Name: Aislamiento de células endoteliales embrionarias ventriculares (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-07-20T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 5 s
Description: Aprenda a aislar células endoteliales ventriculares embrionarias de ratones transgénicos mediante dissección, tratamiento con colágeno y separación magnética con anticuerpos. Este método permite estudiar el desarrollo cardiovascular.

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Nos gustaría dar las gracias a Andrea Portbury para la lectura crítica del manuscrito, el Laboratorio de Servicio de microscopio de UNC para obtener ayuda con el time-lapse y el NIH (subvención # R01HL061656) de apoyo financiero.

1. Prepare los granos de anticuerpos conjugados <ol><li> Un día antes de la disección, se combinan el anticuerpo de elección con los Dynabeads apropiadas (por ejemplo, rata Dynabeads IgG para un anticuerpo producido en la rata, 4 x 10 8 cuentas / ml) según las instrucciones del fabricante. Para la rata anti-CD31 anticuerpo BD (0,5 g / l, que se utiliza para aislar las células endoteliales), se añadió 3 l de anticuerpo por cada 25 l perlas, para una concentración final de 1,5 mg anticuerpo anti-CD31 y 1 x 10 7 / perlas 25 l de tampón. </li><li> Incubar los granos y de anticuerpos durante la noche a 4 ° C. </li></ol> 2. Preparación de la placa de colágeno <ol><li> Células aisladas forman túbulos más rápidamente cuando se cultivan en un gel de colágeno en comparación con simplemente una placa recubierta con colágeno. Por lo tanto, los geles de colágeno se hizo la noche antes de la disección, como se describe en 6. En el hielo en una campana de cultivo de tejidos, se combinan los siguientes reactivos (suficiente para 19 pozos): 206,4 l estéril H &lt;sub&gt; 2 S, 140,4 l de colágeno tipo I (4,08 mg / ml), 38,4 l 10x M199, y 1,15 l de NaOH 5 M. </li><li> Pipetear 20 l de este gel de colágeno en los pocillos de una placa de cultivo de tejidos de 384 pocillos. Colocar la placa en un 37 ° C incubadora de cultivo de tejido durante 30 min. </li><li> Añadir 80 l de DMEM a cada pocillo e incubar durante 15 min a 37 ° C. Retire el medio de cultivo y repetir dos veces más. </li><li> Después del enjuague final, añadir 80 l 10% de FBS / DMEM a cada pocillo e incubar durante la noche a 37 ° C. Retirar el medio de cultivo antes de la adición de las células aisladas. </li></ol> 3. Impuestos y digerir el Corazón <ol><li> La eutanasia a un ratón de disolución-embarazada en el día embrionario deseado usando una técnica de eutanasia aprobada. Todos los experimentos fueron aprobados por el Cuidado de Animales institucional y el empleo Comisión de la Universidad de Carolina del Norte en Chapel Hill. </li><li> Con el ratón en una posición supina, liberalmente rociar el lado ventral de la hembra con etanol al 70% antes de ladisección. Con unas pinzas para levantar la piel del abdomen inferior y el músculo fuera de los órganos internos, a cielo abierto la cavidad abdominal de la hembra para visualizar los órganos internos. </li><li> Sosteniendo el cuello uterino con una pinza, corta cuidadosamente caudal a los fórceps y comenzar el levantamiento de la trompa uterina de la cavidad abdominal. Mientras levanta el cuerno uterino, cortar cualquier tejido conectivo que sostiene el cuerno en su lugar. Para terminar de extirpar el cuerno uterino, corte la unión del cuello uterino con el oviducto para liberar el cuerno uterino. </li><li> Coloque el cuerno uterino en una placa de Petri que contiene frío 1x solución salina tamponada con fosfato (PBS) y enjuague según sea necesario. Cortar el cuello uterino a través de la línea media para exponer los sacos embrionarios adjuntos. </li><li> Cortar un saco embrionario en la unión de la placenta y el embrión para evitar que accidentalmente cortar el embrión y recuperar un embrión. Coloque el embrión en una segunda placa de Petri con PBS frío. Devuelva la placa de Petri con el cuerno uterino en hielo. </li><li> Decapitate el embrión para mejorar el acceso a la pared torácica. Si genotipado es necesario, cortar la cola a quitar y guardar en un tubo Eppendorf se coloca en hielo. </li><li> Con el embrión en su parte posterior, cortar y abrir la pared torácica para visualizar el corazón y los pulmones. Para evitar que se corte el corazón, hacer un corte vertical a lo largo del lado de la caja torácica, cerca de una extremidad anterior, seguido de un corte horizontal a través de la parte inferior de las costillas y, a continuación, tire suavemente de la pared del pecho hacia arriba y fuera del camino. Up hasta aproximadamente el día embrionario 13.5, la pared torácica es transparente, ayudando en la visualización. </li><li> Levante con cuidado el corazón con las pinzas y cortar los vasos a continuación. Luego, corte por encima de los grandes vasos para liberar el corazón. Si los vasos pulmonares no se cortan, los pulmones se pueden eliminar con el corazón. Por lo tanto, eliminar los tejidos extraños, como los pulmones, si es necesario. </li><li> Separar y desechar los vasos aurículas y grande de los ventrículos. Con unas tijeras, picar los ventrículos en trozos pequeños (aproximadamente 1 mm 3 &lt;/ Sup&gt;) y el lugar en aproximadamente 500 l de colagenasa (1 mg / ml en PBS estéril). Mantener las muestras en hielo hasta que los ventrículos se han picado y se coloca en la colagenasa. </li><li> Repetir los pasos anteriores hasta que los ventrículos se han extirpado de todos los embriones, la recogida de cada corazón en un tubo Eppendorf separado. Si todos los embriones tienen el mismo genotipo, corazones puedan ser agrupados en un solo tubo Eppendorf. El número de muestras procesadas en un solo tiempo puede ser limitado con base en el imán utilizado para el aislamiento, la dynamag (123-21D) que se utiliza aquí tiene un máximo de 16 tubos Eppendorf. </li><li> Coloque los ventrículos picada a 37 ° C con agitación durante 45 min. Cada 15 minutos, retire suavemente las muestras y la pipeta hacia arriba y abajo para disociar mecánicamente las células. </li></ol> 4. Aislamiento de las células endoteliales <ol><li> Pasar la solución ventrículo-colagenasa a través de un filtro de 70 micras para eliminar grupos restantes de las células. </li><li> Centrifugar las células a 400 xg durante 10 min. Descartarel sobrenadante, reemplace con aproximadamente 200 l FBS al 10% en DMEM, y la pipeta hacia arriba y abajo para disociar las células. </li><li> Repita el paso anterior una vez. Centrifugar las células a 400 xg durante 10 min después de la segunda 10% de FBS / DMEM lavado. Resuspender las células en 50 l 10% de FBS / DMEM. </li><li> Durante el paso final de la centrifugación, preparar las perlas. <ol><li> Colocar el tubo Eppendorf que contiene el anticuerpo y perlas en un imán durante 1 min. </li><li> Con el tubo en su lugar en el imán, eliminar el sobrenadante. Retire el tubo del imán y añadir aproximadamente 100 l 10% FBS / DMEM. </li><li> Colocar el tubo en el imán durante 1 min. Eliminar el sobrenadante, y se lava de nuevo con 10% de FBS / DMEM. Repita para un total de 3 lavados. </li><li> Después del último lavado, resuspender las perlas de anticuerpo-conjugados en 10% de FBS / DMEM (5 l por muestra). </li></ol></li><li> Para cada muestra de células, añadir 5 l de las perlas de anticuerpo-conjugados. Coloque las suspensiones del grano de células a 4 º C con balanceo FOr 30 min. </li><li> En una campana de flujo laminar, colocar los tubos Eppendorf que contienen las células y los granos de anticuerpos conjugados en el imán durante 1 min. Eliminar el sobrenadante, retirar los tubos del imán, y se lava con aproximadamente 100 l 10% FBS / DMEM. Repita por 5 lavados. </li><li> Después del último lavado, se colocan los tubos en el imán durante 1 min, eliminar el sobrenadante, y quitar los tubos del imán. Añadir aproximadamente 100 l de DMEM. </li><li> Colocar los tubos en el imán durante 1 min, eliminar el sobrenadante, y quitar los tubos del imán. Añadir 100-200 l precalentado 0,25% de tripsina-EDTA. Incubar las muestras a 37 ° C y CO2 al 5% durante 5 min. </li><li> Colocar los tubos en el imán durante 2 min. Transferir con cuidado el sobrenadante que contiene células a tubos Eppendorf frescos. Centrifugar durante 5 min a 400 x g. </li><li> Eliminar el sobrenadante. Resuspender las células en 80-100 l de medio de crecimiento y la placa en un 96 - o 384 pocillos placa de cultivo tratadas, dependiendo del rendimiento esperado(Aproximadamente 450-600 células de los ventrículos de embriones E14.5-E16.5). Para las células endoteliales, utilizar medio de cultivo de crecimiento endotelial (definido a continuación). </li></ol>

<ol><li>Landecker, H. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLandecker%2C+H+%22Culturing+Life%3A+How+Cells+Became+Technologies%22">Culturing Life: How Cells Became Technologies</a>. , Presidents and Fellows of Harvard College. (2007).</li>
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</ol>

Los autores declaran que no tienen intereses financieros en competencia.

La investigación con células embrionarias primarias permite experimentos novedosos para abordar en etapas críticas del desarrollo in vitro. Sin embargo, el procedimiento de aislamiento no es trivial. Los pasos críticos para el aislamiento de cualquier tipo de células incluyen asegurar que las células están bien separados tras la digestión de colagenasa y luego de que están bien suspendidos durante los pasos de lavado. Disección mecánica mediante pipeteo en gran medida ayuda a separar las células durant...

La llegada de las líneas celulares inmortalizadas ha revolucionado la biología celular básica 1. Las líneas celulares disponibles en la actualidad son derivados de una amplia gama de órganos y abarcan todos los tipos de células principales. Sin embargo, las líneas celulares establecidas tienen algunas limitaciones. El proceso de inmortalización, obviamente, cambia el comportamiento de las células, específicamente con respecto a la duración de la vida y la proliferación, sino que también puede afectar a la expresión de las proteínas inesperados, tales como las proteínas del citoesqueleto 2. Además, aunque muchos diferentes líneas celulares están disponibles, existe una diversidad significativa entre incluso un solo tipo de células dentro de un organismo entero. Las células endoteliales, en particular, muestran diversos comportamientos en función de si se alinean las arterias o las venas y el tipo de flujo está presente en el recipiente 3. Incluso más apremiante de una perspectiva de desarrollo, sin embargo, es que la gran mayoría de las líneas celulares disponibles se derivan de tejido adulto (ver, por ejemplo, tque de recogida disponible a través de ATCC). Estas líneas de células adultas probablemente no recapitulan la naturaleza dinámica de sus precursores embrionarios. El rápido cambio espacio-temporales patrones de expresión génica observados durante el desarrollo también sugieren que una célula endotelial de un órgano a la etapa de desarrollo determinado puede no comportarse de la misma manera que una célula endotelial a partir de ese mismo órgano en una etapa de desarrollo diferente. Como una alternativa al uso de líneas celulares inmortalizadas disponibles comercialmente, las células primarias pueden ser aislados a partir del tejido específico de interés. Entre las ventajas de esta técnica, estas células primarias se pueden aislar a partir de un órgano específico o incluso parte de un órgano en cualquier etapa de desarrollo específico. Además, estas células primarias se pueden aislar a partir de la amplia variedad de animales transgénicos disponibles, lo que permite el estudio in vitro del gen knockout y knock-in evitando al mismo tiempo otros problemas tales como la eficiencia de transfección en. No es sorprendente que muchostécnicas se han publicado que detalla cómo aislar determinados tipos de células 4,5. En general, estas técnicas implican la recogida de la región de interés, disociar las células de marcado, el tipo específico de célula de interés, y el aislamiento de las células para su posterior análisis. Para estudiar una población embrionario temprano de las células endoteliales coronarias, que en escala una técnica publicada previamente 4 para su uso con un órgano más pequeño. Con este procedimiento a escala reducida, podemos aislar las células endoteliales coronarias del corazón embrionario en las etapas embrionarias específicas. Estas células pueden entonces ser usados ​​en ensayos de endoteliales tradicionales, tales como los análisis de migración. Hasta que las líneas de células embrionarias tempranas cada vez más frecuentes, en colaboración con las pilas es una técnica muy valiosa.

<table><tbody><tr><td colspan="4"><fuertes>REACTIVOS</fuertes></td></tr><tr><td>Ratones</td><td></td><td></td> con preñez cronometrada <td>Para ser diseccionados en la etapa embrionaria de interés</td></tr><tr><td>Anti-ratón CD31</td><td>BD Bioscience</td><td>553370</td><td></td></tr><tr><td>Rata IgG Dynabeads</td><td>Invitrogen</td><td>110-35</td><td></td></tr><tr><td>Colágeno</td><td>BD Bioscience</td><td>354236</td><td></td></tr><tr><td>PBS (1x)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Colagenasa, tipo I</td><td>Worthington Biochemical</td><td>LS004196</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Cellgro</td><td></td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F2442</td><td></td></tr><tr><td>Medio de crecimiento de células endoteliales</td> <td>(hecho en laboratorio como se describe en las notas)</td><td></td><td>DMEM que contiene 20% FBS, 5 &mu; M &#946;-mercapt&#8211; etanol, 50 &mu; g/ml ECG, y 1x penicilina/estreptomicina</td></tr><tr><td>&#946;-mercapt&#8211; etanol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M6250</td><td></td></tr><tr><td>ECGS</td><td>Biomedical Technologies, Inc.</td><td>BT-203</td><td></td></tr><tr><td>Penicilina-estreptomicina</td><td>Gibco</td><td>15140</td><td></td></tr><tr><td>Tripsina-EDTA</td><td>Gibco</td><td>25300</td><td></td></tr><tr><td>Placa de cultivo de 384 pocillos</td><td>La placa Greiner</td><td>T-3037-6</td><td>se preparó con un gel fino de colágeno, como se describe en 6; superficie de trabajo 10 mm2</td></tr><tr><td>Colágeno tipo I</td><td>BD</td><td>354236</td><td>Uso en una final concentración de 1,5 mg/ml</td></tr><tr><td>M199, 10x</td><td>Invitrogen</td><td>11825-015</td><td></td></tr><tr><td>Syto-16</td><td>Invitrogen</td><td>S7578</td><td>Utilizado según las indicaciones en 13 </td></tr><tr><td colspan="4">EQUIPMENT</td></tr><tr><td>Microscopio estereoscópico</td><td>Nikon</td><td>SMZ645</td><td></td></tr><tr><td>Incubadora de cultivo celular</td><td>Thermo</td><td>3110</td><td></td></tr><tr><td>DynaMag</td><td>Invitrogen</td><td>123-21D</td><td></td></tr><tr><td>Centrífuga de sobremesa</td><td>Thermo</td><td>75002430</td><td></td></tr></tbody></table>

aislamiento de células endoteliales embrionarias ventriculares

Isolation of Embryonic Ventricular Endothelial Cells

Cultivo celular ha mejorado en gran medida nuestra capacidad para evaluar las poblaciones individuales de las células bajo condiciones de cultivo innumerables. Mientras que las líneas celulares inmortalizadas ofrecen ventajas significativas para su facilidad de uso, estas líneas celulares no están disponibles para todos los tipos de células potenciales. Al aislar las células primarias de una región específica de interés, en particular de un ratón transgénico, se pueden realizar estudios más matizadas. La técnica básica consiste en la disección del órgano u órgano parcial de interés (por ejemplo, el corazón o de una región específica del corazón) y disociar el órgano a las células individuales. Estas células se incuban a continuación con perlas magnéticas conjugadas con un anticuerpo que reconoce el tipo de célula de interés. Las células de interés se pueden aislar con el uso de un imán, con una breve incubación con tripsina disociar las células de las perlas. Estas células aisladas pueden cultivarse a continuación, y se analizaron como se desee. Esta técnica fue diseñada originalmente para órgano ratón adultos pero se puede escalar fácilmente hacia abajo para su uso con órganos embrionarios, como se demuestra en este documento. Debido a que nuestro interés se centra en el desarrollo de la vasculatura coronaria, queríamos estudiar esta población de células durante las fases embrionarias específicas. Por lo tanto, el protocolo original tuvo que ser modificado para ser compatible con el pequeño tamaño de los ventrículos embrionarias y el bajo rendimiento potencial de las células endoteliales en estas etapas de desarrollo. Utilizando este enfoque a escala reducida, hemos evaluado la remodelación del plexo coronaria en las células endoteliales ventriculares embrionarias transgénicas.

Uso de un anticuerpo endotelial-específico que reconoce CD31, las células endoteliales se aislaron de los ventrículos del embrionarias (E) 13,5 (Figura 1A) y 18.5 (Figuras 1B-1D) embriones. Cuando se cultiva en una placa de cultivo sin tratar, estas células siguen siendo redondeadas y formarían un patrón de adoquines si confluente cerca (Figura 1A). Diluir colágeno también se ha utilizado para recubrir los pozos, y mientras que las células endoteliales se adherirá a la ...

Cultivo celular primaria es una técnica útil para el análisis de poblaciones específicas de células, en particular a partir de embriones de ratones transgénicos en etapas de desarrollo específicas. En esto, los ventrículos embrionarias se disecan y se disociaron, y los granos de anticuerpos conjugados reconocen y se separan las células endoteliales para su posterior análisis.

Aislamiento de células endoteliales embrionarias ventriculares

Cell culture has greatly enhanced our ability to assess individual populations of cells under myriad culture conditions. While immortalized cell lines ...

El objetivo general de este procedimiento es aislar células endoteliales ventriculares embrionarias. Esto se logra primero recuperando un embrión para su disección. A continuación, se extrae el corazón.Se elimina el atrio y los ventrículos picados se transfieren a una solución de colágeno. Luego, la suspensión de células individuales se incuba con un anticuerpo que reconoce las células endoteliales. Finalmente, se utiliza un imán para aislar las células endoteliales unidas al anticuerpo.Finalmente, se pueden obtener resultados que muestren la formación de cadenas endoteliales mediante microscopía de campo brillante. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo del desarrollo cardiovascular, como qué factores promueven la migración endotelial coronaria. Aunque este método puede proporcionar información sobre el comportamiento de las células endoteliales, también puede aplicarse a otros tipos celulares, como miocitos y fibroblastos. El día anterior a la realización de la disección, trabajando en una campana de cultivo celular, combine el anticuerpo de elección con las perlas Dyna adecuadas siguiendo las instrucciones del fabricante para el anticuerpo rat anti CD 31 utilizado aquí.Se añaden tres microlitros de anticuerpo a 25 microlitros de perlas para obtener una concentración final de 1,5 microgramos en 10 a la siete perlas. Incubar las perlas con el anticuerpo durante la noche a cuatro grados Celsius para preparar geles de colágeno destinados a la rápida formación de túbulos de células aisladas en una campana de cultivo celular sobre hielo. Combinar colágeno tipo uno, agua estéril, 10 XM 1 99 e hidróxido de sodio cinco molar. Según el protocolo descrito, pipetear 20 microlitros del gel de colágeno en los pocillos de una placa de cultivo celular de 384 pocillos.Coloque la placa en un incubador de cultivo de tejidos a 37 grados Celsius durante 30 minutos. Añada 80 microlitros de DMM a cada pocillo e incube durante 15 minutos a 37 grados Celsius. Retire el medio de cultivo y repita el lavado dos veces más; tras el lavado final, añada 80 microlitros de DM con 10 % de FBS a cada pocillo e incube durante la noche a 37 grados Celsius.Después de sacrificar una rata preñada sincronizada en el día embrionario deseado, utilizando una técnica aprobada y extrayendo el cuerno uterino según el protocolo descrito en el texto, colóquelo en una placa de Petri con un XPBS y enjuáguelo. Una vez expuestos los sacos embrionarios mediante una incisión media en la unión entre la placenta y el embrión, abra un saco embrionario y recupere el embrión.Coloque el embrión en una segunda placa de Petri con PBS frío y devuelva el cuerno uterino al hielo para mejorar el acceso a la pared torácica; decapite el embrión. Y si va a realizar genotipificación, corte la cola y guárdela en un tubo sobre hielo. Con el embrión boca arriba, corte.Abra la pared torácica para visualizar el corazón y los pulmones y así evitar cortar el corazón. Realice un corte vertical a lo largo del costado de la caja torácica cerca de una extremidad, seguido de un corte horizontal a través de la parte inferior de las costillas. Luego, levante suavemente la pared torácica hacia arriba y hacia un lado hasta aproximadamente el día embrionario 13,5.La pared torácica es transparente, lo que facilita la visualización. Con pinzas, levante cuidadosamente el corazón y corte los vasos por debajo. Si se desea, transfiera el corazón a un recipiente limpio para separarlo de los pulmones y corte por encima de los grandes vasos.A continuación, separen y descarten las aurículas y los grandes vasos de los ventrículos. Luego, utilizando tijeras, piquen los ventrículos en trozos pequeños y colóquenlos en aproximadamente 500 microlitros de colagenasa sobre hielo. Extraigan y procesen los ventrículos de los embriones restantes, recogiendo cada corazón en un tubo separado.Coloque los ventrículos picados a 37 grados Celsius con agitación durante 45 minutos. Cada 15 minutos, retire suavemente las muestras y pipetee arriba y abajo para disociar mecánicamente las células. Después de la incubación, pase la solución de colagenasa de ventrículo a través de un filtro de 70 micrómetros para eliminar los restos de agregados celulares, centrifugue las células a 400 G durante 10 minutos, deseche el sobrenadante y reemplácelo con aproximadamente 200 microlitros de DMEM con 10 % de FBS; pipetee arriba y abajo para resuspender las células, centrifugue nuevamente las células y, tras un segundo lavado y centrifugación, resuspenda las células en 50 microlitros de DMEM con 10 % de FBS.A continuación, prepare las perlas colocando primero el tubo de anticuerpo y perlas sobre un imán durante un minuto y aspire el sobrenadante. Luego retire el tubo del imán y agregue aproximadamente 100 microlitros de FBS al 10% en dmm. Regrese el tubo al imán durante un minuto y luego elimine el sobrenadante.Repita el lavado un total de tres veces tras el lavado final. Reuspenda las perlas conjugadas con anticuerpo en DMM con 10 % de FBS para cada muestra celular y agregue cinco microlitros de las perlas conjugadas con anticuerpo. Incube las suspensiones de perlas y células a cuatro grados Celsius con agitación durante 30 minutos en un cabina de flujo laminar, coloque las muestras en el imán durante un minuto y aspire el sobrenadante.Retire los tubos del imán y lave con aproximadamente 100 microlitros de 10%FPS y dm. Repita un total de cinco lavados tras el lavado final. Suspenda las perlas en aproximadamente 100 microlitros de DMEM.Coloque los tubos en el imán durante un minuto. Retire el medio, luego agregue de 100 a 200 microlitros de tripsina al 0,25 % precalentada en EDTA, incube las muestras a 37 grados Celsius y 5 % de dióxido de carbono durante cinco minutos. Coloque los tubos en el imán durante dos minutos.Luego, transfiera cuidadosamente la célula que contiene el sobrenadante a tubos nuevos y centrifugue durante cinco minutos a 400 G. Finalmente, tras eliminar el sobrenadante, resuspenda las células en 80 a 100 microlitros de medio de crecimiento endotelial y siembre en una placa de cultivo tratada de 96 o 384 pocillos, según el rendimiento esperado. Cada par de ventrículos procedente de embriones desde E 14.5 hasta E 16.5 produce típicamente entre 450 y 600 células, como se demuestra aquí utilizando un anticuerpo específico para células endoteliales que reconoce CD 31. Las células endoteliales se aislaron de los ventrículos de embriones del día E 13.5.Cuando se cultivan en una placa de cultivo no tratada, estas células permanecen redondeadas y forman un patrón tipo adoquín al alcanzar la casi confluencia. Aunque las células se adhieren a placas recubiertas con colágeno diluido, estas células aisladas de los ventrículos de E 18.5 forman menos cadenas que cuando se cultivan sobre un gel de colágeno. Además, las células forman interacciones célula-célula y cadenas más rápidamente sobre el gel de colágeno en comparación con la placa recubierta con colágeno, lo cual sirve como verificación de su identidad.Las células en esta figura se etiquetan positivamente con el marcador endotelial ISO selectina. Además, como se muestra aquí, las células endoteliales aisladas de los ventrículos de embrión E 18.5 se etiquetaron positivamente con los marcadores endoteliales PAM y flick one. Esta figura muestra células endoteliales que fueron aisladas de los ventrículos de un embrión E 14.5 y etiquetadas con el colorante específico para endotelio cyto.16 células aisladas sobreviven hasta un cultivo debilitado, pero son resistentes a la inmortalización y, por lo tanto, son más adecuadas para experimentos terminales. Una vez dominada, esta técnica puede realizarse en aproximadamente tres horas y media si se lleva a cabo correctamente. Tras seguir este procedimiento, se pueden realizar otros ensayos, como ensayos de formación de tubos y ensayos de migración en transwell, para determinar cómo se comportan estas células aisladas in vitro.

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Investigación

JoVE Journal

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Biología

Este protocolo de vídeo ilustra el aislamiento y cultivo de las células endoteliales de vena umbilical (HUVEC) de cordón umbilical humano. Una vez aisladas estas células se pueden utilizar en los ensayos de la angiogénesis in vitro, como el gel de fibrina Optimizado ensayo de bolas también se demuestra por el laboratorio de Hughes.

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Aquí se describe un protocolo para el aislamiento y cultivo de las células endoteliales murinas pulmonar. Este método consiste en la disociación mecánica y enzimática del tejido pulmonar, así como un proceso de purificación de 2 pasos con anti-PECAM-1 y anti-ICAM-2 anticuerpos conjugados a perlas magnéticas, lo que produce una población pura de células endoteliales microvasculares su mayoría de origen.

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Este video muestra una estrategia fácil y confiable para la preparación de cultivos puros de células endoteliales del cerebro anterior embrionario dentro de 10 a 12 días y será útil para la investigación se centró en muchos aspectos de la angiogénesis cerebral.

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La capacidad de aislar las células endoteliales de las válvulas cardíacas (VECs) es fundamental para comprender los mecanismos de desarrollo, mantenimiento y enfermedad de las válvulas.  En este trabajo describimos el aislamiento de VECs de ratones Tie2-GFP embrionarios y adultos utilizando FACS que permitirá realizar estudios que determinen la contribución de los VECs en los procesos de desarrollo y enfermedad.

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células madre y progenitoras hematopoyéticas (HSPC) se derivan de las células endoteliales especializadas (hemogenic) durante el desarrollo, sin embargo, se sabe poco sobre el proceso por el cual algunas células endoteliales especifican a convertirse en la formación de la sangre. Demostramos un método basado en citometría de flujo permite el aislamiento simultáneo de las células endoteliales y hemogenic HSPC de tejidos embrionarios murinos.

Aislamiento de las células murinas embrionarias Hemogenic endoteliales

El objetivo de este protocolo es aislar las células progenitoras endoteliales de cordón umbilical. Algunas de las aplicaciones incluyen el uso de estas células como un biomarcador para identificar pacientes con riesgo cardiovascular, tratamiento de enfermedades isquémicas, y construye creando ingeniería de tejido vascular y del corazón la válvula.

Aislamiento de células endoteliales progenitoras de la sangre de cordón Umbilical humano

Presentamos un protocolo para el aislamiento de células endoteliales endocardiales y coronarias de corazones de rata a través de la digestión secuencial del tejido en un tampón de digestión, la recolección celular de ciclos de centrífuga recurrentes y la purificación celular mediante microperlas CD31 anti-rata.

Aislamiento de células endoteliales endocardiales y coronarias de la pared libre ventricular del corazón de rata

El presente protocolo describe el aislamiento agudo de células viables del músculo liso cardíaco y vascular de peces cebra adultos, juveniles, larvales y embrionarios (Danio rerio), adecuados para estudios electrofisiológicos.

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Aunque es un desafío, el aislamiento de las células endoteliales pulmonares es esencial para los estudios sobre la inflamación pulmonar. El presente protocolo describe un procedimiento para el aislamiento de alto rendimiento y alta pureza de células endoteliales macrovasculares y microvasculares.

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Aprenda a aislar células endoteliales ventriculares embrionarias de ratones transgénicos mediante dissección, tratamiento con colágeno y separación magnética con anticuerpos. Este método permite estudiar el desarrollo cardiovascular.

Aislamiento de células endoteliales embrionarias ventriculares

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