Name: Administración intranasal de la terapéutica del SNC para Ratones Awake (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-04-08T12:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 15 s
Description: Aprende a administrar fármacos intranasales en ratones despiertos para dirigir terapéuticas al sistema nervioso central sin anestesia. Este método permite tratamientos crónicos repetidos minimizando la exposición sistémica.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Los autores desean agradecer a la atención HealthPartners Animales institucional y el empleo Comisión en el Hospital Regions.

1. Aclimatación de Manejo para la administración intranasal de ratones Awake Introducción Los ratones deben ser aclimatadas a la manipulación por un período de dos a cuatro semanas antes del inicio de la administración intranasal. Aclimatación a la manipulación es importante, ya que ayuda a asegurar una posición correcta del cuerpo para lograr la máxima eficacia de la entrega despierto fármaco intranasal. Además, los ratones que no han sido adecuadamente acostumbrados a este proceso puede tener una reacción de ansiedad grave después de la dosificación. Los ratones deben pasar cerca de 2-3 días en cada uno de nueve pasos antes de proceder al paso siguiente, dependiendo de la comodidad de los animales a la manipulación. El nivel de estrés de ratón debe ser utilizado como una medida del progreso. Esto significa controlar los movimientos del ratón, la cantidad / frecuencia de la micción, defecación, temblando, y morder. Si el ratón tiene una respuesta de estrés alto, permanezca en ese paso antes de pasar a la siguiente hasta que la respuesta se reduce. Una muestra de aclimatación schedule se puede ver en la Tabla 1. La aclimatación de los ratones deben progresar a través de los siguientes de una vez al día pasos. Realizar estos pasos más de una vez al día, en un intento de acelerar la aclimatación, no se recomienda. <ol><li> Coloque el ratón en la palma de la mano por un período de dos a tres minutos, no más de un pie por encima de la cima de la jaula, como animales frecuentemente saltar durante esta etapa introductoria. Si el ratón intenta arrastrarse fuera de la parte superior de su brazo, simplemente levante el ratón por la base de la cola y colocarlo de nuevo en la mano. </li><li> Coloque el ratón en la palma de la mano durante tres minutos y acariciar al animal suavemente. Acepta el ratón direccionalmente desde la cabeza hasta la cola, mientras que permite que el animal se mueva libremente. </li><li> Coloque el ratón en la palma de la mano durante tres minutos mientras que el masaje detrás de las orejas (ligeramente pellizcando juntos la piel en la parte posterior del cuello utilizando el pulgar y el dedo índice). </li><li> Mantener / lift el ratón por la piel de su cuello durante 30 segundos, dejando que el resto del ratón en la cima de la jaula durante 30 segundos antes de repetir la bodega de nuevo. </li><li> Mantenga el ratón usando el agarre intranasal, que se describe en la sección 2, pero no invertir el animal (completar hasta el paso 2.4). Sostenga el animal como este por un período de 30 segundos y suelte de nuevo a la cima de la jaula. Repetir una segunda vez después de un período de descanso de un minuto. </li><li> Sujete el mouse con el agarre intranasal tal como se describe en la sección 2, que incluye la inversión del animal, por lo que su parte ventral es hacia arriba hacia el techo. Asegúrese de que el cuello del animal es paralelo al suelo. Mantenga esta posición durante 30 segundos. Repita este una segunda vez después de un período de descanso de un minuto. Algunos ratones se resistirá a la empuñadura intranasal más que otros, especialmente cuando se utiliza por primera vez con la inversión en esta etapa en la aclimatación. Si el ratón se libera del yugo, poner el ratón de nuevo en la cima de la jaula y volver a agarrar. Repita el re-grip si es necesario, Pero vigilar el nivel de estrés del ratón y devolverlo a la jaula si es necesario. Otro factor que puede desempeñar un papel en la pérdida de la adherencia en este punto en el proceso de aclimatación es la inexperiencia de los cuidadores de animales con la técnica de administración intranasal. </li><li> Sujete el mouse con el agarre intranasal, invertir, brevemente colocar una pipeta con una punta vacía encima de cada ventana de la nariz y mantenga la posición de los animales durante 30 segundos. Repita este después de un período de descanso de un minuto. </li><li> Sujete el mouse con el agarre intranasal, que invertir y administrar por vía intranasal 6 l de solución salina en el orificio nasal izquierdo y derecho como se describe en la sección 3 (a través de paso 3,7). </li><li> Sujete el mouse con el agarre intranasal, invertir, y administrar por vía intranasal 6 l de solución salina en el orificio nasal izquierdo y derecho dos veces colocar al animal de nuevo en la cima de la jaula en el medio, como se describe en la sección 3. </li></ol> 2. El Grip intranasal para inmovilizar Ratones Awake <ol><li> Coloque el ratón on la jaula superior. </li><li> Con el pulgar y el dedo índice de su mano dominante, sostenga el ratón por la cola. Uso de su corazón, anular y meñique, ligeramente pin de la parte inferior del cuerpo a la cima de la jaula (Figura 1A). Vamos a agarrar el ratón sobre las barras a medida que estirar ligeramente el ratón fuera y mejor agarrar la nuca. </li><li> Con el pulgar y el dedo medio de su mano no dominante, apriete firmemente el ratón en la nuca (el exceso de piel) por detrás del cuello y los hombros. Tire hacia arriba de la piel suelta para hacer una tienda de piel a través de los hombros (fig. 1B). Tome tanta piel como sea posible, pero tenga cuidado de no tirar de músculo ya que esto causará molestias al ratón. Tenga cuidado para no aplicar demasiada presión a la caja torácica del animal o la columna vertebral. El exceso de presión o de tracción de la piel puede conducir a la inhibición de la respiración en algunos casos. </li><li> Rápidamente coloque el dedo índice de la mano no dominante sobre la cabeza del ratón comocerca de la nariz como sea posible y tire hacia atrás la piel (Figura 1C, 1D). Al mismo tiempo, deslice el pulgar y el dedo medio hacia la cabeza de la posición óptima. Idealmente, el ratón no debería ser capaz de mover su cabeza vertical u horizontalmente. </li><li> Mientras se mantiene el control sobre la nuca, gire el ratón sobre su espalda. La espalda del ratón debe estar en la palma de su mano. Sostenga firmemente la cola del ratón (cerca de la base) contra su palma con sus dos últimos dedos (anular y meñique) para estabilizar el ratón, o puede envolver sus dedos en la parte inferior del cuerpo (Figura 1E, 1F). </li><li> En este punto, asegurarse de que el cuello del ratón y la barbilla son planos y paralelos al suelo. La barbilla debe estar cerca de un ángulo de 180 grados con el cuello tanto como sea posible para ayudar en la administración intranasal. Ligeros cambios en ángulo puede provocar que el medicamento terminan en el lugar equivocado. Asegúrese de que el ratón es capaz de respirar al ver el abdomen. El sho ratónuld no ser capaz de moverse, pero deben ser cómodos y no en ningún dolor. Si usted ve el cuello del ratón y la barbilla haciendo una &quot;V&quot;, entonces usted necesita para volver a agarrar. </li></ol> 3. La administración intranasal de drogas a ratones Awake Introducción Utilizando la empuñadura intranasal, cada ratón se restringe dos veces y se mantuvo con su cuello paralelo al suelo, mientras que un volumen de 20-30 l de líquido se administra. Este volumen es segura y eficaz para los pequeños grandes ratones; usamos normalmente 24 l, y que se describe en este protocolo. El método intranasal despierto puede ser utilizado en ratones de cualquier edad, por ejemplo en ratones recién nacidos para la investigación en neurociencias de desarrollo. En los ratones recién nacidos, un menor volumen total (8 l) y tamaño de las gotas (1 l) se debe utilizar para acomodar el volumen más pequeño de la cavidad nasal. Drogas es típicamente de entregarse a dos ratones a la vez, alternando períodos de descanso para hacer el uso más eficiente del tiempo y mantener on horario. Set-up será un poco diferente en función de si va a dosificar ratones alojados en grupo o ratones alojados individualmente. Con los ratones alojados individualmente, es útil para colocar todo el material entre las jaulas para evitar que los ratones de cruzar a la cima de la jaula otro. Con el alojada en grupo los ratones, la dosis de la jaula sólo. Es importante que cada ratón en una jaula alojada en grupo recibe el tratamiento intranasal mismo, como potencial de contaminación cruzada de dos tratamientos diferentes existe debido a la expulsión de medicamento en el aire o con contacto con la piel. Se recomienda que una hoja de dosificación pueden imprimir con anticipación, para recordar a los técnicos de las asignaciones de tratamiento, para grabar las notas de las gotas perdidas, tener en cuenta la salud general de cada animal, etc Pasos <ol><li> Configure las jaulas donde deben estar para la dosificación y configurar una estación de administración (Figura 2). </li><li> Retire ratón de la jaula y mantenerse en la cima jaula durante la dosificación. </li><li> Coge el ratón usando el agarre intranasal se describe en la sección 2. </li><li> Con la mano dominante, cargar la pipeta con 6 l de fármaco o vehículo. Coloque la punta de la pipeta de llenado cerca de la fosa nasal izquierda del ratón, por lo general en un ángulo de 45 grados (Figura 1G, 1H). Si usted tiene una solución viscosa puede que tenga que aumentar el ángulo de 90 grados ya que el medicamento puede correr por el lado de la punta de la pipeta en vez de hacer una sola gota. Si es muy viscoso, limpiando la punta de la pipeta con un pañuelo antes de expulsar el líquido puede ayudar. Lentamente expulsar el fármaco para formar una pequeña gota con aproximadamente la mitad del volumen (3 l). </li><li> La gotita debe ser colocado lo suficientemente cerca de la ventana de la nariz de ratón, de modo que el ratón se puede inhalar la gotita. Inmediatamente después el ratón inhala esta pequeña gota, expulsar el resto del fármaco en la punta de la pipeta para formar otra gotita pequeño para el ratón a inhalar a través de la fosa nasal mismo de 2-3 segundos más tarde. Asegúrese de ver la boca. Si hay is cualquier líquido en la boca, la gota no lo hacen completamente en la nariz y esto debe tenerse en cuenta. </li><li> Mantenga el ratón en esta posición durante 15 segundos. Es altamente recomendable que un temporizador se utiliza para estandarizar esta espera 15 seg. </li><li> Repita los pasos 3,3 a 3,6 por la fosa nasal derecha. Si las gotas son resopló fuera, que la caída debe ser reemplazado y señaló. </li><li> Coloque el ratón de nuevo en la parte superior de su jaula durante 2 min. Repetir todo el proceso a partir del 2 min. después de la entrega de la primera gota. Esto le da al ratón cuatro gotas de 6 l cada uno un total de 24 l de solución. Un programa de muestreo para la dosificación de uno o dos ratones a la vez se puede ver en la Tabla 2. </li><li> Después de que el ratón ha recibido todas las gotas, devuelva el ratón a su jaula. </li></ol> 4. Técnicas generales para el manejo de animales Aclimatación y la administración intranasal de drogas a los ratones Awake Después de cada sesión de aclimatación o la administración intranasal, los ratones se deberá tomar enna tratar, tal como un Cheerio o semillas de girasol pelado como un refuerzo positivo. Treats se dan como una recompensa y para distraerlos de rascarse la nariz, que puede causar daño a sí mismos. Cuando se trabaja con los ratones alojados en grupo, golosinas suficientes deben ser dejados para cada ratón. Antes de devolver los animales a sus jaulas asegúrese de restaurar nidos a sus estados originales con el fin de reducir el estrés. Cuando la dosificación los animales alojados en grupo, los guantes deben ser cambiados entre la administración de las jaulas para no transferir olor de la colonia colonia jaula a jaula, ya que se vuelven agresivos uno hacia el otro.

<ol><li>Dhuria, S. V., Hanson, L. R., Frey, W. H. 2nd <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intranasal+delivery+to+the+central+nervous+system%3A+mechanisms+and+experimental+considerations%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pharm+Sci%22%5BJournal%5D)">Intranasal delivery to the central nervous system: mechanisms and experimental considerations.</a> J. Pharm Sci. 99, 1654-1673 (2010).</li>
<li>Thorne, R. G., Pronk, G. J., Padmanabhan, V., Frey, W. H. 2nd <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Delivery+of+insulin-like+growth+factor-I+to+the+rat+brain+and+spinal+cord+along+olfactory+and+trigeminal+pathways+following+intranasal+administration%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Delivery of insulin-like growth factor-I to the rat brain and spinal cord along olfactory and trigeminal pathways following intranasal administration.</a> Neuroscience. , 127-481 (2004).</li>
<li>Benedict, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intranasal+insulin+as+a+therapeutic+option+in+the+treatment+of+cognitive+impairments%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Gerontol%22%5BJournal%5D)">Intranasal insulin as a therapeutic option in the treatment of cognitive impairments.</a> Exp. Gerontol. 46, 112-115 (2011).</li>
<li>Francis, G. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intranasal+insulin+prevents+cognitive+decline%2C+cerebral+atrophy+and+white+matter+changes+in+murine+type+I+diabetic+encephalopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Brain%22%5BJournal%5D)">Intranasal insulin prevents cognitive decline, cerebral atrophy and white matter changes in murine type I diabetic encephalopathy.</a> Brain. 131, 3311-3334 (2008).</li>
<li>Francis, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intranasal+insulin+ameliorates+experimental+diabetic+neuropathy%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">Intranasal insulin ameliorates experimental diabetic neuropathy.</a> Diabetes. 58, 934-945 (2009).</li>
<li>Marks, D. R., Tucker, K., Cavallin, M. A., Mast, T. G., Fadool, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Awake+intranasal+insulin+delivery+modifies+protein+complexes+and+alters+memory%2C+anxiety%2C+and+olfactory+behaviors%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Awake intranasal insulin delivery modifies protein complexes and alters memory, anxiety, and olfactory behaviors.</a> J. Neurosci. 29, 6734-6751 (2009).</li>
<li>Hanson, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intranasal+delivery+of+deferoxamine+reduces+spatial+memory+loss+in+APP%2FPS1+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Drug+Delivery+and+Translational+Research%22%5BJournal%5D)">Intranasal delivery of deferoxamine reduces spatial memory loss in APP/PS1 mice.</a> Drug Delivery and Translational Research. 2, 160-168 (2012).</li>
<li>Danielyan, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protective+effects+of+intranasal+losartan+in+the+APP%2FPS1+transgenic+mouse+model+of+Alzheimer+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Rejuvenation+Research%22%5BJournal%5D)">Protective effects of intranasal losartan in the APP/PS1 transgenic mouse model of Alzheimer disease.</a> Rejuvenation Research. 13, 195-201 (2010).</li>
<li>Fine, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intranasal+deferoxamine+improves+performance+in+radial+arm+water+maze%2C+stabilizes+HIF-1alpha%2C+and+phosphorylates+GSK3beta+in+P301L+tau+transgenic+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Intranasal deferoxamine improves performance in radial arm water maze, stabilizes HIF-1alpha, and phosphorylates GSK3beta in P301L tau transgenic mice.</a> Exp. Brain Res. 219, 381-390 (2012).</li>
<li>Lochhead, J. J., Thorne, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intranasal+delivery+of+biologics+to+the+central+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22Adv.+Drug+Deliv.+Rev%22%5BJournal%5D)">Intranasal delivery of biologics to the central nervous system.</a> Adv. Drug Deliv. Rev. 64 (11), 614-628 (2012).</li>
<li>Hanson, L. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intranasal+deferoxamine+provides+increased+brain+exposure+and+significant+protection+in+rat+ischemic+stroke%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pharmacol.+Exp+Ther%22%5BJournal%5D)">Intranasal deferoxamine provides increased brain exposure and significant protection in rat ischemic stroke.</a> J. Pharmacol. Exp Ther. 330, 679-686 (2009).</li>
<li>Reger, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+intranasal+insulin+on+cognition+in+memory-impaired+older+adults%3A+modulation+by+APOE+genotype%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol.+Aging%22%5BJournal%5D)">Effects of intranasal insulin on cognition in memory-impaired older adults: modulation by APOE genotype.</a> Neurobiol. Aging. 27, 451-458 (2006).</li>
<li>Kim, C. H., Song, H. yun, M, E. unA. hn, Lee, Y., G, J., Yoon, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+hypo-%2C+iso-+and+hypertonic+saline+irrigation+on+secretory+mucins+and+morphology+of+cultured+human+nasal+epithelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Otolaryngol%22%5BJournal%5D)">Effect of hypo-, iso- and hypertonic saline irrigation on secretory mucins and morphology of cultured human nasal epithelial cells.</a> Acta Otolaryngol. 125, 1296-1300 (2005).</li>
<li>Greiff, L., Andersson, M., Wollmer, P., Persson, C. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hypertonic+saline+increases+secretory+and+exudative+responsiveness+of+human+nasal+airway+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+Respir.+J%22%5BJournal%5D)">Hypertonic saline increases secretory and exudative responsiveness of human nasal airway in vivo.</a> Eur. Respir. J. 21, 308-312 (2003).</li>
</ol>

No hay conflictos de interés declarado.

Este método muestra cómo los ratones se pueden dar dosis regulares de medicamento intranasal para atacar el cerebro sin el uso de anestesia. Medicamento intranasal puede ser entregado a grandes grupos de ratones durante largos períodos de tiempo con el mínimo esfuerzo. Un único grupo de hasta 20 ratones por vía intranasal puede tratarse por una sola persona en menos de una hora. Una amplia gama de moléculas, que van desde los quelantes del hierro pequeños a factores de crecimiento a las células madre mesenquimales, se h...

<table><tbody><tr><td>Pipetador P20 ajustado a 6 &amp;mu;l</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Puntas de pipeta para carga de geles</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cronómetro</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Receptáculo de desecho para puntas</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hoja de dosificación para anotaciones</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bolígrafo</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fármaco y vehículo</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Contenedor para sostener los viales de fármaco</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Animales a dosificar</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Guantes de repuesto</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Toallas de papel para limpiar orina</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="4">&lt;strong&gt;Tabla 3. &lt;/strong&gt; Materiales necesarios</td></tr></tbody></table>

administración intranasal de la terapéutica del snc para ratones awake

Intranasal Administration of CNS Therapeutics to Awake Mice

La administración intranasal es un método de suministro de agentes terapéuticos para el sistema nervioso central (SNC). Es no invasiva y permite que las moléculas grandes que no atraviesan el acceso barrera hematoencefálica en el SNC. Las drogas son dirigidas directamente al SNC con la administración intranasal, reducir la exposición sistémica y los efectos sistémicos secundarios no deseados así 1. Entrega de la nariz para el SNC se produce en cuestión de minutos a lo largo de tanto los caminos de los nervios olfativos y a través de una ruta trigémino extracelular y no requiere medicamentos para unirse a cualquier receptor o el transporte axonal 2. Administración intranasal es un método ampliamente difundido y se utiliza actualmente en ensayos clínicos humanos 3. La administración intranasal de fármacos en modelos animales permite la evaluación inicial de distribución farmacocinética y la eficacia. Con los ratones, es posible administrar fármacos a animales despiertos (no anestesiado) sobre una base regular usando una especializado agarre intranasal. Entrega Awake es beneficioso porque permite que a largo plazo la administración crónica sin anestesia, se tarda menos tiempo que con la anestesia, y puede ser aprendido y hecho por muchas personas para que equipos de técnicos puedan números grandes dosis de ratones en períodos cortos. La eficacia de la terapéutica administrado por vía intranasal de esta manera a los ratones se ha demostrado en una serie de estudios que incluyen la insulina en modelos de ratones diabéticos 4-6 y deferoxamina en modelos de ratón de Alzheimer. 7,8 El agarre intranasal en ratones se pueden aprender, pero no es fácil y requiere práctica, habilidad y un agarre preciso para cumplir efectivamente con las drogas en el cerebro y evitar el drenaje de los pulmones y el estómago. Los ratones se restringen a mano usando un scruff modificada en la mano no dominante con el cuello mantiene paralela al suelo, mientras fármaco se suministra con una pipeta usando la mano dominante. Por lo general toma 3-4 semanas de aclimatación a la manipulación de los ratones antes dese hace con este agarre sin una respuesta de estrés. Hemos preparado este vídeo JoVE para hacer esta técnica de administración intranasal más accesible.

Hay varias formas de determinar la eficacia de la administración de fármacos. La primera es para administrar por vía intranasal un colorante, tal como tinta India o azul de metileno y de visualizar el colorante después de la eutanasia de los animales, en el epitelio olfativo y después se remueve el cerebro, entrando en el SNC a través de la lámina cribosa. El segundo es para medir el fármaco administrado ya sea mediante el uso de una etiqueta de radio-marcado o utilizando ELISA de detección de la molécula marcada. Un bu...

Un método para administrar por vía intranasal a ratones despiertos medicamentos para el fin de dirigir el cerebro se describe. Este método permite la administración repetida durante largos períodos con la administración intranasal de drogas sin anestesia, y la nariz al cerebro de entrega con una exposición sistémica mínima.

Administración intranasal de la terapéutica del SNC para Ratones Awake

La administración intranasal es un método para suministrar agentes terapéuticos al sistema nervioso central (SNC). Es un procedimiento no invasivo que permite la entrega de grandes...

El objetivo general de este procedimiento es dirigir fármacos al sistema nervioso central mediante administración intranasal en ratones sin anestesia. Esto se logra primero acostumbrando al ratón al manejo. El segundo paso consiste en utilizar un agarre modificado por la nuca para inmovilizar la cabeza del animal.A continuación, se administran gotas del fármaco por vía intranasal con una pipeta. En el último paso, se devuelve al ratón a su jaula con una recompensa. Las principales ventajas de esta técnica son que la administración intranasal dirige los fármacos al sistema nervioso central sin exposición sistémica, y que la administración intranasal en animales despiertos permite tratamientos crónicos en ratones sin anestesia.Este método puede utilizarse para ayudar a responder preguntas clave en el desarrollo de fármacos para el tratamiento de enfermedades neurológicas. Por lo general, las personas nuevas en este método tendrán dificultades porque es complicado sostener la boca firmemente para evitar el movimiento de la cabeza. La demostración visual de este método es fundamental, ya que la colocación adecuada de los dedos para lograr un agarre correcto es crucial y difícil de expl

intranasal-administration-of-cns-therapeutics-to-awake-mice

Research

Investigación

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Exhaustivas pruebas preclínicas de fármacos que actúan en el sistema nervioso central a menudo incluye la evaluación y la comparación de biodistribución de drogas en asociación con rutas específicas de la administración. En este caso, tres métodos de uso general de la administración sistémica (intravenosa, intraperitoneal y oral), así como un método para la entrega local (convección mejorado la entrega) se ha demostrado en ratones.

Medicamentos sistémicos y locales de entrega para el Tratamiento de Enfermedades del Sistema Nervioso Central en modelos de roedores

Este artículo muestra dos métodos muy diferentes de inyección: 1) en el cerebro (intracerebroventricular) y 2) sistémica (intravenosa) para introducir los agentes terapéuticos en el sistema nervioso central de ratones recién nacidos.

La entrega de los agentes terapéuticos a través de intracerebroventricular (ICV) y la inyección intravenosa (IV) en ratones

Caracterización electrofisiológica de las respuestas neuronales es importante para entender la función del cerebro y para guiar la colocación de los tintes para el rastreo vía. Sin embargo, muchos estudios se realizan en animales anestesiados. Para entender la función del cerebro sin anestesia, hemos desarrollado un método para registrar las propiedades neuronales de respuesta e inyectar tintes en el ratón despierto.

Preparación de un ratón para la grabación de Despierta respuestas neuronales y de inyección de trazadores

Este video muestra la administración intranasal de células madre neurales terapéuticas cargadas de virus oncolíticos en un modelo de ratón portador de tumores cerebrales. La administración intranasal no invasiva de células madre evita la barrera hematoencefálica, lo que facilita su entrega al sitio del tumor en el cerebro para aplicaciones terapéuticas.

Administración intranasal de células madre neurales terapéuticas (NSC) en un modelo murino: un procedimiento para la administración dirigida al tumor de NSC cargadas con virus oncolíticos en un modelo de ratón portador de tumores cerebrales

Fuente: Shahror, R. A. et. al., Seguimiento de células madre mesenquimales marcadas con óxido de hierro superparamagnético mediante resonancia magnética después de la administración intranasal en un modelo murino de lesión cerebral traumática. J. Vis. Exp. (2019)Este video muestra la administración intranasal de células madre mesenquimales (MSC) en un modelo de ratón. Las MSC se absorben en el tejido nasal, migran al cerebro a través de señales de citoquinas y secretan factores neurotróficos en...

Administración intranasal de células madre mesenquimales en un modelo de ratón de lesión cerebral traumática

Fuente: Ullah, I., et.al. Un dispositivo de posicionamiento para la colocación de ratones durante la administración intranasal de ARNip al sistema nervioso central. J. Vis. Exp. (2019)Este video demuestra una técnica de administración intranasal precisa para administrar complejos de péptido-ARNip dirigidos a neuronas al cerebro del ratón utilizando un dispositivo de posicionamiento especializado. Los ratones anestesiados se aseguran en una posición con la cabeza hacia abajo y hacia adelante...

Entrega intranasal de ARNip al cerebro del ratón mediante un dispositivo de posicionamiento

Fuente: Kanazawa, T., et al. Métodos novedosos para la administración intranasal bajo anestesia inhalatoria para evaluar la administración de fármacos de nariz a cerebro. J. Vis. Exp. (2018)Este video demuestra la administración intranasal de fármacos radiomarcados en un ratón anestesiado para lograr la administración del fármaco de nariz al cerebro. Explica cómo los medicamentos atraviesan el epitelio nasal y viajan a través de vías neuronales para llegar al cerebro, así como también cómo el...

Administración intranasal de fármacos en ratones mediante pipeta y canulación inversa para la administración de fármacos de nariz a cerebro

Las células madre son portadores terapéuticos prometedores para tratar tumores cerebrales debido a su tropismo tumoral intrínseco. La administración intranasal no intrusiva de células madre evita la barrera hematoencefálica y demuestra un fuerte potencial para la traducción clínica. Este artículo resume los principios básicos de la entrega de células madre intranasales en un modelo de ratón de glioma.

Entrega intranasal de células madre terapéuticas a glioblastoma en un modelo de ratón

Aquí, Describimos dos nuevos métodos de administración intranasal estable bajo anestesia inhalatoria con mínimo estrés físico para animales de experimentación. También describimos un método para la evaluación cuantitativa de los niveles de distribución de drogas en el cerebro vía el camino de la nariz al cerebro usando radiactivos [14C]-inulina como sustrato modelo de macromoléculas solubles en agua.

Nuevos métodos para la administración Intranasal bajo inhalación de anestesia para evaluar el suministro de medicamentos de la nariz al cerebro

Aquí, presentamos un protocolo utilizando un dispositivo de posicionamiento del ratón que permite la colocación adecuada de ratones para la administración intranasal de una formulación de péptido-siRNA dirigida al cerebro que permite un silenciamiento eficaz del gen en el sistema nervioso central.

Un dispositivo de posicionamiento para la colocación de ratones durante la entrega de siRNA intranasal al sistema nervioso central

Aprende a administrar fármacos intranasales en ratones despiertos para dirigir terapéuticas al sistema nervioso central sin anestesia. Este método permite tratamientos crónicos repetidos minimizando la exposición sistémica.

Administración intranasal de la terapéutica del SNC para Ratones Awake

Explorar más videos