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Coloque una rebanada de cerebro de ratón fijada químicamente en un plato con fondo de vidrio que contenga tampón y asegúrelo con una malla.
Conecte un electrodo lleno de un tinte fluorescente aniónico e hidrofílico a una fuente de voltaje.
Inserte un electrodo de tierra en el tampón para completar el circuito eléctrico.
Usando iluminación de campo claro, avance el electrodo lleno de tinte hacia la rebanada.
Cambie a imágenes de contraste de interferencia diferencial infrarroja para localizar un astrocito.
Perfore el soma de astrocitos con el electrodo para acceder al citoplasma.
Aplique una corriente eléctrica para conducir el tinte al citoplasma a través de la iontoforesis.
Cambie a microscopía confocal para monitorear el movimiento del tinte.
El tinte hidrófilo, incapaz de atravesar la membrana hidrofóbica, se difunde dentro del citoplasma para llenar el soma y las ramas.
Una vez que la celda esté llena, detenga la corriente y retire el electrodo.
Deje que la membrana de los astrocitos se vuelva a sellar.
Adquiera imágenes en varios planos Z y reconstrúyalas para visualizar la morfología de los astrocitos.
Para la prueba de inyección de tinte, coloque suavemente una rebanada de cerebro ligeramente fijada en un plato con fondo de vidrio lleno de PBS molar 0.1 a temperatura ambiente. Y mantenga la rebanada en su lugar con un arpa de platino con cuerdas de nylon.
Conecte el electrodo a una fuente de voltaje y coloque el electrodo de tierra en el baño que contiene el corte de cerebro. Mueva el objetivo de un microscopio confocal a la región del cerebro de interés.
Y baje el electrodo en la solución con la lente de inmersión en agua de 10x, moviendo el electrodo al centro del campo de visión. Luego, bajo un campo claro, baje lentamente el electrodo hacia el corte, deteniéndose justo por encima de la superficie.
Para llenar un astrocito de interés con iontoforesis, use el contraste de interferencia diferencial infrarroja para identificar astrocitos con somata alargado de forma ovalada, de aproximadamente 10 micrómetros de diámetro, de 40 a 50 micrómetros por debajo de la superficie del corte.
Este es el estrato radiado del hipocampo directamente debajo de la capa de células piramidales. A medida que nos movemos por el tejido, podemos ver vasos sanguíneos, neuronas, astrocitos y otros tipos de células.
Una vez que se haya seleccionado un astrocito, mueva la celda al centro del campo de visión y baje lentamente la punta del electrodo en la rebanada. Navegar a través del tejido hasta que el electrodo esté en el mismo plano que el cuerpo celular.
Una vez que el cuerpo celular del astrocito esté claramente visible y delineado, avance lenta y suavemente el electrodo hacia adelante, moviendo el electrodo hasta que la punta empale el soma de la célula.
Mueva el enfoque del objetivo lentamente hacia arriba y hacia abajo para observar si el electrodo está dentro del soma. Una vez que la punta del electrodo esté dentro de la celda, encienda el estimulador de 0.5 a 1 voltio para expulsar continuamente la corriente hacia la celda.
Con el microscopio confocal, observe el llenado de la celda, aumentando el zoom digital para visualizar los detalles de la celda y asegurarse de que la punta del electrodo sea visible dentro de la celda según sea necesario.
Espere unos 15 minutos hasta que las ramas y procesos más finos parezcan definidos, antes de apagar el voltaje y retirar suavemente la punta del electrodo de la celda.
Para obtener imágenes de la célula llena, espere de 15 a 20 minutos para que la célula vuelva a su forma original, antes de ajustar la configuración en el microscopio confocal para asegurarse de que las ramas y procesos más finos aparezcan definidos bajo el objetivo de 40x.
Configure una pila z con un tamaño de paso de 0,3 micrómetros, moviendo el objetivo mientras se obtiene la imagen hasta que no haya señal de la celda. Y establecer ese escalón como la cima.
Luego mueva el objetivo hacia abajo, enfocando a través de la célula hasta que no haya señal. Y establece ese paso como la parte inferior.