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Neurociencia
0 vistas • 4:31 min • April 28th, 2025
Tome tejido fibrovascular enfermo rehidratado con gel de fibrina incrustado, fijado y permeabilizado derivado del paciente. Este tejido contiene estructuras neovasculares irregulares con células endoteliales y pericitos.
Trate el tejido con una solución bloqueadora para evitar la unión de anticuerpos no específicos.
Incubar con anticuerpos primarios dirigidos a proteínas de superficie en células endoteliales y pericitos.
Enjuague con tampón para eliminar los anticuerpos no unidos, luego incube en tampón.
Después del lavado con tampón, incube con anticuerpos secundarios conjugados con colorantes fluorescentes para unirse a los anticuerpos primarios.
Lavar con tampón para eliminar el exceso de anticuerpos e incubar en tampón.
Después del lavado con tampón, agregue un colorante nuclear para teñir los núcleos celulares. Enjuague con tampón y agua desionizada para eliminar el tinte no unido.
Transfiera el tejido a un portaobjetos de microscopio.
Aplique los medios de montaje y selle con un cubreobjetos que contenga medios de montaje de endurecimiento rápido.
Después de secar al aire, guarde el portaobjetos a baja temperatura. Luego, obtenga imágenes del tejido bajo un microscopio de epifluorescencia para visualizar la disposición espacial de las células endoteliales y los pericitos dentro de las estructuras neovasculares.
Incline la placa sobre un soporte e incube las gotas en 500 microlitros de solución de bloqueo durante dos horas a temperatura ambiente. Prepare la mezcla de anticuerpos primarios de acuerdo con el protocolo de texto.
Luego use una espátula de bordes redondeados para transferir las gotas a una placa de fondo redondo de 96 pocillos. Incube las gotas en 30 microlitros de mezcla de anticuerpos primarios por gota durante la noche a 4 grados centígrados. Al día siguiente, transfiera las gotas a una placa de 12 pocillos que contenga 2 mililitros de solución de lavado por pocillo. Enjuague las gotas con tres lavados de 5 minutos. Luego lave las gotas con nueve lavados de 30 minutos.
Al día siguiente, enjuague las gotas tres veces con PBS. Prepare la mezcla adecuada de anticuerpos secundarios conjugados con fluoróforos de acuerdo con el protocolo de texto. Transfiera las gotas a una placa de fondo redondo de 96 pocillos como se demostró anteriormente. E incubar la placa con 30 microlitros de mezcla de anticuerpos secundarios durante cuatro horas a temperatura ambiente, protegida de la luz.
Después de 4 horas, transfiera las gotas a una placa de 12 pocillos que contenga 2 mililitros de solución de lavado por pocillo. Primero, enjuague las gotas con tres lavados de 5 minutos. Luego lave las gotas con cuatro lavados de 30 minutos.
Al día siguiente, enjuague las gotas cinco veces con solución de lavado durante 30 minutos y tres veces con PBS durante 30 minutos. Al día siguiente, transfiera las gotas a una placa de fondo redondo de 96 pocillos como se demostró anteriormente. Contratiña las gotas con tinte nuclear Hoechst durante 30 minutos a temperatura ambiente. Transfiera las gotas a una placa de 12 pocillos que contenga 2 mililitros de PBS por pocillo. Y enjuague tres veces con PBS.
A continuación, aplique una capa estrecha de medio de montaje de endurecimiento rápido a lo largo de los bordes de una cubierta de vidrio cuadrada. Y déjalo secar durante un minuto. Luego enjuague una gota sumergiéndola en un pocillo de una placa de 12 pocillos que contenga agua desionizada. Y transfiera la gota a un portaobjetos de microscopio.
A continuación, dispense 15 microlitros de medio de montaje antidecoloración no endurecedor en la gota. Coloque suavemente el cubreobjetos sobre la gota con el medio de montaje hacia la corredera. Y deja que se asiente.
Deje que los portaobjetos se sequen durante dos horas a temperatura ambiente y guárdelos a 4 grados centígrados durante la noche. Finalmente, obtenga imágenes de los portaobjetos con un microscopio de epifluorescencia vertical equipado con una función de corte óptico con un objetivo de 20x o 40x.
Este artículo detalla un protocolo para la obtención de imágenes de tejido fibrovascular enfermo derivado de pacientes mediante microscopía fluorescente. El método implica el uso de anticuerpos específicos para visualizar células endoteliales y pericitos dentro de estructuras neovasculares.
Este protocolo de inmunofluorescencia permite la cartografía espacial detallada de células endoteliales y pericitos en tejido fibrovascular derivado de pacientes, lo que apoya la validación de objetivos en la investigación de la retinopatía diabética proliferativa. Al preservar la arquitectura neovascular dentro del gel de fibrina, el método proporciona un sistema relevante para la enfermedad, útil para la reducción mecanicista de riesgos en las vías angiogénicas. Este enfoque mejora la confianza predictiva en la selección preclínica de objetivos al vincular marcadores moleculares con la patología estructural.
El método se integra en el continuo de descubrimiento desde la identificación del blanco hasta la optimización del fármaco líder, proporcionando una validación basada en imágenes antes de los ensayos funcionales.
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Última actualización: 29 agosto 2026