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Comience con neuronas hipotalámicas primarias de ratón de tipo salvaje y knockout CCR5 cultivadas en cubreobjetos recubiertos de poli-D-lisina en una placa de pocillos múltiples.
Estas neuronas expresan el transportador de glucosa-4 marcado con proteína verde fluorescente (GFP-GLUT4) en el citoplasma.
Transfiera los cubreobjetos a portaobjetos de vidrio y limpie suavemente el exceso de medio para garantizar la estabilidad durante la adquisición de imágenes.
Coloque un portaobjetos en la platina del microscopio de deconvolución con el cubreobjetos hacia abajo.
Visualice las neuronas bajo iluminación de campo claro, luego trátelas con la quimiocina CCL5 e insulina secuencialmente.
Cambie a iluminación de fluorescencia para identificar las neuronas diana que expresan GFP-GLUT4 y ajuste los parámetros de imagen para capturar imágenes fluorescentes en vivo.
En las neuronas de tipo salvaje, la insulina y CCL5 se unen al receptor de insulina y CCR5, respectivamente, activando las vías de señalización aguas abajo que impulsan la translocación de la membrana GFP-GLUT4.
En las neuronas knockout de CCR5, CCL5 no se une, lo que resulta en una translocación reducida de GFP-GLUT4.
Capture las imágenes y aplique un algoritmo de deconvolución para reducir la luz desenfocada, mejorando la claridad y la resolución de la imagen.
Para preparar las células para imágenes en vivo, retire con cuidado los cubreobjetos con neuronas con fórceps y colóquelos en el portaobjetos de vidrio con precaución. A continuación, retire el exceso de medio con toallitas delicadas doblándolas dos veces y colocándolas con cuidado sobre el cubreobjetos sin moverlo.
Es esencial eliminar el exceso de medio para evitar movimientos innecesarios en el cubreobjetos.
A continuación, trate las muestras de células seleccionadas con CCL5 a 10 nanogramos por mililitro o insulina a 10 unidades por mililitro durante un minuto. A continuación, añade 1,5 microlitros de insulina diluida en el borde de los cubreobjetos. Luego, agregue aceite de inmersión en una lente de objetivo 1.52 NA de 60 aumentos de aumento.
Luego, coloque los cubreobjetos en la platina del microscopio de deconvolución con los cubreobjetos hacia abajo y asegurados correctamente. Utilice iluminación de campo claro o fluorescencia para identificar las células objetivo. Luego, ajuste el enfoque hasta que las células objetivo se puedan observar claramente. No mueva la lente del objetivo fuera del área del cubreobjetos para evitar marcas de arañazos innecesarias.
A continuación, identifique GFP-GLUT4 por la señal GFP. Luego identifique las celdas objetivo deseadas para la adquisición de imágenes. Posteriormente, establezca los parámetros experimentales adecuados en cada celda objetivo, incluido el número de píxeles, la longitud de onda de excitación, el porcentaje de transmisión, el tiempo de exposición, el grosor de la pila, el intervalo de tiempo y el tiempo total de imágenes. Ajuste el parámetro de exposición a aproximadamente 2.000 a 3.000 recuentos para lograr la máxima intensidad de píxeles.
Para minimizar el fotoblanqueo por fluorescencia, reduzca al máximo el porcentaje de transmisión de luz de excitación, manteniendo el tiempo de exposición inferior a 1 segundo. Establezca el límite superior e inferior de la pila z en cada celda objetivo moviendo la platina del microscopio hasta que la parte superior e inferior de la celda objetivo estén ligeramente desenfocadas.