-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

ES

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

Spanish

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuroscience
Modelado de la regeneración sensorial de axones en una rata mediante la inyección de ganglios de ...
Modelado de la regeneración sensorial de axones en una rata mediante la inyección de ganglios de ...
Encyclopedia of Experiments
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
Encyclopedia of Experiments Neuroscience
Modeling Sensory Axon Regeneration in a Rat Using Dorsal Root Ganglion Injection and Dorsal Root Crush Injury

Modelado de la regeneración sensorial de axones en una rata mediante la inyección de ganglios de la raíz dorsal y la lesión por aplastamiento de la raíz dorsal

Protocol
450 Views
04:38 min
July 8, 2025
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Transcript

Comience con una rata anestesiada.

Haga una incisión en la línea media de la piel entre las vértebras cervicales C2 y T2 torácicas.

A continuación, haga una incisión a lo largo de la línea media del tejido fibroso blanco y retraiga la primera capa muscular.

Diseccionar el tejido membranoso delgado en la línea media de la segunda capa muscular, luego retraer los músculos longitudinales estriados.

Finalmente, haga una incisión en la tercera capa muscular para exponer la columna vertebral.

Retire la lámina y el pedículo que recubren las vértebras C4 a T1 izquierdas para revelar los ganglios de la raíz dorsal C5 a C8 o DRG.

Inyecte una suspensión viral adenoasociada recombinante en los DRG.

El virus codifica una proteína promotora del crecimiento que ayuda en la regeneración axonal.

Con fórceps, aplaste las raíces dorsales C5 a C8 para cortar las conexiones axonales del DRG a la médula espinal, creando una lesión axonal controlada.

El modelo está listo para estudiar la regeneración axonal mediada por virus.

Comience la cirugía ubicando las apófisis espinosas C2 y T2 prominentes sobre la piel. Luego use un bisturí número 10 para hacer una incisión en la piel entre las apófisis espinosas C2 y T2. Una vez que se abre la piel, debe ser visible una línea media de tejido fibroso blanco en la primera capa de músculo, que tiene una textura gelatinosa.

Haga una incisión de tamaño similar en la primera capa de músculo a lo largo de la línea media blanca. No vaya más allá de la prominente apófisis espinosa T2, ya que hay un vaso sanguíneo importante ubicado cerca de allí. Retraiga la primera capa de músculo usando dos retractores, uno colocado rostralmente y otro caudalmente.

La segunda capa de músculo con apariencia estriada ahora debería ser visible. Localice la línea media de la segunda capa de músculo, donde se pueden observar dos músculos longitudinales, conectados por un tejido membranoso delgado. Luego use un par de microtijeras para diseccionar el tejido membranoso y separar los dos músculos longitudinales.

Ajuste los retractores para exponer la tercera capa de hocico delgado que cubre la columna vertebral. Las apófisis espinosas se pueden sentir tocando ligeramente con un par de fórceps sobre la tercera capa de músculo. Use microtijeras para hacer una pequeña incisión en la tercera capa del músculo. Y raspe suavemente el músculo del hueso con una cureta o bisturí de manera lateral para exponer claramente las vértebras.

Para exponer los DRG C5 a C8 izquierdos, use un par de rongeurs finos para realizar una hemilaminectomía izquierda en las vértebras C4 a T1 extirpando cuidadosamente parte de la lámina y el pedículo. Una vez que se haya expuesto suficiente DRG para la inyección, prepare la jeringa colocando la jeringa de microlitros llena de virus equipada con una aguja roma de calibre 33 hecha a medida, en el soporte de la jeringa estereotáxica. A continuación, use una aguja biselada de calibre 30 para hacer una pequeña abertura superficial en cada uno de los DRG específicos para ayudar con la inserción de la aguja de inyección. Ajuste suavemente las coordenadas estereotáxicas para insertar la aguja de calibre 33 en el centro del DRG.

Idealmente, la aguja debe colocarse en el centro del DRG para garantizar una difusión uniforme de la solución inyectada en todo el DRG.

Una vez insertada la aguja, use la bomba de jeringa de infusión para inyectar 1 microlitro del virus en cada GRD. Durante la inyección, el DRG cambiará lentamente de color si la solución del virus contiene un tinte de color. No inserte demasiado la aguja, ya que esto puede hacer que el líquido se filtre por el lado ventral del DRG.

En caso de fuga durante la inyección, ajuste la posición de la aguja inmediatamente. Tres minutos después del final de la inyección, retire la aguja de inyección. Para realizar una lesión simultánea por aplastamiento de la raíz dorsal C5 a C8, aplaste cada raíz tres veces durante 10 segundos con un par de pinzas de punta fina. Oponerse completamente a los extremos de los fórceps. Debe aparecer una línea blanca en el tejido en el sitio del aplastamiento.

Related Videos

Investigadora de axón mamífero de regeneración: En Vivo electroporación de ganglio de raíz Dorsal de ratón adulto

06:17

Investigadora de axón mamífero de regeneración: En Vivo electroporación de ganglio de raíz Dorsal de ratón adulto

Related Videos

8.8K Views

Inducción de lesión cerebral axonal difusa en ratas basada en aceleración rotacional

06:14

Inducción de lesión cerebral axonal difusa en ratas basada en aceleración rotacional

Related Videos

8.8K Views

Mielinización in vitro de axones periféricos en un cocultivo de explantes de ganglio de raíz dorsal de rata y células de Schwann

08:57

Mielinización in vitro de axones periféricos en un cocultivo de explantes de ganglio de raíz dorsal de rata y células de Schwann

Related Videos

2.5K Views

Imágenes en vivo de los axones de la raíz dorsal después de rizotomía

06:39

Imágenes en vivo de los axones de la raíz dorsal después de rizotomía

Related Videos

14.1K Views

Ratón reproducible aplastamiento del nervio ciático y posterior evaluación de la regeneración mediante el análisis de músculo entero Monte

08:49

Ratón reproducible aplastamiento del nervio ciático y posterior evaluación de la regeneración mediante el análisis de músculo entero Monte

Related Videos

34.6K Views

Estudio genético de la regeneración axonal en neuronas cultivadas de Adultos ganglio de la raíz dorsal

09:42

Estudio genético de la regeneración axonal en neuronas cultivadas de Adultos ganglio de la raíz dorsal

Related Videos

27.1K Views

Regeneración axonal en el nervio ciático de un ratón después de una lesión por aplastamiento

02:40

Regeneración axonal en el nervio ciático de un ratón después de una lesión por aplastamiento

Related Videos

234 Views

Transfección mediada por electroporación de ganglios de la raíz dorsal de ratón para promover la regeneración sensorial de axones

02:56

Transfección mediada por electroporación de ganglios de la raíz dorsal de ratón para promover la regeneración sensorial de axones

Related Videos

308 Views

El uso de chips de microfluídica para imágenes en vivo y de estudio de las respuestas de lesiones en Drosophila Las larvas

11:46

El uso de chips de microfluídica para imágenes en vivo y de estudio de las respuestas de lesiones en Drosophila Las larvas

Related Videos

15.8K Views

Inyección de raíz dorsal ganglio de raíz dorsal y Lesión por aplastamiento como modelo para la regeneración del axón sensorial

09:48

Inyección de raíz dorsal ganglio de raíz dorsal y Lesión por aplastamiento como modelo para la regeneración del axón sensorial

Related Videos

18.7K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code