Name: Direct Imaging de calcio ER con Targeted-esterasa inducida colorante de carga (TED) (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-05-07T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 32 s
Description: Aprende a visualizar dinámicas de calcio en el retículo endoplásmico de células vivas mediante el método TED. Esta técnica utiliza carboxilesterasa recombinante e indicadores fluorescentes para estudiar señalización celular.

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Este trabajo ha sido apoyado por becas de la Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG) BL567/3-1 y la Friedrich-Baur-Stiftung. Nos gustaría dar las gracias a Roger Y. Tsien, Howard Hughes Medical Institute Laboratorios de la Universidad de California, San Diego por darnos Tag-RFP-T2. Nosotros afortunadamente reconocemos David Baltimore, Instituto de Tecnología de California, Pasadena, y Didier Trono, de la Universidad de Ginebra, Ginebra, por brindarnos la lentiviral plásmidos FUGW y psPAX2/pMD2.G.

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Los autores declaran que no tienen intereses financieros en competencia.

Las ventajas y desventajas del método TED se han discutido ampliamente en publicaciones recientes 34,35. En comparación con otros métodos descritos anteriormente, el TED evita el problema de la interrupción y la perfusión de las células. Por otra parte, dos aspectos deben ser enfatizado. El principio de TED para ER imágenes de calcio requiere de (1.) La expresión selectiva de una carboxilesterasa activo en el lumen del retículo endoplasmático con la ayuda de TED constructos vectoriales y (2.) La liberación ef...

Con el fin de resolver las respuestas fisiológicas del calcio ER, hemos desarrollado una nueva estrategia para mejorar la captura de tintes sensibles calcio sintéticos en la sala de emergencias. El método permite la monitorización en tiempo real, directa, sin interrupciones del libre ER calcio en presencia de calcio extracelular. Función y señalización de calcio ER Señales de calcio se encuentran en diferentes tipos de células, por ejemplo células de músculo, neuronas y células gliales y su gama de funciones de la mediación de la contracción del músculo a una participación en la transmisión sináptica en el aprendizaje y la memoria 1,2. Los cambios en la concentración de calcio libre son de alto interés científico porque el calcio está implicado en la regulación de la transcripción de genes, la proliferación celular, la excitabilidad neuronal, muerte celular y otros eventos de señalización celular 1-7. Todas estas señales de calcio celulares están funcionalmente conectados y contribuyen a intracelular de calciotienda 8-10 dinámica. Una característica común entre todas las señales de calcio es el flujo de calcio entre el espacio extracelular, el citosol y los orgánulos, principalmente la sala de emergencia y las mitocondrias. Esto hace que los cambios dinámicos en la concentración de calcio dentro de estos orgánulos, los cuales son percibidos por los diferentes componentes de señalización. En general, la concentración de calcio en los rangos de ER entre 100 a 800 mM, en el citosol de la concentración de calcio es cerca de 100 nM, y en el espacio extracelular, la concentración es de alrededor de 1-2 mM. En consecuencia, hay una fuerza motriz química alta para el flujo de calcio hacia el citosol 2,9,10. Las señales de calcio derivados del ER más comúnmente investigados dependen de la estimulación de receptores acoplados a proteína G (GPCR), que a continuación, activan la fosfolipasa C (PLC). PLC a su vez produce inositol 1,4,5-trifosfato (IP 3) 1. Tras la unión de IP3 a su receptor (IP-3 Rec., Figura 1) en el ER-membrana, los iones de calcio son liberados desde el lumen del retículo endoplasmático. Históricamente, la liberación de calcio mediada por IP 3 de la ER fue el primero - aunque indirectamente - medido en células pancreáticas acinares por Streb et al en 1983 11.. Esta publicación sugirió por primera vez una cascada de señalización que implica la acetilcolina, la fosfolipasa C, y IP 3. Esta forma de liberación de calcio se denomina generalmente la liberación de calcio inducida por 3-IP (TIIE) (Figura 1). La activación de la quinasa dependiente de fosfolipasa Cγ por receptores tirosina quinasas vincula la acción de factores de crecimiento y factores neurotróficos para ER señalización de calcio después de IP3 elevación 12. Además de TIIE, elevación de calcio puede ser mediada por la entrada de calcio ionotrópicos, por ejemplo a través de los canales de calcio dependientes de voltaje (CA V), y la posterior liberación de calcio inducida por calcio (CICR) por rianodina receptores (RyR). TIIE y el CICR están fisiológicamente vinculados a la entrada de calcio tienda que funciona (SOCE). SOCE incluye la acción de STIM (molécula interactuante estroma), que es un sensor para la liberación de calcio ER. STIM se ha demostrado que estimula la entrada de calcio extracelular a través de canales receptores de potencial transitorio (TRP) 13, Orai canales de calcio y hasta 14 canales de calcio dependientes del voltaje 15 (Figura 1). La pérdida de calcio ER es rescatado dinámicamente por la acción del retículo endoplásmico sarco-ATPasa de calcio (SERCA), que activa las bombas de calcio de nuevo en la sala de emergencias. El bloqueo de la SERCA con fármacos tales como tapsigargina presenta una pérdida continua de calcio ER para el compartimiento citosólico. Esta ER calcio &quot;fuga&quot; es causado por ER complejos de poro intramembrane tales como el complejo de proteína Sec61 16,17 (Figura 1). En 1998, Berridge publicó un modelo, la &quot;neurona dentro de un modelo de neurona&quot;, which sugiere un papel fisiológico principio de la ER en la integración de calcio neuronal 5. Este modelo considera la existencia de un sistema de membrana del RE continua que forma una &quot;imagen&quot; intracelular de la membrana plasmática neuronal 5. Este sistema de membranas eucariotas binario se afirma que es un requisito básico para la integración temporal y espacial de las señales de calcio rápidos y lentos en las neuronas. Señales de calcio que se producen ya sea concomitantemente o posteriormente en diferentes espinas o dendritas de la misma neurona se confieren al soma o núcleo a través de la sala de emergencias, en el que se resumen 5,18 de la célula. Entonces, su suma puede tener efectos sobre la excitabilidad de la neurona, la regulación de la transcripción de genes o la integración de cascadas de señalización. Por lo tanto, la sala de emergencias apoya la integración de las señales de calcio. Un requisito previo para este concepto es la continuidad de la ER en una sola célula, que ha sido reclamada por varios estudios y que se ha demostrado al menos para somato-dáreas endritic y corta distancia proyecciones axonales 19-21. Si hay continuidad ER dentro de proyecciones axonales largas es una cuestión de debate. Estrategias para medir el flujo de calcio libre sobre la membrana ER Señales de calcio se controlan con mayor frecuencia en el citosol 22,23. Por lo tanto, no puede ser distinguido fácilmente si Ca 2 + está fluyendo hacia el citosol a partir extracelular o intracelular de las tiendas 6,24. Para superar esta limitación, se han desarrollado estrategias metodológicas para la obtención de imágenes directas de calcio ER. En resumen, se utilizan las siguientes estrategias: (1) ER-dirigidos ingeniería genética de proteínas indicadores 25-27 de baja afinidad Ca 2 + indicadores basados ​​en la proteína utilizan la proteína aequorina bioluminiscente o GFP en combinación con una proteína de detección. Calcio. Estos Ca 2 + indicadores de ingeniería genética (Gecis) puedeser dirigidos a la sala de emergencia con la ayuda de un péptido señal y se mantienen activamente en el ER mediante un motivo de retención y recuperación. Común ER Ca 2 + indicadores de base en el principio de Cameleon y son el Cameleon YC4.3 26,28; Cameleon división YC7.3ER 29 y Cameleon D1 30. (2) Directo carga de colorante a base de esterasa AM-éster de baja afinidad Ca 2 + indicadores. 31,32 de los colorantes indicadores (Mag-Fura2-AM, Mag-Fluo4-AM o Fluo5N-AM)-derivados AM pasar el membranas biológicas en un estado lipofílica, calcio y minúsculas. Entonces, en el citosol, así como en la sala de emergencias, esterasas endógenas escindir el grupo de AM-éster y liberan el indicador de Ca 2 +, dejando tras de sí una cierta cantidad de colorante activo en el citosol y en la sala de emergencias. Por lo tanto, este enfoque es útil en condiciones de una alta concentración de calcio en la sala de emergencias, siempre y cuando la concentración de calcio citosólico se mantiene muy por debajo de la delímite de protección de los indicadores de baja afinidad, en particular durante las señales de calcio características (por ejemplo nM a mM bajas). (3) de carga AM-éster en combinación con permeabilización de la membrana plasmática 32. Cualquier + indicador restante citosólica de Ca 2 se elimina mediante permeabilización de la membrana de plasma con pequeñas cantidades de un detergente &quot;suave&quot; (por ejemplo, saponina) en un tampón intracelular artificial. Por lo tanto, las membranas intracelulares pueden ser estimuladas, por ejemplo, con IP 3 en el tampón intracelular, directamente a través de &quot;poros&quot; en la membrana plasmática. (4) Diálisis del citosol bajo configuración de célula y las mediciones simultáneas de Ca 2 + en el lumen del RE y el citosol 32,33. Una celda se carga por primera vez con una baja afinidad Ca 2 + indicador (por ejemplo, Mag-Fura2- AM, radiométrico, la luz ultravioleta). Después, con la ayuda de una pipeta de parche, cualquier cyt restanteCa + Indicador de baja afinidad 2 osolic se dializa fuera del citosol con un tampón que contiene un indicador de Ca 2 + de alta afinidad (por ejemplo, Fluo-3, la luz visible). Esta estrategia permite la grabación simultánea de señales derivadas citosólicas y ER. (5) Targeted-esterasa inducida colorante de carga 8,34. Un carboxilesterasa (CES) se dirige al lumen del ER y proporciona una alta actividad de esterasa para la captura eficiente de la forma de AM-éster de baja afinidad Ca 2 + indicadores. Inducida Targeted-esterasa colorante de carga (TED) Para mejorar la focalización de baja afinidad Ca 2 + indicadores a la luz del RE, TED se ha desarrollado. TED requiere la sobreexpresión de una carboxilesterasa ER dirigido ratón (CES2) (Figura 2), que se consigue a través de construcciones de expresión. Las células que expresan un CES-constructo recombinante se incuban con la forma de AM-éster de un calcio enindicador colorante (Fluo5N-AM, la Figura 2). A continuación, en la sala de emergencias, el colorante se convierte en el Ca 2 + sensibles, membrana impermeable Ca 2 + complejo indicador (Fluo5N/Ca 2 +) por la alta actividad de esterasa, por lo tanto atrapando el colorante en una alta concentración en el lumen del RE 8 , 34. El método es especialmente útil para investigar-ER liberación de calcio a través de las vías de TIIE-por ejemplo a través de metabotrópicos purinérgicos-o receptores de glutamato, 8,34 y para visualizar el agotamiento de calcio ER a través de &quot;canales de fugas&quot; directamente, por ejemplo, después del bloqueo de la SERCA 17 , 34. Para nuestra experiencia, la baja afinidad de Ca 2 + indicador Fluo5N-AM es actualmente el mejor indicador disponible para su uso con la estrategia de carga TED tinte. Fluo5N-AM tiene una baja afinidad por Ca 2 + (constante de disociación K D ~ 90 mM, Figura 2), es casi no fluorescente en su AM-forma, pero ofrece una alta emisión de fluorescencia a calciu8,34 m vinculante. El Fluo5N/Ca 2 + complejo puede ser excitado con una fuente de luz estándar de ~ 490 nm, que corresponde a los tintes estándar tales como FITC, Alexa 488, o eGFP. Señales de calcio citosólico apenas alcanzan una concentración en el rango de baja mu M y por lo tanto apenas se detectaron por Fluo5N en el citosol 35. Para mejorar el funcionamiento del TED, se han desarrollado varias construcciones de vectores recombinantes (Figura 3). Originalmente, los vectores de TED basado en la secuencia de codificación de CES2 (Refseq número de acceso NM_145603, CES2c) y mejor funcionamiento del TED se observa con expresión estable de construcciones de CES. Nuevos vectores TED expresan un elemento central de CES2 fusionado a la proteína roja fluorescente TagRFP-T2 36. Estos vectores tienen la ventaja de que pueden ser utilizados para identificar las células transducidas y para utilizar la fluorescencia roja como un control interno para la normalización de los cambios en Fluo5N/Ca 2 + fluorescencia. La fluorescencia de color rojo también ofrece la posibilidad de visualizar la distribución estructural de la sala de emergencia y los cambios en la dinámica de ER en condiciones de estimulación.

<table><tbody><tr><td>(S)-3,5-DHPG (Dihidroxifenilglicina)</td><td>Tocris</td><td>0805</td><td></td></tr><tr><td>5';-ATP-Na2, hidrato de sal disódica ATP</td><td>Sigma</td><td>A26209-1G</td><td></td></tr><tr><td>B-27 suplemento,50x</td><td>Invitrogen</td><td>17504-044</td><td></td></tr><tr><td>Cloruro de carbamoilcolina (Charbachol)</td><td>Sigma</td><td>C4382-1g</td><td></td></tr><tr><td>Ácido ciclopiazónico (CPA)</td><td>Ascent scientific</td><td>Asc-300</td><td></td></tr><tr><td>Dimetilsulfóxido (DMSO)</td><td>Sigma</td><td>D2650</td><td></td></tr><tr><td>DMEM con Glutamax</td><td>Invitrogen-Gibco</td><td>31966-047</td><td></td></tr><tr><td>PBS de Dulbecco sin Ca/Mg 1x</td><td>PAA</td><td>H15-002</td><td></td></tr><tr><td>Suero fetal para terneros</td><td>Invitrogen-Gibco</td><td>10270-106</td><td></td></tr><tr><td>Fluo-5N-AM, 10 x 50 &mu; g</td><td>Invitrogen</td><td>F14204</td><td></td></tr><tr><td>Glutamato</td><td>Ascent scientific</td><td>Asc-049</td><td></td></tr><tr><td>Glutamax</td><td>Invitrogen</td><td>35050-038</td><td></td></tr><tr><td>Mezcla de nutrientes Ham's F12</td><td>Invitrogen-Gibco</td><td>21765-029</td><td></td></tr><tr><td>Hank's BSS(1x) sin Ca, sin Mg, con Rojo de Fenol, HBSS</td><td>Laboratorios PAA</td><td>H15-010</td><td></td></tr><tr><td>Suero de caballo</td><td>SHD3250YK</td><td>Linearis</td><td></td></tr><tr><td>Ionomicina Ca2+ sal</td><td>Ascent scientific</td><td>Asc-116</td><td></td></tr><tr><td>murino EGF </td><td>PreproTech</td><td>315-09</td><td></td></tr><tr><td>N2 suplemento 100x</td><td>Invitrogen</td><td>17502-048</td><td></td></tr><tr><td>Medio neurobasal</td><td>Invitrogen-Gibco</td><td>21103-049</td><td></td></tr><tr><td>Pluronic F127, baja absorbancia UV,2g</td><td>Invitrogen</td><td>P6867</td><td></td></tr><tr><td>Hidrobromuro de poli-DL-ornitina PORN</td><td>Sigma</td><td>P8638</td><td></td></tr><tr><td>Hidrobromuro de poli-D-lisina</td><td>Sigma</td><td>P7280</td><td></td></tr><tr><td>Poly-L-lisina</td><td>Sigma</td><td>P2636</td><td></td></tr><tr><td>Thapsigargin</td><td>Calbiochem</td><td>586005-1mg</td><td></td></tr><tr><td>TryLE Express</td><td>Invitrogen</td><td>12605-028</td><td></td></tr><tr><td>Tripsina</td><td>Worthington</td><td>LS-003707</td><td></td></tr><tr><td>Inhibidor de tripsina de glicina MAX (soja)</td><td>Sigma</td><td>T6522</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Materials</td></tr><tr><td>Confocal system: microscopio de barrido láser invertido: FV1000 con IX81</td><td>Olympus</td><td></td><td>configuración específica para el usuario</td></tr><tr><td>Sistema confocal: combinador láser FV10 y láseres de diodo (405, 473, 559, 635)</td><td>Olympus</td><td></td><td>configuración específica del usuario</td></tr><tr><td>Sistema confocal: cabezal de escaneo FV10-SPD con detector espectral</td><td>Configuración específica del usuario de</td><td>Olympus</td><td></td></tr><tr><td>Controlador de calefacción TC-344B</td><td>Warner Instruments</td><td>64-0101</td><td>para controlar el calentador de solución en línea</td></tr><tr><td>Software</td> <td>NIH ImageJWS Rasband, ImageJ, Institutos Nacionales de Salud de EE. UU., <a href="http://rsb.info.nih.gov/ij/" target="_blank">http://rsb.info.nih.gov/ij/</a>, 1997--2006</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Objetivo: UAPON20XW340 NA 0,7 WD 0,35</td><td>Olympus</td><td>N2709100</td><td></td></tr><tr><td>Objetivo: UPLFLN40XO</td><td>Olympus</td><td>N1478700</td><td></td></tr><tr><td>Objetivo: UPLSAPO60XO/1.35, WD=0.15</td><td>Olympus</td><td>N1480700</td><td></td></tr><tr><td>Cámara de perfusión, inversa</td><td>hecha</td><td></td><td></td>a medida</tr><tr><td>Cámara de perfusión, RC-49FS</td><td>Warner Instruments</td><td>W4 64-1709</td><td></td></tr><tr><td>Tubo de perfusión: PT-49</td><td>Warner Instruments</td><td>64-1730</td><td>para perfusión</td></tr><tr><td>Bomba peristáltica MiniPlus 3 (4 canales)</td><td>Gilson</td><td>n.a.bomba</td> de <td>perfusión</td></tr><tr><td>Calentador de solución en línea simple SH-27B</td><td>Warner Instruments</td><td>64-0102</td><td>controlado por el controlador del calentador</td></tr><tr><td>Tubos de aspiración: ST3R</td><td>Warner Instruments</td><td>64-1407</td><td>para perfusión</td></tr><tr><td>Inserto calefactor: Tempocontrol 37-2 digital 2 canales</td><td>Pecon</td><td>n.a.</td><td></td></tr></tbody></table>

direct imaging de calcio er con targeted-esterasa inducida colorante de carga (ted)

Direct Imaging of ER Calcium with Targeted-Esterase Induced Dye Loading (TED)

Visualización de la dinámica de calcio es importante para entender el papel del calcio en la fisiología celular. Para examinar la dinámica del calcio, fluorescentes Ca 2 + indicadores sintéticos se han vuelto populares. Aquí demostramos TED (= carga de colorante inducida dirigido-esterasa), un método para mejorar la liberación de Ca 2 + colorantes indicadores en el lumen del retículo endoplasmático de diferentes tipos de células. Hasta la fecha, el TED se utilizó en líneas celulares, células gliales y neuronas in vitro. Bases TED en eficiencia, recombinante orientación de una actividad de alto carboxilesterasa al lumen ER usando vectores construcciones que carboxilesterasas expresos (CES). Los últimos vectores TED contienen un elemento central de CES2 fusionado a una proteína fluorescente de color rojo, lo que permite simultánea de imágenes de dos colores. La dinámica de calcio libre en el ER se obtuvieron imágenes en un solo color, mientras que la estructura ER correspondiente aparece en rojo. Al comienzo del procedimiento, las células son transducidas con un lentivirus. Posteriormente, las células infectadas unare sembraron en cubreobjetos para finalmente permitir imágenes de células vivas. Entonces, las células vivas se incuban con el éster de acetoximetilo (AM-éster) de forma de baja afinidad Ca 2 + indicadores, por ejemplo Fluo5N-AM, Mag-Fluo4-AM, o Mag-Fura2-AM. La actividad esterasa en los unirá ER frente cadenas laterales hidrófobas de la forma de AM de la Ca 2 + indicador y un colorante fluorescente / Ca 2 + complejo hidrófilo se forma y atrapado en el lumen del RE. Después de colorante de carga, las células se analizaron en un microscopio de barrido láser confocal invertido. Las células se sometieron a perfusión continua con soluciones de Ringer-como y la dinámica del calcio ER son directamente visualizada por time-lapse. La liberación de calcio desde el RE se identifica por una disminución en la intensidad de fluorescencia en las regiones de interés, mientras que la recarga de la tienda de calcio ER produce un aumento en la intensidad de fluorescencia. Por último, el cambio en la intensidad de fluorescencia con el tiempo se determina mediante el cálculo de Delta F / F 0.

Este protocolo proporciona un enfoque no-perjudicial para la imagen directa de la libre ER calcio. De baja afinidad sintética Ca 2 + indicadores son liberados y atrapados en el lumen del RE con la ayuda de un ER específica, actividad de la enzima esterasa recombinante. Mejora de la carga de la Ca 2 + indicador tintes para el ER lumen permite una imagen directa y rápida de la dinámica de la tienda calcio ER. Tipos de células de TED La viabilidad...

Targeted-esterasa inducida colorante de carga (TED) es compatible con el análisis de la dinámica del almacén de calcio intracelular por imágenes de fluorescencia. El método basa en la orientación de un carboxilesterasa recombinante para el retículo endoplásmico (ER), donde mejora el desenmascaramiento local del sintético de baja afinidad Ca<sup&gt; 2 +</sup&gt; Tintes indicadores en el lumen del RE.

Direct Imaging de calcio ER con Targeted-esterasa inducida colorante de carga (TED)

Visualization of calcium dynamics is important to understand the role of calcium in cell physiology. To examine calcium dynamics, synthetic fluorescent ...

El objetivo general del siguiente experimento es visualizar directamente la dinámica del calcio en el lumen del retículo endoplasmático de células vivas. Esto se logra transduciendo las células con el vector constructo de colorante inducido por esterasa dirigido o TED para sobreexpresar la carboxiesterasa CS2 en el retículo endoplasmático. A continuación, las células se incuban con el indicador de calcio aceto metil éster flu oh cinco NA, que difunde a través de las membranas plasmática y del RE.Luego, la carboxil esterasa escinde el grupo éster, liberando el indicador sensible al calcio en la luz del retículo endoplasmático. Se forman complejos fluorescentes de calcio.Se obtienen resultados que muestran cambios en la concentración de calcio libre en el retículo endoplasmático basados en imágenes de células vivas. Este método puede ayudar a responder preguntas clave sobre la regulación de la homeostasis celular del calcio. Las señales de calcio se monitorean con mayor frecuencia en el citosol, por lo tanto, no se puede distinguir fácilmente si el calcio que fluye hacia el citosol proviene del espacio extracelular o del almacén intracelular de calcio en el retículo endoplasmático.Pa

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JoVE Journal

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Biología

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Direct Imaging de calcio ER con Targeted-esterasa inducida colorante de carga (TED)

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