4 de noviembre de 2012
En este artículo se describe la administración de Lux-etiquetado Bacterias a ratones y posteriores In vivo Análisis utilizando imágenes IVIS bioluminiscencia.
Este video describe el uso de imágenes bioluminiscentes de cuerpo entero para el estudio del tráfico bacteriano en ratones vivos, con énfasis en la detección del crecimiento bacteriano dentro de los xenoinjertos tumorales. Las bacterias presentan una clase atractiva de vector para la terapia contra el cáncer, ya que poseen una capacidad natural para crecer preferentemente dentro de los tumores, después de la administración intravenosa, ya sea fuera o dentro de las células tumorales. Las cepas bacterianas diseñadas para expresar el casete del gen lux facilitan la detección de las bacterias y los tumores concurrentes. El valor de la monitorización longitudinal no invasiva de las cepas bacterianas in vivo es bien aceptado, ya que reduce el uso de animales y genera datos estadísticamente más relevantes que los ensayos de punto final.
Este procedimiento consiste en la inducción de tumores subcutáneos en ratones. Se permite el desarrollo de tumores y se controla con el tiempo. Se administran bacterias y los ratones se someten a imágenes de bioluminiscencia en puntos de tiempo dedicados para los experimentos descritos aquí.
Los tumores subcutáneos se inducen en ratones de formación inmunocompetente o tímica. Dependiendo de la elección del xenoinjerto, las bacterias de tipo Lux de la especie deseada, como la E. coli, se cultivan como cultivos nocturnos. Las células bacterianas se lavan y se resuspenden a la concentración deseada para su administración intravenosa.
10 a los seis. Las células bacterianas en un volumen de inyección de 100 microlitros se utilizan de forma rutinaria. Los ratones portadores de tumores subcutáneos de 100 milímetros de volumen cubano de forma rutinaria están preparados para el tratamiento.
Usando una aguja de jeringa de calibre 29, la suspensión bacteriana se inyecta en la vena lateral de la cola. Las bacterias se replican preferentemente dentro de la masa tumoral a lo largo del tiempo. Las bacterias intratumorales continúan replicándose durante varias semanas y son detectables por imágenes IVUS entre tres y seis días.
Después de la administración, para la obtención de imágenes bioluminiscentes, se colocan ratones vivos y anestesiados dentro de la cámara de 37 grados del ivus. Si se desea, se pueden obtener imágenes de varios ratones simultáneamente. Las imágenes fotográficas y de luz luminiscente se recopilan utilizando una cámara CCD refrigerada con la configuración de software deseada.
Dependiendo del dispositivo de imagen, se pueden realizar análisis bidimensionales o tridimensionales. Se logra una relación robusta y lineal entre el número de bacterias intratumorales y los niveles de luz producidos. Estimación fiable del número de bacterias in vivo Las bacterias que expresan LX también pueden detectarse desde el interior del cuerpo.
Las bacterias comensales colonizadoras del intestino que expresan Lux se visualizan durante varias semanas. La administración posterior a la cavidad demuestra aún más la utilidad de las imágenes bioluminiscentes para el análisis de bacterias que expresan lux dentro de animales de investigación.
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Este artículo describe el uso de imágenes bioluminiscentes de cuerpo entero para estudiar el tráfico bacteriano en ratones vivos. El enfoque está en detectar el crecimiento bacteriano dentro de xenoinjertos tumorales, destacando el potencial de las bacterias como vectores para la terapia del cáncer.
Bioluminescent bacterial imaging enables real-time, non-invasive tracking of bacterial trafficking in vivo, supporting preclinical evaluation of bacterial vectors for cancer therapy. This approach reduces animal usage while providing longitudinal, quantitative data on tumor targeting and bacterial persistence. The method enhances predictive confidence in early-stage therapeutic vector development by visualizing spatial and temporal dynamics of bacterial localization within tumors.
The method integrates into the discovery continuum from early vector screening through preclinical validation, enabling iterative design-build-test cycles for bacterial therapeutics.