Name: Cambio de la dirección y la orientación del campo eléctrico durante la aplicación pulsos eléctricos Mejora la transferencia de genes plásmido In vitro /em (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-09-12T14:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 46 s
Description: Aprende a mejorar la transferencia de genes mediante electroporación cambiando la orientación del campo eléctrico en células CHO. Este método optimiza la eficiencia sin comprometer la viabilidad celular.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Este trabajo fue apoyado por la Agencia de Investigación de Eslovenia (proyecto J2-9770, IP-0510 centro de la infraestructura y el programa P2-0249). Este video representa el material complementario para la &quot;base de electroporación, tecnologías y tratamientos&quot; taller científico y postgrado, organizado por la Facultad de Ingeniería Eléctrica de la Universidad de Ljubljana, en Eslovenia. Los autores agradecen también Dusa Hodzic por la amabilidad de proporcionar el ADN del plásmido.

1. Cultivo de células, plásmido y la preparación de amortiguamiento para el experimento <ol><li> En este experimento células ováricas de hámster chino (CHO-K1) se utilizan. Las células se cultivan en una mezcla de nutrientes HAM-F12 (PAA) suplementado con 2 mM L-glutamina, un 10% de suero fetal bovino, 400 l / l de gentamicina (todos de Sigma-Aldrich Chemie GmbH, Deisenhofen, Alemania), y 1 ml / l crystacilin (Pliva, Zagreb, Croacia). Las células se mantuvieron a 37 º C en un humidificado 5% de CO2 la atmósfera en la incubadora durante 24 horas. </li><li> Amplificar plásmido pEGFP-N1 (Clontech Laboratories Inc., Mountain View, CA, EE.UU.) que codifica la proteína verde fluorescente (GFP) en la cepa de Escherichia coli DH5a y aislarlo con Kit Hi-Speed ​​Maxi plásmido (Qiagen, Hilden, Alemania). Concentración de ADN plásmido (plásmido disuelto en buffer TE) debe ser determinado por espectrofotometría a 260 nm y se confirmó por electroforesis en gel. </li><li> Prepare el buffer de isoosmolar fosfato de sodio (10 mM Na 2 HPO 4, 10 mM NaH 2 PO 4, 1 mM MgCl 2, 250 mM de sacarosa, pH 7,4). </li><li> En el día del experimento de preparar la suspensión de células por tripsinización con 0,25% de tripsina / EDTA (Sigma-Aldrich Chemie GmbH, Deisenhofen, Alemania). Las células se centrifuga durante 5 min a 1000 rpm (180 xg) a 4 ° C (Sigma, Alemania) y resuspender el sedimento celular en tampón fosfato de sodio isoosmolar a una densidad celular de 5 x 10 6 células / ml. </li></ol> 2. Equipo de hardware <ol><li> Las células son expuestas a campos eléctricos en la punta de la pipeta (Figura 1) con electrodos integrados conectados a un generador prototipo de alta tensión. La punta y la geometría de los electrodos permite la aplicación de campo eléctrico relativamente homogénea y el generador permite el envío de pulsos eléctricos en diferentes direcciones. La punta y el generador se desarrollaron en el Laboratorio de Biocibernética, Facultad de Ingeniería Eléctrica de la Universidad de Ljubljana 1. </li></ol><img src="/files/ftp_upload/3309/3309fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Vertical y horizontal (a) sección transversal y la fotografía (b) de la punta de la pipeta con electrodos integrados. En la sección transversal de color gris se utiliza para la carcasa de plástico y el negro para los electrodos. La punta de la pipeta con electrodos integrados consta de cuatro electrodos de barra cilíndrica. Los electrodos son de acero inoxidable, su diámetro es de 1,4 mm, electrodos adyacentes son 1 mm, y los electrodos opuestos son 2 mm. Los electrodos se pegan en la punta de plástico en paralelo y su longitud de aplicación es de 30 mm 2. 3. Gene electrotransferencia protocolo <ol><li> Añadir plásmido pEGFP-N1 a una suspensión celular en la concentración de 10 ug / ml. </li><li> Incubar la mezcla durante 2-3 minutos a temperatura ambiente, antes de la aplicación de pulsos eléctricos. </li><li> Aspire 100 l de suspensión de células en la punta de la pipeta con electrodos integrados. </li><li> Para lograr la mejor eficacia de electrotransferencia gen y mantener la viabilidad celular, los parámetros óptimos de los impulsos eléctricos se debe utilizar. En este experimento, un tren de 8 pulsos rectangulares (cada uno con duración de 1 ms, la amplitud de 225 V a una frecuencia de repetición Hz) se aplica a cada muestra, utilizando alta tensión del generador prototipo. Dos diferentes protocolos de campo eléctrico (Figura 2) se utilizan: en el primer protocolo de todos los pulsos son entregados en la misma dirección, mientras que en los pulsos de segundo protocolo se entregan al cambiar alternativamente la dirección del campo eléctrico y la orientación. El segundo protocolo sólo se puede usar con generador de impulsos adecuados, lo que permite la aplicación de pulsos eléctricos en diferentes direcciones. </li><li> Inmediatamente después de la aplicación de pulsos de transferencia de las células de la punta de la pipeta en 6 pocillos y añadir suero fetal bovino (FCS-Sigma, EE.UU.) (25% del volumen de la muestra). </li><li> Se incuban las células durante 5 min a 37 ° C para permitir que el resellado de la membrana celular. </li><li> Añadir 2 ml de HAM-F12 para cada muestra en 6 pocillo e incubar las células durante 24 horas a 37 ° C en un humidificado 5% de CO2 la atmósfera en la incubadora. </li></ol><img src="/files/ftp_upload/3309/3309fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> . Figura 2 protocolos de campo eléctrico: (a) todos los pulsos son entregados en la misma dirección, (b) Los pulsos son entregados por el cambio, alternativamente, la dirección del campo eléctrico y la orientación. 4. De adquisición de imágenes y la determinación de la eficacia del gen electrotransferencia <ol><li> La eficacia del gen electrotransferencia se determina como el porcentaje de células que expresan GFP 24 horas después de la aplicación de pulsos. </li><li> Las células se observan con un microscopio de fluorescencia (en nuestro caso Zeiss 200, Axiovert, ZR Alemania) con luz de excitación a 488 nm generada por un sistema monocromador (policroma IV, Visitron, Alemania) y la emisión se detecta a 507 nm. Las imágenes se graban mediante imágenes de sistema (sistema de imagen MetaMorph, Visitren, Alemania), pero otro software de adquisición similar también se puede utilizar. </li><li> Adquirir al menos cinco imágenes (contraste de fases y fluorescencia verde) en el aumento del objetivo de 20x. </li><li> Recuento de células en la imagen de contraste de fase y las células que expresan GFP en la imagen de fluorescencia verde. Determinar el porcentaje de eficacia del gen electrotransferencia dividiendo el número de células que expresan GFP con el número de todas las células en cada imagen correspondiente (Figura 3). </li></ol> 5. Los resultados representativos: <img src="/files/ftp_upload/3309/3309fig3.jpg" alt="Figura 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. El porcentaje de células que expresan GFP cuando todos los pulsos son entregados en la misma dirección y, cuando las leguminosas son entregados por el cambio, alternativamente, la dirección del campo eléctrico y la orientación se presenta. Las células fueron expuestas a un tren de ocho pulsos con amplitud de 225 V, la duración de 1 ms y la frecuencia de repetición de 1 Hz. Los resultados fueron obtenidos por medio de microscopía de fluorescencia. Cada valor en el gráfico representan la media de tres experimentos independientes ± desviación estándar. Al cambiar la dirección del campo eléctrico y la orientación que el porcentaje de células que expresan GFP aumenta.

<ol><li>Rebersek, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electroporator+with+automatic+change+of+electric+field+direction+improves+gene+electrotransfer+in-vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Biomed+Eng+Online%22%5BJournal%5D)">Electroporator with automatic change of electric field direction improves gene electrotransfer in-vitro.</a> Biomed Eng Online. 6, 25-25 (2007).</li>
<li>Trontelj, K., Rebersek, M., Miklavcic, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tip+electrode+chamber+for+small+volume+electroporation%2C+electrofusion%2C+and+gene+transfection%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Tip electrode chamber for small volume electroporation, electrofusion, and gene transfection.</a> 18, (2006).</li>
<li>Neumann, E., Schaefer-Ridder, M., Wang, Y., Hofschneider, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+transfer+into+mouse+lyoma+cells+by+electroporation+in+high+electric+fields%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">Gene transfer into mouse lyoma cells by electroporation in high electric fields.</a> EMBO J. 1, 841-841 (1982).</li>
<li>Daud, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phase+I+trial+of+interleukin-12+plasmid+electroporation+in+patients+with+metastatic+melanoma%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Oncol%22%5BJournal%5D)">Phase I trial of interleukin-12 plasmid electroporation in patients with metastatic melanoma.</a> J Clin Oncol. 26, 5896-5903 (2008).</li>
<li>Pavlin, M., Miklavcic, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effective+conductivity+of+a+suspension+of+permeabilized+cells%3A+a+theoretical+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys+J%22%5BJournal%5D)">Effective conductivity of a suspension of permeabilized cells: a theoretical analysis.</a> Biophys J. 85, 719-729 (2003).</li>
<li>Xie, T., Sun, L., Zhao, H., Fuchs, J., Tsong, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Study+of+mechanisms+of+electric+field-induced+DNA+transfection.+IV.+Effects+of+DNA+topology+on+cell+uptake+and+transfection+efficiency%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys+J%22%5BJournal%5D)">Study of mechanisms of electric field-induced DNA transfection. IV. Effects of DNA topology on cell uptake and transfection efficiency.</a> Biophys J. 63, 1026-1031 (1992).</li>
<li>Rols, M., Delteil, C., Serin, G., Teissie, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Temperature+effects+on+electrotransfection+of+mammalian+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">Temperature effects on electrotransfection of mammalian cells.</a> Nucleic Acids Res. 22, 540-540 (1994).</li>
<li>Golzio, M., Teissie, J., Rols, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+synchronization+effect+on+mammalian+cell+permeabilization+and+gene+delivery+by+electric+field%5BTitle%5D)+AND+%22Biochim+Biophys+Acta%22%5BJournal%5D)">Cell synchronization effect on mammalian cell permeabilization and gene delivery by electric field.</a> Biochim Biophys Acta. 1563, 23-28 (2002).</li>
<li>Haberl, S., Miklavcic, D., Pavlin, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+Mg+ions+on+efficiency+of+gene+electrotransfer+and+on+cell+electropermeabilization%5BTitle%5D)+AND+%22Bioelectrochemistry%22%5BJournal%5D)">Effect of Mg ions on efficiency of gene electrotransfer and on cell electropermeabilization.</a> Bioelectrochemistry. 79, 265-271 (2010).</li>
<li>Rols, M., Teissie, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electropermeabilization+of+mammalian+cells+to+macromolecules%3A+control+by+pulse+duration%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys+J%22%5BJournal%5D)">Electropermeabilization of mammalian cells to macromolecules: control by pulse duration.</a> Biophys J. 75, 1415-1423 (1998).</li>
<li>Kanduser, M., Miklavcic, D., Pavlin, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+involved+in+gene+electrotransfer+using+high-and+low-voltage+pulses-An+in+vitro+study%5BTitle%5D)+AND+%22Bioelectrochemistry%22%5BJournal%5D)">Mechanisms involved in gene electrotransfer using high-and low-voltage pulses-An in vitro study.</a> Bioelectrochemistry. 74, 265-271 (2009).</li>
<li>Pavlin, M., Flisar, K., Kanduser, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+electrophoresis+in+gene+electrotransfer%5BTitle%5D)+AND+%22J+Membr+Biol%22%5BJournal%5D)">The role of electrophoresis in gene electrotransfer.</a> J Membr Biol. 236, 75-79 (2010).</li>
<li>Sersa, G., Cemazar, M., Semrov, D., Miklavcic, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Changing+electrode+orientation+improves+the+efficacy+of+electrochemotherapy+of+solid+tumors+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Bioelectrochem+Bioenerg%22%5BJournal%5D)">Changing electrode orientation improves the efficacy of electrochemotherapy of solid tumors in mice.</a> Bioelectrochem Bioenerg. 39, 61-66 (1996).</li>
<li>Faurie, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electro-mediated+gene+transfer+and+expression+are+controlled+by+the+life-time+of+DNA%2Fmembrane+complex+formation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Gene+Med%22%5BJournal%5D)">Electro-mediated gene transfer and expression are controlled by the life-time of DNA/membrane complex formation.</a> J Gene Med. 12, 117-125 (2010).</li>
</ol>

No hay conflictos de interés declarado.

Gene electrotransferencia es una técnica versátil que la biotecnología permite la transferencia de ADN en las células mediante la aplicación de pulsos cortos, de alta tensión eléctrica 3 y representa una alternativa más segura a los vectores virales, debido a su seguridad, eficacia y facilidad de aplicación. Aunque hoy en día electrotransferencia gen es ampliamente utilizado para transfectar todos los tipos de células y la primera fase I de ensayos clínicos con este método se ha reportado 4, los me...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nombre del reactivo </td><td> Empresa </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentarios </td></tr><tr><td> HAM-F12 </td><td> PAA </td><td> E15-016 </td><td> medio de cultivo </td></tr><tr><td> L-glutamina </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> G7513 </td><td></td></tr><tr><td> de suero fetal bovino </td><td> PAA </td><td> A15-151 </td><td></td></tr><tr><td> gentamicina </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> G1397 </td><td> antibiótico </td></tr><tr><td> crystacilin </td><td> Pliva </td><td> 625110 </td><td> antibiótico </td></tr><tr><td> pEGFP-N1 </td><td> Clontech Laboratories </td><td> 6085-1 </td><td> ADN plásmido </td></tr><tr><td> Kit Hi-Speed ​​Maxi plásmido </td><td> Qiagen </td><td> 12662 </td><td></td></tr><tr><td> Na 2 HPO 4 </td><td> Merck </td><td> F640786 933 </td><td></td></tr><tr><td> NaH 2 PO 4 </td><td> TKI Hrastnik </td><td> 0795 </td><td></td></tr><tr><td> MgCl2 </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> M-8266 </td><td></td></tr><tr><td> sacarosa </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 16104 </td><td></td></tr><tr><td> tripsina / EDTA </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> T4174 </td><td></td></tr><tr><td> punta de la pipeta </td><td> Una medida que se </td><td></td><td></td></tr><tr><td> eléctrica del generador de impulsos </td><td> Una medida que se </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 6 pocillos </td><td> TPP </td><td> 92406 </td><td></td></tr><tr><td> 15 ml tubo de centrífuga </td><td> TPP </td><td> 91015 </td><td></td></tr><tr><td> 75 cm 2 frasco de la cultura </td><td> TPP </td><td> 90076 </td><td></td></tr></tbody></table>

cambio de la dirección y la orientación del campo eléctrico durante la aplicación pulsos eléctricos mejora la transferencia de genes plásmido in vitro</em

Changing the Direction and Orientation of Electric Field During Electric Pulses Application Improves Plasmid Gene Transfer in vitro

Gene electrotransferencia es un método físico utilizado para introducir genes en las células mediante la aplicación de pulsos eléctricos cortos e intensos, que provocan la desestabilización de la membrana celular, por lo que es permeable a pequeñas moléculas y permite la transferencia de moléculas grandes como el ADN. Representa una alternativa a los vectores virales, debido a su seguridad, eficacia y facilidad de aplicación. Para el gen de electrotransferencia diferentes protocolos de impulsos eléctricos se utilizan con el fin de lograr la máxima transfección de genes, uno de ellos es cambiar la dirección del campo eléctrico y la orientación durante la entrega de pulso. Cambio de la dirección del campo eléctrico y la orientación de aumentar la superficie de la membrana competente para la entrada de ADN en la célula. En este video, se demuestra la diferencia en la eficacia del gen electrotransferencia cuando todos los pulsos son entregados en la misma dirección y, cuando las leguminosas son entregados por el cambio, alternativamente, la dirección del campo eléctrico y la orientación. Para este propósito la punta con electrodos integrados y de alta tensión del generador prototipo, que permite cambiar de campo eléctrico en diferentes direcciones durante la aplicación de pulsos eléctricos, fueron utilizados. Gene eficacia electrotransferencia se determina 24 horas después de la aplicación de pulsos como el número de células que expresan la proteína verde fluorescente dividido por el número de todas las células. Los resultados muestran que la transfección de genes se incrementa cuando la orientación del campo eléctrico durante la entrega de impulsos eléctricos se cambia.

Transfección de genes mediante electroporación se mejora aproximadamente dos veces en la orientación del campo eléctrico se modifica durante la aplicación de pulsos, mientras que la viabilidad celular no se ve afectada. El aumento de la transfección de genes es causada por el aumento de la superficie de membrana que se hace competente para la entrada de ADN en la célula.

Cambio de la dirección y la orientación del campo eléctrico durante la aplicación pulsos eléctricos Mejora la transferencia de genes plásmido In vitro</em

La electrotransferencia de genes es un método físico utilizado para introducir genes en las células mediante la aplicación de pulsos eléctricos cortos e intensos, que provocan...

La transferencia génica por electroforesis es un método físico utilizado para introducir genes en las células mediante la aplicación de pulsos eléctricos breves e intensos. En una transferencia génica por electroforesis exitosa, se involucran varios pasos: la formación de un complejo entre el ADN y la membrana celular, la translocación del ADN a través de la membrana perturbada, el transporte del ADN desde el citoplasma hacia el núcleo y la expresión génica tras la electrotransferencia. Se utilizan diferentes protocolos de pulsos eléctricos con el fin de lograr una transfección génica máxima.Uno de ellos consiste en cambiar la orientación del campo eléctrico durante la aplicación del pulso. En este video, demostramos la diferencia en la eficiencia de transferencia de genes mediante electroporación cuando todos los pulsos se aplican en la misma dirección y cuando se aplican pulsos cambiando la orientación del campo eléctrico. Los experimentos se realizaron en células de ovario de hámster chino, CHOK1, para el estudio.Siga estos pasos: cultive las células en un matraz de cultivo en la incubadora durante 24 horas. El día del experimento, prepare la suspensión celular mediante tripsina

changing-direction-orientation-electric-field-during-electric-pulses

Research

Investigación

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Este procedimiento muestra cómo utilizar el sistema de electroporación Gene Emisores MXcell para identificar rápida y fácilmente las mejores condiciones de electroporación de fibroblastos embrionarios de ratón (MEFs) o de otras células primarias. Consideraciones para la solución de problemas también se discuten en el vídeo asociado.

Utilizando el sistema de electroporación Gene Emisores MXcell para transfectar células primarias con alta eficiencia

Fuente: Stefan, A., et al., Los beneficios multifacéticos de la coexpresión de proteínas en Escherichia coli. J. Vis. Exp. (2015)Este video demuestra el procedimiento para transformar Escherichia coli con un plásmido portador de un gen de resistencia a los antibióticos, incluida la preparación celular, la electroporación, la recuperación y la selección de transformadores.

Preparación y transformación de bacterias mediante electroporación de alto voltaje

Este video demuestra la técnica de electroporación que introduce ADN plásmido codificante de proteínas fluorescentes en precursores de células granulosas cerebelosas primarias de ratón.

Entrega de genes in vitro mediada por electroporación: una técnica de pulso eléctrico para introducir plásmidos fluorescentes que codifican proteínas reporteras en células cultivadas

Una plataforma de electroporación asistida vórtice de microfluidos fue desarrollado para la entrega secuencial de múltiples moléculas en poblaciones de células idénticas con control de la dosificación precisa e independiente. Tamaño basado electroporación anterior etapa de purificación de células diana del sistema ayudado a mejorar la eficiencia de la entrega molecular y la viabilidad celular procesada.

Vortex asistida Microscale Electroporador para entrega secuencial Molecular

Este protocolo describe la transfección de plásmido de alto rendimiento de células de mamíferos en una placa de 384 pocillos utilizando tecnología de eyección de gotas acústicas. La dispensación y multiplexación de ADN, que consume mucho tiempo y propensa a errores, pero también la dosificación del reactivo de transfección, son impulsadas por software y realizadas por un dispositivo de nanodispensador. Las células son sembradas en estos pozos precargados.

Multiplexación y transfección de plasmión de ADN de alto rendimiento mediante tecnología de nanodispensación acústica

Hemos desarrollado un protocolo para transfectar células epiteliales pigmentarias humanas primarias por electroporación con el gen que codifica el factor derivado del epitelio pigmentario (PEDF) utilizando el sistema de transposones de la Bella Durmiente (SB). La transfección exitosa se demostró mediante reacción cuantitativa en cadena de la polimerasa (qPCR), inmunotransferencia y ensayo inmunoabsorbente ligado a enzimas (ELISA).

Modificación genética basada en electroporación de células epiteliales pigmentarias humanas primarias utilizando el sistema de transposones de la Bella Durmiente

Este protocolo describe las técnicas de microfabricación necesarias para construir un dispositivo de electroporación microfluídica de laboratorio en un chip. La configuración experimental realiza transfecciones controladas a nivel de una sola célula en un flujo continuo y se puede extender a rendimientos más altos con control basado en la población. Se proporciona un análisis que muestra la capacidad de monitorear eléctricamente el grado de permeabilización de la membrana celular en tiempo real.

La fabricación y operación de un sistema de microelectroporación de flujo continuo con detección de permeabilización

La electroporación del ADN plásmido en el músculo esquelético es un método viable para modular la expresión génica sin comprometer la contractilidad muscular en ratones.

Electroporación del ADN plásmido en el músculo esquelético del ratón

El protocolo describe los métodos para la edición del epigenoma basada en repeticiones palindrómicas cortas agrupadas regularmente interespaciadas (CRISPR) en líneas celulares humanas mediante la transfección de ADN plasmídico y la nucleofección de ARNm.

Edición del epigenoma CRISPR en células humanas mediante transfección de ADN plasmídico y administración de nucleofección de ARNm

Se describe un método para propagar los tumores humanos en ratones retinoblastoma. Las células tumorales se inyectan directamente en los ojos de ratones inmunes deficientes. Los tumores secundarios se han establecido con éxito utilizando las células cosechadas directamente de tumores humanos y tumorspheres cultivadas.

Establecimiento y propagación de los tumores del retinoblastoma humanos en ratones con deficiencia inmune

Aprende a mejorar la transferencia de genes mediante electroporación cambiando la orientación del campo eléctrico en células CHO. Este método optimiza la eficiencia sin comprometer la viabilidad celular.

Cambio de la dirección y la orientación del campo eléctrico durante la aplicación pulsos eléctricos Mejora la transferencia de genes plásmido In vitro /em (Video) | JoVE Journal

Cambio de la dirección y la orientación del campo eléctrico durante la aplicación pulsos eléctricos Mejora la transferencia de genes plásmido In vitro

Explorar más videos