Name: El aislamiento de la microglía Primaria cultivos mixtos de células gliales del tejido neonatal cerebro de rata (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-08-15T12:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 20 s
Description: Aprende a aislar microglía primaria de cerebros de rata neonatal mediante homogeneización y cultivo mixto glial. Este protocolo mecánico minimiza la activación celular y proporciona alta pureza para estudios in vitro de neuroinflamación.

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Financiado por el programa intramuros de la Universidad de Servicios Uniformados.

1. La disección de los tejidos neonatal cerebro de rata <ol><li> 15 L-medios de comunicación acondicionado Chill Leibovitz (Leibowitz L-15 + BSA al 0,1% + 1% Pen / Strep) a 4 ° C. Medios calientes de cultivo (DMEM + 10% de SFB + 1% de penicilina / estreptomicina) a 37 ° C. Preparar 4 60x15 mm placas de Petri con 4-5 ml de los 15 L-acondicionado medios de comunicación sobre el hielo. Esterilice todos los instrumentos quirúrgicos con un 100% de etanol. </li><li> Enjuague los cachorros recién nacidos P2 rap con el 70% de etanol. (Crías de rata neonatal edades comprendidas entre P1-P5 se puede utilizar en este protocolo.) </li><li> Rápidamente decapitar a una cría de rata con tijeras estériles y colocar la cabeza de inmediato en etanol al 70%. Repetir para un total de 5 crías de rata luego transferir las cabezas en solución salina. </li><li> Retire los cerebros enteros de los jefes y colocarlos en una placa de Petri con 4 - 5 ml de solución de L-15 (Leibowitz L-15 + BSA al 0,1% + 1% Pen / Strep) en el hielo. </li><li> Repita los procedimientos de 1,2 - 1,4 para el resto de los cachorros en la camada. </li><li> Retire las meninges del cerebro y transferir el destejido cerebral IRED (es decir, la corteza, el cerebelo, el cerebro entero, etc) en una nueva placa de Petri con 4-5 ml de solución de L-15 (Leibowitz L-15 + BSA al 0,1% + 1% Pen / Strep) en el hielo. </li></ol> 2. Preparación de la población mixta de células gliales <ol><li> Sin dañando los tejidos cerebrales con unas tijeras o una cuchilla, la transferencia del tejido con una pipeta de 10 ml a un estéril de 50 ml tubo cónico. </li><li> Cónico de centrífuga a 2.500 RCF durante 5 min a 4 ° C. </li><li> Aspirar el sobrenadante. Añadir 4-5 ml de frescos 15 L-medios de comunicación (Leibowitz L-15 + BSA al 0,1% + 1% Pen / Strep). </li><li> Pipetear tejido hacia arriba y hacia abajo 10 veces con una pipeta estéril de 10 ml. </li><li> Colocar un filtro de células (100 poros micras) en un tubo cónico fresco 50 ml. Tejido pipeta arriba y hacia abajo una vez con una pipeta estéril de 5 ml y con la pipeta a ras de la filtro de células, dispensar el material a través del filtro de células en el tubo cónico. </li><li> Limpie el filtro de células con 4-5 ml de frescos 15 L-medios de comunicación (Leibowitz L-15 + 0,1% BSUna pluma + 1% / Strep). </li><li> Centrífuga cónico con células tensas a 2.500 RCF durante 5 min a 4 ° C. </li></ol> 3. Revestimiento y mantenimiento de cultivos mixtos de células gliales <ol><li> Para cada cerebro procesa las crías de rata, preparar 1 T-75 frascos estériles mediante la adición de 12 ml de medio de cultivo (DMEM + 10% de SFB + 1% de penicilina / estreptomicina) en cada frasco. </li><li> Aspirar el sobrenadante de las células sedimentadas y añadir 5-6 ml de medio de cultivo para el pellet celular. Pipetear arriba y hacia abajo 10 veces con una pipeta de 10 ml. </li><li> Transferir un volumen igual de suspensión de células en cada matraz T-75. </li><li> Incubar los frascos en un 5% de CO 2 incubadora a 37 ° C durante un total de 1-3 semanas. </li><li> Los matraces se incubaron primero durante 5 días, y el quinto día, reemplazar los medios de cultivo en cada matraz con 12 ml de medio fresco y volver a la incubadora. Luego, cada 3 días, vuelva a colocar los medios de comunicación acondicionado en cada frasco con 12 ml de medio fresco para lograr la confluencia. Esto se debe hacerne muy cuidadosamente sin tocar el fondo de los frascos donde las células se adhieren. </li></ol> 4. El aislamiento y forro de Primaria microglía <ol><li> Después de cultivos mixtos gliales son completamente confluente, eliminar matraces de la incubadora y cubrir las tapas matraz con parafilm para impedir el intercambio de gases con el aire ambiental. </li><li> Agitar frascos a 100 rps (compañero de laboratorio SI-600, Jeio Tech) durante 1 hora a 37 ° C. </li><li> Recoger los medios de comunicación de todos los frascos con una pipeta de 10 ml sin alterar la capa de los astrocitos en la superficie del frasco. Coloque el material en tubos de 50 ml cónicos. Añadir medio fresco a los frascos y frascos de retorno a la incubadora. </li><li> Centrifugar los tubos cónicos a 2.500 RCF durante 5 min a 4 ° C. </li><li> Aspirar el sobrenadante de todos los tubos cónicos. Gránulos de las células son células de la microglia alta pureza. Volver a suspender las pastillas en 1 ml de revestimiento microglia los medios de comunicación (DMEM + FES 10% + 1% de penicilina / estreptomicina). </li><li> Cuente con la densidad celular en los medios de comunicación que utilizan resuspendidasun hemocitómetro. </li><li> Añadir un volumen apropiado de los medios de comunicación de enchapado microglia para lograr un 2 x 10E5 células por ml de densidad. Placa como adecuado para el análisis experimental. </li><li> Permita que la microglia para unir toda la noche. </li></ol> 5. Los resultados representativos El protocolo descrito anteriormente resultados en cultivos primarios de alta pureza microglía. Según lo determinado por inmunohistoquímica para un marcador celular de macrófagos / microglia específico (Iba1), enchapados en culturas microglia son&gt; 90% de pureza (Figura 2). Además, la tinción de los marcadores de células de astrocitos, oligodendrocitos y neuronas específicas demuestra la mínima contaminación (Figura 2). Después de establecer cultivos mixtos de células gliales, la microglía puede ser aislado por agitación hasta 4 veces sucesivas. El primer aislamiento de microglia rendirá aproximadamente 2.2 x 106 células / ml o aproximadamente 9 millones de células por cada 10 frascos y el rendimiento esperado disminuye con cada sucesiva shake. Microglia aisló por este método se han utilizado con éxito para investigar la capacidad de fagocitosis, funciones tales como la producción de óxido nítrico, y la toxicidad neuronal (Figura 3) 13-14. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/3814/3814fig1.jpg" /> Figura 1. Visión general del protocolo para la preparación de cultivos mixtos de células gliales y el aislamiento de la microglía primaria. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/3814/3814fig2.jpg" /> Figura 2. El aislamiento de la microglía de alta pureza que se han verificado mediante análisis de inmunohistoquímica con la microglía (IBA-1, roja), astrocitos (GFAP, verde), las neuronas (NeuN, rojo) y oligodendrocitos (CC1, rojo) de marcadores específicos. La tinción de ADN de las células en cultivo por DAPI (azul) también se muestra. <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/3814/3814fig3.jpg" /> Figura 3. Microglia aislado en el método descricama se han utilizado en una serie de ensayos, incluyendo, pero no se limitan a, los ensayos de fagocitosis, ensayos de la función y los estudios de neurotoxicidad. En estos estudios, se ha encontrado que la microglía (IBA-1 positivo, verde), cuando se expone a controlar (A) o LPS (B) medios tratados, aumentar su fagocitosis de marcadas fluorescentemente perlas de látex (rojo), que pueden ser cuantificados ( C). Además, el LPS (1ng/ml) el tratamiento puede aumentar la producción de óxido nítrico en la microglía (D). Por último, tanto a través de transwell inserto separado o directa culturas microglia-neuronas, hemos encontrado que la microglia incubadas con LPS puede inducir la muerte celular neuronal, medido por la lactato deshidrogenasa (LDH) liberación (E, F).

<ol><li>Ransohoff, R. M., Perry, V. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microglial+physiology%3A+unique+stimuli%2C+specialized+responses%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Microglial physiology: unique stimuli, specialized responses.</a> Annu. Rev. Immunol. 27, 119-145 (2009).</li>
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<li>Hassan, N. F., Rifat, S., Campbell, D. E., McCawley, L. J., Douglas, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+flow+cytometric+characterization+of+newborn+mouse+brain-derived+microglia+maintained+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Leukoc.+Biol%22%5BJournal%5D)">Isolation and flow cytometric characterization of newborn mouse brain-derived microglia maintained in vitro.</a> J. Leukoc. Biol. 50, 86-92 (1991).</li>
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<li>Hassan, N. F., Campbell, D. E., Rifat, S., Douglas, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+characterization+of+human+fetal+brain-derived+microglia+in+in+vitro+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Isolation and characterization of human fetal brain-derived microglia in in vitro culture.</a> Neuroscience. 41, 149-158 (1991).</li>
<li>Frank, M. G., Wieseler-Frank, J. L., Watkins, L. R., Maier, S. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+isolation+of+highly+enriched+and+quiescent+microglia+from+adult+rat+hippocampus%3A+immunophenotypic+and+functional+characteristics%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci.+Methods%22%5BJournal%5D)">Rapid isolation of highly enriched and quiescent microglia from adult rat hippocampus: immunophenotypic and functional characteristics.</a> J. Neurosci. Methods. 151, 121-130 (2006).</li>
<li>Byrnes, K. R., Stoica, B., Loane, D. J., Riccio, A., Davis, M. I., Faden, A. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metabotropic+glutamate+receptor+5+activation+inhibits+microglial+associated+inflammation+and+neurotoxicity%5BTitle%5D)+AND+%22Glia%22%5BJournal%5D)">Metabotropic glutamate receptor 5 activation inhibits microglial associated inflammation and neurotoxicity.</a> Glia. 57, 550-560 (2009).</li>
<li>Loane, D. J., Stoica, B. A., Pajoohesh-Ganji, A., Byrnes, K. R., Faden, A. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Activation+of+metabotropic+glutamate+receptor+5+modulates+microglial+reactivity+and+neurotoxicity+by+inhibiting+NADPH+oxidase%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Activation of metabotropic glutamate receptor 5 modulates microglial reactivity and neurotoxicity by inhibiting NADPH oxidase.</a> J. Biol. Chem. 284, 15629-15639 (2009).</li>
</ol>

No hay conflictos de interés declarado.

Si bien este protocolo se utiliza rutinariamente para producir la microglía pura y saludable para los experimentos de investigación, la consideración cuidadosa de los aspectos técnicos durante las partes críticas del procedimiento minimizar la variabilidad en la microglia aislado. En primer lugar, durante la disección del tejido cerebral de crías de ratas neonatales, trabajando en el momento oportuno es necesario para minimizar el daño hipóxico isquémica, y en el tejido. Sin embargo, también es importante eliminar compl...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nombre del reactivo </td><td> Empresa </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentarios </td></tr><tr><td> 60 mm x 15 mm placas de Petri </td><td> Fisher de la marca </td><td> 0875713A </td><td></td></tr><tr><td> Afiladas tijeras de disección </td><td> Herramientas de Bellas Ciencia </td><td> 14094-11 </td><td></td></tr><tr><td> Dumont # 7b fórceps estándar consejos, curvas, 11cm </td><td> Herramientas de Bellas Ciencia </td><td> 11270-20 </td><td></td></tr><tr><td> Dumont # 5 fórceps estándar consejos, rectas, 11 cm </td><td> Herramientas de Bellas Ciencia </td><td> 11251-10 </td><td></td></tr><tr><td> 50 ml tubos de centrífuga cónicos </td><td> VWR </td><td> 89039-656 </td><td></td></tr><tr><td> 5 ml pipetas serológicas </td><td> Grenier Bio One </td><td> 606180 </td><td></td></tr><tr><td> 10 ml serológicas pipetas </td><td> Grenier Bio One </td><td> 607180 </td><td></td></tr><tr><td> 100 micras de nylon estéril filtro de células </td><td> Halcón </td><td> 35-2360 </td><td></td></tr><tr><td> 75 cm 2 frascos de cultivo de tejidos </td><td> Corning </td><td> 430641 </td><td></td></tr><tr><td> Medio esencial mínimo de Dulbecco (DMEM) </td><td> Gibco (Invitrogen) </td><td> 31053-028 </td><td></td></tr><tr><td> Leibovitz medio L-15 </td><td> Gibco (Invitrogen) </td><td> 11415064 </td><td></td></tr><tr><td> Suero bovino fetal </td><td> Gibco (Invitrogen) </td><td> 16000-036 </td><td></td></tr><tr><td> Fetal suero equino </td><td> Pescador </td><td> SH3007402 </td><td></td></tr><tr><td> La penicilina-estreptomicina </td><td> Gibco (Invitrogen) </td><td> 15140163 </td><td></td></tr><tr><td> 100% de etanol </td><td> La Compañía Warner Graham </td><td> 64-17-5 </td><td></td></tr><tr><td> Solución salina tamponada con fosfato, 10X, pH 7,4 </td><td> De calidad biológica, inc. </td><td> 119-069-131 </td><td> 1X en agua destilada estéril </td></tr><tr><td> Bolsas de bioseguridad </td><td> VWR </td><td> 14220-028 </td><td></td></tr><tr><td> Hemocitómetro </td><td> Hausser Científico </td><td> 1492 </td><td></td></tr><tr><td> 6-y las placas de cultivo celular con superficie Cellbind </td><td> Corning </td><td> 3335 </td><td></td></tr></tbody></table>

el aislamiento de la microglía primaria cultivos mixtos de células gliales del tejido neonatal cerebro de rata

Primary Microglia Isolation from Mixed Glial Cell Cultures of Neonatal Rat Brain Tissue

La microglía representan aproximadamente el 12% de la población celular total en el cerebro de los mamíferos. Mientras que las neuronas y astrocitos son considerados como los principales tipos de células del sistema nervioso, la microglía desempeñar un papel importante en la fisiología normal del cerebro mediante el control de los tejidos de los escombros y los agentes patógenos y el mantenimiento de la homeostasis en el parénquima a través de la actividad fagocítica 1,2. Microglia se activan durante una serie de condiciones lesiones y enfermedades, incluyendo enfermedad neurodegenerativa, lesión cerebral traumática, y la infección del sistema nervioso 3. Bajo estas condiciones de activación, la microglía aumentar su actividad fagocítica, sufren cambios morpohological y proliferativa, y secretan activamente las especies reactivas de oxígeno y nitrógeno, quimiocinas pro-inflamatorias y citoquinas, que a menudo la activación de un circuito paracrina o autocrina 4-6. A medida que estas respuestas microgliales contribuir a la patogénesis de la enfermedad en enfermedades neurológicas, la investigación se centró en microglia está garantizado. Debido a la heterogeneidad celular del cerebro, es técnicamente difícil obtener suficiente material muestra microglial con alta pureza durante los experimentos in vivo. La investigación actual sobre las funciones neuroprotectoras y neurotóxica de la microglía requieren un método de rutina técnica para generar constantemente microglia pura y saludable con el rendimiento suficiente para su estudio. Se presentan, en texto y video, un protocolo para aislar microglia primaria pura a partir de cultivos gliales mixtos para una variedad de aplicaciones posteriores. Brevemente, esta técnica utiliza tejido cerebral disociada de crías de rata neonatal para producir cultivos mixtos de células gliales. Después de que los cultivos gliales mixtas alcanzar la confluencia, microglía primarios son mecánicamente aislado del cultivo mediante un breve duración de agitación. La microglia se siembran con alta pureza para el estudio experimental. El principio y el protocolo de esta metodología han sidodescrito en la literatura 7,8. Además, las metodologías alternativas para aislar microglia primarias están bien descritos 9-12. Tejido cerebral homogeneizada puede ser separado por centrifugación en gradiente de densidad para producir primaria microglía 12. Sin embargo, la centrifugación es de longitud moderada (45 min) y puede causar daño celular y la activación, así como, causar enriquecido microglía y otras poblaciones celulares. Otro protocolo se ha utilizado para aislar microglía primaria en una variedad de organismos por prolongada (16 h) agitando mientras que en la cultura 9-11. Después de agitar, el sobrenadante se centrifuga medios para aislar microglía. Este método de aislamiento ya dos pasos también pueden perturbar la función microglial y la activación. Se utilizan principalmente el siguiente protocolo microglía aislamiento en nuestro laboratorio para un número de razones: (1) primaria microglía simular en la biología in vivo más fielmente que líneas celulares inmortalizadas roedores microglia, (2) Mecánico interrupción nominal minimiza disfunción potencial celular o activación, y (3) el rendimiento se puede obtener suficiente sin paso de los cultivos de células gliales mixtas. Es importante señalar que este protocolo utiliza el tejido cerebral de crías de rata neonatal para aislar microglia y que el uso de las ratas viejas para aislar microglía puede afectar significativamente el rendimiento, estado de activación, y las propiedades funcionales de aislado microglía. Hay evidencia de que el envejecimiento está relacionado con la disfunción microglia, neuroinflamación aumentado y patologías neurodegenerativas, estudios previos han utilizado para ex vivo para adultos microglia para comprender mejor el papel de la microglía en las enfermedades neurodegenerativas, donde el envejecimiento es un parámetro importante. Sin embargo, ex vivo microglía no se pueden mantener en cultivo durante períodos prolongados de tiempo. Por lo tanto, mientras que este protocolo se extiende la vida de la microglía primaria en cultivo, se debe señalar que la microglía comportan differently de los adultos microglia y en estudios in vitro deben ser cuidadosamente considerados cuando se traduce a un ajuste en vivo.

Aislamiento de la microglía primaria a partir de la heterogeneidad celular del cerebro es esencial para investigar su papel en las dos condiciones fisiológicas y patológicas. Este protocolo describe un aislamiento mecánico y técnica mixta de cultivo celular que proporciona un alto rendimiento y alta pureza, viables células primarias microgliales para<em&gt; In vitro</em&gt; Estudio y aplicaciones posteriores.

El aislamiento de la microglía Primaria cultivos mixtos de células gliales del tejido neonatal cerebro de rata

La microglia representa aproximadamente el 12 % de la población celular total del cerebro de los mamíferos. Mientras que las neuronas y los astrocitos se consideran los principales...

El objetivo general de este procedimiento es preparar cultivos primarios de células microgliales a partir de cerebros de ratas neonatales. Esto se logra primero aislado el cerebro y eliminando las meninges. El segundo paso consiste en homogenizar el cerebro y sembrar el cultivo glial mixto en frascos T 75.A continuación, los frascos se incuban durante 10 a 14 días hasta que una monocapa de astrocitos alcance confluencia. El paso final consiste en agitar los frascos para liberar los microglías que están creciendo sobre la monocapa de astrocitos, obteniendo así un cultivo purificado de microglías. En definitiva, se pueden utilizar microglías primarias de alta pureza en ensayos posteriores de cultivo celular individual y en co-cultivo in vitro.La principal ventaja de esta técnica frente a métodos existentes como el método de gradiente Perico es que la perturbación mecánica nominal minimiza la disfunción o activación de los microglías, y los microglías para experimentos pueden obtenerse durante semanas tras la preparación inicial. Demostraré este procedimiento junto con Tammy Tero, estudiante de posgrado en el laboratorio del Dr. Clifton Dau guard. Las culturas de microglía de alta pureza obtenidas mediante este protocolo pueden utilizarse en experimentos in vitro para estudiar la función de los microglías en condiciones fisiológicas normales, así como en condiciones patológicas de enfermedad.La microglía, su respuesta al daño tisular y a los estímulos inflamatorios tiene una relevancia directa en las lesiones neurológicas y las enfermedades neurodegenerativas. En general, las personas nuevas en este método pueden tener dificultades porque no están familiarizadas con la forma de eliminar las meninges del tejido cerebral de manera oportuna, con el fin de reducir la contaminación por fibroblastos en los cultivos primarios de microglía. Además, se debe tener cuidado de no dañar la monocapa de astrocitos durante la agitación de los frascos y el manejo de los cultivos de microglía.Para prepararse para el procedimiento, enfríe el medio Chi Livi L-15 a cuatro grados Celsius, prepárelo en placas de Petri de 60 por 15 milímetros que contengan medio L-15 y colóquelas sobre hielo. Caliente el medio de cultivo a 37 grados Celsius y asegúrese de que todas las herramientas quirúrgicas hayan sido esterilizadas. Después de decapitar un ratón lactante P1 a P5 con tijeras afiladas, sumerja la cabeza en etanol al 70 %.Después de haber recolectado las cabezas de cinco crías de rata, transfiera las cabezas a solución salina. Extraiga el cerebro completo de cada cabeza realizando cuidadosamente incisiones a ambos lados del cráneo por encima de las orejas, y saque el cerebro hacia uno de los recipientes de Petri que contienen medio L 15 sobre hielo. Una vez que los primeros cinco cerebros hayan sido transferidos al medio L 15 sobre hielo, se pueden procesar las siguientes cinco crías del mismo modo, cuando todos los cerebros hayan sido recolectados.Retire las meninges agarrando suavemente un borde de la lámina meníngea con pinzas y separándola cuidadosamente de la corteza subyacente. Es esencial eliminar completamente las meninges y hacerlo lo más rápidamente posible. Después de retirar las meninges, transfiera cada cerebro a una placa de Petri fresca con medio L 15 sobre hielo.Utilice una pipeta de 10 mililitros para aspirar el tejido cerebral y el medio de la placa hacia un tubo cónico estéril de 50 mililitros. Luego, centrifugue a 2.500 RCF durante cinco minutos a cuatro grados Celsius. Tras la centrifugación, aspire el sobrenadante.A continuación, utilice una pipeta estéril de 10 mililitros para transferir a Reese. Suspender el precipitado en cuatro a cinco mililitros de medio L 15 fresco, aspirando y dispensando el medio y el tejido de arriba abajo 10 veces. A continuación, coloque un filtro celular de 100 micrones de poro sobre un tubo cónico nuevo de 50 mililitros.Utilice una pipeta estéril de cinco mililitros para aspirar y dispensar la suspensión de tejido varias veces, y luego, agotando la pipeta en el filtro celular, vierta el material a través del filtro celular hacia el tubo cónico. Enjuague el filtro con cuatro a cinco mililitros de medio L15 frío y fresco. A continuación, centrifugue a 2.500 RCF durante cinco minutos a cuatro grados Celsius.Para cada cerebro de rata lactante procesado, prepare un matraz estéril T 75 añadiendo 12 mililitros de medio de cultivo precalentado a cada matraz. A continuación, después de aspirar el sobrenadante de las células sedimentadas, agregue cinco a seis mililitros de medio de cultivo al sedimento celular y pipete arriba y abajo 10 veces con una pipeta de 10 mililitros. Luego transfiera un volumen igual de suspensión celular a cada matraz T 75.Incube los frascos en una incubadora con 5% de dióxido de carbono a 37 grados Celsius durante una a tres semanas, permitiendo que las células permanezcan sin disturbio durante los primeros cinco días tras el siembra inicial. Después de cinco días, reemplace el medio condicionado en cada frasco con 12 mililitros de medio fresco para alcanzar confluencia. Esto debe hacerse con mucha precaución sin tocar el fondo del frasco donde se adhieren las células.Una vez que las culturas mixtas de glía alcancen la total confluencia, retire el frasco del incubador. Cubra las tapas de los frascos con parafilm para evitar el intercambio de gases con el aire ambiental y coloque los frascos en un incubador agitador ajustado a 100 RPS y 37 grados Celsius durante una hora. Transcurrida la hora, utilice una pipeta de 10 mililitros para recoger el medio de los frascos sin perturbar la capa de astrocitos y dispense en tubos cónicos de 50 mililitros. Añada medio fresco a los frascos y devuélvalos al incubador.Después de centrifugar los tubos a 2.500 RCF durante cinco minutos a cuatro grados Celsius, aspire el sobrenadante y resuspenda las células en un mililitro de medio de siembra de microglía. Luego cuente las células utilizando un citómetro humano y procedimientos estándar. Una vez determinado el número de células, agregue un volumen adecuado de medio de siembra de microglía para obtener una concentración celular deseada.Una concentración de dos veces 10 a la cinco células por placa de mililitro es adecuada para el experimento; regrese luego a la incubadora. Deje que las microglías se adhieran durante la noche. Las células han sido inmunomarcadas con un anticuerpo específico para IBA uno, un marcador de microglía, que aparece en rojo.Hay una contaminación mínima de la cultura con células neuronales, como lo demuestra esta imagen de microscopio de inmunotinción utilizando un anticuerpo contra el nuevo marcador neuronal NA, que aparece en rojo. La muestra se contratiñó con DPI para teñir en azul todos los núcleos celulares. Esta imagen muestra la inmunotinción con GFAP y el marcador de astrocitos.Los astrocitos aparecen en verde. Aquí observamos una imagen de la cultura de microglía inmunomarcada con un anticuerpo específico para CC uno, un marcador de oligodendrocitos. Los oligodendrocitos aparecen en rojo.Este histograma muestra los resultados de la cuantificación de cada tipo celular. Puede observarse que las culturas de microglía sembradas son más del 90 % puras. Esta imagen de microscopio de fluorescencia muestra una cultura de microglía que ha sido inmunotincionada para IBA1.Las áreas rojas son microesferas de látex marcadas con fluorescencia. La cultura de microglía mostrada aquí ha sido tratada con un nanogramo por mililitro de lipopolisacárido, y puede observarse que las células de microglía han fagocitado las microesferas de látex marcadas con fluorescencia. Aquí, los resultados del ensayo de fagocitosis se muestran en un histograma.Se observa un aumento de la fagocitosis tras el tratamiento con LPS. Esta figura muestra que la producción de óxido nítrico también aumenta en cultivos de microglía tras la adición de LPS. Finalmente, tanto los cultivos neuronales de microglía separados directamente como los separados mediante insertos tipo transwell son susceptibles a un aumento de la muerte celular tras la incubación con LPS, medido mediante la liberación de deshidrogenasa láctica. Una vez dominada la primera parte de esta técnica, la siembra en matraces T 75 puede realizarse en una hora y media, y el procedimiento completo puede completarse en un plazo de dos semanas.Otra consideración durante la optimización de este protocolo es determinar la duración del tiempo. Las culturas mixtas de glía deben mantenerse antes de aislar microglía primaria para su siembra, tras el establecimiento de cultivos de alta pureza. Mediante este procedimiento, se puede evaluar la función de la microglía in vitro mediante la medición de la producción de óxido nítrico, la liberación de citocinas y quimioquinas, así como la actividad fásica, todo ello determinable y mensurable mediante ensayos de laboratorio de rutina.Por lo tanto, con el desarrollo de este procedimiento, los investigadores en el campo de la neurociencia tienen la capacidad de explorar la actividad de las microglías en un entorno celular homogéneo e investigar sus funciones bajo diversas condiciones neurológicas. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo preparar cultivos primarios de células microgliales a partir de cerebros de ratas neonatales. Al aislarse primero el cerebro y eliminarse las meninges, seguido de la homogenización del cerebro y su siembra en matraces, estos se incuban durante 10 a 14 días hasta que una monocapa de astrocitos alcance confluencia.El paso final consiste en agitar los matraces para liberar los microglías que están creciendo encima de la monocapa de astrocitos, lo que resulta en un cultivo purificado de microglías.

primary-microglia-isolation-from-mixed-glial-cell-cultures-neonatal

Research

Investigación

JoVE Journal

Immunology and Infection

Inmunología e Infección

Este video muestra un método para aislar y cultivar microglía de cerebros de ratas. Consiste en separar la microglía de otras células neuronales y no neuronales mediante placas recubiertas con un anticuerpo monoclonal específico para la microglía.

Aislamiento y cultivo de microglía a partir de cerebros de rata utilizando medios sin suero

El video demostró el método de aislar y cultivar células del cerebro de un ratón neonatal. Implicó la disociación enzimática y mecánica del cerebro, seguida de cultivo en medios de crecimiento carentes de factor de crecimiento neuronal para obtener una población glial mixta.

Obtención de un cultivo de células gliales mixtas a partir de un cerebro de ratón neonatal

Nosotros describimos métodos para el aislamiento / cultura eficiente y rápida de la microglia viable desde la corteza cerebral neonatal y adulto de la médula espinal. La disección y placas de microglia cortical se puede lograr dentro de los 90 minutos, con la cosecha microglial posterior que tiene lugar ~ 10 días después de la disección inicial.

Microglia cultivo del Sistema Nervioso Central Neonatal y Adultos

Una clave para el éxito de la investigación de la biología microglial es la preservación de immunofunction microglial ex vivo durante el aislamiento del tejido del SNC. Aislar microglia mediante agitación rotatoria resultados en cultivos de células de alta pureza y inmunofuncional según la evaluación de imágenes fluorescentes, inmunocitoquímica y ELISA después de la activación microglia con el lipopolisacárido estímulos proinflamatorias (LPS) y Pam 3 CSK 4 (Pam).

Aislamiento de cortical Microglia con Inmunofenotipo Conservas y funcionalidad de murinos Neonatos

Aquí, se presenta un protocolo para aislar microglia de crías de ratón postnatal (día 1) para la experimentación in vitro. Este método improvisada de aislamiento genera tanto alto rendimiento y pureza, una ventaja significativa sobre métodos alternativos que permite amplia experimentación gama para los fines de elucidar la biología microglial.

El aislamiento magnético rápida y refinado CD11b de la microglia primaria con mayor pureza y versatilidad

Esfuerzos para comprender la función microglial en detalle han impedido por la falta de modelos de cultura microglial que recapitular las propiedades de microglia maduros en vivo . Este protocolo describe un acercamiento aislamiento y cultura diseñado para mantener la supervivencia robusta de microglia altamente ramificados de rata maduro medio definido en condiciones.

Aislamiento y cultivo de Microglia roedor para promover una dinámica ramifican morfología en medio libre de suero

Aquí presentamos un protocolo para el aislamiento in vitro de múltiples poblaciones de células gliales de un SNC de ratón. Este método permite la segregación de microglía regional, células precursoras de oligodendrocitos y astrocitos para estudiar los fenotipos de cada uno en una variedad de sistemas de cultivo.

Disección y aislamiento de la glía murina de múltiples regiones del sistema nervioso central

Este protocolo es un método eficiente, rentable y robusto para aislar la microglia primaria del tejido cerebral humano vivo, adulto. La microglia humana primaria aislada puede servir como una herramienta para estudiar los procesos celulares en la homeostasis y la enfermedad.

Obtención de Microglia Humana del Tejido Cerebral Humano Adulto

Los cultivos primarios de microglía se utilizan comúnmente para evaluar nuevas moléculas antiinflamatorias. El presente protocolo describe un método reproducible y relevante para aislar magnéticamente la microglía de cachorros neonatos.

Aislamiento magnético de células microgliales de ratones neonatos para cultivos celulares primarios

Este protocolo describe un cocultivo microglía-neuronal establecido a partir de células neuronales primarias aisladas de embriones de ratón en los días embrionarios 15-16 y microglía primaria generada a partir de los cerebros de ratones neonatos en los días postnatales 1-2.

Generación y cocultivo de microglía primaria murina y neuronas corticales

Aprende a aislar microglía primaria de cerebros de rata neonatal mediante homogeneización y cultivo mixto glial. Este protocolo mecánico minimiza la activación celular y proporciona alta pureza para estudios in vitro de neuroinflamación.

El aislamiento de la microglía Primaria cultivos mixtos de células gliales del tejido neonatal cerebro de rata

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