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Neurociencia
0 vistas • 4:06 min • April 28th, 2025
Tome una sección de cerebro de ratón fijada químicamente.
Agregue una mezcla de hibridación que contenga un agente de permeabilización y sondas de ARN marcadas con FITC o DIG.
Incubar para permitir la permeabilización celular y la entrada de la sonda.
Las sondas se unen a secuencias complementarias en el ARNm de MBP, un marcador de referencia que se expresa de forma ubicua en oligodendrocitos, o ARNm de ASPA, el objetivo.
Lave para eliminar las sondas sueltas.
Agregue un tampón de bloqueo para evitar la unión de anticuerpos no específicos.
Introducir anticuerpos anti-FITC conjugados con HRP dirigidos a la sonda marcada con FITC.
Lavar, luego agregar FITC-tiramida.
HRP oxida la tiramida FITC en una forma altamente reactiva que se une a las proteínas cercanas, amplificando la señal de fluorescencia.
Lave y vuelva a introducir el tampón de bloqueo.
Agregue anticuerpos anti-DIG conjugados con fosfatasa alcalina dirigidos a la sonda marcada con DIG.
Lavar y aplicar la solución Fast Red.
La fosfatasa alcalina desfosforila Fast Red, produciendo un precipitado fluorescente.
Visualice bajo un microscopio de fluorescencia.
La colocalización de las señales de Mbp y ASPA indica la expresión de ASPA en oligodendrocitos.
Diluya las dos sondas en tampón de hibridación, precalentadas a 65 grados centígrados y mezcle bien. Aplique 300 microlitros de mezcla de hibridación en cada portaobjetos y cubra con un cubreobjetos horneado. Posteriormente, incube los portaobjetos durante la noche a 65 grados centígrados en una cámara humidificada.
Al día siguiente, transfiera los portaobjetos a un frasco Coplin que contenga un tampón de lavado precalentado y lave los portaobjetos durante 30 minutos, dos veces a 65 grados centígrados. Después de eso, lave los portaobjetos durante 10 minutos tres veces con la solución de lavado MABT a temperatura ambiente.
En este paso, use un bolígrafo hidrofóbico para dibujar círculos alrededor de las secciones de tejido. Luego, incube los portaobjetos durante una hora a temperatura ambiente con tampón de bloqueo ISH en una cámara humidificada. A continuación, incube los portaobjetos durante la noche a 4 grados centígrados con un anticuerpo anti-FITC conjugado con peroxidasa de rábano picante.
Luego, coloque los portaobjetos en un frasco Coplin que contenga PBST. Lávelos en PBST tres veces durante 10 minutos cada vez y reemplácelos con PBST fresco cada vez. Luego, agregue tiramida fluorescente a los portaobjetos y déjelos durante 10 minutos a temperatura ambiente. Coloque los portaobjetos en un frasco Coplin y lávelos en PBST durante 10 minutos tres veces.
Posteriormente, incube los portaobjetos con tampón de bloqueo ISH durante una hora a temperatura ambiente. Luego, incube los portaobjetos durante la noche a 4 grados Celsius con un anticuerpo anti-DIG conjugado con fosfatasa alcalina. Después de eso, lávelos con MABT tres veces durante 10 minutos cada vez. A continuación, lave los portaobjetos dos veces con Tris-HCL molar 0,1 a pH 8,2 durante cinco minutos a temperatura ambiente.
Filtre la solución roja rápida e incube los portaobjetos a 37 grados Celsius con una solución roja rápida en una cámara humidificada. Como el tiempo para un desarrollo óptimo varía, revise los portaobjetos regularmente con un microscopio fluorescente para monitorear la formación de precipitado. Luego, lávelos tres veces con PBST durante 10 minutos cada vez.
Este artículo describe un método para detectar la expresión de ARNm en oligodendrocitos utilizando microscopía de fluorescencia. La técnica implica la hibridación de sondas de ARN con dianas específicas de ARNm, seguida de la amplificación de la señal y su visualización.
La hibridación fluorescente in situ doble (FISH) permite una cartografía espacial precisa de la expresión génica en secciones cerebrales de ratón, apoyando el descubrimiento temprano y la validación de dianas en I+D centrada en neurobiología. La capacidad del método para detectar simultáneamente dos objetivos de ARN con alta sensibilidad proporciona claridad mecanicista y confianza predictiva para el análisis de vías moleculares y la expresión específica de tipo celular. Esta capacidad es fundamental para reducir los riesgos asociados a las dianas e informar las decisiones de cartera en el descubrimiento de fármacos para el sistema nervioso central.
Este protocolo doble de FISH se integra en el continuo de descubrimiento a preclínico al permitir la validación guiada por hipótesis de la expresión génica in situ, aportando información para la selección de dianas y las estrategias de biomarcadores.
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Última actualización: 29 agosto 2026