Name: La medición de γHV68 infección en los ratones (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-11-22T12:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 22 s
Description: Aprenda a medir infecciones agudas y latentes de γHV68 en ratones mediante ensayos de placa y centros infecciosos. Este protocolo permite cuantificar la carga viral en pulmón y bazo para estudiar la patogénesis del herpesvirus gamma.

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Los autores desean agradecer el apoyo y asesoramiento técnico de Ren Sol (Universidad de California, Los Angeles) y Seungmin Hwang (Universidad de Washington). Este trabajo fue financiado por la Fundación Baxter, los Institutos Nacionales de Salud subvenciones (R01 y R21 CA140964 AI083841 a C. Liang).

El siguiente protocolo se describe el estudio de los títulos de virus y la carga viral del genoma en el ciclo de infección lítica y latente de γHV68 en ratones, lo que teóricamente se puede utilizar para evaluar la infección por virus que comparten el estilo de vida similar a la de γHV68. 1. La amplificación de γHV68 <ol><li> Descongelar un vial congelado de γHV68 de 37 ° C baño de agua. </li><li> Añadir inóculo viral NIH3T12 o cultivo de células 3T3 (~ 50% de confluencia) en platos de 10 cm y la cultura de las células infectadas a 37 ° C en 5% de CO 2. </li><li> Examinar la cultura mediante microscopía de efecto citopático (ECP) y recoger los medios de comunicación en un momento en que más del 80% de las células muestran CPE 4 ~ 5 días después de la infección. Para maximizar el rendimiento de los virus, el cultivo de células infectadas pueden ser congelados y descongelados dos veces para liberar a todos los asociados a células γHV68. </li><li> Centrifugar los medios de comunicación recogieron a 1000 rpm durante 5 min a temperatura ambiente (TA) para eliminar los restos celulares. </li><li> Transfiera cuidadosamente los sobrenadantes a nuevos tubos (tubo de alta velocidad de centrifugado) sin tocar los restos celulares en la parte inferior. </li><li> De alta velocidad se centrifuga a 12.000 rpm (para Sorvall SA-600) a 4 ° C durante por lo menos 1,5 horas de concentración de partículas virales. </li><li> Descartar el sobrenadante en una solución de lejía 10γ y cuidadosamente vuelva a suspender el pellet (virus y restos celulares residual) con 1 ml de suero libre de DMEM. Transferencia de la re-suspensión de pellets en un 1,5 ml micro-tubo de centrifugadora y mezclar adecuadamente por agitación. </li><li> Centrifugar durante 2 minutos a velocidad máxima para eliminar los restos celulares residual y la transferencia del sobrenadante (stock de virus) a un nuevo tubo. Este es el balance definitivo de la infección viral. El título de la acción del virus se determina mediante el ensayo de la placa (ver más abajo). </li></ol> 2. La infección intranasal de ratones con γHV68 <ol><li> Infectar a los ratones en unas 6 semanas de edad con 1.000 ~ 5.000 unidades formadoras de placas (UFP) de ratones por γHV68. </li><li> Anestesiarratones mediante la inyección de ketamina / xilazina (60 l / ratón de una mezcla de 80 mg / ml de ketamina y xilacina 12 mg / ml) en la cavidad peritoneal. Monitor de anestesia pellizcando la punta ratones. Por lo general toma min ~ 10.5. Si los ratones no son totalmente anestesiado, se estornudar el virus. </li><li> Cuando el ratón está totalmente anestesiado, el uso de una pipeta para inocular ~ 30 l de PBS que contenía γHV68 (15 l en cada fosa nasal) a ratones gota a gota, lentamente pero sin pausa. Asegúrese de que el ratón es de hecho la inhalación de las gotas, sin tratar de formar burbujas. </li><li> Permitir el ratón para recuperar durante 10-15 minutos y vigilar el bienestar de los ratones (por ejemplo, la conciencia, la respiración, etc) antes de regresar a la jaula. Los animales se comprueban todos los días por enfermedad y la adecuación de los alimentos, el agua y las condiciones de camas. Si los signos clínicos de la enfermedad, el dolor o la angustia desarrollo, el diagnóstico de rutina para determinar la etiología se llevará a cabo. Los animales que pierden más del 20% de su peso corporal se registró la pérdida de peso máximoy la eutanasia. La decisión final para llevar a cabo la eutanasia está en la discreción del veterinario clínico y tras consultar con el investigador principal. </li></ol> 3. Placa de ensayo para determinar el título del virus en los pulmones con infección aguda <ol><li> Los títulos de infectividad del virus se determina por la formación de placas en monocapas de células Vero. </li><li> Células Vero se siembran en 2.5x10 4 células / pocillo en placas de 12 pocillos, el día antes de la placa de ensayo. Las células deben estar uniformemente distribuida y la densidad celular debe llegar a 30 - 40% en el día de la placa de ensayo. </li><li> Prepare un 0,5% (w / v) de metilcelulosa (MC) medio de recubrimiento (Tabla 1). </li><li> Sacrificio γHV68 ratones infectados 5-7 días después de la infección intranasal para determinar la fase aguda de los títulos de virus en los pulmones. Para la eutanasia Ketamina HCl (80-100 mg / kg SC, IM, IP) será administrado IM seguido por sobredosis intravenosa de pentobarbital Na (30-50 mg / kg IP). Este método es aprobado por tque American Veterinary Medical Association. </li><li> Cosecha de los pulmones y enjuagar dos veces con 1 x PBS para eliminar las células de la sangre. Recoge por un lado de los pulmones en un ml de helado de medio completo DMEM y mantener en hielo. Congelar rápidamente al otro lado de los pulmones y almacenar a -80 ° C para el examen de carga viral del ADN en los pulmones por qPCR (ver más abajo). </li><li> Use un homogeneizador de tejidos a fin de homogeneizar los tejidos del pulmón a la velocidad máxima durante 1 segundo, congelación y la descongelación tres veces. Lave el homogeneizador con etanol al 70% en cada paso cuando se cambia la muestra. </li><li> Centrífuga el tejido homogeneizado a 3.000 rpm durante 10 min a 4 ° C. Recoger el sobrenadante y la transferencia de nuevos tubos de ensayo en placa. </li><li> Prepare diluciones seriadas (generalmente de 10 ° a 10 -8) de las muestras de pulmón homogeneizado en 1,5 ml micro-tubos de centrífuga con DMEM normal por vórtice. Rellenar el número apropiado de tubos con 540 l DMEM y diluir 60 homogeneizado l en el primer tubo. Transferencia de 60 l del primer tubo ino el siguiente, y así sucesivamente. </li><li> Aspirar los medios de comunicación de las monocapas preparado Vero en placas de 12 pocillos y carga de 200 l / homogeneizado bien diluido en serie que contienen virus infecciosos en un orden inverso (de 10 -8 a 10 °). Use dos pocillos para cada titulación (por duplicado). </li><li> Se incuban las células Vero con el virus del inóculo de 1 hora a 37 ° C. Remover con suavidad las placas de cada 15 minutos para distribuir uniformemente el virus a través de la monocapa. </li><li> Eliminar el inóculo y reemplazarlo con 2 ml / pocillo de medio de recubrimiento (Tabla 1). Las placas se incuban durante una semana a 37 ° C. </li><li> Quitar medio de recubrimiento (no necesita ser completa) y sustituirlo por la solución / medio de tinción de la placa de ensayo (Tabla 1) y se incuba durante al menos 1 hora a temperatura ambiente. </li><li> Cuando las placas se secan, contar el número de placas bien aisladas en cada dilución. Para minimizar el error, sólo los pozos que contienen entre 10 y 100 placas se cuentan. </li><li> Calcular el título del virus con los siguienala fórmula: título (UFP / ml) = [(número de placas / y) / (volumen de inóculo / y)] x factor de dilución. </li></ol> 4. Ensayo Centro infecciosas para determinar la carga del virus en los esplenocitos con infección latente <ol><li> Carga viral latente está determinado por el centro infecciosas (IC) de ensayo sobre la monocapa de células Vero. El día antes de las células IC ensayo de semillas, Vero en placas de 6 pocillos (1 -. 2.5 X 10 5 células / Por lo general, el uso de 11 pozos por muestra bazo, 10 pozos serán utilizados para la suspensión diluida en serie esplenocitos y un bien para la prueba una reactivación espontánea del virus después de ciclos hielo-deshielo. </li><li> Sacrificio de los ratones infectados después de la latencia se establece (12 - 14 días después de la infección). Cosecha del bazo del ratón y la piscina que en un ml de DMEM frío. </li><li> Disociación mecánica de bazo de ratón. La transferencia de los bazos de ratón recién aisladas en una placa de 10 cm y añadir 10 ml de medio deseado, tal como DMEM con FBS al 2%. Húmedo dos helados de gama de vidrio microscOpe diapositivas con helado de mediano plazo. Colocar el bazo en el lado poroso de una diapositiva y nick de la cápsula con el borde del extremo esmerilado de la otra guía. Mecánicamente se disocian del bazo entre dos diapositivas hasta que todos los grupos de color rojo son triturados (también eliminar las partículas de grasa si lo hay). </li><li> Lavar los portaobjetos con DMEM para recuperar las células restantes en los dos diapositivas. </li><li> Transferir la suspensión de todo el tejido suavemente a través de un colador de células (40 micras de malla de nylon) en un cónico de 50 ml con tapón de rosca del tubo. Lavar el plato de 10 cm que contiene los homogeneizados de bazo con 10 ml de PBS y la transferencia mientras que los filtros. </li><li> Se centrifuga la suspensión celular solo 10 minutos a 375 xg y desechar el sobrenadante. Flick los gránulos de las células para romper existentes grupos de células. Añadir 5 ml de tampón ACK (Tabla 1) para lisar los glóbulos rojos. Incubar 5 min y se centrifuga de nuevo a 375 x g. </li><li> Eliminar el sobrenadante y volver a suspender las pastillas, a fondo, pero suavemente, en PBS con FBS al 2%. Mantener a las células a 4 ° C. Use una pipeta paraeliminar los residuos, en su caso. Recuento de células viables mediante un contador de células automático (Bio-Rad). </li><li> Centrifugar el esplenocitos PBS-resuspendido en 375 g durante 4 min. Desechar el sobrenadante y resuspender las células en DMEM 4 ml completa (2 x 1 ml se utilizará para el ensayo de IC de la suspensión original, 0,6 ml de serie utilizado para la dilución de cinco veces en el ensayo de IC, 0,4 ml de la preparación de ADN viral y qPCR, y 1 ml de suspensión se utilizará para evaluar una reactivación espontánea del virus latente después de tres ciclos de congelación y descongelación) </li><li> Prepara serie de cinco diluciones (es decir, 1 / 5, 1 / 25, 1 / 125, 1 / 250) de la suspensión de esplenocitos en los duplicados. Rellenar los tubos de 15 ml cónicos con 2,4 ml de DMEM y se diluye la suspensión de esplenocitos 600 l en el primer tubo y mezclar bien. Transferencia de 600 l de tubo anterior en el tubo que viene, etc No vórtice! </li><li> Aspirar el medio de los preparados de 6 y monocapa de células Vero. Semillas de 1 ml de esplenocitos en serie diluido en las células Vero con cada dilución DUPLicated (10 pozos se utilizará para 0, 1 / 5, 1 / 25, 1 / 125, 1 / 250 diluciones). </li><li> Incubar las placas 8-12 horas a 37 ° C y 5% de CO 2. No exceda las 24 horas. Aspirar la suspensión de esplenocitos cabeza de serie y la carga de 4 ml superposición de los medios de comunicación (Tabla 1) a cada pocillo. Incubar durante 6 días. </li><li> Determinar los niveles de los centros de bazo infecciosas mediante la tinción de las placas con un 0,2% (w / v) de cristal violeta, como se muestra en la placa de ensayo. </li></ol> 5. La cuantificación del genoma viral <ol><li> Extraer el ADN genómico total de los tejidos γHV68 infectados, como el pulmón y el bazo muestras en este experimento. Utilice la sangre y DNeasy Tissue Kit (Qiagen), siguiendo el protocolo del fabricante. </li><li> Determinar la concentración de ADN de cada muestra para asegurar la misma cantidad de ADN se utiliza para el ensayo qPCR. El diseño del virus de primers específicos (~ 200 pb de amplificación es el preferido para un ensayo qPCR). Se utilizó el γHV68 ORF56 primers específicos (cebador: 5 y prime; - GTAACTCGAGACTGAAACCTCGCAGAGGTCC - 3 'cebador inverso: 5'-CCGAAGCTTGCACGGTGCAATGTGTCACAG-3') para este ensayo y la actina β-primers (cebador: 5'-cacccacactgtggcccatcat-3 'cebador inverso: 5'-gtgaggatcttcatgaggtagtc-3') como un control de la reacción de PCR cuantitativa. </li><li> Mezclar la muestra de ADN (100 - 500 ng es bueno) y cebadores apropiados con 2 x SYBR maestro de la mezcla (Bio-Rad iQ SYBR Green Supermix). El uso del Bio-Rad en tiempo real del sistema PCR para cuantificar la carga viral en los tejidos infectados. Realizar PCR en las siguientes condiciones: 95 ° C durante 15 min y 45 ciclos de 95 ° C durante 30 min, 60 ° C durante 30 min y 72 ° C durante 30 minutos, seguido por análisis de las curvas de fusión, tanto para el virus y actina amplificados. </li><li> Para realizar una curva estándar para la cuantificación de genomas virales, diluir en serie de cantidades conocidas de un ADN γHV68 bácmido con el ADN genómico aislado de las células no infectadas. Ejecutar qPCR en paralelo con el ADN recuperado de la infecciónTed tejidos utilizando los mismos conjuntos de cebadores específicos del virus. </li><li> Presente la carga del genoma viral en los tejidos como el número de copias de ADN viral por unidad (por ejemplo, 100 ng o 500 ng) de ADN genómico tras la normalización de actina. </li></ol> 6. Los resultados representativos: La Figura 1 muestra el esquema general de los experimentos para la medición de γHV68 infección en ratones in vivo. Los resultados representativos de los títulos de virus en los pulmones durante la infección aguda de γHV68, según lo determinado por la placa de ensayo, se muestra en la Figura 2A. Una cepa mutante de γHV68 que contiene no funcional viral Bcl-2 (vBcl-2) replica a niveles comparables a los de tipo salvaje γHV68 en los pulmones después de 7 días de la infección intranasal de ratones Balb / c (6-7 ratones por grupo). No se observaron diferencias estadísticamente significativas en los títulos de los pulmones de los virus fueron detectados entre los dos grupos. Estos datos indican que vBcl-2 no es un factor crucial para la infección aguda de γHV68 enratones. Sin embargo, después de la infección en un 28 días, el título de vBcl-2 del virus mutante en el bazo caído 6 - a 10 - veces en comparación con el WT, según lo medido por el ensayo de centro infecciosas (Figura 2B), lo que sugiere que la vBcl-2 mutante virus γHV68 fallas en el mantenimiento de la latencia del bazo después de la infección. De acuerdo con los títulos de centro infecciosa reduce la carga viral del genoma del virus mutante vBcl-2 se redujo drásticamente en comparación con la de los virus de PESO en el día 28 en repetidos experimentos, como se muestra en la Figura 2C. La estrecha correlación entre las cargas del genoma viral y la frecuencia de latente HV68vBcl-2 ex vivo virus mutante en la etapa de reactivación latente de la infección destaca un defecto de la latencia de la infección por el virus mutante. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/3472/3472fig1.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Esquema para la medición de γHV68 infección en los ratones a través de la formación de placa, un centro de infecciosos, y el ensayo qPCRs. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/3472/3472fig2.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Infección lítica y latente de la WT y mutantes γHV68 virus in vivo. La replicación aguda (A) de la WT y mutantes vBcl-2 γHV68 virus en los pulmones de los ratones Balb / c de 7 dpi (días después de la infección) se determinó por ensayo en placa. (B y C) del bazo centros infecciosas (B) y la carga del genoma viral (C) en el bazo de los ratones infectados se midieron a los 28 dpi mediante el ensayo de centro infecciosas y qPCR, respectivamente. Las líneas rojas, los promedios de los valores indicados. ns, no significativo.

<ol><li>Damania, B., Choi, J. K., Jung, J. U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Signaling+activities+of+gammaherpesvirus+membrane+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">Signaling activities of gammaherpesvirus membrane proteins.</a> J. Virol. 74, 1593-1601 (2000).</li>
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<li>Simas, J. P., Swann, D., Bowden, R., Efstathiou, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+murine+gammaherpesvirus-68+transcription+during+lytic+and+latent+infection%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Gen.+Virol%22%5BJournal%5D)">Analysis of murine gammaherpesvirus-68 transcription during lytic and latent infection.</a> J. Gen. Virol. 80, 75-82 (1999).</li>
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<li>Weck, K. E., Kim, S. S., Virgin, H. I., Speck, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Macrophages+are+the+major+reservoir+of+latent+murine+gammaherpesvirus+68+in+peritoneal+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">Macrophages are the major reservoir of latent murine gammaherpesvirus 68 in peritoneal cells.</a> J. Virol. 73, 3273-3283 (1999).</li>
</ol>

No hay conflictos de interés declarado.

γHV68 ha sido ampliamente utilizada como modelo para entender la patogénesis de los derechos humanos γ-VS 2,4,5. En este protocolo, se describen tres métodos de rutina utilizados, incluyendo la placa de ensayo para el título de virus infecciosos, ensayo de IC de la carga viral latente, y qPCR para la carga del genoma viral, para evaluar la infección aguda y latente de γHV68 después de la inoculación intranasal en ratones. La placa de ensayo se ha utilizado ampliamente para determi...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nombre del Material </td><td> Procedimiento de preparación </td></tr><tr><td> Metilcelulosa (MC) superposición medio de ensayo de placa viral </td><td><ol><li> Calor ~ 250 ml de agua destilada en la botella TC a&gt; 80 ° C (hirviendo durante 3 minutos en el microondas) </li><li> Añadir poco a poco 2,5 g de polvo MC en agua caliente, revolviendo a fuego lento hasta que se disuelva. </li><li> Autoclave durante 15 minutos inmediatamente a un ciclo de líquido. </li><li> La agitación de la autoclave medios MC a 4 ° C durante la noche. </li><li> Combine 250 ml con 200 ml de medios MC 2 x MEM (Gibco-BRL) + 50 ml de FBS para dar 500 ml de medios de superposición. </li></ol></td></tr><tr><td> Fix / mancha por medio de la placa de ensayo </td><td> 0,2% (w / v) de cristal violeta en etanol al 20%. </td></tr><tr><td> Tampón de lisis ACK </td><td> NH 4 Cl 0,15 M, KHCO3 10 mM, EDTA 0,1 mM </td></tr><tr><td> DMEM completo </td><td> Dulbecco modificado de Eagle(DMEM) suplementado con suero fetal bovino al 10% (FBS, Invitrogen), 2 mM L-glutamina, y el 1% de penicilina-estreptomicina (Gibco-BRL). </td></tr></tbody></table> Tabla 1. Específicas de medios utilizados en este protocolo <table border="1"><tbody><tr><td> Nombre del reactivo </td><td> Empresa </td><td> Número de catálogo </td></tr><tr><td> La ketamina </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> K2753 </td></tr><tr><td> Xilazina </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> X1251 </td></tr><tr><td> Metilcelulosa </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> M0512-250g </td></tr><tr><td> 2 x MEM </td><td> Tecnologías de la Vida </td><td> 11935 </td></tr><tr><td> Células colador </td><td> BD Faclon </td><td> 352340 </td></tr><tr><td> Omni homogeneizador de tejidos </td><td> OMNI Internacional </td><td> TH115 </td></tr><tr><td> Sangre y DNeasy Tissue Kit </td><td> Qiageneración </td><td> 69504 </td></tr><tr><td> IQTM SYBRH Green Supermix </td><td> BioRad </td><td> 170-8882 </td></tr><tr><td> CFX96 PCR en tiempo real del sistema </td><td> Bio-Rad </td><td> 184-5072 </td></tr><tr><td> Contador de células </td><td> Bio-Rad </td><td> 145-0001 </td></tr><tr><td> Sorvall SA-600 </td><td> Thermo Scientific </td><td> 096-124022 </td></tr></tbody></table> Tabla 2. Reactivos y equipos específicos

la medición de γhv68 infección en los ratones

Measurement of &#947;HV68 Infection in Mice

γ-herpesvirus (γ-VS) se caracterizan por su capacidad para establecer infecciones latentes de las células linfoides 1. El rango de hospedadores de los derechos humanos γ-VS, como EBV y HVSK, ha obstaculizado seriamente los estudios detallados patógenos. Murinas herpesvirus γ-68 (γHV68) acciones amplias similitudes genéticas y biológicas con humanos γ-VS y es un patógeno natural de los roedores múridos 2. Como tal, la evaluación de γHV68 infección de ratones puras cepas en diferentes etapas de la infección viral constituye un modelo importante para la comprensión del ciclo de vida viral y patogenia en γ-VS infección. Tras la inoculación intranasal, γHV68 infección da lugar a una viremia aguda en el pulmón que luego resuelve en una infección latente de esplenocitos y otras células, que puede ser reactivado durante la vida del huésped 3,4. En este protocolo, se describe cómo utilizar la placa de ensayo para evaluartítulo de s virus infeccioso en el pulmón homogeneizado en monocapas de células Vero en la primera etapa (5-7 días) después de la infección intranasal (dpi). Mientras que la infección aguda es en gran parte aclaró 2-3 postinfección semana, una infección latente de γHV68 se establece alrededor de 14 dpi y mantenido posteriormente en el bazo de los ratones. La infección latente por lo general afecta a una población muy pequeña de células en los tejidos infectados, por el cual el virus permanece latente y se apaga la mayor parte de su expresión génica. Esplenocitos latente infectadas por el virus de reactivar de manera espontánea en explante en cultivo de tejidos, que puede ser recapitulado en un centro de infecciosos (IC) de ensayo para determinar la carga viral latente. A fin de estimar la cantidad de copias del genoma viral en la forma aguda y / o tejidos con infección latente, la PCR cuantitativa en tiempo real (qPCR) se utiliza para su máxima sensibilidad y precisión. El análisis combinado de los resultados de ensayo qPCR y la placa, y / o ensayo de IC se muestran los perfiles de espacio-temporal de los virusla replicación y la infectividad in vivo.

γ-herpesvirus (γ-VS) establecer la persistencia de toda la vida en su huésped. La infección de ratones con γ-HV68 ofrece un manejable de forma genética<em&gt; En vivo</em&gt; Modelo para la caracterización del ciclo de vida / patogenia de γHVs. Este protocolo describe la detección y cuantificación de γHV68 infección en las fases aguda y después de la infección latente por la placa de formación, centro de infecciosos, y los ensayos de PCR cuantitativa.

La medición de γHV68 infección en los ratones

Los $\gamma$-herpesvirus ($\gamma$-HV) destacan por su capacidad de establecer infecciones latentes en células linfoides1. El estrecho rango de hospedadores de los...

En este video, se evalúan las infecciones agudas y latentes por virus del herpes tras la infección intranasal en ratones mediante ensayos de placas y de centros infecciosos. Primero, para imitar la exposición fisiológica, los ratones se infectan mediante administración intranasal del virus del herpes gamma neuronal. 68, entre cinco y siete días después, se recoge y homogeniza el tejido pulmonar.Luego se realiza un ensayo de placas para determinar la carga viral aguda. Para determinar la carga viral latente, se extrae el bazo del ratón. Entre 12 y 14 días después de la infección, se genera una suspensión de células individuales a partir de los sitios SPOC infectados y se lleva a cabo un ensayo de centros infecciosos. Los resultados de estos ensayos revelan los perfiles espacio-temporales de la replicación viral e infectividad in vivo.Por lo tanto, la principal ventaja de esta técnica frente a los métodos existentes, como el uso del sistema de cultivo de tejidos para el estudio de la infección viral, es que aprovecha la infección por gammaherpesvirus marino en ratones para la caracterización in vivo del ciclo vital y/o la patogénesis de los gammaherpesvirus. Comience este protocolo i

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Immunology and Infection

Inmunología e Infección

Se describe un protocolo para identificar las principales funciones de las moléculas de señalización de acogida en la replicación lítica de un modelo herpesvirus, virus herpes gamma 68 (γHV68). La utilización de cepas de ratón modificados genéticamente y los fibroblastos embrionarios de γHV68 replicación lítica, el protocolo permite tanto la caracterización fenotípica y molecular de las interacciones interrogatorio virus-huésped durante la replicación viral lítico.

Disección de Host-virus Interacción en la replicación lítica de un Herpesvirus Modelo

Fuente: Seman, B. G., et al. Un modelo de imagen neonatal de sepsis bacteriana gramnegativa. J. Vis. Exp. (2020)El vídeo muestra un modelo neonatal murino para estudiar la infección sistémica utilizando bacterias bioluminiscentes encapsuladas. A los cachorros neonatales se les inyectan suspensiones bacterianas de dosis altas o bajas y se les devuelven a su madre para cuidados postnatales. Las bacterias encapsuladas evaden la detección inmunitaria temprana, se propagan sistémicamente y se...

Modelado de la infección en ratones neonatales utilizando bacterias bioluminiscentes encapsuladas

Fuente: Zhang, J., et al. P. Análisis de la señalización inmune innata en la evasión viral de la producción de citoquinas. J. Vis. Exp. (2014)Este video demuestra la administración intranasal de herpesvirus murino en ratones para inducir una respuesta inmunitaria específica en el pulmón. Posteriormente, se procesa el tejido pulmonar para obtener sobrenadantes que contienen citoquinas, destinados a la evaluación posterior de las respuestas inmunitarias del huésped.

Infección intranasal por herpesvirus murino en ratones para evaluar las respuestas inmunitarias del huésped

En este video, describimos un protocolo para probar la eficacia de una vacuna acelular contra la tos ferina contra la infección por Bordetella pertussis en ratones. Después de la vacunación, los ratones se sometieron a la infección y su homogeneizado de tejido se cultivó para analizar las colonias bacterianas como una lectura de la inmunidad protectora inducida por la vacuna.

Evaluación de la inmunidad inducida por vacunas contra la infección bacteriana en un modelo de ratón

Se describe un protocolo para medir la producción de citoquinas antivirales en ratones infectados con un virus herpes modelo, murino herpesvirus gamma 68 (γ HV68) que está relacionado con estrechamente a sarcoma de herpesvirus asociado de Kaposi humano (VHSK) y virus de Epstein-Barr (EBV). La utilización de cepas de ratones genéticamente modificados y los fibroblastos de embriones de ratón (MEFs), se evaluó la producción de citocina antiviral tanto in vivo como ex vivo. "Reconstituir" la...

La disección de señalización inmune innata en Evasion Viral de la producción de citoquinas

Virus de la gripe A (gripe) son importantes patógenos respiratorios humanos. Para entender la patogenicidad de gripe y realizar ensayos preclínicos de vacunas nuevos enfoques, modelos animales, imitar la fisiología humana se requieren. Aquí, describimos las técnicas para evaluar el IAV patogenia, respuesta humoral y eficacia de la vacuna utilizando un modelo murino de infección.

Estudios de Virus de influenza A en un modelo murino de infección

Aquí presentamos un elegante protocolo para la evaluación en vivo de la vacuna eficacia y anfitrión inmunorespuestas. Este protocolo puede ser adaptado para modelos de vacuna que estudian viral, bacteriana o parásitos patógenos.

Evaluación de las respuestas del huésped-patógeno y eficacia de la vacuna en ratones

Aquí, describimos un método para inducir la meningitis meningocócica a través de una vía intracisternal de infección en ratones adultos. Presentamos un protocolo paso a paso de la infección meningocócica desde la preparación del inóculo hasta la infección intracisternal; luego registrar la supervivencia animal y evaluar las cargas bacterianas en los tejidos murinos.

Inducir meningitis meningocócica Serogrupo C en ratones a través de parto intracisternal

Aquí se describen tres enfoques experimentales para estudiar la dinámica de la infección por VIH en ratones humanizados. El primero permite el estudio de eventos de infección crónica, mientras que los dos últimos permiten el estudio de eventos agudos después de una infección primaria o reactivación viral.

Infección crónica, aguda y reactivada por VIH en modelos de ratón inmunodeficientes humanizados

Este documento describe los protocolos de evaluación de la respuesta Tfh y GC B en el modelo de ratón de infección por el virus de la gripe.

Evaluación de las células auxiliares foliculares T y la respuesta del centro germinal durante la infección por el virus de la gripe A en ratones

Hemos desarrollado un protocolo para la generación y evaluación de un modelo de ratón NOG infectado por el virus de inmunodeficiencia humana y humanizado basado en el trasplante de células madre, la exposición al virus de inmunodeficiencia humana intravaginal y el ARN PCR digital de gotas Cuantificación.

Ratones NOG humanizados para la exposición y tratamiento del VIH intravaginal

Aprenda a medir infecciones agudas y latentes de γHV68 en ratones mediante ensayos de placa y centros infecciosos. Este protocolo permite cuantificar la carga viral en pulmón y bazo para estudiar la patogénesis del herpesvirus gamma.

La medición de γHV68 infección en los ratones

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