Name: Aislamiento de células dendríticas del pulmón de ratón (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-11-22T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 4 s
Description: Aprende a aislar células dendríticas convencionales del pulmón de ratón mediante digestión con colagenasa, enriquecimiento magnético y citometría de flujo. Este protocolo permite obtener preparaciones altamente purificadas para estudios inmunológicos.

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Los autores desean agradecer a Marilyn Dietrich en el Centro de Citometría de Flujo LSU central por su ayuda en la clasificación de células, y Mottram Pedro por su ayuda con las microfotografías. Este trabajo fue financiado por el Flight Attendant Medical Research Institute, el Premio de Investigación LSU-programa competitivo, y las subvenciones del NIH / NIAID P20 RR020159 y R03AI081171.

1. Perfusión pulmonar y la suspensión de células individuales <ol><li> La eutanasia a los ratones con una inyección intraperitoneal de ketamina / xilazina mezcla anestésica (en mg / ratón ketamina 1.8, xilazina 0,19) y desangrado por la vena femoral </li><li> Exponer la cavidad torácica por el corte y retraiga la piel exterior del peritoneo. Procederá a la apertura del diafragma por el corte de la caja torácica para exponer el corazón y los pulmones. </li><li> Perfusión de los pulmones con suavidad utilizando una jeringa de 5 ml llena de EDTA-HBSS (1 mM EDTA en magnesio libre de calcio / HBSS). Conecte una aguja G 25 e insertar la aguja en el ventrículo derecho. Para evitar fugas durante la inyección, seguro que el tejido de miocardio alrededor de la aguja por el uso de fórceps. Inyectar suavemente la solución, manteniendo una presión constante. Perfusión precisa dará lugar a la inflación de pulmón y un cambio de color de rosa / blanco. </li><li> Quitar ganglios linfáticos de drenaje para descartar cualquier posible contaminación de este tejido. </li><li> Recogertejido pulmonar, la transferencia de una placa de Petri en el hielo, y cortar en pedazos pequeños, usando una cuchilla de afeitar. </li><li> La transferencia de tejido a tierra en un tubo de gentleMACS C con 5 ml / pulmón de la solución de colagenasa digestión (colagenasa tipo 1A 0,5 mg / ml, más de tipo IV pancreática bovina DNasa 20 mg / ml en HBSS que contiene 5% de SFB, 100 U / ml penicilina y 100 mg / ml estreptomicina). </li><li> Utilice el disociador gentleMACS para obtener una suspensión de células individuales. Elección del programa: m_lung_01. Incubar la muestra a 37 ° C durante 30 minutos. Agite el tubo cada 5 minutos para volver a suspender fragmentos de tejido. Proceder con m_lung_02 programa. </li><li> Transferir la muestra a un tubo cónico de 15 ml y centrifugar durante 10 minutos a 335 x g a 4 ° C. Después de este paso, tenga todos los reactivos y centrifugados a 4 ° C para evitar una reducción de la viabilidad celular. </li><li> Desechar el sobrenadante y el resto de lisar los glóbulos rojos mediante la adición de 2 ml de tampón de lisis ACK durante 1 minuto a temperatura ambiente. Lavar las células con 13ml de BSA frío PBS/0.5% y centrifugar durante 10 minutos a 335 x g a 4 ° C. </li><li> Deseche las células sobrenadante, el total de resuspender en 5 ml de BSA frío PBS/0.5% y pasa a fondo una malla de 100 micras de nylon. </li><li> Determinar el número total de células mediante el uso de tinte de exclusión con azul tripán. </li></ol> 2. Aislamiento magnético y el enriquecimiento de las células CD11c + <ol><li> Centrifugar la suspensión de células individuales de 10 minutos a 200 x g a 4 º C y desechar el sobrenadante. </li><li> Resuspender el sedimento celular en 400 l de tampón de separación (PBS, 0,5% de BSA y 2 mM EDTA) por 10 8 células totales. Bloquear Fc-mediada por anticuerpos no específicos de enlace mediante anti-CD16/CD32 anticuerpos (0.5μg / 10 6 células) durante 30 minutos a 4 ° C. </li><li> Lavar las células con 10 ml de tampón de separación frío y centrifugar durante 10 minutos a 200 x g a 4 ° C. Resuspender las células en 400 l de tampón de separación. </li><li> Añadir 100 ml de MicroBeads CD11c por 10 8 </apoyo células&gt; total. Mezclar bien e incubar durante 15 minutos en el refrigerador (2-8 ° C). </li><li> Lavar las células con 10 ml de tampón de separación frío y centrifugar durante 10 minutos a 200 x g a 4 º C y desechar el sobrenadante. </li><li> Resuspender el botón celular en 3 ml de tampón de separación de frío. </li><li> Realizar la separación magnética utilizando el separador autoMACS Pro TM seleccionando el posseld programa. Recoger la fracción positiva (0,5 ml). </li></ol> 3. Células dendríticas convencionales (CDC) de aislamiento <ol><li> Incubar enriquecido CD11c suspensión de células positivas a anti-CD11c-PE Cy7 y anti-IA/IE (MHC-II)-FITC anticuerpos durante 30 minutos a 4 ° C. Concentración de anticuerpos optimizado es de 0,5 mg / 10 6 de las células. </li><li> Lavar las células con BSA frío PBS/0.5% y centrifugar durante 10 minutos a 335 x g a 4 ° C. Resuspender las células en 0,5 ml de PBS/0.5% de BSA y pasar a través de una malla de 40 micras de nylon. </li><li> Proceder a laordenar a las células mediante el uso de la FACS Aria clasificador de células en el modo de pureza. Añadir 100 ml de PBS/0.5% de BSA para los tubos de recolección con el fin de prevenir el daño de las células purificadas. Mantener a las células a una temperatura refrigerada durante todo el proceso de separación celular. </li></ol> 4. Protocolo alternativo para la obtención de una suspensión de células individuales y enriquecimiento de las células CD11c + <ol><li> En sustitución del disociador gentleMACS, el tejido pulmonar a tierra desde el paso 1.5 se puede transferir a un tubo cónico de 15 ml que contiene 5 ml de solución de colagenasa por los pulmones y se incuba durante 1 hora a 37 ° C. Vortex células cada 15 minutos con el fin de volver a suspender fragmentos de tejido. Destruir el tejido de pasar la muestra a 6-8 veces de entrada y salida a través de una jeringa de 3 ml conectada a una aguja de 20 G. Evitar hacer burbujas durante el proceso, de lo contrario la viabilidad celular se verá comprometida. Una vez que la suspensión de células individuales se obtiene, continúe con el paso 1.8. </li><li> En sustitución de la separación AutoMACSPro TMtor, aislamiento magnético para el enriquecimiento de las células CD11c, también se puede realizar al aprobar la suspensión de células de forma manual a través de dos columnas de MACS. La selección de las columnas necesarias variarán en función del tamaño de la muestra. </li></ol> 5. Los resultados representativos: Pulmonar CDC se identifican como CD11c hi / MHC-II la población de células de alta. Como se muestra en la fig. 1, los CDC representan un porcentaje menor del 1,4% en comparación con algunos otros tejidos como el bazo (4,8%). Sin embargo, en contraste con el bazo, el pulmón de células CD11c positivo expresan diferentes cantidades de MHC-II, incluyendo una población de células diferentes que la de los CDC. Después de la preparación de una sola célula, la producción de células de pulmón de células total era de aproximadamente 3,0 a 3,8 x 10 7 células / pulmonar con una viabilidad de 60 a 70% de los cuales un poco más del 1% representado subconjunto CDC. Este porcentaje se incrementó después de que el aislamiento CD11c magnética donde el total del pulmón CDC se incrementó alrededor de 10 tIME (&gt; 16%) de la preparación original (Fig. 2A). Sin embargo, las células que expresan CD11c bajas cantidades de MHC-II (CD11c hi / lo MHC-II, los macrófagos) representa una alta contaminación de la población de células (&gt; 70%), que se mezcló con el subconjunto de pulmón CDC. Como se muestra en la fig. 2B, las células fueron eliminados tras la etapa de clasificación de células, cuando la pureza CDC alcanzó&gt; 96%. El rendimiento normal de los CDC después de todo el procedimiento fue de 5 x 10 4 células / pulmón. Microfotografías muestran las características morfológicas de los CDC como células redondeadas con las dendritas típicas (panel superior). Por otro lado, CD11c hi / lo MHC-II representa un subconjunto morfológicamente diferentes que muestra protuberancias celulares que son típicas de los macrófagos (MΦ, panel inferior) 12. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/3563/3563fig1.jpg" /> Figura 1. Diferencial DC frecuencia en el pulmón y el bazo del ratón. Un pulmóntejido º del bazo de ratones C57BL / 6 fueron recogidos y tratados con colagenasa. Después de la digestión colagenasa, las células fueron teñidas con anti-ratón CD11c-PE-IA Cy7 y anti-ratón / IE-FITC. Representante de las parcelas de citometría de flujo muestran los porcentajes de los CDC (CD11c de alta / alta MHC-II) en el pulmón y el bazo. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/3563/3563fig2.jpg" /> Figura 2. Aislamiento de los CDC de pulmón de ratón. Suspensión de ratón de pulmón de células individuales fue marcado con anti-CD11c microesferas y pasa a través de un separador celular automático. A) Un gráfico muestra los porcentajes de representación de los CDC (CD11c de alta / alta MHC-II) y macrófagos (MΦ, CD11c hi / lo MHC-II) la población después del enriquecimiento CD11c. Tinción más de la fracción enriquecida seguido utilizando anti-ratón CD11c-PE-IA Cy7 y anti-ratón / IE-FITC. Doble células positivas fueron ordenados y analizados por citometría de flujo. Aidentificar su morfología, las células fueron cytospun y se tiñeron con una versión modificada de Wright-Giemsa tinción. B) Representante parcelas muestran los porcentajes de los CDC y MΦ después de la separación de células. Microfotografías muestran una imagen representativa de pulmón CDC y MΦ pulmón. Barra de escala = 20 micras.

<ol><li>Pulendran, B., Palucka, K., Banchereau, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sensing+pathogens+and+tuning+immune+responses%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Sensing pathogens and tuning immune responses.</a> Science. 293, 253-256 (2001).</li>
<li>Banchereau, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunobiology+of+dendritic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">Immunobiology of dendritic cells.</a> Annual Review of Immunology. 18, 767-811 (2000).</li>
<li>Manicassamy, S., Pulendran, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dendritic+cell+control+of+tolerogenic+responses%5BTitle%5D)+AND+%22Immunol.+Rev%22%5BJournal%5D)">Dendritic cell control of tolerogenic responses.</a> Immunol. Rev. 241, 206-227 (2011).</li>
<li>Steinman, R. M., Cohn, Z. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+a+novel+cell+type+in+peripheral+lymphoid+organs+of+mice.+I.+Morphology%2C+quantitation%2C+tissue+distribution%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">Identification of a novel cell type in peripheral lymphoid organs of mice. I. Morphology, quantitation, tissue distribution.</a> J. Exp. Med. 137, 1142-1162 (1973).</li>
<li>Asselin-Paturel, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+type+I+IFN-producing+cells+are+immature+APCs+with+plasmacytoid+morphology%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Mouse type I IFN-producing cells are immature APCs with plasmacytoid morphology.</a> Nat. Immunol. 2, 1144-1150 (2001).</li>
<li>Chan, C. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interferon-producing+killer+dendritic+cells+provide+a+link+between+innate+and+adaptive+immunity%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Med%22%5BJournal%5D)">Interferon-producing killer dendritic cells provide a link between innate and adaptive immunity.</a> Nat. Med. 12, 207-213 (2006).</li>
<li>Taieb, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+dendritic+cell+subset+involved+in+tumor+immunosurveillance%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Med%22%5BJournal%5D)">A novel dendritic cell subset involved in tumor immunosurveillance.</a> Nat. Med. 12, 214-219 (2006).</li>
<li>Guerrero-Plata, A., Kolli, D., Hong, C., Casola, A., Garofalo, R. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subversion+of+pulmonary+dendritic+cell+function+by+paramyxovirus+infections%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">Subversion of pulmonary dendritic cell function by paramyxovirus infections.</a> Journal of Immunology. 182, 3072-3083 (2009).</li>
<li>Larson, R. S., Springer, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structure+and+function+of+leukocyte+integrins%5BTitle%5D)+AND+%22Immunol.+Rev%22%5BJournal%5D)">Structure and function of leukocyte integrins.</a> Immunol. Rev. 114, 181-217 (1990).</li>
<li>Sung, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+major+lung+CD103+%28alphaE%29-beta7+integrin-positive+epithelial+dendritic+cell+population+expressing+Langerin+and+tight+junction+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">A major lung CD103 (alphaE)-beta7 integrin-positive epithelial dendritic cell population expressing Langerin and tight junction proteins.</a> J. Immunol. 176, 2161-2172 (2006).</li>
<li>Wang, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Local+CD11c%2B+MHC+class+II-+precursors+generate+lung+dendritic+cells+during+respiratory+viral+infection%2C+but+are+depleted+in+the+process%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Local CD11c+ MHC class II- precursors generate lung dendritic cells during respiratory viral infection, but are depleted in the process.</a> J. Immunol. 177, 2536-2542 (2006).</li>
<li>Bhatia, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+host+defense+against+Aspergillus+fumigatus+involves+alveolar+macrophages+with+a+predominance+of+alternatively+activated+phenotype%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Rapid host defense against Aspergillus fumigatus involves alveolar macrophages with a predominance of alternatively activated phenotype.</a> PLoS One. 6, e15943-e15943 (2011).</li>
<li>Shao, Z., Makinde, T. O., McGee, H. S., Wang, X., Agrawal, D. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fms-like+tyrosine+kinase+3+ligand+regulates+migratory+pattern+and+antigen+uptake+of+lung+dendritic+cell+subsets+in+a+murine+model+of+allergic+airway+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Fms-like tyrosine kinase 3 ligand regulates migratory pattern and antigen uptake of lung dendritic cell subsets in a murine model of allergic airway inflammation.</a> J. Immunol. 183, 7531-75381 (2009).</li>
<li>Hao, X., Kim, T. S., Braciale, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+response+of+respiratory+dendritic+cell+subsets+to+influenza+virus+infection%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">Differential response of respiratory dendritic cell subsets to influenza virus infection.</a> J. Virol. 82, 4908-4919 (2008).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

El aislamiento de DC pulmonar del ratón es una técnica importante para el estudio de una amplia gama de estímulos respiratorios. El proceso de obtención de estas células incluye los pasos críticos que impiden la pérdida de las células, así como la viabilidad celular y la pureza. Perfusión del pulmón antes de la recogida ayudará a eliminar las células periféricas, así como reducir los eritrocitos contaminantes. El uso de la disociación puede ser automatizado advanteogus cuando un gran número de los pulmones se manejan, d...

<table width="200" border="1"><tr><td> Nombre del reactivo </td><td> Empresa </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentarios (opcional) </td></tr><tr><td> Buffer de lisis ACK </td><td> Invitrogen </td><td> D6-0005DG </td><td></td></tr><tr><td> Anti-ratón CD11c (HL3) </td><td> BD Pharmingen </td><td> 5580979 </td><td> PE-conjugado Cy7 </td></tr><tr><td> Anti-ratón de IA / IE (269) </td><td> BD-Pharmingen </td><td> 553623 </td><td> Conjugado con FITC </td></tr><tr><td> Collangenase tipo 1A </td><td> Sigma </td><td> 9891-500MG </td><td></td></tr><tr><td> Filtros de células </td><td> BD Falcon </td><td> 352340, 352360 </td><td></td></tr><tr><td> CD11c (N418) microesferas </td><td> Miltenyi </td><td> 130-052-001 </td><td></td></tr><tr><td> DNasa I </td><td> Sigma </td><td> D5025-150KU </td><td></td></tr><tr><td> Solución salina equilibrada de Hank </td><td> Invitrogen </td><td> 14170 </td><td></td></tr><tr><td> Solución tampón Hepes </td><td> Invitrogen </td><td> 15630 </td><td></td></tr><tr><td> Placas de Petri de 60 mm </td><td> BD Falcon </td><td> 351016 </td><td></td></tr><tr><td> GentleMACS ™ C tubos </td><td> Miltenyi </td><td> 130-093-237 </td><td></td></tr><tr><td> MACS disociador suave </td><td> Miltentyi </td><td> 130-093-235 </td><td></td></tr><tr><td> AutoMACS-Pro ™ </td><td> Miltenyi </td><td> 130-092-545 </td><td></td></tr><tr><td> FASC Aria </td><td> BD </td><td></td><td></td></tr></table>

aislamiento de células dendríticas del pulmón de ratón

Isolation of Mouse Lung Dendritic Cells

Las células pulmonares dendríticas (DC), juegan un papel fundamental en la detección de 1,2 patógenos invasores, así como en el control de las respuestas tolerogénicas 3 en el tracto respiratorio. Al menos tres subgrupos principales de las células dendríticas del pulmón se han descrito en ratones: CC convencionales (CDC) 4, plasmocitoide DC (PDC) 5 y el asesino DC IFN-producción (IKDC) 6,7. El subconjunto de los CDC es el subconjunto DC más destacados en el pulmón 8. El marcador común conocida para identificar subgrupos de DC CD11c es, un tipo que la integrina transmembrana (β2) que también se expresa en monocitos, macrófagos, neutrófilos y algunas células B 9. En algunos tejidos, con CD11c como marcador para identificar ratón DC es válido, como en el bazo, donde la mayoría de las células CD11c + representan el subconjunto de los CDC, que expresa los altos niveles del complejo mayor de histocompatibilidad de clase II (MHC-II). Sin embargo, el pulmón es un tejido más heterogénea, donde sesubconjuntos lado DC, hay un alto porcentaje de una población de células distintas que expresa los altos niveles de CD11c pelea niveles bajos de MHC-II. Con base en su caracterización y sobre todo en su expresión de F4/80, un marcador de macrófagos del bazo, el CD11c alta MHC-II pulmonar he población celular ha sido identificado como macrófagos pulmonares 10 y más recientemente, como un posible precursor de DC 11. En contraste con el ratón PDC, el estudio de la función específica de los CDC en la respuesta inmune pulmonar ha sido limitado debido a la falta de un marcador específico que podría ayudar en el aislamiento de estas células. Por lo tanto, en este trabajo se describe un procedimiento para aislar altamente purificada de pulmón de ratón CDC. El aislamiento de los subconjuntos pulmonar DC representa una herramienta muy útil para obtener información sobre la función de estas células en respuesta a patógenos respiratorios, así como los factores ambientales que pueden desencadenar la respuesta inmune del huésped en el pulmón.

Una preparación altamente purificada de células dendríticas del pulmón del ratón se describe. Especial énfasis se da al aislamiento de subgrupo de células dendríticas convencionales.

Aislamiento de células dendríticas del pulmón de ratón

Las células dendríticas (DC) del pulmón desempeñan un papel fundamental en la detección de patógenos invasores 1,2, así como en el control de las respuestas tolerogénicas 3 en el...

El objetivo general de este procedimiento es obtener una preparación altamente purificada de células dendríticas de pulmón de ratón. Esto se logra primero recolectando el tejido pulmonar sin incluir los ganglios linfáticos drenantes. Luego, se obtiene una suspensión de células individuales mediante digestión con colagenasa.El siguiente paso consiste en enriquecer las células positivas para CD11C utilizando un sistema de aislamiento magnético de células. Ahora, el subconjunto de células dendríticas convencionales se aísla mediante clasificación celular por citometría de flujo. En última instancia, las células dendríticas convencionales aisladas del tejido pulmonar de ratón pueden analizarse mediante citometría de flujo y microscopía óptica.Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la inmunología, como cuál es la participación del subconjunto de células dendríticas convencionales en la inmunidad innata y las enfermedades infecciosas del tracto respiratorio. El procedimiento será demostrado por Issa Lancelin, un asociado de investigación de mi laboratorio, y por mí mismo. Después de sacrificar al ratón, comience cortando y luego retirando suavemente la piel externa del peritoneo para exponer la cavidad torácica.Proceda a abrir el diafragma cortando la caja torácica para exponer el corazón y los pulmones. Una vez expuestos el corazón y los pulmones, puede comenzar el procedimiento de perfusión. Llene una jeringa de cinco mililitros con E-D-T-A-H-B-S-S y conecte una aguja de calibre 25 a la jeringa.Luego, inserte la aguja en el ventrículo derecho para evitar fugas durante la inyección. Utilice pinzas para sujetar el tejido miocárdico alrededor de la aguja. A continuación, inyecte suavemente la solución manteniendo una presión constante.Una perfusión precisa dará como resultado la inflación pulmonar y un cambio de color a rosa o blanco; para evitar una posible contaminación, retire y deseche los ganglios linfáticos drenantes. A continuación, recoja el tejido pulmonar, transfiriendo el órgano extirpado a una placa de Petri sobre hielo. Llene un tubo gentle max C con cinco mililitros de solución de digestión con colagenasa para pulmón y luego corte el pulmón en trozos pequeños.Utilizando una hoja de afeitar, transfiera el tejido al tubo mediante una disociación máxima suave. Para obtener una suspensión de células individuales, seleccione el programa M lung zero one. A continuación, incube la muestra a 37 grados Celsius durante 30 minutos, agitando el tubo cada cinco minutos para resuspender los fragmentos de tejido F, y continúe con el programa M lung zero two.Ahora transfiera la muestra a un tubo cónico de 15 mililitros y centrifugue las células durante 10 minutos a 335 ×g a cuatro grados Celsius. Descarte el sobrenadante y agregue dos mililitros de un tampón de lisis CK al precipitado durante un minuto a temperatura ambiente para lisar los glóbulos rojos restantes. Luego lave las células con 13 mililitros de PBS frío suplementado con 0,5 % BSA.Después de desechar el sobrenadante, volver a suspender este sedimento en cinco mililitros de PBS frío más BSA y luego pasar la solución celular a través de una malla de nailon de 100 micrómetros. Finalmente, determinar el número total de células mediante exclusión con azul de trian. En lugar de usar una disociación suave máxima, llenar un tubo cónico de 15 mililitros con cinco mililitros de solución de colagenasa por pulmón.Agregue el tejido pulmonar picado al tubo e incube el tejido pulmonar durante una hora a 37 grados Celsius. Vortexee las células cada 15 minutos para re-suspender los fragmentos de tejido. Luego, rompa el tejido digerido pasando la muestra de seis a ocho veces a través de una jeringa de tres mililitros conectada a una aguja de calibre 20.Evite formar burbujas durante el proceso. Primero, lave la suspensión de células individuales durante 10 minutos a 200 veces G a cuatro grados Celsius y deseche el sobrenadante. Luego, re suspenda las células en 400 microlitros de tampón de separación.Incube el bloque de células totales con anticuerpos anti-CD16/32 para bloquear la unión inespecífica mediada por FC, utilizando 0,5 microgramos de anticuerpo anti-CD16/32 por cada 10⁸ células, durante 30 minutos a cuatro grados Celsius. Después de lavar las células con 10 mililitros de tampón de separación frío, resuspenda las células en 400 microlitros adicionales de tampón de separación. A continuación, añada 100 microlitros de microperlas CD11c, añada hasta un total de 10⁸ células, mezcle bien e incube la solución de células y perlas durante 15 minutos en el refrigerador.Después de eliminar las perlas no unidas con 10 mililitros de tampón de separación frío, deseche el sobrenadante y resuspenda el botón celular en un mililitro de tampón de separación frío. Finalmente, cargue las muestras en el separador AutoMax pro y ejecute el programa P-O-S-S-E-L-D. Para recoger la fracción de células que expresan CD 11 C.Incube la suspensión de células positivas para CD11c enriquecidas con anticuerpo anti-CD11c PEI siete y anticuerpos dirigidos contra las moléculas de Clase II del MHC presentes en estas células durante 30 minutos a cuatro grados Celsius. Después de lavar las células con PBS frío más BSA, re suspenda las células en 0.5 mililitros de PBS más BSA y páselas a través de un filtro de malla de nailon de 40 micrómetros. Finalmente, agregue las células positivas para CD11c purificadas a un tubo FACS para su cuantificación posterior en tubos en blanco separados.Añada 100 microlitros de PBS más BSA a tubos de recolección de cinco mililitros para prevenir daños en las células purificadas y clasifique la suspensión celular filtrada mediante citometría; mantenga las células recolectadas a temperatura refrigerada durante todo el proceso de clasificación celular. En estos gráficos de densidad, hay más del triple de células dendríticas convencionales en el bazo que en el pulmón. Además, en el pulmón, las células positivas para CD11c incluyen una población celular que no corresponde a células dendríticas convencionales, representada por el grupo de eventos con bajo nivel de MHC clase II fuera de la compuerta de células dendríticas convencionales.En el lado izquierdo de la figura, como se observa en este gráfico de densidad, la separación magnética de las células pulmonares totales aumenta el número de células dendríticas convencionales desde aproximadamente el 1,5 % de las células totales hasta aproximadamente el 16,5 %. Sin embargo, los macrófagos CD11C positivos y de baja expresión de MHC clase II aún constituyen más del 70 % de la población celular total, contaminando significativamente la pureza del subconjunto enriquecido de células dendríticas convencionales pulmonares en esta etapa del proceso de aislamiento. No obstante, la clasificación por FACS mejora la pureza de las células dendríticas convencionales a más del 96 %, como se observa en la microfotografía superior derecha. Las células dendríticas convencionales CD11C alto y MHC clase II alto son células redondeadas que presentan las dendritas típicas, mientras que las células CD11C alto y MHC clase II bajo, observadas en la microfotografía inferior derecha, exhiben protuberancias celulares más características de la morfología de los macrófagos.Al realizar este procedimiento, es importante recordar manipular el tejido pulmonar y la preparación de células individuales a las temperaturas indicadas. Esto es fundamental para preservar la viabilidad celular y el rendimiento de células dendríticas convencionales. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo aislar subpoblaciones de células dendríticas del pulmón de ratón.El aislamiento de subpoblaciones de células dendríticas pulmonares representa una herramienta muy útil para comprender las funciones de estas células frente a patógenos respiratorios y factores ambientales que pueden desencadenar la respuesta inmunitaria del huésped en el pulmón.

Research

Investigación

JoVE Journal

Immunology and Infection

Inmunología e Infección

Disociar las células de tipos específicos de tejido requiere de parámetros específicos para la agitación del tejido para obtener un alto volumen de células viables, cultivables. El Miltenyi gentleMACS disociador optimiza esta tarea con un protocolo simple y práctico. En esta publicación, el uso de este aparato en el tejido pulmonar se explica.

La preparación estandarizada de un solo suspensiones de células de tejido pulmonar de ratón con el disociador gentleMACS

En este artículo se demuestra el aislamiento de las células del pulmón murino residentes madre mesenquimales (MSC pulmón), su expansión, la caracterización y análisis de las propiedades inmunomoduladoras.

Aislamiento y Caracterización de Hoechst Baja CD45 Negativo Mouse células madre mesenquimales de pulmón

Aquí, le detallamos una metodología para el aislamiento rápido de las células dendríticas de ratones intestinales (DCS) y los macrófagos. Caracterización fenotípica de los países en desarrollo y los macrófagos intestinales se realiza utilizando varios colores, mientras que el flujo de análisis de citometría de enriquecimiento de bolas magnéticas seguido por la selección de células se utiliza para producir poblaciones de alta pureza para los estudios funcionales.

Aislamiento y caracterización de las células dendríticas y los macrófagos del intestino delgado de ratón

Este protocolo detalla un método para aislar células presentadoras de antígeno de timo humano a través de diferentes etapas de la digestión enzimática del tejido seguido por centrifugación de densidad de la suspensión de células individuales y la clasificación finalmente magnético y / o FACS de las poblaciones de células de interés.

Aislamiento de células dendríticas mieloides y células epiteliales de timo humano

Existen distintos subconjuntos de células dendríticas como poblaciones raras en los órganos linfoides y, por lo tanto, son difíciles de aislar en número y pureza suficientes para los experimentos inmunológicos. Aquí describimos un método de alta eficiencia y alto rendimiento para el aislamiento de todos los principales subconjuntos actualmente conocidos de células dendríticas esplénicas de ratón.

Un método de rendimiento eficiente y de alta para el aislamiento de ratón subconjuntos de células dendríticas

Se describe un método para generar la precisión de corte de pulmón rebanadas (PCLS) y la inmunotinción ellos para visualizar la localización de diversos tipos de células inmunes en el pulmón. Nuestro protocolo se puede extender a visualizar la ubicación y la función de muchos tipos celulares diferentes bajo una variedad de condiciones.

Precisión de corte pulmón de ratón Rebanadas para visualizar las células en vivo pulmonar dendríticas

Derivados de monocitos DC (MoDC) puede detectar pequeñas cantidades de moléculas asociadas de peligro y por lo tanto son fácilmente preparada. Proporcionamos un protocolo detallado para el aislamiento de MoDC de sangre y los tumores y su activación con complejos inmunes mientras destacando medidas claves que deben considerarse para evitar su activación prematura.

Protocolo de aislamiento de células dendríticas derivadas de monocitos de ratón y su activación posterior In Vitro con complejos inmunes Tumor

Aquí, presentamos un método económico y eficiente para aislar y generar células dendríticas derivadas de la médula ósea de alta pureza a partir de ratones después de 7 días de cultivo con 10 ng / ml GM-CSF / IL-4.

Protocolo económico y eficiente para aislar y cultivar células dendríticas derivadas de la médula ósea de ratones

En este artículo, las células endoteliales pulmonares primarias se aislaron y cultivaron de ratones neonatos.

Aislamiento de células endoteliales pulmonares primarias de ratón

Proporcionamos un protocolo detallado para aislar e identificar poblaciones de células T específicas de antígenos raros en pulmones de ratón a través del enriquecimiento de células T basado en perlas magnéticas y tetrámeros del complejo de histocompatibilidad mayor (MHC) de péptidos.

Identificación de células T raras específicas de antígeno de pulmones de ratón con tetrámeros del complejo de histocompatibilidad peptídico:principal

Este protocolo detalla el aislamiento de poblaciones vivas inmunes y no inmunes del pulmón de ratón en un estado estacionario y después de la infección por influenza. También proporciona estrategias de activación para identificar subconjuntos de células epiteliales y mieloides.

Aislamiento de poblaciones vivas de células mieloides y epiteliales del pulmón de ratón

Aprende a aislar células dendríticas convencionales del pulmón de ratón mediante digestión con colagenasa, enriquecimiento magnético y citometría de flujo. Este protocolo permite obtener preparaciones altamente purificadas para estudios inmunológicos.

Aislamiento de células dendríticas del pulmón de ratón

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