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Neurociencia
0 vistas • 4:27 min • June 17th, 2025
Comience con un cerebro de Drosophila eliminado con glicerol en medios de montaje antidecoloración.
El cerebro contiene neuronas de médula dispuestas en capas, que organizan conexiones sinápticas, y columnas, que coordinan circuitos neuronales.
Algunas de estas neuronas están marcadas con marcadores fluorescentes verdes, en contraste con los axones fotorreceptores fluorescentes rojos.
Coloque el cerebro con el lado ventral hacia arriba. Coloque un cubreobjetos con pequeños parches de arcilla a los lados para evitar aplastar la muestra cerebral.
Bajo un microscopio, obtenga la pila de imágenes de vista horizontal, que contiene la neurona etiquetada en verde.
Retire el cubreobjetos y vuelva a colocar el cerebro, con la parte anterior hacia arriba.
Capture una pila de imágenes de la vista frontal de la misma neurona.
Usando el software, combine estas imágenes, elimine el canal fotorreceptor y visualice la imagen 3D de la neurona.
Trace el axón y luego las dendritas, siguiendo cada rama hasta su terminación, para mapear la organización dendrítica a través de las capas y columnas de la médula.
Para montar el cerebro en orientación horizontal, transfiera un cerebro limpiado de glicerol a una gota de 20 microlitros de medio de montaje antidecoloración, depositada centralmente en el portaobjetos del microscopio. Luego, en un cubreobjetos, coloque pequeños parches de arcilla en las cuatro esquinas para evitar que el cubreobjetos aplaste el cerebro.
Ahora, bajo un microscopio de disección, coloque los cerebros en la posición ventral hacia arriba. Use la superficie dorsal convexa del cerebro como punto de referencia para identificar la orientación de la muestra cerebral. Esto proporcionará una vista horizontal de la neurona. Luego coloque el cubreobjetos.
Utilizando un microscopio confocal, idealmente equipado con detectores GaAsP. Obtenga la pila de imágenes de vista horizontal con un objetivo de alta apertura numérica y un zoom digital de 2.5. Adquirir al menos 180 secciones ópticas, tener 512 píxeles cuadrados y un tamaño de paso de 0,2 micras.
Después de tomar la primera pila de imágenes, retire el cubreobjetos del portaobjetos y vuelva a colocar el cerebro en la posición anterior hacia arriba, lo que proporciona una vista frontal. Luego, usando la misma técnica, haga una nueva pila de imágenes de la vista frontal de las mismas neuronas fotografiadas en la vista horizontal. Asegúrese de registrar también la ubicación de la neurona de interés con respecto al neuropilo de la médula.
Identificar las mismas neuronas es factible con un aumento menor. Sin embargo, si se pierde la señal porque el tejido es profundo, simplemente obtenga una imagen de la mitad ventral del cerebro.
El objetivo de este procedimiento es rastrear neuritas y asignar puntos de referencia para el registro. Primero, abra el archivo de imagen recombinado. Luego vaya a Editar, luego a Mostrar ajuste de pantalla y apague el canal del fotorreceptor, que es rojo.
A continuación, visualice la imagen en el modo de superación. Si el ordenador está equipado con el sistema de estereógrafo, encienda el estéreo y utilice el modo Quad Buffer para visualizar imágenes en 3D. Agrega nuevos filamentos. Ve a Superar, luego Filamentos. Y haga clic en la pestaña etiquetada "Omitir creación automática, editar manualmente". Luego haga clic en la pestaña Dibujar y seleccione Autoprofundidad.
A continuación, seleccione Configuración. Alterne la opción Línea e ingrese el número de píxel apropiado para una mejor visualización. A continuación, alterne Mostrar dendritas, Punto inicial y Punto de bifurcación, y establezca la Calidad de renderizado en 100%. Ahora seleccione la pestaña Dibujar y comience a rastrear neuritas. Comience con el axón, luego pase a las dendritas. El axón y las dendritas de las neuronas transmédulas deberían ser fáciles de diferenciar.
Después de rastrear las neuritas, vuelva a Configuración y desactive Punto de inicio y Punto de ramificación. Luego vaya a Superar, luego a Exportar. Seleccione objetos y guarde el filamento como un archivo de Inventor.
Este artículo detalla un método para la obtención de imágenes de neuronas del cerebro de Drosophila mediante microscopía confocal. El enfoque está en visualizar y rastrear la organización de las neuronas de la medula y sus conexiones sinápticas.
Este método permite la visualización tridimensional de alta resolución de la morfología neuronal en un sistema modelo genéticamente manipulable, apoyando la validación de objetivos mediante la cartografía detallada de la estructura de los circuitos neuronales. Al proporcionar datos morfológicos cuantitativos a través de capas y columnas anatómicas definidas, mejora la reducción mecanicista de riesgos en las fases iniciales del descubrimiento al aclarar las relaciones entre estructura y función. El enfoque respalda la confianza predictiva en la selección de objetivos al vincular la organización dendrítica con patrones de conectividad sináptica relevantes para los modelos de enfermedades neuropsiquiátricas.
El método se integra en el continuo de descubrimiento, desde la validación temprana del blanco hasta la identificación de compuestos activos, al proporcionar datos de fenotipificación estructural que aportan información para la comprensión mecanicista y la modelización predictiva.
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Última actualización: 22 agosto 2026