Name: Las mitocondrias asociadas ER membranas (MAM) y glicoesfingolípidos microdominios enriquecidos (GEMS): Aislamiento de cerebro de ratón (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-03-04T12:15:00.000+00:00
Duration: 10 min 32 s
Description: Aprende a aislar membranas ER asociadas a mitocondrias (MAM) y microdominios enriquecidos en glicoesfingolípidos (GEMS) de cerebro de ratón mediante disecación, homogenización y centrifugación en gradiente de sacarosa.

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Reconocemos la contribución de Renata Sano en la concepción del protocolo inicial. Ad&#39;A. contiene los joyeros de la Infancia (JFC) Cátedra de Genética y Terapia Génica. Este trabajo fue financiado en parte por el NIH subvenciones GM60905, DK52025 y CA021764, y los americanos libaneses Caridades sirios asociados (ALSAC).

<html> El siguiente protocolo está diseñado para el aislamiento y purificación de MAM y gemas de cerebro de ratón Soluciones necesario para el aislamiento de las mitocondrias, MAM y gemas Fraccionamiento de obtener preparación mitocondrial crudo: Solución A: 0,32 M sacarosa, 1 mM NaHCO 3, 1 mM MgCl 2, 0,5 mM CaCl 2 + Inhibidores de la proteasa (añada fresca, según sea necesario) Solución B: 0,32 M de sacarosa, 1 mM NaHCO 3 + Inhibidores de la Proteasa (agregar fresco, según sea necesario) MAM aislamiento: Medio de aislamiento: 250 mM de manitol, 5 mM de HEPES, pH 7,4, 0,5 mM EGTA, 0,1% BSA Tampón de gradiente: 225 mM de manitol, 25 mM de HEPES, pH 7,5, 1 mM EGTA, 0,1% BSA (concentración final) GEMs aislamiento: contenido &quot;&gt; GEM tampón de extracción: 25 mM HEPES pH 7,5, 0,15 M NaCl, 1% de Triton X-100 + Inhibidores de la Proteasa (agregar fresco, según sea necesario) GEM solubilizantes Tampón: 50 mM Tris-HCl, pH 8,8, 5 mM EDTA, 1% SDS + inhibidores de proteasa (agregar fresco, según sea necesario). 1. Fraccionamiento subcelular Primer Paso: Las células de eliminación de los núcleos, no lisadas y restos celulares <ol><li> Eutanasiar ratón en la cámara de CO 2. </li><li> Retire inmediatamente cerebro, reducir a la mitad, colocar en tubos de 2 ml en hielo y pesar. </li></ol> Nota: Mantenga mitades del cerebro separado a lo largo de todo el procedimiento. Lo siguiente se aplica para el tratamiento de un medio único cerebro. <ol start="3"><li> Place cerebro medio en un pre-refrigerados 2 molino de vidrio tejido Dounce ml que contiene 1 ml de solución fría A. Homogeneizar con 15 golpes de una mano de mortero total de espacio libre grande. </li><li> Transferir a un tubo Falcon de 15 ml, en hielo, y se diluyehomogeneizado hasta 10 volúmenes p / v, por ejemplo, 0,225 g a 2,25 ml. </li><li> Centrifugar la muestra a 1.400 xg durante 10 min a 4 ° C. </li><li> Retirar con cuidado el sobrenadante y transferir a un 30 ml de fondo redondo de tubo de centrífuga de vidrio, en hielo. Asegúrese de no perturbar el sedimento. </li><li> Resuspender el precipitado en las mismas 10 volúmenes de la solución A. Homogeneizar en el mismo molino, con 3-6 golpes de una mano de mortero de espacio libre pequeño, 1 ml a la vez. </li><li> Transferir a un tubo Falcon de 15 ml y centrifugar a 710 xg durante 10 min a 4 ° C. Esto da como resultado un sedimento de núcleos y restos celulares. </li><li> Retire con cuidado el sobrenadante y la piscina con el sobrenadante guardó en el paso 1.6. </li></ol> 2. Segundo Paso: Aislamiento mitocondrias crudo <ol><li> Centrifugar los sobrenadantes a 13.800 xg durante 10 min a 4 ° C. </li><li> Transferir el sobrenadante a un tubo de centrífuga Ultra-Clear Beckman, en hielo </li><li> Resuspender el sedimento en 10 volúmenes de solución A. Homogeneizar en el mismo molino, con 3-6 golpes de una mano de mortero de espacio libre pequeño, 1 ml a la vez. </li><li> Centrifugar como el paso 2.1. </li><li> Repita los pasos 2.2-2.4. </li><li> El sedimento resultante es una fracción enriquecida mitocondrial. Reunir los sobrenadantes (citosol y ER), cubrir con parafilm y mantener en hielo. </li><li> Resuspender el precipitado con 6 golpes de una mano de mortero pequeña holgura, en 4,8 ml / g (g se refiere al peso del cerebro original) de la solución B, en un homogeneizador fresco. </li><li> Utilizando pipetas Pasteur de vidrio, preparar un gradiente discontinuo de sacarosa en un tubo de centrífuga Beckman Ultra-Clear, añadiendo posteriormente a la parte inferior del tubo de la siguiente manera, cuidadosamente, asegurándose de que no se forman burbujas: Resupended Pellet (0,32 M de sacarosa) 3 ml 850 mM de sacarosa (en 1 mM NaHCO 3) 3 ml 1 M de sucrosa (en 1 mM NaHCO 3) 3 ml 1,2 M de sucrosa (en 1 mM NaHCO3) </li><li> Centrifugar a 82.500 xg durante 2 horas a 4 ° C. La separación resultante al final del gradiente se producen tres bandas y un pellet: 1) la mielina y otros contaminantes de membrana (0,32 M - 0,85 M interfaz), 2) ER, Golgi, las membranas plasmáticas (0,85 M - 1 M interfaz); 3) sinaptosomas (1 M - 1,2 M interfaz), 4) crudo mitocondrias (pellet) que se utiliza para las etapas de purificación posteriores </li></ol> 3. Aislamiento de mitocondrias asociada a la membrana ER, MAM <ol><li> Resuspender el crudo recién aisladas las mitocondrias de una mitad del cerebro, en 2 ml de medio de aislamiento que contiene recién añadidos inhibidores de la proteasa. </li><li> Preparar un gradiente de Percoll al 30% con tampón Gradient 8 ml por cada mitad del cerebro, y colocar en un tubo de centrífuga Ultra-Clear Beckman. </li></ol> * Nota: Asegúrese de tampón de gradiente más concentrado (1,43 veces) para lograr la correcta concentración final después diluting Percoll al 30%. <ol start="3"><li> Capa de suspensión mitocondrial en la parte superior del gradiente preparado lentamente para evitar las burbujas. </li><li> Centrifugar a 95.000 xg durante 30 min, 4 ° C. </li><li><ol class="lroman"><li> Retire la fracción pesada (banda inferior) primero con una pipeta Pasteur de vidrio y transferir a un tubo de vidrio de fondo redondo, fresco, en hielo. </li><li> Retire la fracción ligera (banda superior) SEGUNDA con otra pipeta Pasteur de vidrio y transferir a un tubo nuevo aparte de vidrio de fondo redondo, sobre el hielo. </li></ol></li><li> Diluir ambas fracciones recogidas en el paso 10 con 3,5 ml de medio de aislamiento y se centrifuga a 6.300 xg durante 10 min a 4 ° C. </li><li> Eliminar el sobrenadante de la fracción pesada obtenida en el paso 3,6, resuspender el precipitado con otro 10 ml de medio de aislamiento y se centrifuga de nuevo, como paso 3,6. El sedimento resultante será la fracción mitocondrial puro. </li><li> Transferir el sobrenadante a partir de la luz Fracción obtenida en el paso 3,6 a un tubo de centrífuga Ultra-Clear Beckman, en hielo. Descartar el sedimento. </li><li> Añadir medio de aislamiento suficiente para el sobrenadante obtenido en el paso 3,8 para llenar el tubo y centrifugar a 100.000 xg durante 1 h, 4 ° C. El sedimento resultante será la fracción de MAM. Con cuidado, retirar y desechar el sobrenadante. </li></ol> Nota: En este paso, es posible que también se centrifuga a 100.000 xg durante 1 hora a 4 º C, el sobrenadante guardado en el paso 2.6. El sedimento será la fracción de ER y el sobrenadante de la fracción citosólica. 4. Extracción de glicoesfingolípidos-microdominios enriquecidos, gemas <ol><li> Lyse fracciones puras mitocondrias y / o MAM en 500 l-1 ml de tampón de extracción durante 20 min en hielo. </li><li> Centrifugar lisados ​​a 15.300 xg durante 2 min a 4 ° C. </li><li> Recoger los sobrenadantes (Triton X-100 material soluble) y pellets de centrífuga de re-durante 2 minutos para retirar los restos de material soluble. (Triton X-100 extrae mitocondrias y / o Triton X-100 MAM extraídos). </li><li> Solubilizar gránulos en la solubilización de Estabilización. Este material solubilizado representa las fracciones de GEM y se puede utilizar para el análisis adicional. </li></ol>

<ol><li>Poburko, D., Kuo, K. H., Dai, J., Lee, C. H., van Breemen, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organellar+junctions+promote+targeted+Ca2%2B+signaling+in+smooth+muscle%3A+why+two+membranes+are+better+than+one%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Pharmacol.+Sci%22%5BJournal%5D)">Organellar junctions promote targeted Ca2+ signaling in smooth muscle: why two membranes are better than one.</a> Trends Pharmacol. Sci. 25 (1), 8-15 (2004).</li>
<li>Pani, B., Ong, H. L., Liu, X., Rauser, K., Ambudkar, I. S., Singh, B. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lipid+rafts+determine+clustering+of+STIM1+in+endoplasmic+reticulum-plasma+membrane+junctions+and+regulation+of+store-operated+Ca2%2B+entry+%28SOCE%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Lipid rafts determine clustering of STIM1 in endoplasmic reticulum-plasma membrane junctions and regulation of store-operated Ca2+ entry (SOCE.</a> J. Biol. Chem. 283 (25), 17333-17340 (2008).</li>
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<li>Grimm, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+ER-mitochondria+interface%3A+the+social+network+of+cell+death%5BTitle%5D)+AND+%22Biochim.+Biophys.+Acta%22%5BJournal%5D)">The ER-mitochondria interface: the social network of cell death.</a> Biochim. Biophys. Acta. 1823 (2), 327-334 (2012).</li>
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<li>Wieckowski, M. R., Giorgi, C., Lebiedzinska, M., Duszynski, J., Pinton, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+mitochondria-associated+membranes+and+mitochondria+from+animal+tissues+and+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Isolation of mitochondria-associated membranes and mitochondria from animal tissues and cells.</a> Nat. Protoc. 4 (11), 1582-1590 (2009).</li>
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</ol>

Ninguno de los autores tiene conflicto de intereses que declarar.

Los sitios de contacto entre las membranas intracelulares o entre orgánulos y la membrana plasmática de las células dinámicas representan plataformas de señalización para los procesos celulares básicos. La caracterización exacta de su función y composición, tanto en condiciones fisiológicas como patológicas requiere protocolos de purificación fiables y reproducibles. Los métodos detallados aquí han sido específicamente optimizada por nuestro laboratorio para el aislamiento y purificación de los MAM y sus gemas correspon...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nombre del reactivo / material </td><td> Empresa </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentarios </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> REACTIVOS </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Fraccionamiento </td></tr><tr><td> Sacarosa </td><td> Fisher Scientific </td><td> S5-500 </td><td></td></tr><tr><td> Bicarbonato de Sodio </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> S-5761 </td><td></td></tr><tr><td> Cloruro de magnesio, hexahidratado </td><td> Fisher Scientific </td><td> BP214-500 </td><td></td></tr><tr><td> Cloruro de calcio, dihidrato </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> C-5080 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> MAM </td></tr><tr><td> D-Manitol </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> M9546-250G </td><td></td></tr><tr><td> Hepes </td><td> Fisher Scientific </td><td> BP310-500 </td><td></td></tr><tr><td> EGTA </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> E4378-250G </td><td></td></tr><tr><td> BSA, fracción V, choque térmico, liofilizado </td><td> Roche </td><td> 03-116-964-001 </td><td></td></tr><tr><td> Percoll </td><td> GE </td><td> 17-0891-02 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> GEM </td></tr><tr><td> Triton X-100 </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> T9284-500 ml </td><td></td></tr><tr><td> Cloruro de Sodio </td><td> Fisher Scientific </td><td> S271-3 </td><td></td></tr><tr><td> Tris Base </td><td> Roche </td><td> 03-118-142-001 </td><td></td></tr><tr><td> HCl </td><td> Fisher Scientific </td><td> A144S-500 </td><td></td></tr&gt; <tr><td> EDTA </td><td> Fisher Scientific </td><td> BP120-500 </td><td></td></tr><tr><td> Dodecil sulfato de sodio (SDS) </td><td> Fisher Scientific </td><td> BP166-500 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Común </td></tr><tr><td> Inhibidores de Proteasa Tablets, Complete EDTA libre </td><td> Roche </td><td> 11-873-580-001 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> EQUIPO </td></tr><tr><td> 2 ml Douce All-Glass Grinders tejido </td><td> Kimble Chase </td><td> 885300-0002 </td><td></td></tr><tr><td> 15 ml tubos de polipropileno cónicos de centrífuga, BD Falcon </td><td> BD </td><td> 352097 </td><td></td></tr><tr><td> 30 ml de fondo redondo de vidrio Tubos centrífuga </td><td> Kimble Chase </td><td> 45500-30 </td><td></td></tr><tr><td> 15 ml de fondo redondo de vidrio CentriTubos Fuge </td><td> Kimble Chase </td><td> 45500-15 </td><td></td></tr><tr><td> Tubos de ultracentrífuga, con claridad, espesores, mm 14x89 </td><td> Beckman-Coulter </td><td> 344059 </td><td></td></tr><tr><td> Parafilm </td><td> Cole-Parmer </td><td> PM996 </td><td></td></tr><tr><td> Disposable vidrio borosilicato Pipetas Pasteur, 9 &quot; </td><td> Fisher Scientific </td><td> 13-678-20C </td><td></td></tr></tbody></table>

las mitocondrias asociadas er membranas (mam) y glicoesfingolípidos microdominios enriquecidos (gems): aislamiento de cerebro de ratón

Mitochondria-associated ER Membranes (MAMs) and Glycosphingolipid Enriched Microdomains (GEMs): Isolation from Mouse Brain

Orgánulos intracelulares son estructuras altamente dinámicas con diferentes forma y composición, que son sometidos a células específicas de señales intrínsecas y extrínsecas. Sus membranas son a menudo yuxtapuestos en sitios de contacto definidas, que se convierten en los cubos para el intercambio de moléculas de señalización y los componentes de membrana 1,2,3,4. Los inter-organellar microdominios de membrana que se forman entre el retículo endoplasmático (ER) y la mitocondria en la apertura de la Ca IP3-2 sensible son conocidos canal + como las mitocondrias asociado-ER membranas o MAMS 4,5,6. La composición de proteína / lípido y propiedades bioquímicas de estos sitios de membrana de contacto han sido ampliamente estudiados en particular en relación con su papel en la regulación intracelular de Ca 2 + 4,5,6. El ER sirve como el almacén principal de la concentración de Ca 2 +, y en esta capacidad regula una gran variedad de procesos celulares aguas abajo de Ca 2 + señalización, including post-traduccional plegamiento de la proteína y proteína maturation7. Las mitocondrias, por otra parte, mantener la homeostasis del Ca 2 +, por la precarga de concentración citosólica de Ca 2 + evitando de este modo la iniciación de las vías de apoptosis aguas abajo de Ca 2 + desequilibrio 4,8. La naturaleza dinámica de los mames hace sitios ideales para diseccionar los mecanismos básicos celulares, incluyendo Ca 2 + señalización y regulación mitocondrial de Ca 2 + concentración supervivencia, la biosíntesis de lípidos y el transporte, la energía y el metabolismo celular 4,9,10,11,12. Varios protocolos se han descrito para la purificación de estos microdominios de tejido hepático y células cultivadas 13,14. Tomando los métodos publicados anteriormente en cuenta, se ha adaptado un protocolo para el aislamiento de las mitocondrias y MAM desde el cerebro de ratón adulto. Para este procedimiento se ha agregado una etapa de purificación adicional, a saber, una extracción de Triton X100, que enables el aislamiento de la glicoesfingolípido enriquecido microdominio (GEM) de la fracción de los mames. Estas preparaciones GEM comparten varios componentes de proteínas con balsas caveolas y lípidos, derivados de la membrana de plasma u otras membranas intracelulares, y se proponen para funcionar como puntos de encuentro para el agrupamiento de proteínas receptoras y para las interacciones proteína-proteína 4,15.

Basándonos en nuestra experiencia con el uso de este protocolo con seguridad puedo recomendar para el aislamiento y purificación de MAM, gemas y fracciones mitocondriales de cerebro de ratón. El procedimiento presentado es altamente reproducible y consistente. En la Figura 1 se muestra una imagen representativa de la forma pura capa de mitocondrias y MAM en un gradiente de Percoll (paso 3,4). De una banda definida, lechoso que contiene purificó mitocondrias (Mito-P) se segrega en la parte inferior del t...

Este procedimiento muestra cómo aislar del cerebro del ratón adulto las membranas de las mitocondrias ER-asociados o mams y los glucoesfingolípidos fracciones enriquecidas microdominio de MAM y preparaciones mitocondriales.

Las mitocondrias asociadas ER membranas (MAM) y glicoesfingolípidos microdominios enriquecidos (GEMS): Aislamiento de cerebro de ratón

Intracellular organelles are highly dynamic structures with varying shape and composition, which are subjected to cell-specific intrinsic and extrinsic ...

El objetivo general de este procedimiento es aislar la mitocondria, la membrana del retículo endoplásmico, microdominios o MAMs (por sus siglas en inglés) del cerebro de ratón. Los MAMs purificados se extraen posteriormente para obtener fracciones de microdominios enriquecidas en lípidos con glicofinger o gems. Esto se logra primero mediante la disección del cerebro de ratón, el cual luego se homogeniza en un tampón específico utilizando un homogenizador Dounce. El homogenado resultante se centrifuga a baja velocidad para eliminar núcleos, células intactas y restos celulares.El segundo paso consiste en preparar una fracción mitocondrial cruda. Mediante una ulterior centrifugación del sobrenadante, el sedimento resultante se resuspende y se separa adicionalmente utilizando un gradiente discontinuo de sacarosa. A continuación, la fracción mitocondrial cruda se aplica a un gradiente peral.Tras la centrifugación y varios pasos de lavado, se obtienen la fracción mitocondrial pura y las MAM. El paso final consiste en tratar las MAM con una solución que contiene TRITON X-100 para extraer la fracción de microdominio enriquecida en lípidos tipo glicodedo. Finalmente, la pureza de las fracci

mitochondria-associated-er-membranes-mams-glycosphingolipid-enriched

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La visualización y el análisis mitocondrial del tejido cerebral de mamíferos es una tarea desafiante. Aquí, describimos cómo el análisis de reconstrucción tridimensional (3D) de la microscopía electrónica de barrido de cara de bloque en serie (SBFSEM) se puede utilizar para obtener información sobre el análisis morfológico y volumétrico de este orgánulo generador de energía crítico.

Análisis del Cerebro Las mitocondrias Usando serie Bloque-Cara Microscopía Electrónica de Barrido

A continuación, describimos un procedimiento para visualizar y cuantificar con alta sensibilidad las interacciones endógenas entre el retículo endoplasmático y las mitocondrias en las células fijadas. El protocolo cuenta con una optimizada en el ensayo de ligamiento por proximidad situ la orientación del inositol receptor / proteína 1,4,5-trifosfato regulada por glucosa 75 / D compleja canal de aniones / ciclofilina dependiente de la tensión en la interfase membrana de la mitocondria asociada.

Estudio del retículo endoplasmático y las mitocondrias por Interacciones<em&gt; In Situ</em&gt; Proximidad ligadura de ensayo en células fijadas

Aquí, presentamos un protocolo para el aislamiento de entero, intacto el ratón glándulas mamarias para investigar la expresión de matriz extracelular (ECM) y morfología ductal. Las glándulas abdominales de ratón #4 se extrajeron de ratones femeninos nulíparas del 8-10 semanas de edad fijado en formalina tamponada neutra, seccionadas y teñido mediante inmunohistoquímica para las proteínas de la ECM.

Aislamiento de las glándulas mamarias del ratón intacto, todo para el análisis de expresión de la matriz extracelular y la morfología de la glándula

Presentamos un protocolo para estudiar la distribución de mitocondrias y retículo endoplasmático en células enteras después de la modificación genética utilizando microscopía electrónica correlativa de luz y volumen incluyendo ascorbato peroxidasa 2 y tinción de peroxidasa de rábano picante, seccionamiento en serie de células con y sin el gen objetivo en la misma sección, y la toma de imágenes en serie a través de microscopía electrónica.

Mitocondrias y endoplasmática retícula imagen por microscopía electrónica de luz y volumen correlativa

Proporcionamos un protocolo para el aislamiento de la microglia de diferentes regiones diseccionadas de un hemisferio cerebral de ratón adulto, seguido de la preparación de la biblioteca semiautomática para la secuenciación profunda de ARN de una sola célula de transcriptomes de longitud completa. Este método ayudará a dilucidar la heterogeneidad funcional de la microglia en salud y enfermedad.

Aislamiento de microglia específica de la región del hemisferio cerebral de un ratón adulto para la secuenciación profunda del ARN de una sola célula

Describimos un protocolo detallado para la generación de organoides cerebrales derivados de células madre pluripotentes inducidas por humanos y su uso en el modelado de enfermedades mitocondriales.

Generación de organoides cerebrales humanos para el modelado de enfermedades mitocondriales

Presentamos un protocolo de dos pasos para el aislamiento de mitocondrias de alta calidad que es compatible con el descubrimiento y cuantificación de proteínas a escala de proteoma. Nuestro protocolo no requiere ingeniería genética y, por lo tanto, es adecuado para estudiar las mitocondrias de cualquier célula y tejido primario.

Aislamiento de dos pasos sin etiquetas de las mitocondrias para mejorar el descubrimiento y la cuantificación de proteínas

Aquí, describimos la medición de la tasa de transporte axonal de los estabilizadores constitutivos de las membranas del retículo endoplásmico (RE) (MAM) asociadas a las mitocondrias mediante el aumento o el mantenimiento de la generación de β-amiloide (Aβ) neurotóxica de las neuronas de la enfermedad de Alzheimer (EA) en tiempo real para que sirva como una métrica directa y cuantitativa para medir la estabilización de MAM y ayudar al desarrollo de terapias para la EA.

Análisis cuantitativo de la estabilización de la membrana del retículo endoplásmico (MAM) asociada a mitocondrias en un modelo neural de la enfermedad de Alzheimer (EA) 

Este protocolo describe una técnica para el análisis de supercomplejos respiratorios cuando solo se dispone de pequeñas cantidades de muestras.

Aislamiento de mitocondrias para el análisis de supercomplejos mitocondriales a partir de muestras de pequeños tejidos y cultivos celulares 

Se desarrolló un protocolo para la preparación de mitocondrias purificadas a partir de células microgliales, el aislamiento de proteínas mitocondriales para la liberación de N-glicanos y la detección rápida de glicanos mitocondriales subcelulares mediante ionización por electrospray de desorción láser asistida por matriz infrarroja acoplada a espectrometría de masas de analizador de masas precisa de alta resolución.

Preparación mitocondrial de la microglía para el análisis de glicanos

Aprende a aislar membranas ER asociadas a mitocondrias (MAM) y microdominios enriquecidos en glicoesfingolípidos (GEMS) de cerebro de ratón mediante disecación, homogenización y centrifugación en gradiente de sacarosa.

Las mitocondrias asociadas ER membranas (MAM) y glicoesfingolípidos microdominios enriquecidos (GEMS): Aislamiento de cerebro de ratón (Video) | JoVE Journal

Las mitocondrias asociadas ER membranas (MAM) y glicoesfingolípidos microdominios enriquecidos (GEMS): Aislamiento de cerebro de ratón

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