Tinción inmunohistoquímica de criosecciones de tejido coronal de rata para microglía y neuronas

0 vistas3:59 min • April 28th, 2025

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Tome un portaobjetos que contenga criosecciones fijas y permeabilizadas de tejido coronal de rata.

Delinee las secciones con un bolígrafo hidrofóbico para crear un entorno de tinción controlado.

Transfiera las secciones a una cámara de humedad para evitar que los reactivos y el tejido se sequen durante los pasos posteriores.

Tratar las secciones con proteínas séricas para bloquear los sitios de unión no específicos.

Enjuague con tampón para eliminar el exceso de proteínas séricas.

Incubar con anticuerpos primarios dirigidos a proteínas específicas en la microglía y las neuronas.

Lavar con tampón para eliminar los anticuerpos primarios no unidos.

Incubar con anticuerpos secundarios conjugados con fluoróforos que se unen a los anticuerpos primarios.

Lavar con tampón para eliminar los anticuerpos secundarios no unidos. Luego, enjuague con agua doble destilada.

Aplique medios de montaje acuosos para proteger la señal fluorescente, coloque un cubreobjetos y séllelo.

Imágenes de las secciones bajo un microscopio de fluorescencia para visualizar la microglía y las neuronas inmunomarcadas.

Seque los bordes de las diapositivas y haga un borde repelente de líquidos alrededor del borde de la diapositiva con un bolígrafo de papanicolaou, para asegurar una cobertura uniforme del líquido y reducir los efectos de los bordes. A continuación, bloquee las secciones agregando 300 microlitros de suero en PBS a cada portaobjetos. El suero, debe ser de la especie en la que se cría el anticuerpo secundario. En este caso, se utilizó suero de burro.

Asegúrese de que la solución de bloqueo se extienda hasta el borde del portaobjetos y cubra completamente el tejido para evitar manchas desiguales. Coloque los portaobjetos en una cámara de humedad para incubar a temperatura ambiente, durante una hora. Durante la incubación, prepare los anticuerpos primarios. Diluya el anticuerpo IBA1, de 1 a 5.000 y el anticuerpo panneuronal, de 1 a 500 en una mezcla de suero de burro al 1% en PBS.

Retire la solución de bloqueo y agregue 300 microlitros de la solución de anticuerpos, que contiene ambos anticuerpos de interés. Coloque todos los portaobjetos en una cámara de humedad e incube durante la noche a 4 grados centígrados. A la mañana siguiente, lave los portaobjetos tres veces en PBS durante cinco minutos cada uno.

Preparar la mezcla de anticuerpos secundarios fluorescentes, diluyendo ambos de 1 a 250, en suero de burro al 1% en PBS. Agregue 300 microlitros de la mezcla en cada portaobjetos. Y coloque los portaobjetos en una cámara de humedad ligera y hermética durante 60 minutos a temperatura ambiente. Luego lave los portaobjetos tres veces en PBS durante cinco minutos cada uno. Y finalmente, enjuáguelos en agua doble destilada. Proteja las diapositivas de la luz mientras las lava en PBS.

Agregue unas gotas de un medio de montaje acuoso, que ayuda a preservar la intensidad de la señal de fluorescencia en cada portaobjetos. Luego, cubra el portaobjetos y elimine las burbujas de aire restantes con un aplicador con punta de algodón. Para sellar los medios de montaje en las guías y evitar que las secciones se sequen, cubra los bordes con esmalte de uñas. Los portaobjetos se dejan secar durante una hora en una caja protegida contra la luz, antes de almacenarlos en un recipiente ligero y hermético, envueltos en papel de aluminio a 4 grados centígrados.

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Última actualización: 15 agosto 2026