Name: El alcohol polivinílico esponja modelo de implantación (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-04-18T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 23 s
Description: Aprende a utilizar esponjas de alcohol polivinílico para modelar la cicatrización de heridas en ratones mediante implante subcutáneo e inyección de tratamientos. Este método permite análisis histológicos y cuantitativos del proceso de reparación tisular.

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El financiamiento proporcionado por los Institutos Nacionales de Salud (NIH) de subvención R01-HL088424; Veteranos premio al mérito de Asuntos de PPY.

1. Preparación Esponja <ol><li> Esponjas Hidratacion por agitación durante la noche en 0,9% (w / v) de solución acuosa de cloruro sódico. </li><li> Esterilizar esponjas hidratados en autoclave ellos. Para 75 ml, autoclave durante 25 minutos a 121 ° C. </li></ol> Nota: esponjas de carga con un tratamiento como se describe a continuación es opcional. <ol start="3"><li> En una campana estéril con instrumentos estériles, recoger una esponja de la solución con unas pinzas. Exprimir la esponja con las pinzas y utilizar una punta de vacío para eliminar la solución tanto como sea posible de la esponja. Coloque la esponja exprimida en una placa de cultivo de tejidos, teniendo cuidado de dejar espacio entre las esponjas. Múltiples placas se puede utilizar para separar los diferentes tratamientos. </li><li> Pipetear la solución de tratamiento directamente sobre el centro de una esponja. Presione suavemente sobre la esponja con la punta de la pipeta después la solución se ha colocado en la esponja, lo que ayuda la esponja absorben la solución. Nota: El 6mmde diámetro por 2.75 mm de espesor, las esponjas que empleamos son capaces de mantener un máximo de 25 l. </li><li> Una vez que todas las esponjas se cargan, la placa están en puede ser almacenado en hielo hasta que se implantan en el ratón. </li></ol> 2. Procedimiento Quirúrgico <ol><li> Apropiadamente anestesiar a los animales y la administración preventiva de analgésicos. Todo el procedimiento dura aproximadamente 20 minutos por animal. Por unos 30 g de ratón 1,5 litros por minuto de oxígeno con 1,5% de isoflurano se utiliza para inducir y mantener la anestesia. Cuando los animales ya no es sensible a la prueba de reflejo de apuro, lugar en el cono de la nariz en posición supina. Use una rasuradora eléctrica para afeitarse de 1 pulgada por 1 pulgada área en la parte inferior ventral por debajo de la caja torácica. Limpie de corte de pelo. </li><li> Esterilizar la zona afeitada por limpieza con betadina seguido por 70% de alcohol. Repita esta limpieza betadine, alcohol tres veces. </li><li> Mientras mantiene la piel enseña, utiliza el bisturí para realizar una incisión vertical 1,5-2 veces el diámetrometros de las esponjas que se inserta, teniendo cuidado de no cortar a través de la cavidad del cuerpo. </li><li> Utilizar una pinza para sujetar el borde de la piel y lentamente comenzar a separar la piel del músculo en ambos lados de la incisión utilizando tijeras Metzembaum. El bolsillo debe ir a lo ancho del ratón y de la caja torácica de las patas traseras. </li><li> Use unas pinzas para recoger la esponja primero para ser colocado en el animal por pellizcándola de los lados. Transferir la esponja para unas pinzas rectas de modo que se mantiene desde la parte superior e inferior. </li><li> Use pinzas para sujetar el borde de la piel y levantar de manera que la esponja se puede insertar. Introduzca lentamente la esponja tratando de evitar el contacto con la piel o el músculo debajo, como la esponja será difícil de mover, una vez que éste haya tocado el tejido. Repita el procedimiento para todas las esponjas. </li><li> Una vez que todas las esponjas se han insertado, el lugar dos o tres suturas para cerrar la incisión. Utilice un par de pinzas para sujetar ambos lados de la incisión juntos y enhebrar la Sutuvolver a través de ambas capas de piel. Apriete el primer tiro lo suficiente como para cerrar los bordes de la piel. Termina el nudo cuadrado, con un mayor distancia de la otra dirección, esta vez tirando del nudo. Luego atar dos nudos más cuadrados para terminar la sutura (Figura 2). Coloque suturas adicionales para cerrar la incisión entero. Otros métodos de unión de la herida puede ser utilizado como Dermabond, los clips de la herida, o grapas. </li><li> Retirar los animales de un sistema de seguimiento de la anestesia y mientras que la conciencia se reanuda. Animal debe comenzar rápidamente y volver a deambular antes de la operación la movilidad. Asegurarse de que son capaces de alcanzar suficiente alimento y agua. Algunos alimentos humedecido puede ser colocado en la parte inferior de la jaula para ayudar en la recuperación. Continúe controlando los animales diariamente para detectar signos de angustia o malestar, y comprobar el sitio de la incisión para la infección, la inflamación y la dehiscencia. Tome las medidas oportunas si alguna complicación a la recuperación se encuentran. </li></ol> 3. Inyección opcional <p class = &quot;jove_content&quot;&gt; Nota: Una vez que las esponjas han sido implantados en el animal que puede ser inyectado con una solución de células, fármacos, factores de crecimiento, etc Esto permite el análisis de los efectos de la sustancia inyectada durante los tiempos de entrega variadas y la administración regímenes. Si las inyecciones se realizan un control siempre debe ser utilizado. <ol><li> Para inyectar la esponja con una solución deseada, primero determinar la cantidad de la sustancia para administrar al ratón. La sustancia tiene que estar concentrados para que el volumen de inyección es menor que la mitad del volumen total de la esponja puede contener. </li><li> Preparar una jeringa para la inyección (para los ratones que usamos una aguja 28 G). </li><li> Colocar el animal para recibir las inyecciones bajo anestesia. </li><li> Cuando el animal ya no responde a la prueba del pellizco de la inyección se puede dar. </li><li> Para dar a la inyección de introducir la aguja en un ángulo de 45 ° a fondo la piel en el centro de la esponja. A continuación, introduzca la aguja en la esponja sólo se va a mitad de caminoa través de su espesor. El objetivo consiste en inyectar en el centro exacto de la esponja. </li><li> Para comprobar para asegurarse de que la aguja está en la esponja, levante lentamente la aguja en posición vertical. Si la aguja está en la esponja, la esponja debe moverse hacia arriba con la aguja. </li><li> Poco a poco se inyecta en la esponja y retire la aguja. Si hay esponjas múltiples que requieren inyecciones es posible que parte del líquido inyectado será empujado fuera de los sitios anteriores de inyección. </li></ol> 4. Esponja de eliminación Nota: Durante el retiro de las esponjas, manejar la esponja con mucha precaución. Evitar penetrar la esponja con los instrumentos quirúrgicos y evitar el sangrado excesivo en la esponja, evitando las arterias principales en todo el tejido circundante. <ol><li> Después de que el animal es sacrificado, retire la esponja mediante la celebración de la piel con unas pinzas y hacer una incisión cerca de la esponja. </li><li> Separar cuidadosamente las esponjas de la cápsula que rodea un<html> ª evitar la cosecha tejido extra que rodea a la esponja. Para los ensayos, tales como la administración de fármacos o la morfometría, menos precisión se requiere para la escisión. </li></ol> 5. Los resultados representativos Esponjas eliminados pueden ser almacenadas bajo condiciones diferentes dependiendo del tipo de análisis que se realiza. Para el corte, las esponjas recuperados se pueden incrustar en un medio para la congelación como la temperatura óptima de corte (octubre) compuesto o colocado en formol al 10% para la inclusión y corte en bloques de parafina (Figura 3 A y B). Los mejores resultados para seccionar se obtienen cuando la esponja se corta por la mitad a través del diámetro y embebidos cortado superficie hacia abajo (Figura 4A y B). Las secciones de la esponja debe tomarse de modo que todo lo ancho de la esponja está presente. Figura 3A muestra dos esponjas, la esponja izquierda se ha incrustado / seccionada incorrectamente y la esponja derecho fue procesada correctamente. ent &quot;&gt; Para el análisis, esponjas pueden ser colocados en un tubo Eppendorf y se almacenó a -20 ° C hasta que esté listo para su procesamiento para el ARN y cuantitativos en tiempo real esponjas análisis de PCR debe ser colocado en un tubo Eppendorf, flash congelado y almacenado a. - 80 ° C. Además, un conservante ARN, tales como RNAlater de QIAGEN, se puede utilizar para estabilizar el ARN para el almacenamiento seguro a temperaturas más altas. fluido de la herida puede ser recogida por exprimir las esponjas en un tubo, y reuniendo el fluido desde Esponjas múltiples para obtener una muestra representativa. células vivas, como fibroblastos, macrófagos y linfocitos, también se puede extraer de las esponjas. Después de la retirada del animal, esponjas pueden ser lugar en un medio apropiado para el tipo deseado de células. esponjas pueden ser procesada para liberar las células por física (es decir picado) o enzimática (es decir, colagenasa) métodos. <img alt="Figura 1." src="/files/ftp_upload/3885/3885fig1.jpg" /> Figura 1. Deshidrataciónted PVA esponja discos en tres tamaños diferentes. <img alt="Figura 2." src="/files/ftp_upload/3885/3885fig2.jpg" /> Figura 2. Imagen de ratón de cicatrización de heridas modelo que muestra la posición de la herida lateral y cuatro esponjas de PVA. <img alt="Figura 3." src="/files/ftp_upload/3885/3885fig3.jpg" /> Figura 3. (A) tinción H &amp; E a 4x y (B) tinción tricrómica a 10x de esponjas embebidas en parafina de sección. <img alt="Figura 4." src="/files/ftp_upload/3885/3885fig4.jpg" /> Figura 4. (A) Imagen de la corte de esponja en la mitad a lo largo del diámetro. (B) PVA medio esponja, incrustado en el lado cortado hacia abajo octubre

<ol><li>Efron, D. T., Barbul, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subcutaneous+sponge+models%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Med%22%5BJournal%5D)">Subcutaneous sponge models.</a> Methods Mol. Med. 78, 83-93 (2003).</li>
<li>Gottrup, F., Agren, M. S., Karlsmark, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Models+for+use+in+wound+healing+research%3A+a+survey+focusing+on+in+vitro+and+in+vivo+adult+soft+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Wound+Repair%22%5BJournal%5D)">Models for use in wound healing research: a survey focusing on in vitro and in vivo adult soft tissue.</a> Wound Repair. 8, 83-96 (2000).</li>
<li>Sprugel, K. H., McPherson, J. M., Clowes, A. W., Ross, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+growth+factors+in+vivo.+I.+Cell+ingrowth+into+porous+subcutaneous+chambers%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Pathol%22%5BJournal%5D)">Effects of growth factors in vivo. I. Cell ingrowth into porous subcutaneous chambers.</a> Am. J. Pathol. 129, 601-613 (1987).</li>
<li>Alaish, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+the+polyvinyl+alcohol+sponge+and+expanded+polytetrafluoroethylene+subcutaneous+implants+as+models+to+evaluate+wound+healing+potential+in+human+beings%5BTitle%5D)+AND+%22Wound+Repair%22%5BJournal%5D)">Comparison of the polyvinyl alcohol sponge and expanded polytetrafluoroethylene subcutaneous implants as models to evaluate wound healing potential in human beings.</a> Wound Repair. 3, 292-298 (1995).</li>
<li>Davidson, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+for+wound+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Arch.+Dermatol.+Res%22%5BJournal%5D)">Animal models for wound repair.</a> Arch. Dermatol. Res. 290, 1-11 (1998).</li>
<li>Alfaro, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((sFRP2+suppression+of+bone+morphogenic+protein+%28BMP%29+and+Wnt+signaling+mediates+mesenchymal+stem+cell+%28MSC%29+self-renewal+promoting+engraftment+and+myocardial+repair%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">sFRP2 suppression of bone morphogenic protein (BMP) and Wnt signaling mediates mesenchymal stem cell (MSC) self-renewal promoting engraftment and myocardial repair.</a> J. Biol. Chem. 285, 35645-35653 (2010).</li>
<li>Andrade, S. P., Ferreira, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+sponge+implant+model+of+angiogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">The sponge implant model of angiogenesis.</a> Methods Mol. Biol. 467, 295-304 (2009).</li>
<li>Diegelmann, R. F., Lindblad, W. J., Cohen, I. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+subcutaneous+implant+for+wound+healing+studies+in+humans%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Surg.+Res%22%5BJournal%5D)">A subcutaneous implant for wound healing studies in humans.</a> J. Surg. Res. 40, 229-237 (1986).</li>
<li>Efron, D. T., Most, D., Shi, H. P., Tantry, U. S., Barbul, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+method+of+studying+wound+healing%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Surg.+Res%22%5BJournal%5D)">A novel method of studying wound healing.</a> J. Surg. Res. 98, 16-20 (2001).</li>
<li>Lindblad, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Considerations+for+selecting+the+correct+animal+model+for+dermal+wound-healing+studies%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomater.+Sci.+Polym.+Ed%22%5BJournal%5D)">Considerations for selecting the correct animal model for dermal wound-healing studies.</a> J. Biomater. Sci. Polym. Ed. 19, 1087-1096 (2008).</li>
</ol>

No tenemos nada que revelar.

<p class="jove_content"&gt; El modelo de esponja de cicatrización de la herida tiene múltiples variaciones, sino que puede realizarse en muchas especies diferentes, incluyendo los seres humanos y las esponjas también pueden ser implantados dorsalmente<sup&gt; 1,2,8</sup&gt;. Para los estudios en seres humanos y algunas otras especies, esponjas pueden necesitar ser colocado en un tubo de silicona poroso para evitar que la esponja de ser encapsulada y para permitir la facilidad de eliminación<sup&gt; 4,8</sup&gt;. La ubicación del implante esponja se puede cambiar según los resultados deseados y la habilidad del técnico. Implantación dorsal puede permitir que las esponjas de moverse bajo la piel, mientras que los implantes ventrales son más difíciles debido a la probabilidad de cortar a través de la cavidad abdominal. Las esponjas se pueden configurar con un catéter de modo que la administración de fármacos es constante y controlada, eliminando la necesidad de inyecciones múltiples<sup&gt; 9</sup&gt;. Más pequeñas, esponjas tubulares incluso puede ser inyectado a través de una aguja<sup&gt; 8</sup&gt;. Las esponjas de la composición no se limita a sólo el alcohol polivinílico. Se pueden preparar a partir de muchos materiales exclusivamente o en combinación<sup&gt; 7</sup&gt;.</p&gt;<p class="jove_content"&gt; Es fundamental para la preparación de la esponja y la colocación en el animal para ser coherente y entendido correctamente. Si se cortan las esponjas de las hojas deben ser de un peso similar para poder comparar. Si la esponja se va a cargar con células o un tratamiento, la cantidad colocada en cada esponja debe ser exacta. El proceso de curación puede variar en función de la ubicación de la colocación de la esponja en el animal y la curación se reducirá a medida que aumenta la distancia desde la cabeza<sup&gt; 1,10</sup&gt;.</p

<table border="1"><tbody><tr><td> Nombre del Material </td><td> Empresa </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentarios </td></tr><tr><td> PVA Esponja </td><td> Medtronic </td><td> CF120 </td><td> El tamaño y la porosidad de la esponja depende del experimento </td></tr><tr><td> Tamaño de la hoja de bisturí 15 </td><td> Medial BD </td><td> 371115 </td><td></td></tr><tr><td> Metzembaum tijera </td><td> Thermo Scientific </td><td> 79-211 </td><td></td></tr><tr><td> Pinza hemostática </td><td> Herramientas de Bellas Ciencia </td><td> 13004-14 </td><td></td></tr><tr><td> Portaagujas </td><td> Herramientas de Bellas Ciencia </td><td> 12004-16 </td><td></td></tr><tr><td> 5-0 de sutura de nylon </td><td> Ethilon </td><td> 698 </td><td></td></tr><tr><td> Octubre compouª </td><td> Tissue-Tek </td><td> 4583 </td><td></td></tr></tbody></table>

el alcohol polivinílico esponja modelo de implantación

The Polyvinyl Alcohol Sponge Model Implantation

La cicatrización de heridas es un proceso complicado, de múltiples pasos que implica muchos tipos de células, factores de crecimiento y compuestos 1-3. Debido a esta complejidad, los estudios de cicatrización de la herida son más completa cuando se lleva a cabo in vivo. Hay muchos modelos in vivo disponibles para estudiar la curación de las heridas agudas, incluyendo la incisión, el espacio de escisión, muerto, y quemaduras. Modelos muertas espaciales son los implantes artificiales, porosas que se utilizan para estudiar la formación de tejido y los efectos de las sustancias en la herida. Algunos de los modelos espaciales comúnmente usados ​​incluyen muertas de alcohol polivinílico (PVA) esponjas, cilindros de acero de malla de alambre, los materiales expandido politetrafluoroetileno (PTFE), y el 1,2 Cellstick. Cada modelo de espacio muerto tiene sus propias limitaciones basadas en la composición de su material y la implantación de métodos. La malla de alambre de acero modelo cilindro tiene una fase de retardo de infiltración después de la implantación y requiere una cantidad de tiempo largo antes de la granulación formación Begi tejidons 1. Las etapas posteriores de la curación de heridas se analizan mejor con los modelos de 1,4 ePTFE. El Cellstick es una esponja de celulosa dentro de un modelo de tubo de silicona que se utiliza típicamente para el estudio de las heridas humanos cirugía y herir fluido 2. La esponja de PVA se limita a los estudios de toxicidad aguda, porque con el tiempo se empieza a provocar una respuesta de cuerpo extraño que provoca una reacción de células gigantes en el animal 5. A diferencia de otros materiales, esponjas de PVA son fáciles de insertar y quitar, hechos de materiales inertes y no biodegradables y sin embargo son lo suficientemente suave para ser seccionada para el análisis histológico 2,5. En la cicatrización de heridas de la esponja de PVA es muy útil para analizar la formación de tejido de granulación, el depósito de colágeno, la composición del fluido de la herida, y los efectos de las sustancias en el proceso de curación 1,2,5. Además de su uso en el estudio de una amplia gama de atributos de la curación de heridas, la esponja de PVA se ha utilizado también en muchos otros tipos de estudios. Se hcomo se ha utilizado para investigar la angiogénesis tumoral, la administración de fármacos y la supervivencia del injerto de células madre y 1,2,6,7. Con su gran alterabilidad, el uso previo extenso, con resultados reproducibles, la esponja de PVA es un modelo ideal para el 1,2 muchos estudios. Aquí, vamos a describir la elaboración, implantación y recuperación de discos de esponja de PVA (Figura 1) en un modelo murino de la cicatrización de heridas.

Una herramienta útil para analizar los efectos de las drogas, factores de crecimiento y células manipuladas en un modelo animal de reparación de la herida se describe. Esta técnica utiliza las propiedades de un alcohol polivinílico (PVA) esponja para entregar y contener el tratamiento deseado y también proporcionar una plataforma para ser extirpado y analizado.

El alcohol polivinílico esponja modelo de implantación

La cicatrización de heridas es un proceso complejo y multietapa que involucra muchos tipos celulares, factores de crecimiento y compuestos1-3. Debido a esta complejidad, la cicatrización de heridas...

El objetivo general de este procedimiento es utilizar una esponja de alcohol polivinílico para modelar la cicatrización de heridas en ratones. Esto se logra primero hidratando y cargando la esponja para su implantación. A continuación, se inserta la esponja en un bolsillo entre el músculo abdominal y la piel del ratón.Después del implante, cada esponja puede inyectarse entonces con un tratamiento. El paso final consiste en retirar las esponjas del ratón. En última instancia, se pueden realizar tinciones por seccionado y ensayos cuantitativos para observar cambios y variaciones en el proceso de cicatrización de heridas.Aunque este método puede proporcionar información sobre la cicatrización de heridas, también puede aplicarse a otras áreas de estudio, como la angiogénesis tumoral, la administración de fármacos y la supervivencia de células implantadas. Y el engraftment comience hidratando las esponjas con agitación nocturna en una solución acuosa de cloruro de sodio al 0,9 %. Luego, autoclave 75 mililitros de la suspensión de esponjas hidratadas durante 25 minutos a 121 grados Celsius.Para esterilizar las esponjas, coloque la solución para esponjas de autoclave en un flujo laminar estéril y luego use pinzas estériles para tomar una esponja, exprima la esponja con las pinzas y utilice una punta de vacío para eliminar la mayor cantidad posible de solución de la esponja. A continuación, coloque la esponja escurrida en una placa de cultivo de tejidos, teniendo cuidado de dejar espacio entre las esponjas, y pipetee la solución de tratamiento directamente sobre el centro de una esponja. Luego, presione suavemente la esponja con la punta de la pipeta para ayudarla a absorber la solución.Una vez que todas las esponjas estén cargadas, guarde la placa en hielo hasta que las esponjas se implanten en el ratón. Después de confirmar la sedación mediante la prueba del reflejo de pellizco, comience colocando al ratón en una concha nasal en posición supina. Luego, utilizando una afeitadora eléctrica, retire un área de un pulgada por un pulgada de pelo en la parte ventral inferior del ratón, por debajo de la caja torácica.Limpiar el área de pelos cortados después. Esterilice el área afeitada con Betadine, seguido de alcohol al 70%. A continuación, mantenga la piel tensa.Utilice el bisturí para realizar una incisión vertical de una vez y media a dos veces el diámetro de las esponjas que se insertarán, teniendo cuidado de no cortar a través de la cavidad corporal. Use las pinzas para sujetar el borde de la piel.Luego, use tijeras de Metzenbaum para separar lentamente la piel del músculo en ambos lados de la incisión. Extienda el bolsillo a lo ancho del ratón y desde la caja torácica hasta las patas traseras. Ahora, use las pinzas para tomar la primera esponja que se colocará en el animal, sujetándola por los lados.Luego, transfiera la esponja a un par de pinzas rectas de manera que quede sujeta por la parte superior e inferior. A continuación, sujete y levante el borde de la piel con otro par de pinzas, e inserte lentamente la esponja, evitando tocar la piel o el músculo debajo. Una vez que se hayan insertado todas las esponjas, utilice un par de pinzas para mantener juntos ambos lados de la incisión y luego pase el hilo de sutura a través de ambas capas de la piel.Ajuste el primer lazada lo suficiente como para cerrar los bordes de la piel y complete el nudo cuadrado con una lazada más en la dirección opuesta. Esta vez, tire del nudo para apretarlo. A continuación, ate dos nudos cuadrados más para finalizar la sutura.Coloque suturas adicionales para cerrar toda la incisión. Finalmente, retire al animal del sistema de anestesia y monitórelo hasta que recupere la conciencia. El ratón debería comenzar a desplazarse rápidamente y recuperar la movilidad previa a la cirugía.Comience llenando una jeringa con la solución deseada y coloque una aguja de calibre 28 en la jeringa. Luego, tras confirmar la sedación mediante el pellizco del dedo del pie, introduzca la aguja en el animal en un ángulo de 45 grados a través de la piel en el centro de las esponjas para asegurarse de que la aguja esté dentro de la esponja. Levante lentamente la aguja en posición vertical.Si la aguja está dentro de la esponja, la esponja subirá junto con la aguja. Luego, inyecte lentamente la sustancia en la esponja y retire la aguja. Después de sacrificar al animal, sostenga la piel con un par de pinzas y realice una incisión cerca de la esponja deseada.Finalmente, separe cuidadosamente las esponjas de la cápsula circundante, evitando recolectar tejido adicional alrededor de la esponja extraída. Las esponjas pueden almacenarse en diferentes condiciones dependiendo del tipo de análisis que se realizará. Para el corte en secciones, las esponjas recuperadas pueden incluirse en un medio de congelación, como el compuesto de temperatura óptima para corte, o colocarse en formalina al 10 % para inclusión y seccionado en bloques de parafina, como se hizo con estas esponjas teñidas con H y E.Y en estas secciones de esponjas teñidas de trirreme, los mejores resultados en el corte se obtienen cuando la esponja se divide por la mitad a través del diámetro, como se muestra aquí, y luego se incluye con la superficie de corte hacia abajo. Como se demuestra aquí, las secciones de la esponja deben tomarse de manera que todo el ancho de la esponja esté presente en esta figura. La esponja de la izquierda fue incluida o seccionada incorrectamente, como lo demuestra el borde de tejido alterado a lo largo del lado derecho de la sección, mientras que la esponja intacta de la derecha fue procesada correctamente.Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo preparar, implantar, inyectar y extraer esponjas de alcohol polivinílico para estudiar la cicatrización de heridas en ratones.

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Aprende a utilizar esponjas de alcohol polivinílico para modelar la cicatrización de heridas en ratones mediante implante subcutáneo e inyección de tratamientos. Este método permite análisis histológicos y cuantitativos del proceso de reparación tisular.

El alcohol polivinílico esponja modelo de implantación

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