Name: Microinyección insulina hipocampo y En vivo Microdiálisis durante la prueba de memoria espacial (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-01-11T17:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 32 s
Description: Aprende a medir el metabolismo hipocampal durante pruebas de memoria espacial mediante microdiálisis in vivo en animales conscientes. Este método permite analizar cambios neuroquímicos en tiempo real.

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<ol><li>McNay, E. C., Fries, T. M., Gold, P. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Decreases+in+rat+extracellular+hippocampal+glucose+concentration+associated+with+cognitive+demand+during+a+spatial+task%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Decreases in rat extracellular hippocampal glucose concentration associated with cognitive demand during a spatial task.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 97 (6), 2881(2000).</li>
<li>McNay, E. C., Gold, P. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Age-related+differences+in+hippocampal+extracellular+fluid+glucose+concentration+during+behavioral+testing+and+following+systemic+glucose+administration%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Gerontol.+A.+Biol.+Sci.+Med.+Sci%22%5BJournal%5D)">Age-related differences in hippocampal extracellular fluid glucose concentration during behavioral testing and following systemic glucose administration.</a> J. Gerontol. A. Biol. Sci. Med. Sci. 56 (2), 66(2001).</li>
<li>McNay, E. C., McCarty, R. C., Gold, P. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluctuations+in+brain+glucose+concentration+during+behavioral+testing%3A+dissociations+between+brain+areas+and+between+brain+and+blood%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol.+Learn.+Mem%22%5BJournal%5D)">Fluctuations in brain glucose concentration during behavioral testing: dissociations between brain areas and between brain and blood.</a> Neurobiol. Learn. Mem. 75 (3), 325(2001).</li>
<li>McNay, E. C., Gold, P. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extracellular+glucose+concentrations+in+the+rat+hippocampus+measured+by+zero-net-flux%3A+effects+of+microdialysis+flow+rate%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Extracellular glucose concentrations in the rat hippocampus measured by zero-net-flux: effects of microdialysis flow rate.</a> 72 (2), 785(1999).</li>
<li>McNay, E. C., Sherwin, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+recurrent+hypoglycemia+on+spatial+cognition+and+cognitive+metabolism+in+normal+and+diabetic+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">Effect of recurrent hypoglycemia on spatial cognition and cognitive metabolism in normal and diabetic rats.</a> Diabetes. 53 (2), 418(2004).</li>
<li>McNay, E. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hippocampal+memory+processes+are+modulated+by+insulin+and+high-fat-induced+insulin+resistance%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiology+of+Learning+and+Memory%22%5BJournal%5D)">Hippocampal memory processes are modulated by insulin and high-fat-induced insulin resistance.</a> Neurobiology of Learning and Memory. 93 (4), 546(2010).</li>
<li>McNay, E. C., McCarty, R. C., Gold, P. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluctuations+in+brain+glucose+concentration+during+behavioral+testing%3A+dissociations+between+brain+areas+and+between+brain+and+blood%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiology+of+Learning+%26+Memory%22%5BJournal%5D)">Fluctuations in brain glucose concentration during behavioral testing: dissociations between brain areas and between brain and blood.</a> Neurobiology of Learning & Memory. 75 (3), 325(2001).</li>
<li>McNay, E. C., Williamson, A., McCrimmon, R. J., Sherwin, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cognitive+and+neural+hippocampal+effects+of+long-term+moderate+recurrent+hypoglycemia%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">Cognitive and neural hippocampal effects of long-term moderate recurrent hypoglycemia.</a> Diabetes. 55 (4), 1088(2006).</li>
<li>McNay, E. C., Sherwin, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((From+artificial+cerebro-spinal+fluid+%28aCSF%29+to+artificial+extracellular+fluid+%28aECF%29%3A+microdialysis+perfusate+composition+effects+on+in+vivo+brain+ECF+glucose+measurements%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience+Methods%22%5BJournal%5D)">From artificial cerebro-spinal fluid (aCSF) to artificial extracellular fluid (aECF): microdialysis perfusate composition effects on in vivo brain ECF glucose measurements.</a> Journal of Neuroscience Methods. 132 (1), 35(2004).</li>
<li>McNay, E. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hippocampal+memory+processes+are+modulated+by+insulin+and+high-fat-induced+insulin+resistance%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiology+of+Learning+and+Memory%22%5BJournal%5D)">Hippocampal memory processes are modulated by insulin and high-fat-induced insulin resistance.</a> Neurobiology of Learning and Memory. 93 (4), 546(2010).</li>
<li>Benveniste, H., Drejer, J., Schousboe, A., Diemer, N. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regional+cerebral+glucose+phosphorylation+and+blood+flow+after+insertion+of+a+microdialysis+fiber+through+the+dorsal+hippocampus+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neurochemistry%22%5BJournal%5D)">Regional cerebral glucose phosphorylation and blood flow after insertion of a microdialysis fiber through the dorsal hippocampus in the rat.</a> Journal of Neurochemistry. 49 (3), 729(1987).</li>
<li>Benveniste, H., Diemer, N. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+reactions+to+implantation+of+a+microdialysis+tube+in+the+rat+hippocampus%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Neuropathologica%22%5BJournal%5D)">Cellular reactions to implantation of a microdialysis tube in the rat hippocampus.</a> Acta Neuropathologica. 74 (3), 234(1987).</li>
<li>McNay, E. C., Fries, T. M., Gold, P. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Decreases+in+rat+extracellular+hippocampal+glucose+concentration+associated+with+cognitive+demand+during+a+spatial+task%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Decreases in rat extracellular hippocampal glucose concentration associated with cognitive demand during a spatial task.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 97 (6), 2881(2000).</li>
<li>McNay, E. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hippocampal+memory+processes+are+modulated+by+insulin+and+high-fat-induced+insulin+resistance%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol.+Learn+Mem%22%5BJournal%5D)">Hippocampal memory processes are modulated by insulin and high-fat-induced insulin resistance.</a> Neurobiol. Learn Mem. 93 (4), 546(2010).</li>
<li>Lonnroth, P., Jansson, P. -A., Smith, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+microdialysis+method+allowing+characterization+of+intercellular+water+space+in+humans%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology%22%5BJournal%5D)">A microdialysis method allowing characterization of intercellular water space in humans.</a> American Journal of Physiology. 1987, E228(1987).</li>
<li>McNay, E. C., Gold, P. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extracellular+glucose+concentrations+in+the+rat+hippocampus+measured+by+zero-net-flux%3A+effects+of+microdialysis+flow+rate%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Extracellular glucose concentrations in the rat hippocampus measured by zero-net-flux: effects of microdialysis flow rate.</a> 72 (2), 785(1999).</li>
<li>Lalonde, R. obert <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+neurobiological+basis+of+spontaneous+alternation%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience+%26+Biobehavioral+Reviews%22%5BJournal%5D)">The neurobiological basis of spontaneous alternation.</a> Neuroscience & Biobehavioral Reviews. 26 (1), 91(2002).</li>
<li>Richman, C., Dember, W., Kim, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spontaneous+alternation+behavior+in+animals%3A+A+review%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Psychology%22%5BJournal%5D)">Spontaneous alternation behavior in animals: A review.</a> Current Psychology. 5 (4), 358(1986).</li>
<li>McNay, E. C., Canal, C. E., Sherwin, R. S., Gold, P. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modulation+of+memory+with+septal+injections+of+morphine+and+glucose%3A+effects+on+extracellular+glucose+levels+in+the+hippocampus%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Behav%22%5BJournal%5D)">Modulation of memory with septal injections of morphine and glucose: effects on extracellular glucose levels in the hippocampus.</a> Physiol. Behav. 87 (2), 298(2006).</li>
<li>McNay, E. C., Gold, P. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Memory+modulation+across+neural+systems%3A+intra-amygdala+glucose+reverses+deficits+caused+by+intraseptal+morphine+on+a+spatial+task+but+not+on+an+aversive+task%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Memory modulation across neural systems: intra-amygdala glucose reverses deficits caused by intraseptal morphine on a spatial task but not on an aversive task.</a> Journal of Neuroscience. 18 (10), 3853(1998).</li>
<li>Rex, A., Bert, B., Fink, H., Voigt, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stimulus-dependent+changes+of+extracellular+glucose+in+the+rat+hippocampus+determined+by+in+vivo+microdialysis%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Behav%22%5BJournal%5D)">Stimulus-dependent changes of extracellular glucose in the rat hippocampus determined by in vivo microdialysis.</a> Physiol. Behav. 98 (4), 467(2009).</li>
</ol>

No hay conflictos de interés declarado.

Todas las soluciones utilizadas en la microdiálisis se filtró inmediatamente antes de su uso, usando un filtro de 0,2 micras. Después de la inserción de la sonda dentro de la cánula guía, observar para confirmar que el flujo no está obstruido y recogida de muestras está ocurriendo. Si el flujo se detiene después de la inserción, la causa más probable es el daño a la membrana de la sonda causado por la insuficiente atención en la inserción, y una sonda fresco debe ser sustituido. Como se seña...

<table border="1"><tbody><tr><td></td><td></td><td></td><td> La mayoría de los reactivos son de grado de laboratorio estándar y se pueden obtener de un proveedor de elección. Del mismo modo, el equipo tal como bombas de jeringa y los tubos se puede utilizar desde cualquiera de varios fabricantes. Los temas específicos utilizados aquí para que los detalles son importantes incluyen: </td></tr><tr><td> CMA 12 sondas de microdiálisis </td><td> CMA / microdiálisis </td><td> CMA-12-XXX </td><td> Estos están disponibles en longitudes de membrana diferentes y cortes, indicados por códigos específicos en el &#39;XXX&#39;. </td></tr><tr><td> La insulina humana (Humulina) </td><td> Eli Lilly </td><td> N / a </td><td></td></tr><tr><td> Giratorio líquido </td><td> Instech </td><td> 375/D/22QM </td><td> Este giro específico tiene un par muy bajo y volumen interno, así como un nonrearevestimiento de cuarzo ctive. </td></tr></tbody></table>

microinyección insulina hipocampo y<em&gt; en vivo</em&gt; microdiálisis durante la prueba de memoria espacial

Hippocampal Insulin Microinjection and In vivo Microdialysis During Spatial Memory Testing

Metabolismo de la glucosa es un marcador útil para la actividad neuronal local, formando la base de métodos tales como la resonancia de 2-desoxiglucosa y magnética funcional. Sin embargo, el uso de tales métodos en modelos animales y por lo tanto requiere anestesia tanto altera el estado del cerebro y previene medidas de comportamiento. Un método alternativo es el uso de la microdiálisis in vivo para tomar la medición continua de las concentraciones cerebrales de fluidos extracelulares de los metabolitos de la glucosa, lactato, y similares en animales despiertos, sin restricciones. Esta técnica es especialmente útil cuando se combina con las tareas diseñadas para confiar en regiones específicas del cerebro y / o la manipulación farmacológica aguda, por ejemplo, las mediciones del hipocampo durante una tarea de memoria de trabajo espacial (alternancia espontánea) muestran un descenso de la glucosa extracelular y aumento del lactato que son sugerente de 1,2 glucólisis mejorada, y la administración de insulina intrahipocampal tanto mejora la memoria y aumenta glicol hipocampolisis 3. Sustancias tales como la insulina puede ser entregado a la hipocampo a través de la sonda de microdiálisis mismo que se utiliza para medir metabolitos. El uso de alternancia espontánea como una medida de la función del hipocampo está diseñado para evitar cualquier confundir motivadores de estrés (por ejemplo choque eléctrico), restricción, o recompensas (por ejemplo, alimentos), todos los cuales pueden alterar tanto la ejecución de tareas y el metabolismo; esta tarea también proporciona un medir la actividad motora que permite el control de los efectos no específicos del tratamiento. Combinados, estos métodos permiten la medición directa de las variables neuroquímicos y metabólicos que regulan el comportamiento.

Las ratas se recuperará rápidamente de la cirugía y estar alerta, móvil y activo dentro de los 30 min tras el cese de la anestesia. El impacto de la tapa de la cánula debe ser mínimo si la cirugía se lleva a cabo de manera limpia y cemento dental mínimo se utiliza. Si cualquier signo de infección se nota durante el seguimiento post-operatorio, o la rata es de ninguna manera mostrar signos de malestar o incomodidad, inmediatamente terminado el experimento, lo que debe ser extremadamente rara. Durante la tramitación antes...

La modulación de hippocampally dependiente de memoria de trabajo espacial mediante microinyección intrahipocampal directo, acompañado y seguido de<em&gt; In vivo</em&gt; Microdiálisis para metabolitos en animales conscientes y se comportan.

Microinyección insulina hipocampo y<em&gt; En vivo</em&gt; Microdiálisis durante la prueba de memoria espacial

El metabolismo de la glucosa es un marcador útil de la actividad neuronal local, que constituye la base de métodos como la 2-desoxiglucosa y la resonancia magnética funcional...

El objetivo general de este procedimiento es medir el metabolismo del hipocampo durante las pruebas conductuales. Esto se logra mediante la preparación quirúrgica de un animal bien manipulado con una cánula guía para microdiálisis. El día de la prueba, se inserta una sonda de microdiálisis en la cánula y se confirma el flujo PERFUSE ocho.A continuación, se permite que la sonda alcance el equilibrio mientras el animal permanece en una cámara de control. En última instancia, se requieren métodos analíticos adecuados, por ejemplo, una reacción de glucosa oxidasa, NADP, N-A-D-P-H y análisis fluorométrico. Si se mide la glucosa para mostrar el nivel de metabolismo y/o liberación neuroquímica durante el período de prueba, uno de los aspectos más difíciles de esta técnica es el cuidado necesario al manipular el tubo de microdiálisis y también el hecho de que con frecuencia los animales lo mastican o enredan los conductos si no se toman las precauciones debidas.Así que la primera vez que utilicé la microdiálisis del hipocampo durante pruebas conductuales fue durante mi trabajo de posgrado, y queríamos comprobar si los modelos existentes sobre el suministro de glucosa eran, de hecho, compatibles con los datos psicológicos conocidos respecto al mejoramiento de la memoria por la glucosa. Esta metodología nos permitió demostrar que, en realidad, los modelos existentes sobre la glucosa aplicados al cerebro eran completamente erróneos.Tras seguir procedimientos quirúrgicos estándar, prepare el animal, exponga el cráneo y realice orificios para la colocación de la cánula. Inserte una cánula en coordenadas predeterminadas y luego bájela lentamente hasta la profundidad objetivo. Una vez posicionada correctamente, fije la cánula en su lugar con cemento dental.Utilice un hilo quirúrgico estéril para cerrar la herida si es necesario. Por último, se utiliza un estilo para mantener la permeabilidad del catéter. A continuación, prepare el PERFUSE ocho para su uso en microdiálisis.Debe tenerse en cuenta que una composición precisa del fluido es esencial para obtener resultados óptimos. El día de la prueba, debe agregarse albúmina sérica bovina BSA y disolverse completamente. Después de la preparación, el PERFUSE ocho debe filtrarse a través de un filtro de 0,2 micrones.A continuación, prepare el tratamiento que se administrará al cerebro, si lo hubiera, utilizando una alícuota del ECF-A preparado. Aquí se prepara insulina para su administración en el hipocampo. Se debe preparar una sonda y línea de microdiálisis nuevas el día anterior a la prueba.Cree dos líneas separadas para la entrada y la salida. Utilice tubo PE 50 para conectar dos piezas de tubo FEP de un metro de largo y asegúrese de que haya un espacio muerto mínimo entre las líneas. El tubo debe recortarse como se muestra para crear extremos inclinados que faciliten la inserción en los conectores PE 50.Conecte el tubo de entrada a una jeringa Hamilton de un mililitro llena con agua desionizada estéril filtrada y conecte la sonda al otro extremo para permitir que el animal se mueva libremente durante la toma de mediciones. Conecte las líneas de entrada y salida a un conector giratorio de dos canales. A continuación, conecte el tubo de salida a la bomba y hágala funcionar a 1,5 microlitros por minuto hasta que observe agua desionizada saliendo por el tubo de salida de la sonda.Apague la bomba y conecte la otra línea entre el tubo de salida y un tubo de recolección de muestra. Pase cinco mililitros a través del tubo y coloque la sonda en un vial que contenga agua desionizada estéril durante la noche, asegurándose de que la punta de la sonda permanezca siempre húmeda. 24 horas antes de la prueba, realice la preinstalación del sujeto de prueba retirando el estilete simulado e insertando una sonda de microdiálisis que se utilice exclusivamente para este propósito.Durante 10 minutos después, reemplace el estilo ficticio y devuelva la rata a su jaula. Alternativamente, use una sonda nueva en esta etapa y déjela en su lugar sin retirarla hasta tomar las mediciones. Al día siguiente.El día de la microdiálisis, llene la jeringa Hamilton y el vial de centelleo con A ECF filtrado y permita que la bomba se equilibre durante una hora. Si es necesario, llene una segunda jeringa Hamilton con el tratamiento preparado y colóquela en la bomba de jeringas. La clave del éxito en este procedimiento es mantener la calma y manipular al animal de manera muy cuidadosa.Así que manténgase tranquilo, muévase lentamente y con precisión, y sobre todo practique. Cuando la equilibración esté completa, retire el estiloide simulado e inserte suavemente la sonda de microdiálisis equilibrada en el cerebro de la rata a través de la cánula. Coloque la rata en una caja de plástico transparente que contenga algo de la cama de su hogar.Asegúrese de contrapesar el tubo. Sujete un tubo microcentrífugo de 1,6 mililitros lleno con agua al tubo situado fuera de la jaula de manera que la gravedad mantenga las líneas de microdiálisis sin dobleces pero sin tensión. Permita que la sonda y la rata se equilibren durante dos horas.Al comienzo de este período, confirme que el flujo del Perfuse ocho no esté obstruido. Para ello, recoja el efluente del PERFUSE ocho durante un período definido y pese la muestra para confirmar que el volumen esperado esté saliendo del sistema antes de recolectar las muestras. Asegúrese de que la correlación entre la diálisis de la muestra y su recolección se calcule con precisión.Aquí tenemos un volumen de 30 microlitros entre la sonda y el punto de recogida a una velocidad de 1,5 microlitros por minuto. Existe un retraso de 20 minutos desde que la muestra sale del cerebro hasta que se recoge. Tras el período de equilibración, recoja al menos tres muestras mientras la rata está en reposo en la cámara de alojamiento.Para establecer una línea base estable de mediciones antes de las pruebas conductuales, planifique cuidadosamente el momento de la administración del tratamiento al cerebro. En este montaje, donde tenemos un volumen de 30 microlitros entre la punta de la jeringa y la sonda que ingresa al cerebro del animal, cambiamos la jeringa de tratamiento a la solución de tratamiento profusa ocho minutos antes. Queremos que el tratamiento llegue al hipocampo para cambiar las jeringas.Desconecte simplemente la línea de entrada del jeringa de control PERFUSE eight y conéctela rápidamente a la jeringa de tratamiento PERFUSE eight. Esto no debe tardar más de cinco segundos para evitar interrupciones en el flujo de PERFUSE eight. Tenga cuidado de no introducir burbujas de aire que puedan reducir la eficacia en el período de tiempo adecuado.Después de la administración del tratamiento, traslade suavemente la rata al aparato de pruebas conductuales elegido. Aquí, se mide la alternancia espontánea en un laberinto en forma de cruz. Permita que el animal explore libremente el laberinto durante 20 minutos.Registre la secuencia y el momento del brazo de Aries ya sea mediante una grabación de video o manualmente para recoger muestras. Durante este período, traslade el tubo de salida a un nuevo tubo de recolección. Cada cinco minutos, sostenga el tubo de manera que se mueva libremente.No debe obstaculizar el movimiento de la rata ni moverse frente al animal; manténgase quieto para que sus movimientos no afecten el comportamiento de la rata. Después de la prueba, retire suavemente a la rata del laberinto y devuélvala a la cámara de control. Continúe la recolección de muestras de microdiálisis durante al menos cuatro muestras para cubrir el período de recuperación tras el desempeño de la tarea.Después de recolectar las muestras deseadas, retire suavemente la sonda de la cabeza del animal y colóquela en un vial de almacenamiento. Devuelva al animal a su jaula de origen y observe cuidadosamente cualquier cambio postexperimental en su salud o comportamiento. Finalmente, enjuague el tubo intercambiando a una jeringa que contenga una solución de catho para prevenir el crecimiento de microbios.Este ejemplo muestra una disminución de la glucosa en el ECF hipocampal asociada a una tarea. El cuadro gris representa el tiempo que el animal pasó en el laberinto. La línea púrpura muestra la glucosa hipocampal en animales sin prueba en el laberinto, mientras que la línea roja representa a los animales realizando la tarea de alternancia espontánea del antebrazo.La línea naranja muestra las mediciones en animales realizando la versión más sencilla de esta tarea con tres brazos. Aquí se observan los cambios en la glucosa y el lactato hipocampal tras la administración de insulina. Obsérvese que estos cambios se observan sin ninguna prueba conductual, y por lo tanto reflejan el impacto de la insulina por sí sola en condiciones basales.Al realizar este procedimiento, es muy importante mantener la calma. Las ratas pueden percibir el estrés del experimentador y se volverán agitadas, lo que puede dificultar mucho el procedimiento y probablemente confundir sus resultados. Esta combinación de técnicas ha permitido una investigación neuroquímica precisa de los procesos conductuales.Actualmente, técnicas similares también se utilizan en pacientes humanos. Por ejemplo, pacientes con epilepsia que tienen electrodos implantados para localizar el foco de la crisis también pueden tener una cánula de microdiálisis implantada para permitir mediciones metabólicas.

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