Obtención de imágenes de la dinámica intracelular del ATP mediante sensores basados en FRET en un corte organotípico del hipocampo de un ratón

0 vistas3:40 min • April 28th, 2025

Asegure un corte organotípico de hipocampo de ratón en una cámara experimental.

El corte contiene neuronas transducidas y astrocitos que expresan un sensor de ATP con proteínas fluorescentes donantes y aceptoras.

Coloque la cámara en una platina de microscopio de fluorescencia y perfunda con ACSF oxigenado.

Permite que el segmento se adapte a las condiciones almacenadas en búfer.

Usando luz de transmisión, enfoca el segmento e identifica el área de interés.

Cambie al modo de fluorescencia y excite la proteína fluorescente donante para iniciar la emisión de fluorescencia.

Tras la unión de ATP, el sensor sufre cambios conformacionales, lo que permite la transferencia de energía basada en fluorescencia del donante al aceptor, que emite fluorescencia a una longitud de onda más larga.

Utilice un espejo dicroico y filtros de paso de banda para aislar y separar las emisiones donantes y aceptoras.

Seleccione una región sin fluorescencia para la sustracción de fondo. Luego, identifique las células diana y registre su fluorescencia a lo largo del tiempo.

Calcule la relación FRET para monitorear los niveles de ATP intracelular en tiempo real.

Prepare ACSF experimental y obtenga un pH de 7,4 burbujeándolo con 95% de oxígeno y 5% de dióxido de carbono a través de un tubo insertado conectado al suministro de carbohidratos durante al menos 30 minutos. Mantenga la solución salina burbujeando durante todo el experimento. Luego, encienda la fuente de luz fluorescente del monocromador.

Transfiera el cultivo de rodajas organotípicas a la cámara experimental. Coloque una rejilla encima del cultivo de rodajas organotípicas con el marco hacia abajo, sin tocar el cultivo, y los hilos hacia arriba, tocando la membrana. Coloque la cámara en la platina del microscopio y conéctela al sistema de perfusión.

Encienda la bomba peristáltica a un caudal de 1,5 a 2,5 mililitros por minuto. Asegúrese de que no haya fugas en el sistema de perfusión. Usando luz de transmisión, enfoque el corte cultivado e identifique el área donde se realizarán los experimentos.

Antes de comenzar los experimentos de imágenes, espere al menos 15 minutos para permitir que las rodajas se adapten a las condiciones salinas. A continuación, encienda la cámara y el software de imágenes. Excitar la proteína fluorescente donante a 435 nanómetros. Ajuste el tiempo de exposición entre 40 y 90 milisegundos.

A continuación, inserte el espejo dicroico y los filtros en la unidad divisora de haz. Divida la emisión de fluorescencia a 500 nanómetros con un divisor de imagen de emisión y emplee filtros de paso de banda a 482 más o menos 16 y 542 más o menos 13,5 nanómetros para aislar aún más la fluorescencia del donante y del aceptor.

Seleccione una región de interés aparentemente desprovista de fluorescencia celular para la sustracción de fondo. Encierre en un círculo estructuras individuales de tejido etiquetado en la imagen de la pantalla para crear ROI. Establezca la frecuencia de adquisición de imágenes en el tiempo total de grabación. Para experimentos de más de 30 minutos, se recomienda una frecuencia de adquisición de 0,2 a 0,5 Hertz para prevenir la fototoxicidad. Posteriormente, inicie la grabación.

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Última actualización: 29 agosto 2026