Imágenes confocales del movimiento mitocondrial dentro de los oligodendrocitos en cultivos organotípicos de cortes de cerebro

0 vistas4:11 min • April 28th, 2025

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Comience con una configuración de cámara de baño de microscopio confocal con una solución de imagen circulante y temperatura controlada.

Tome una membrana polimérica hidrófila que contenga una rebanada de cerebro de ratón organotípica en la que los oligodendrocitos se hayan transducido para expresar una proteína fluorescente roja específica de las mitocondrias y una proteína fluorescente verde específica del citosol.

La fluorescencia dual permite una visualización clara de la dinámica mitocondrial dentro del citosol del oligodendrocito.

Sumerja la rebanada en el centro de la bañera y asegúrela con un ancla de arpa.

Baja el objetivo y selecciona un oligodendrocito sano para escanear.

Ajuste la potencia del láser para minimizar la toxicidad celular y el fotoblanqueo.

Establezca los parámetros del microscopio y luego registre imágenes de lapso de tiempo de mitocondrias marcadas con fluorescencia.

Capture imágenes de pila z a diferentes profundidades para obtener una vista tridimensional de alta resolución de toda la celda.

Procese las imágenes para visualizar el movimiento mitocondrial dentro del oligodendrocito.

Use fórceps para transferir el confeti con la rebanada de la placa de Petri a la parte superior del baño. Luego coloca las dos puntas de las pinzas a cada lado del confeti para que toquen el confeti sin tocar la rebanada. Y empuje el confeti a través de la solución hasta el fondo del baño. Centre el confeti en el medio del baño.

Use fórceps para colocar el ancla de sujeción o el arpa encima del confeti sin tocar la rebanada. Luego vuelva a encender la bomba peristáltica. Bajar el objetivo hasta la muestra. A continuación, utilice los oculares y la lámpara fluorescente para encontrar rápidamente un oligodendrocito de aspecto saludable con expresión de proteínas fluorescentes.

Utilice la función en vivo en el software para identificar la celda en la pantalla. Y elige el área de interés. Aquí, se visualizará un área que contiene varios procesos primarios y una vaina de mielina. Acérquese al campo de interés. Esto normalmente producirá una imagen con un tamaño de píxel de 0,14 a 0,30 micras.

Seleccione la herramienta Regiones y dibuje un rectángulo alrededor del área. Elija la opción para escanear solo la región seleccionada. El tiempo de escaneo y, por lo tanto, la exposición al láser se reducen escaneando solo la región seleccionada.

Ajuste la potencia y la ganancia del láser para obtener una buena vista de las mitocondrias. Utilice baja potencia láser y alta ganancia para evitar el blanqueamiento durante las imágenes en vivo. Si es necesario, ajuste el desplazamiento digital.

Minimice el tiempo de escaneo seleccionando una velocidad de escaneo rápida. Establezca la frecuencia y la duración de la grabación de lapso de tiempo para imágenes mitocondriales y oligodendrocitos. Capture imágenes cada dos segundos durante un total de 20 minutos. Inicie la grabación de lapso de tiempo.

El flujo continuo de solución puede provocar el movimiento de la rebanada. Vale la pena dedicar algún tiempo a minimizar este movimiento ajustando las entradas y salidas de la bañera. También puede reducir la velocidad de la bomba.

Monitorea continuamente la pantalla durante las imágenes de lapso de tiempo, ya que generalmente ocurren pequeños cambios en el enfoque. Ajuste el enfoque según sea necesario. Después de las imágenes de lapso de tiempo, capture una pila Z de toda la célula, para la identificación futura de la célula y el proceso de imagen.

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Última actualización: 22 agosto 2026