Name: Las formulaciones para la liofilización de las bacterias y su influencia en la supervivencia celular (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-08-03T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 55 s
Description: Aprende cómo las formulaciones de liofilización afectan la supervivencia de células bacterianas. Este método permite optimizar protocolos de preservación microbiológica mediante análisis de propiedades físicas y estructurales.

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El trabajo fue apoyado por la Fundación Sueca para la Investigación Estratégica Ambiental (MISTRA) a través del programa de DOM y Grant 211684 (BACSIN) del Programa Marco de la Unión Europea Comunidad 7PM. Damos las gracias a J. Engstrand de asistencia en la filmación del análisis de rayos X y L. Tang por su ayuda en la narrativa conceptual.

1. El cultivo y la cosecha de P. putida <ol><li> Preparar un cultivo iniciador de Pseudomonas putida mediante la inoculación de 100 ml de caldo de soja tríptico (TSB) con una colonia de P. células putida cultivadas en agar suplementado con caldo de soja tríptico (TSA). Mantener el cultivo a 30 ° C en un tablero de agitación fijado en 130 rpm. </li><li> Después de 7 h transferir una alícuota del cultivo iniciador equivalente a 1/10 del volumen final del cultivo principal a la TSB-medio fresco. Mantener las células a 30 ° C en un tablero de agitación a 130 rpm durante 16 horas. </li><li> Después de 16 h de crecimiento de las células se recogen por centrifugación del cultivo celular a 1500 xg durante 20 min a TA. Decantar el sobrenadante y lavar las células mediante re-suspensión del sedimento celular se encuentra en una solución de NaCl que es isotónica con el medio de crecimiento. En este caso se utilizó una solución de NaCl 150 mM. Las células se centrifugan una vez más y se decanta el sobrenadante antes de resuspender las células en el medio de formulación,véase el paso 3.2. </li></ol> 2. El cultivo de otras especies <ol><li> Para adaptar el protocolo a otras especies bacterianas los procedimientos de cultivo y la cosecha deben ser cambiados de acuerdo a los requerimientos de esa especie. Para evitar el choque osmótico al manipular las células durante la cosecha y la etapa de lavado (s), la osmolalidad de las soluciones debe coincidir con la del medio de crecimiento en la cosecha. </li></ol> 3. Formulación de las células <ol><li> Preparar las soluciones de formulación pesando los componentes de la matriz respectivas y disolverlos en agua. Para lograr condiciones isotónicas, o bien ajustar la cantidad de excipiente o añadir NaCl o algún otro soluto compatible celular para llegar a la osmolalidad deseada. Para las sustancias de bajo peso molecular, tales como disacáridos las cantidades se pueden ajustar fácilmente para llegar a condiciones isotónicas. En sustancias como polímeros que son de alto peso molecular, la tonicidad tiene que ser ajustado con células compatibles por lolaúdes, por ejemplo, NaCl o disacáridos. Tenga en cuenta que cualquier adición de una sustancia influirá en las propiedades físicas de la formulación, que a su vez puede influir en el comportamiento de la liofilización y la supervivencia celular. </li><li> Decantar la solución de lavado (en este caso NaCl) y volver a suspender las células en los respectivos medios de formulación. </li><li> Asegúrese de que las células se dispersan homogéneamente. Las formulaciones de baja viscosidad se agitaron mientras que las formulaciones de viscosidad más altos se mezclan usando añadiendo, por ejemplo., Una barra de agitación y agitar el recipiente hasta que se logra una mezcla homogénea. </li><li> Divida las formulaciones en viales de congelación de pelo. Los viales se deben pesar vacío, con la muestra antes y después de secado por congelación para calcular la cantidad de agua eliminada durante la liofilización. </li><li> Añadir tapones de goma de los viales si los viales deben ser sellados en el interior del liofilizador, consulte el paso 4.3. </li><li> Enumerar las células en cada formulación antes de la liofilización, consulte el paso 6. </li> &lt;/ Ol&gt; 4. La liofilización <ol><li> Las condiciones de secado por congelación se tienen que ajustar a las propiedades físicas de la formulación. El parámetro más importante es en este caso la temperatura de transición vítrea, Tg, de la formulación, denota Tg &#39;para la muestra de congelación y concentrada para indicar que el agua está todavía presente. La Tg &#39;de la formulación de congelación-concentrada se mide fácilmente utilizando calorimetría de barrido diferencial (DSC), véase el paso 7. </li><li> Ajustar los parámetros del proceso de liofilización de manera que la temperatura de la muestra es siempre por debajo de la Tg de la muestra y que la presión de la cámara permite una rápida sublimación del hielo, es decir, el secado primario, y el agua residual en la formulación, es decir, secundaria secado. Si la temperatura de la muestra está por encima de Tg &#39;durante el proceso de secado hay un gran riesgo de colapso estructural de la muestra lo que puede disminuir significativamente la supervivencia celular. </li><li> Para proteger los productos secos después de freeze-secado de la atmósfera de la muestra tiene que ser controlado. Si es posible, sellar las muestras en el secador por congelación antes de que el vacío se libera al final del ciclo de secado por congelación. Alternativamente, los frascos se pueden llenar con una atmósfera preferida. Es importante evitar la exposición de las muestras a las condiciones ambientales como la humedad o el oxígeno presente en la atmósfera de almacenamiento se influye en la supervivencia de las células. </li><li> Pesar los viales. </li></ol> 5. Rehidratación <ol><li> Rehidratar las muestras con agua desionizada y estéril. La cantidad de agua que debe añadirse debe ser la misma que la cantidad eliminado durante la liofilización y se calcula a partir del peso del vial vacío, el mismo vial con la muestra antes y después de la liofilización. Vortex las muestras una y otra vez hasta que las soluciones a continuación, aparece homogénea. </li></ol> 6. Enumeración <ol><li> Dibuje 100 l de cada muestra y hacer diluciones en serie de 10 veces. A partir de las diluciones de integración100 l resto se siembra en placas de TSA. Las placas se incubaron a la temperatura y el tiempo requerido. </li></ol> 7. Caracterización de la formulación de comportamiento de la congelación <ol><li> Tomar una pequeña cantidad, 5 a 10 mg, de la muestra y encerrarlo en una sartén DSC-aluminio con tapa. Prepare un recipiente vacío como referencia. </li><li> Establecer el programa de análisis de temperatura DSC. El programa de enfriamiento está configurado para imitar la etapa de congelación en el programa de secado por congelación. Esto se hace como la cinética de enfriamiento pueden influir en la Tg &#39;de las formulaciones hidratadas. Antes de la exploración de calefacción comienza a reducir la temperatura por debajo de la Tg esperado &quot;de las formulaciones investigadas, normalmente -100 ° C. </li><li> Elija un tipo adecuado de calentamiento, normalmente una velocidad de calentamiento de 5 - 40 º C / min se utiliza. La señal de flujo de calor registrada se expresa en vatios y se verá influido por la velocidad de calentamiento. A mayor velocidad de calentamiento dará una señal más grande de Tg. </li><li> Ajuste el rango de temperatura de manera que it cubre tanto Tg &#39;y el derretimiento de la formulación. </li></ol> 8. Las mediciones de tensión superficial de las formulaciones hidratadas <ol><li> El montaje experimental usado en este experimento es de acuerdo con el método du Noüy para medir la superficie. </li><li> Limpie el anillo de platino y el recipiente de medición con cuidado. El recipiente se enjuagó con acetona, se secó con un paño libre de pelusa, y luego quemada en el interior con una llama incolora. El anillo se ilumina en rojo en una llama incolora. </li><li> Llene el recipiente con la solución y deje que la superficie resolver antes de medir. Para las soluciones que se alcanza el estado de equilibrio sólo después de un largo tiempo, por ejemplo, polímeros, la sencilla configuración utilizada aquí proporcionarán datos cualitativos. </li><li> Para las formulaciones con altas viscosidades, por ejemplo soluciones de 2% (w / w) de HEC o de HPMC, la tensión superficial tiene que ser medido en soluciones de concentraciones más bajas y luego extrapolada. Esto se puede hacer tomando ventaja del hecho de quela caída en los niveles de tensión superficial frente a concentraciones por debajo de 0,5% (w / w). </li></ol> 9. Análisis de rayos X de las formulaciones secas <ol><li> Tomar una pequeña cantidad de matriz / bacterias y cargarlo en un soporte de muestras. </li><li> Monte el soporte de la muestra en el X-ray-difractómetro. </li><li> Para analizar cualquier fase cristalina presente en la muestra el paquete de programas de Bruker EVA se puede utilizar. </li></ol> 10. Microscopía Electrónica <ol><li> Tomar una pequeña cantidad de matriz / bacterias de los viales y fijarlo en un talón SEM. </li><li> Cargar el titular de SEM en el dispositivo de recubrimiento por pulverización catódica (Thermo Polaron VGScientific SC7640 utilizado en el presente trabajo) y la capa de la muestra con unos pocos nm de Au / Pd o Pt. En estos experimentos, los parámetros de pulverización fueron: 1900 V, 20 mA y 20 segundos, para un ~ 5-10 nm recubrimiento Au / Pd. El recubrimiento reduce la carga eléctrica durante la adquisición de imagen. Se recomienda comenzar con una capa fina y, si persiste la carga y hace que la imagenartefactos, la muestra deben estar recubiertos de nuevo. </li><li> Cargar el titular de SEM en la cámara de SEM. Seleccione los parámetros de imagen correspondientes. Para el instrumento utilizado en la Figura 2 (FEI Strata DB235), se utilizó 5 kV de voltaje de aceleración, tamaño de spot 3, una distancia de trabajo de 5 mm y el detector de electrones secundarios. </li><li> Opcionalmente, es posible utilizar el haz de iones enfocado para cortar secciones transversales de las bacterias incrustadas en el polímero para revelar más detalles. </li></ol>

<ol><li>Wessman, P., Mahlin, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+matrix+properties+on+the+survival+of+freeze-dried+bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Sci.+Food+Agric%22%5BJournal%5D)">Impact of matrix properties on the survival of freeze-dried bacteria.</a> J. Sci. Food Agric. 91 (14), 2518-2528 (2011).</li>
<li>Ablett, S., Izzard, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+Scanning+Calorimetric+Study+of+Frozen+Sucrose+and+Glycerol+Solutions%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+Chemical+Society-Faraday+Transactions%22%5BJournal%5D)">Differential Scanning Calorimetric Study of Frozen Sucrose and Glycerol Solutions.</a> Journal of the Chemical Society-Faraday Transactions. 88 (6), 789-794 (1992).</li>
<li>Knopp, S. A., Chongprasert, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+relationship+between+type+TMDSC+curve+of+frozen+sucrose+solutions+and+collapse+during+freeze-drying%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Thermal+Analysis+and+Calorimetry%22%5BJournal%5D)">The relationship between type TMDSC curve of frozen sucrose solutions and collapse during freeze-drying.</a> Journal of Thermal Analysis and Calorimetry. 54 (2), 659-672 (1998).</li>
<li>Crowe, J. H., Leslie, S. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Is+Vitrification+Sufficient+to+Preserve+Liposomes+during+Freeze-Drying%5BTitle%5D)+AND+%22Cryobiology%22%5BJournal%5D)">Is Vitrification Sufficient to Preserve Liposomes during Freeze-Drying.</a> Cryobiology. 31 (4), 355-366 (1994).</li>
<li>Jain, P., Sen, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+glass-forming+biopreservatives+on+head+group+rotational+dynamics+in+freeze-dried+phospholipid+bilayers%3A+A+P-31+NMR+study%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Chemical+Physics%22%5BJournal%5D)">Effect of glass-forming biopreservatives on head group rotational dynamics in freeze-dried phospholipid bilayers: A P-31 NMR study.</a> Journal of Chemical Physics. 131 (2), (2009).</li>
<li>Stock, J. B., Rauch, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Periplasmic+Space+in+Salmonella-Typhimurium+and+Escherichia-Coli%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Periplasmic Space in Salmonella-Typhimurium and Escherichia-Coli.</a> Journal of Biological Chemistry. 252 (21), 7850-7861 (1977).</li>
<li>Crowe, J. H., Hoekstra, F. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anhydrobiosis%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Physiology%22%5BJournal%5D)">Anhydrobiosis.</a> Annual Review of Physiology. 54, 579-599 (1992).</li>
<li>Leslie, S. B., Israeli, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Trehalose+and+Sucrose+Protect+Both+Membranes+and+Proteins+in+Intact+Bacteria+during+Drying%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+and+Environmental+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Trehalose and Sucrose Protect Both Membranes and Proteins in Intact Bacteria during Drying.</a> Applied and Environmental Microbiology. 61 (10), 3592-3597 (1995).</li>
<li>Nesarikar, V. V., Nassar, M. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+cations+and+anions+on+glass+transition+temperatures+in+excipient+solutions%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmaceutical+Development+and+Technology%22%5BJournal%5D)">Effect of cations and anions on glass transition temperatures in excipient solutions.</a> Pharmaceutical Development and Technology. 12 (3), 259-264 (2007).</li>
<li>You, Y., Ludescher, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+sodium+chloride+on+molecular+mobility+in+amorphous+sucrose+detected+by+phosphorescence+from+the+triplet+probe+erythrosin+B%5BTitle%5D)+AND+%22Carbohydr.+Res%22%5BJournal%5D)">The effect of sodium chloride on molecular mobility in amorphous sucrose detected by phosphorescence from the triplet probe erythrosin B.</a> Carbohydr. Res. 343 (2), 350-363 (2008).</li>
<li>Crowe, J. H., Hoekstra, F. A., Nguyen, K. H. N., Crowe, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Is+vitrification+involved+in+depression+of+the+phase+transition+temperature+in+dry+phospholipids%5BTitle%5D)+AND+%22Biochim.+Biophys.+Acta+Biomembr%22%5BJournal%5D)">Is vitrification involved in depression of the phase transition temperature in dry phospholipids.</a> Biochim. Biophys. Acta Biomembr. 1280, 187-196 (1996).</li>
</ol>

No hay conflictos de interés declarado.

El motivo de este estudio fue investigar algunas propiedades de formulación que puedan ser de importancia para la supervivencia celular durante la liofilización. Aunque la tolerancia intrínseca secado varía entre las diferentes especies, como se ilustra en la Figura 1A, la tendencia de qué tan bien la diferente supervivencia de las células de soporte formulaciones es similar. Es informativo para comenzar con una comparación de la sacarosa y Ficoll. Se cree que un factor clave para una formulación para a...

<table><tbody><tr><td>Ficoll PM 400</td><td>GE-healthcare</td><td>17-0300-10</td><td></td></tr><tr><td>HEC (Natrosol-M Pharm Grade)</td><td>Ashland</td><td></td><td>Donación de Ashland</td></tr><tr><td>HPMC (Methocel F4M)</td><td>Dow</td><td></td><td>Donación del Departamento de Farmacia, Universidad de Uppsala</td></tr><tr><td>Sacarosa</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S2395</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>71376</td><td></td></tr><tr><td>Caldo de soja tripticasa</td><td>Merck</td><td>105459</td><td></td></tr><tr><td>Agar de soja tripticasa</td><td>Merck</td><td>105458</td><td></td></tr><tr><td>Lyostar II</td><td>FTS Kinetics</td><td>N.A.</td><td></td></tr><tr><td>Pyris Diamond DSC</td><td>Perkin-Elmer</td><td>N.A.</td><td></td></tr><tr><td>Difractómetro Bruker AXS SMART CCD 1k</td><td>Bruker</td><td>N.A</td><td></td></tr><tr><td>FIB/SEM de haz dual FEI Strata DB235</td><td>FEI</td><td>N.A</td><td></td></tr><tr><td>Tensiómetro educativo Kr&amp;#252;ss</td><td>Kr&amp;#252;ss</td><td>N.A.</td><td></td></tr></tbody></table>

las formulaciones para la liofilización de las bacterias y su influencia en la supervivencia celular

Formulations for Freeze-drying of Bacteria and Their Influence on Cell Survival

Agua celular se puede quitar para inactivar microorganismos reversible para facilitar el almacenamiento. Uno de tales métodos de eliminación es la liofilización, que se considera un método de deshidratación suave. Para facilitar la supervivencia celular durante el secado, las células se formulan a menudo de antemano. La formulación forma una matriz que incorpora las células y los protege de diversas tensiones perjudiciales impuestas a las células durante la congelación y el secado. Se presenta aquí un método general para evaluar la tasa de supervivencia de las células después de la liofilización y que se ilustra mediante la comparación de los resultados obtenidos con cuatro formulaciones diferentes: la sacarosa, el disacárido sacarosa polímero derivado de Ficoll PM400, y los respectivos polisacáridos hidroxietil celulosa (HEC ) e hidroxipropil metil celulosa (HPMC), en dos cepas de bacterias, P. putida KT2440 y A. A6 chlorophenolicus. En este trabajo se ilustra cómo preparar formulaciones para la liofilización y cómo investigar la mecánicaismos de la supervivencia celular después de la rehidratación mediante la caracterización de la formulación utilizando de calorimetría diferencial de barrido (DSC), mediciones de tensión superficial, análisis de rayos X, y la microscopía electrónica y en relación a los datos de las tasas de supervivencia. Los polímeros se eligen para obtener una estructura monomérica del respectivo polisacárido sacarosa se asemeja a un mayor o menor grado. El uso de este método de instalación que mostramos que los polímeros pueden apoyar la supervivencia de las células tan eficazmente como disacáridos si ciertas propiedades físicas de la formulación son controlados 1.

La Tabla 1 muestra los datos sobre la composición de la formulación, eventos térmicos registrados por DSC durante el calentamiento de las formulaciones congeladas, la estructura de las muestras secas y la tensión superficial de las soluciones de formulación. La Tg &#39;de sacarosa se ​​ha determinado a -40 ° C 2, 3 y puede ser difícil de detectar para concentraciones de sacarosa inferior al 20% w / w. El evento térmico a -35 ° C está probablemente relacionado con la aparic...

La liofilización es a menudo una manera fácil y conveniente de obtener productos secos de células bacterianas viables. Un problema del proceso es la supervivencia celular. Nos detalle aquí un procedimiento para investigar cómo la supervivencia celular durante la liofilización está influenciada por las propiedades de la formulación utilizada.

Las formulaciones para la liofilización de las bacterias y su influencia en la supervivencia celular

El agua celular puede eliminarse para inactivar reversiblemente a los microorganismos y facilitar su almacenamiento. Uno de los métodos de eliminación es la liofilización, que es...

El objetivo del siguiente experimento es observar el efecto que diferentes tipos de formulaciones para liofilización tienen sobre la supervivencia celular. Para comenzar, se preparan distintas formulaciones para liofilizar cultivos celulares. A continuación, cada formulación se mezcla con el cultivo celular, luego se liofiliza, se rehidrata posteriormente y se miden las tasas de supervivencia.Los resultados muestran diferencias en las tasas de supervivencia que pueden relacionarse con las propiedades caracterizadas. Este método puede ayudarle a comprender qué propiedades físicas y estructurales de una formulación son importantes para la supervivencia celular durante la deshidratación. Para preparar un cultivo inicial de pseudomonas putter, comience por inocular 100 mililitros de caldo tripticasa de soja, o TSB, con una colonia de células que se hayan cultivado en agar suplementado con caldo tripticasa de soja o TSB; incube el cultivo a 30 grados Celsius, agitando a 130 RPM durante siete horas.Transfiera una alícuota del cultivo a TSB fresco y crezca durante 16 horas. Recopile las células mediante centrifugación a 1.500 ×g durante 20 minutos a temperatura ambiente. Lave el sedimento celular mediante Resus, suspendiéndolo en cloruro de sodio 150 milimolar.Centrifugar las células y resuspender. Suspenderlas en medio de formulación. Para preparar soluciones de formulación para la liofilización de células.Pese los componentes de la matriz respectivos y disuélvalos en agua para alcanzar condiciones isotónicas. Ajuste la solución con el excipiente, cloruro de sodio, u otros solutos compatibles con las células. Para resuspender homogéneamente las células en una solución de baja viscosidad, agite en vórtex las soluciones de alta viscosidad.Agregue una barra magnética y agite la mezcla. A continuación, divida las formulaciones en viales para liofilización previamente pesados y pese los viales. Tome 100 microlitros de cada muestra y realice diluciones seriadas de diez en diez; plaque las diluciones deseadas e incube a temperatura ambiente. Si los viales se van a sellar dentro del liofilizador, coloque un tapón de hule en cada vial a partir de las células plaqueadas.Enumere las células en cada formulación. Utilizando el método du Nouy, mida la tensión superficial de las mezclas bacterianas secas. Limpie el anillo de platino colocándolo en una llama incolora hasta que se vuelva rojo.Utilice acetona y un tejido sin pelusa para enjuagar y limpiar el recipiente de medición, y use una llama para quemar el interior. Llene el recipiente con la solución y deje que la superficie se estabilice antes de medir, en el caso de soluciones que tardan en alcanzar el equilibrio. La configuración utilizada aquí proporcionará datos cualitativos para formulaciones con altas viscosidades.Utilice una solución de concentración más baja para medir la tensión superficial y extrapole que las condiciones de liofilización deben ajustarse a las propiedades físicas de la formulación. El parámetro más importante es la temperatura de transición vítrea o TG de la formulación, denotada como TG prima para la muestra concentrada por congelación, lo que indica que aún está presente agua. Para determinar el comportamiento de congelación de la fórmula, encierre de cinco a diez miligramos de la muestra en un recipiente de aluminio para calorimetría diferencial de barrido o DSC, con tapa.Prepare una cápsula vacía como referencia. Configure el programa de barrido de temperatura del DSC para imitar el paso de congelación en el programa de liofilización. Esto se realiza porque la cinética de enfriamiento puede influir en la TG prima de las formulaciones no liofilizadas antes de que comience el barrido de calentamiento.Reduzca la temperatura considerablemente por debajo de la tg esperada. En primer lugar, para las formulaciones investigadas, elija una velocidad de calentamiento adecuada. La señal de flujo de calor registrada se expresa en vatios y será influenciada por la velocidad de calentamiento.Una velocidad de calentamiento más alta proporcionará una señal más grande de TG prima; establezca el rango de temperatura de modo que abarque tanto la TG prima como la fusión de la formulación. Una vez determinado el comportamiento de congelación, ajuste los parámetros del proceso de liofilización para que la temperatura de la muestra esté siempre por debajo de la TG de la muestra y de manera que la presión de la cámara permita la sublimación rápida del hielo y del agua residual en la formulación. Para proteger los productos secos tras la liofilización.Controle la atmósfera de la muestra sellando las muestras en el liofilizador antes de liberar el vacío al final del ciclo de liofilización. Alternativamente, los viales pueden llenarse con una atmósfera preferida. Es importante evitar exponer las muestras a las condiciones ambientales, ya que cualquier humedad u oxígeno presente en la atmósfera de almacenamiento influirá en la supervivencia de las células.Finalmente, pese los viales para analizar las muestras mediante rayos X. Coloque una pequeña cantidad de la matriz bacteriana sobre un portamuestras y monte el portamuestras en el refractómetro de rayos X. Utilice el software compatible con el equipo de rayos X para analizar cualquier fase cristalina presente en la muestra.Para analizar la matriz bacteriana mediante microscopía electrónica, monte una pequeña cantidad sobre cinta de carbono fijada en un portaobjetos para microscopía electrónica de barrido. Introduzca el portaobjetos en un evaporador de oro y paladio o platino, y recubra la muestra para obtener imágenes. Coloque el portaobjetos en la cámara del microscopio y seleccione los parámetros de imagenación adecuados.Por ejemplo, en este instrumento utilizamos un voltaje de aceleración de cinco kilovoltios, un tamaño de punto de tres, una distancia de trabajo de cinco milímetros y el detector de electrones secundarios. Esta tabla enumera los datos de diferentes formulaciones, incluidos los eventos térmicos registrados por DSC durante el calentamiento de las formulaciones congeladas, la estructura de las muestras secas y la tensión superficial de las soluciones de formulación. La temperatura de transición vítrea (Tg') de la sacarosa es de menos 40 grados Celsius y puede ser difícil detectar concentraciones de sacarosa inferiores al 20 % en peso por peso.El evento térmico a menos 35 grados Celsius probablemente esté relacionado con el inicio de la disolución del hielo mostrado aquí. Datos de supervivencia para la bacteria gramnegativa P putter y la bactería grampositiva, a CHLOROPHYL cus, formuladas en diferentes formulaciones basadas en sacáridos. Obsérvese que la tendencia en la capacidad de la formulación para mantener la supervivencia celular es similar en ambas especies bacterianas.Este gráfico ilustra la correlación entre la supervivencia tras la liofilización y las tensiones superficiales de las formulaciones, lo que indica que tensiones superficiales más altas producen mayores tasas de supervivencia. Las imágenes de MEB mostradas aquí representan formulaciones secas de cuatro polímeros diferentes cuyas matrices presentan el aspecto de papel crujiente o láminas lisas interconectadas con patrones corrugados de bacterias embebidas para fi, ccal y sacarosa. Las láminas tienen aproximadamente un micrón de grosor y entre 10 y 20 micrones de ancho, siendo la superficie de fi ccal más lisa que la de HPMC y HEC, que forman láminas mucho más delgadas.Y las bacterias son más fácilmente visibles, posiblemente porque la relación polímero-bacteria es menor en estas formulaciones a base de celulosa. Además, se observaron cristales de sal en HEC y HPMC, siendo este último el que mostró una mayor cantidad de precipitados en la superficie de las láminas de polímero. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo la supervivencia celular depende de las propiedades de la formulación utilizando las técnicas mostradas aquí.

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