Name: Protocolos para la Evaluación de radiofrecuencia Interacciones con nanopartículas de oro y Sistemas Biológicos para la terapia del cáncer de hipertermia no invasiva (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-08-28T11:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 51 s
Description: Aprende a evaluar las propiedades térmicas de nanopartículas de oro en campos de radiofrecuencia para terapia de hipertermia en cáncer. Este método permite estudios in vitro e in vivo en modelos murinos.

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Este trabajo fue financiado por el NIH (U54CA143837), los del MD Anderson Cancer Center de Subvenciones de apoyo de los NIH (CA016672), la Fundación V (SAC), y una beca de investigación sin restricciones de la Fundación de Investigación Kanzius (SAC, Erie, PA). Agradecemos a Kristine Ceniza del Departamento de Oncología Quirúrgica, Centro de Cáncer MD Anderson, por la asistencia administrativa.

Una visión general de ensayo completo se representa en la Figura 1. Más detalles se representan en los pasos 1-3 a continuación. 1. Evaluar Calefacción RF de NP Coloides: AuNPs como ejemplo <ol><li> En general, para que se investigó cada muestra NP, primero Lavar la muestra varias veces a través de un filtro de centrifugación con agua desionizada (DI) para eliminar los iones y contaminantes de fondo. Todos los iones y contaminantes se han eliminado de la suspensión AuNP cuando el líquido que se lavan a cabo tiene velocidades de calentamiento de RF similares (HR) como agua DI. Este proceso de purificación también permite mayores concentraciones de PN a ser obtenidos. Vale la pena señalar que, aunque el uso de AuNPs en este ejemplo, los principios fundamentales se pueden aplicar a otros materiales NP. </li><li> Como un ejemplo, purificar una botella de 500 ml de AuNPs disponibles comercialmente de 5 nm de diámetro y, a continuación someterlos a un campo de RF de 13,56 MHz de eléctrica-Field fuerza 90 kV / m. <ol><li> Tome ~ 125 ml de la solución madre AuNP y dividido entre seis 50 kDa tubos de filtración centrífuga. Se centrifuga a 3.000 rpm. durante 2 min 5 seg. Borrar filtros de amortiguamiento y recarga filtrados con más solución de reserva. Repita hasta que se ha filtrado a los 500 ml. </li><li> Reemplazar el tampón se filtró con un volumen similar de agua DI y repetir aproximadamente 8 veces (o hasta que los HRs RF tampón filtrados son equivalentes a agua DI). Nota, análisis UV-Vis también se puede utilizar para controlar los picos de absorción de contaminantes. Una vez que los contaminantes de amortiguamiento se han eliminado totalmente, pipeta aproximadamente 0,5 ml de agua DI en cada filtro y resuspender las AuNPs por pipeteo repetido. Esto debería eliminar por completo los AuNPs del filtro y permitir la completa resuspensión. Combine todos los seis suspensiones en un tubo de 15 ml Eppendorf. </li><li> Una vez que los AuNPs se han purificado y concentrado, analizar la muestra mediante ICP-OES y / o ICP-MS, UV-vis y el potencial Zeta de datos sobre concentratioN y NP estabilidad, respectivamente. SEM y / o análisis de TEM también se puede utilizar para obtener datos morfológicos. La preparación detallada de la muestra para estas técnicas se puede encontrar en la literatura 4. </li></ol></li><li> Usando el sistema de Kanzius de RF descrito en estudios previos 8, o derivaciones de este sistema, colocar un 1,3 ml cilíndrica cubeta de cuarzo de modo que el campo eléctrico de RF en el aire (sin muestra presente) sería ~ 90 kV / m en el interior de la cubeta. Para una muestra estándar de solución salina (0,9% NaCl)-el campo eléctrico se reduciría a ~ 1,1 kV / m. Estas son las condiciones aproximadas utilizados para permitir que se hagan comparaciones entre los diferentes sistemas. <ol><li> Pipetear 1,3 ml de una muestra de 1.000 mg / l de coloide AUNP purificada en la cubeta de cuarzo y introducir este en el campo de RF. Esto se puede hacer mediante el uso de un soporte de muestras de teflón a la medida. Exponer a la muestra de campo de RF para un período de 120 segundos o hasta que la muestra alcanza 70 ° C para evitar la formación de arco eléctrico o de ebullición rápida. Californiapture los datos de imagen térmica (así como las áreas de control) usando una cámara IR y el software asociado. Repita este procedimiento en tres ocasiones. </li><li> Se filtra la muestra a través de otro filtro de centrífuga de 50 kDa a extraer los AuNPs de la memoria intermedia de agua DI. Volver a exponer el búfer para el campo de RF, de nuevo tres veces. La diferencia en jonrones entre el coloide AuNP y el búfer de fondo de agua DI determina la HR por los propios AuNPs. Esperar a obtener jonrones de ~ 0.3 ° C / seg y 0,05 º C / s para dar un HR depende AuNP de ~ 0,25 ° C / seg. Resuspender las AuNPs hayan quedado en el filtro en 1,3 ml de agua para los experimentos in vitro / in vivo. </li></ol></li></ol> 2. La hipertermia inducida RF-Nanopartículas asistida: Estudios in vitro <ol><li> Estos estudios in vitro se pueden aplicar a cualquier tipo de cáncer tipo de células que forman monocapas 2D. En este experimento utilizar carcinoma hepatocelular humano derivado células Hep 3B. <ol><li> Placa ~ 50.000 cells en los tres delanteros pocillos de una placa de 12 pocillos con 1 ml de medio de crecimiento. Repita este 6 veces (usar tres placas para estudios de NP y tres placas como controles). Incubar a 37,5 ° C durante 24 horas antes de la introducción de los PN. Esterilizar NPs primero usando Bioseguridad Gabinete de exposición de luz UV durante 5 min. </li><li> En cada pocillo introducir 0,1 ml de una solución de 1,000 mg / L AuNP y dejar actuar durante otras 24 horas. Añadir 0,1 ml de agua en cada pocillo de las tres placas de células de control y también dejar durante 24 horas. </li><li> Después de haber pasado 24 horas, aspirar el medio celular y lavar con PBS para eliminar cualquier AuNPs unidos a la superficie. Sustituya el medio celular. Las células están listas para la exposición RF. </li></ol></li><li> Coloque cada paquete celular de 12 pocillos dentro del campo de RF. Espere hasta que las células se hayan enfriado a 31 ° C. Encienda el generador de RF y exponer de 3,5 min. La temperatura final de los medios de comunicación celular será ~ 37 ° C. Apague el campo de RF. Retire las células y colocarlas en una incubadora durante 24 horas antes del análisis. <ol> &lt;li&gt; Eliminar las células de la incubadora y medio celular aspirado. Añadir 1,6 ml de medio de células a cada pocillo así en 0,4 ml de reactivo MTT. Se incuban las células durante 4 horas. Medios aspirar y renovar con 2 ml de dimetilsulfóxido (DMSO). Coloca las placas de células sobre un rockero banco y dejar actuar durante 10 minutos para permitir que el DMSO para solubilizar los reactivos MTT. Por último, la pipeta 100 l de cada pocillo en una placa de 96 pocillos y ópticamente leer el pozo a 570 nm usando un lector de placas tales como el lector de placas SPECTROstar Nano. </li></ol></li></ol> 3. La hipertermia inducida RF-nanopartículas asistida: estudios in vivo <ol><li> Estos estudios in vivo se pueden aplicar a cualquier tipo de cáncer que se forma tumores sólidos en un modelo murino ortotópico o ectópico. Este experimento utiliza células de cáncer de hígado Hep 3B en un BALB-C modelo de ratón desnudo del tumor ectópico. </li><li> Nota: todos los experimentos in vivo se ejecutan en cumplimiento de todas las directrices, reglamentos y las agencias reguladoras. Además, el protocolo que se está demostrado se llevó a cabo bajo la dirección y aprobación de la Universidad de Texas MD Anderson Cancer Centros de Cuidado de Animales y el empleo Comisión Institucional (IACUC). <ol><li> Crecer un número apropiado de células (~ 100 K) en un matraz de cultivo de tejidos con el medio de crecimiento apropiado. Incubar en una incubadora a 37 ° C con 5% de CO 2 durante la duración del cultivo celular. </li><li> Tratar las células con tripsina (para separar del matraz) y producir una solución de 2 millones de células por cada 25 l. Añadir una cantidad igual de Matrigel (en hielo) y mezclar a fondo para preparar la solución de la inyección final. Inyectar esta solución en la posición deseada en el lomo del ratón y esperar una cantidad adecuada de tiempo para que los tumores crecen hasta el tamaño deseado (2-4 semanas para la mayoría de las células). Antes de la exposición a RF, BALB-C ratones desnudos deben tener tumores ectópicos sólidos 0,5-1 cm de diámetro. </li></ol></li><li><ol><li> Preparar a los ratones a utilizar (en este caso BALB-C ratones Desnudos) por anaesthetizing ellos con una solución de ketamina y xilazina por inyección IP. Mientras que los ratones están cayendo dormido, mantenerlos en una cámara de temperatura controlada a 37 º C. Se necesitarán 20 ratones en total, todos los tumores tamaño similar rodamientos. Diez ratones se utilizarán en conjunción con y sin AuNPs (este último es sólo inyecciones de PBS), mientras que los 10 ratones restantes se dividirán entre los controles de RF-expuesta sin exposición de RF y: todos sin inyecciones AUNP. </li><li> Una vez adecuadamente anestesiados, inyectar los AuNPs directamente en el tumor usando una jeringa de 1 cc con una aguja de calibre 27. La solución AUNP debe ser a una concentración de Au de 200 mg / L en 0,1 ml de PBS. Después de la inyección, utilice un hisopo de cirugía para absorber la sangre y limpiar el lugar de inyección con un algodón con alcohol. </li><li> A continuación, monte el ratón para ser tratado en la cabeza de recepción del generador de RF. El ratón debe colocarse de manera que el tumor es más cercano a la cabeza de la transmisión. Proteja las áreas que no deben ser tratados, así como la sensibilidadtiva áreas tales como los ojos, los oídos y dedos de los pies, con la cinta de cobre. Asegúrese de que la cinta de cobre está en contacto con el avión a tierra apropiadamente de modo que no se produzca la acumulación de carga. Además, el área de exposición tiene que tener un espacio de al menos 1 cm mayor que el tamaño del sitio de tratamiento deseado. </li><li> Cámara térmica Posición IR para que el tumor y el área de tratamiento son visibles. Encienda RF durante 5 min. Registre la curva de temperatura resultante. Si la terapia alcanza temperaturas superiores a 42 ° C de tratamiento para inmediatamente. </li></ol></li><li><ol><li> Después de la exposición a RF de los ratones a recuperarse de la anestesia en una cámara caliente hasta que estén conscientes. </li><li> Repita el experimento con los mismos ratones 48 horas más tarde (pasos 3.3.1 - 3.4.1). </li><li> Después del experimento, la eutanasia a los ratones de acuerdo con los protocolos y procedimientos institucionales. Anotar el peso del tumor. Para el análisis histológico fijan los tumores utilizando formol e incrustarlos en parafina. Secciones tumorales suelen ser manchadas ingenioh hematoxilina y eosina y metas pertinentes para medir la eficacia terapéutica, por ejemplo, Ki-67, exfoliados caspasa-3, etc. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Gannon, C. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Carbon+nanotube-enhanced+thermal+destruction+of+cancer+cells+in+a+noninvasive+radiofrequency+field%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer%22%5BJournal%5D)">Carbon nanotube-enhanced thermal destruction of cancer cells in a noninvasive radiofrequency field.</a> Cancer. 110, 2654(2007).</li>
<li>Curley, S. A., Cherukuri, P., Briggs, K., Patra, C. R., Upton, M., Dolson, E., Mukherjee, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noninvasive+radiofrequency+field-induced+hyperthermic+cytotoxicity+in+human+cancer+cells+using+cetuximab-targeted+gold+nanoparticles%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Ther.+Oncol%22%5BJournal%5D)">Noninvasive radiofrequency field-induced hyperthermic cytotoxicity in human cancer cells using cetuximab-targeted gold nanoparticles.</a> J. Exp. Ther. Oncol. 7, 313(2008).</li>
<li>Gannon, C. J., Patra, C. R., Bhattacharya, R., Mukherjee, P., Curley, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracellular+gold+nanoparticles+enhance+non-invasive+radiofrequency+thermal+destruction+of+human+gastrointestinal+cancer+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Nanobiotechnology%22%5BJournal%5D)">Intracellular gold nanoparticles enhance non-invasive radiofrequency thermal destruction of human gastrointestinal cancer cells.</a> Journal of Nanobiotechnology. 6, 2(2008).</li>
<li>Raoof, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stability+of+antibody-conjugated+gold+nanoparticles+in+the+endolysosomal+nanoenvironment%3A+implications+for+noninvasive+radiofrequency-based+cancer+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Nanomedicine%22%5BJournal%5D)">Stability of antibody-conjugated gold nanoparticles in the endolysosomal nanoenvironment: implications for noninvasive radiofrequency-based cancer therapy.</a> Nanomedicine. 8, 1096(2012).</li>
<li>Glazer, E. S., Massey, K. L., Zhu, C., Curley, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pancreatic+carcinoma+cells+are+susceptible+to+noninvasive+radio+frequency+fields+after+treatment+with+targeted+gold+nanoparticles%5BTitle%5D)+AND+%22Surgery%22%5BJournal%5D)">Pancreatic carcinoma cells are susceptible to noninvasive radio frequency fields after treatment with targeted gold nanoparticles.</a> Surgery. 148, 319(2010).</li>
<li>Glazer, E. S., Curley, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Radiofrequency+field-induced+thermal+cytotoxicity+in+cancer+cells+treated+with+fluorescent+nanoparticles%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer%22%5BJournal%5D)">Radiofrequency field-induced thermal cytotoxicity in cancer cells treated with fluorescent nanoparticles.</a> Cancer. 116, 3285(2010).</li>
<li>Glazer, E. S., Curley, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-invasive+radiofrequency+ablation+of+malignancies+mediated+by+quantum+dots%2C+gold+nanoparticles+and+carbon+nanotubes%5BTitle%5D)+AND+%22Therapeutic+Delivery%22%5BJournal%5D)">Non-invasive radiofrequency ablation of malignancies mediated by quantum dots, gold nanoparticles and carbon nanotubes.</a> Therapeutic Delivery. 2, 1325(2011).</li>
<li>Corr, S. J., Raoof, M., Mackeyev, Y., Phounsavath, S., Cheney, M. A., Cisneros, B. T., Shur, M., Gozin, M., McNally, P. J., Wilson, L. J., Curley, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Citrate-Capped+Gold+Nanoparticle+Electrophoretic+Heat+Production+in+Response+to+a+Time-Varying+Radiofrequency+Electric-Field%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Phys.+Chem.+C%22%5BJournal%5D)">Citrate-Capped Gold Nanoparticle Electrophoretic Heat Production in Response to a Time-Varying Radiofrequency Electric-Field.</a> J. Phys. Chem. C. 116, 24380(2012).</li>
<li>Kruse, D. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Radio-Frequency+Coupling+Network+for+Heating+of+Citrate-Coated+Gold+Nanoparticles+for+Cancer+Therapy%3A+Design+and+Analysis%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Transactions+on+Biomedical+Engineering%22%5BJournal%5D)">A Radio-Frequency Coupling Network for Heating of Citrate-Coated Gold Nanoparticles for Cancer Therapy: Design and Analysis.</a> IEEE Transactions on Biomedical Engineering. 58, 10(2011).</li>
<li>Li, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Negligible+absorption+of+radiofrequency+radiation+by+colloidal+gold+nanoparticles%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Colloid+Interf.+Sci%22%5BJournal%5D)">Negligible absorption of radiofrequency radiation by colloidal gold nanoparticles.</a> J. Colloid Interf. Sci. 358, 47(2011).</li>
<li>Liu, X., Chen, H. J., Chen, X., Parini, C., Wen, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Low+frequency+heating+of+gold+nanoparticle+dispersions+for+non-invasive+thermal+therapies%5BTitle%5D)+AND+%22Nanoscale%22%5BJournal%5D)">Low frequency heating of gold nanoparticle dispersions for non-invasive thermal therapies.</a> Nanoscale. , (2012).</li>
<li>Sassaroli, E., Li, K. C. P., O'Neill, B. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Radio+frequency+absorption+in+gold+nanoparticle+suspensions%3A+a+phenomenological+study%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Phys.+D+App.+Phys%22%5BJournal%5D)">Radio frequency absorption in gold nanoparticle suspensions: a phenomenological study.</a> J. Phys. D App. Phys. 45, 075303(2012).</li>
<li>Worle-Knirsch, J. M., Pulskamp, K., Krug, H. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oops+they+did+it+again%21+Carbon+nanotubes+hoax+scientists+in+viability+assays%5BTitle%5D)+AND+%22Nano+Lett%22%5BJournal%5D)">Oops they did it again! Carbon nanotubes hoax scientists in viability assays.</a> Nano Lett. 6, 1261(2006).</li>
</ol>

No tenemos nada que revelar.

Estos protocolos permiten que el experimentador para analizar completamente la medida en que los nanomateriales (en este caso AuNPs) puede aumentar la hipertermia inducida por RF para el tratamiento del cáncer. El primer protocolo se ocupa específicamente de analizar la producción de calor a partir de muestras AUNP altamente concentrados y purificados. Aunque otros grupos han informado de la producción de calor principalmente a partir de los tampones que los AuNPs se suspenden en y no los propios 9-11 AuNPs, ...

La absorción de energía de RF por el tejido biológico (debido a su permitividad eléctrica inherente) da lugar a temperaturas elevadas de tejido como una función del tiempo, lo que finalmente conduce a la muerte celular por hipertermia. Se planteó la hipótesis de que la hipertermia cáncer se puede optimizar mediante el uso de nanomateriales específicas que internalizan dentro de la célula del cáncer y actúan como transductores de RF-térmicas, dejando las células sanas, normales vecinas intacta. Varios informes han demostrado ya que una variedad de NPS puede actuar como fuentes de calor RF eficaz que ayuda en la necrosis cáncer de 1-4. En estos aspectos, NP de oro (AuNPs) 3-5, los nanotubos de carbono 1, y los puntos cuánticos 6, 7 han mostrado características interesantes cuando se utiliza en tanto in vitro como in vivo en experimentos de RF. Aunque todavía se está debatiendo la naturaleza exacta del mecanismo de calentamiento de estos PN cuando se expone a un campo de RF, una serie deexperimentos fundamentales utilizando AuNPs ha dado gran importancia tanto en el tamaño de NP y estados de agregación. Se demostró que sólo AuNPs con diámetros &lt;10 nm se calentarán cuando se expone a un campo de RF 8. Además, este mecanismo de calentamiento se atenúa significativamente cuando se agregan los AuNPs. Esta condición agregación también fue validado dentro de los modelos in vitro que dio importancia a la optimización AuNP estabilidad coloidal dentro de los compartimentos intracelulares endolysomal para la terapia de RF eficaz 4. Sin embargo, las técnicas y los principios experimentales utilizados para recoger y evaluar estos datos pueden ser problemáticos, especialmente en el caso de la validación de perfiles de calor de RF de coloides NP. Varios informes han demostrado que el calentamiento Joule del fondo suspensión iónica que los PN se suspenden en puede ser la fuente principal de la producción de calor de RF y no los propios 9-12 PN. Aunque nuestro reciente documento de 8 ha validado tl uso de las interacciones de RF en la generación de calor de AuNPs de diámetro inferior a 10 nm, nuestro objetivo es describir estos protocolos con más detalle en este artículo. También demuestran los protocolos y técnicas necesarios para evaluar la eficacia de AuNPs como agentes térmicos de hipertermia en tanto in vitro como en experimentos in vivo para modelos de cáncer de hígado. Aunque nos centramos principalmente en coloides simples de AuNPs citrato-capsulado, las mismas técnicas se pueden aplicar a otros híbridos AUNP tales como anticuerpos y complejos de quimioterapia-conjugado. Al adherirse a estos principios el experimentalista con suerte debe ser capaz de evaluar rápidamente el potencial para cualquier nanomaterial para ser un agente de hipertermia térmica inducida por RF eficaz.

<table><tbody><tr><td colspan="4"><fuerte>Reactivo/Material</fuerte></td></tr><tr><td>500 ml nanopartículas de oro (5 nm)</td><td>Ted Pella, INC</td><td>15702-5</td><td></td></tr><tr><td>Amicon Ultra-4/-15 Unidades de Filtro Centrífugo (50 kDa)</td><td>Millipore</td><td>UFC805024/UFC910096</td><td>(volúmenes de 4 ml y 15 ml)</td></tr><tr><td>MEM X1 Cell Culture Media</td><td>Cellgro</td><td>10-101-CV</td><td>(añadir nutrientes adicionales según sea necesario)</td></tr><tr><td>Fetal Bovino Suero</td><td>Sigma</td><td>F4135-500 ml</td><td></td></tr><tr><td>Cinta de cobre</td><td>Ted Pella</td><td>16072</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Equipment</td></tr><tr><td>Kanzius RF System (13.56 MHZ)</td><td>ThermMed, LLC, Inc. (Erie, PA, EE. UU.)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cámara IR</td><td>FLIR SC 6000, FLIR Systems, Inc. (Boston, MA, EE. UU.)</td><td>Contacto FLIR</td><td></td></tr><tr><td>Cubeta de cuarzo de 1,3 ml</td><td>ThermMed, LLC, Inc. (Erie, PA, EE. UU.)</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Soporte de muestra de teflón con etapa rotativa</td><td>ThermMed, LLC, Inc. (Erie, PA, EE. UU.)</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Lector de microplacas SPECTROstar Nano</td><td>BGM Labtech</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Espectrómetro UV-Vis</td><td>Nanofluorescencia aplicada, Houston, TX)</td> <td>NS1 NanoSpectralyzer</td><td></td></tr><tr><td>ICP-&#8211; S</td><td>PerkinElmer</td><td>Optima 4300 DV</td><td></td></tr><tr><td>Zetasizer</td><td>Malvern</td><td>Zen 3600 Zetasizer</td><td></td></tr></tbody></table>

protocolos para la evaluación de radiofrecuencia interacciones con nanopartículas de oro y sistemas biológicos para la terapia del cáncer de hipertermia no invasiva

Protocols for Assessing Radiofrequency Interactions with Gold Nanoparticles and Biological Systems for Non-invasive Hyperthermia Cancer Therapy

Terapias de cáncer que son menos tóxicos y invasiva que sus contrapartes existentes son altamente deseables. El uso de la RF-campos eléctricos que penetran profundamente en el cuerpo, provocando una toxicidad mínima, en la actualidad se está estudiando como un medio viable para la terapia del cáncer no invasivo. Se prevé que las interacciones de la energía de RF con nanopartículas internalizados (NPS) pueden liberar calor que puede causar un sobrecalentamiento (hipertermia) de la célula, en última instancia, que termina en la necrosis celular. En el caso de los sistemas no biológicos, se presentan los protocolos detallados en relación con cuantificación del calor liberado por los coloides NP altamente concentradas. Para los sistemas biológicos, en el caso de los experimentos in vitro, se describen las técnicas y las condiciones que deben cumplirse a fin de exponer con eficacia las células cancerosas a la energía de RF sin artefactos de calentamiento del material a granel que oscurecen considerablemente los datos. Por último, damos una metodología detallada fo in vivo en modelos de ratones con tumores de cáncer hepático ectópicos.

1. Evaluación de calentamiento por RF de coloides NP: AuNPs como un ejemplo. Después de seguir el apartado 1.1 - 1.2.3 esperar tener una solución altamente concentrada, estable y purificada de 5 nm y 10 nm de diámetro AuNPs. De los 500 ml AS-comprado solución madre, esperar para obtener al menos 4 ml de solución a una concentración de 1000 mg / L. La diferencia en los CR entre los AuNPs y la solución tampón de agua DI fondo a esta concentración debe ser ~ 0,25 ° C / s y 0,1 º C / s durante 5 nm...

Se describen los protocolos que se utilizan para investigar las interacciones de 13.56 MHz de radiofrecuencia (RF) de electricidad-los campos con coloides de nanopartículas de oro en ambos sistemas no biológicos y biológicos (in vitro / in vivo). Estas interacciones están siendo investigados para su aplicación en la terapia del cáncer.

Protocolos para la Evaluación de radiofrecuencia Interacciones con nanopartículas de oro y Sistemas Biológicos para la terapia del cáncer de hipertermia no invasiva

Cancer therapies  which are less toxic and invasive than their existing counterparts are highly  desirable. The use of RF electric-fields that penetrate ...

El objetivo general de este procedimiento es evaluar las propiedades térmicas de las nanopartículas de oro en un campo eléctrico de radiofrecuencia de 13,56 megahercios, in vitro e in vivo. Esto se logra primero evaluando la tasa de calentamiento de nanopartículas de oro concentradas y su tampón en un vial de cuarzo. El segundo paso del procedimiento consiste en realizar estudios de toxicidad in vitro de las nanopartículas de oro con células cancerosas cultivadas.El tercer paso consiste en realizar estudios in vivo de nanopartículas de oro en un modelo de cáncer ectópico en ratón. En última instancia, los resultados pueden mostrar si la nanopartícula investigada podría ser un agente eficaz para usar con hipertermia mediada por radiofrecuencia, mediante el análisis de las nanopartículas en suspensión, in vitro e in vivo. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la hipotermia por radiofrecuencia no invasiva mediada por nanopartículas, como si el calentamiento se debe a las propias partículas y si puede utilizarse con fines terapéuticos.Por lo general, las personas nuevas en este método tendrán dificultades porque no existen muchos protocolos bien establecidos para realizar este tipo de experimentos. El procedimiento será demostrado por Cisneros, una asistente de investigación, Stuart Core, un científico posdoctoral, y Leila Green, otra científica posdoctoral. Como ejemplo, comience con una botella comercial de 500 mililitros de nanopartículas de oro con un diámetro de cinco nanómetros.Tome aproximadamente 125 mililitros de la solución stock de nanopartículas de oro y divídala entre seis tubos de filtro centrífugo de 50 kilodaltons. Centrifugue las nanopartículas a 3000 RPM durante dos minutos y cinco segundos. Retire el sobrenadante, que es el tampón filtrado, y rellene cada filtro con más solución stock.Continúe con la centrifugación, retire el tampón y recargue los tubos hasta que toda la solución de nanopartículas haya sido filtrada. Después de la última adición, sustituya el tampón filtrado por un volumen similar de agua desionizada y repita el proceso aproximadamente ocho veces más tras cargar la muestra de tampón filtrado en la máquina de RF. Utilizando el software de la cámara infrarroja, cree cuadros sobre el QVE para capturar el perfil de calentamiento. Tras ocho lavados, los datos de calentamiento del filtrado de nanopartículas de oro de cinco nanómetros se aproximan a los del agua desionizada.El análisis UV-vis también puede utilizarse para monitorear la absorción de contaminantes. Picos. Se muestra aquí un espectro limpio. Una vez que se han eliminado completamente los contaminantes del tampón, suspendemos las nanopartículas en 0,5 mililitros de agua desionizada en los tubos con filtro, lo que retira las nanopartículas del filtro.Luego, combine las seis suspensiones en un solo tubo de 15 mililitros. Ahora, analice la muestra utilizando UV-VIS y potencial zeta para obtener datos de estabilidad. Utilice ICP-OES y/o espectrometría de masas con ICP para determinar la concentración de nanopartículas.El análisis mediante MEB y/o MET también puede utilizarse para obtener datos morfológicos utilizando un sistema de RF de Kansas o derivaciones de carga, una jeringa de cuarzo de 1,3 mililitros y estableciendo el campo eléctrico de RF en aproximadamente 90 kilovoltios por metro en aire, donde residiría el vete de Q. Para una muestra estándar de solución salina con cloruro de sodio al 0,9 %, el campo eléctrico se reduciría a aproximadamente 1,1 kilovoltios por metro. Estas son las condiciones aproximadas utilizadas para permitir comparaciones entre diferentes sistemas de RF.Ahora, cargue una veta limpia de cuarzo con 1,3 mililitros de suspensión purificada de nanopartículas de oro a una concentración de 1000 miligramos por litro. Exponga la muestra al campo de radiofrecuencia durante un período de 120 segundos o hasta que la muestra alcance 70 grados Celsius. La exposición excesiva puede provocar arco eléctrico o ebullición rápida.Capture los datos de imagen térmica así como las áreas de control utilizando una cámara de infrarrojos y el software asociado. Repita este procedimiento tres veces sobre la misma muestra. Ahora filtre la muestra a través de otro filtro centrífugo de 50 kilodalton para extraer las nanopartículas de oro del tampón acuoso.Luego, exponga nuevamente el tampón solo al campo de radiofrecuencia. Una vez más, el triple de la diferencia en las hrs entre el coloide de nanopartículas de oro y el filtrado determina la HR debida a las nanopartículas de oro mismas. Finalmente, suspendemos las nanopartículas de oro restantes del filtro en 1,3 mililitros de agua para experimentos posteriores.Estos estudios in vitro pueden aplicarse a cualquier tipo de célula cancerosa que forme monocapas en 2D. En este ejemplo, se utilizarán células Hep tres B derivadas de carcinoma hepatocelular, sembrando aproximadamente 50 000 células en tres pocillos de una placa de 12 pocillos con un mililitro de medio de crecimiento.Continúe cargando las células en el medio hasta llenar tres placas para los estudios con nanopartículas y otras tres placas como controles. Incube las placas a 37,5 grados Celsius durante 24 horas. Al día siguiente, introduzca 0,1 mililitro de una solución de nanopartículas de oro a 1000 miligramos por litro en cada pocillo de las tres placas con nanopartículas y en las placas de control.Añada 0,1 mililitros de agua en cada pocillo y cultive todas las placas durante otras 24 horas. Transcurridas otras 24 horas, aspire el medio celular y lave las células con PBS para eliminar las nanopartículas de oro unidas a la superficie. Luego, reemplace el medio celular.Las células ya están listas para la exposición a RF. Coloque cada paquete de células de 12 pocillos dentro del campo de RF y espere hasta que las células se enfríen a 31 grados Celsius. Una vez que se hayan enfriado ligeramente, exponga las células a 3,5 minutos de rf.La temperatura final del medio celular será de aproximadamente 37 grados Celsius. Transfiera las células a una incubadora y espere 24 horas antes de analizarlas. Cuando las células estén listas, aspire el medio y reemplácelo con dos mililitros de reactivo MTT al 25% en medio.Luego, deje que las células incuben durante otras cuatro horas. A continuación, reemplace el medio de MTT con dos mililitros de DMSO. Coloque las placas de células en un agitador rotatorio durante 10 minutos para permitir que el DMSO solubilice los reactivos de MTT.Finalmente, pipetee muestras de 100 microlitros de cada pocillo a una placa de 96 pocillos y lea ópticamente la placa a 570 nanómetros. Estos estudios in vivo pueden aplicarse a cualquier tipo de cáncer que forme tumores sólidos en un modelo de reflejo ortotópico o ectópico. En este ejemplo, se utilizan células de cáncer hepático Hep tres B con ratones BPC desnudos.Comience con aproximadamente 100.000 células; tritúreelas con tripsina en hielo y prepare una solución de 2 millones de células por 25 microlitros. Añada una cantidad igual de matriz gel fría a la suspensión celular y mezcle bien mediante aspiraciones y expulsiones repetidas con una pipeta. A continuación, inyecte la suspensión mezclada en la posición deseada en la espalda de cada animal.Después de algunas semanas, los tumores tendrán de medio centímetro a un centímetro de diámetro; en ese momento, comience el tratamiento con radiofrecuencia y anestesie los ratones con una solución de ketamina y xilacina mediante inyección intraperitoneal, manteniéndolos calientes. A continuación, inyecte directamente las nanopartículas de oro en la mitad de los tumores utilizando una jeringa de un cc con una aguja de calibre 27 o 30. Utilice un hisopo quirúrgico para absorber la sangre y limpie el sitio de inyección con una toallita con alcohol.Como control, inyecte solo PBS en la otra mitad de los tumores. Ahora, trate la mitad de los ratones en cada grupo. Coloque el ratón en la cabeza receptora del generador de RF y proteja las áreas no tratadas con cinta de cobre, incluyendo los ojos, orejas y dedos de los pies.La parte más importante de este experimento es la correcta conexión a tierra de sus ratones. Sin una conexión adecuada, la acumulación de carga en los animales puede provocar lesiones térmicas o electrodérmicas. Esto puede evitarse fácilmente.Coloque el tumor a al menos un centímetro más de distancia de la cabeza de transmisión que el ancho del sitio de tratamiento deseado. Ahora, coloque la cámara térmica de infrarrojo de manera que el tumor y el área de tratamiento sean visibles. Encienda la RF durante cinco minutos y registre la curva de temperatura resultante.Si la temperatura de la superficie de la piel aumenta por encima de 42 grados Celsius, detenga inmediatamente el tratamiento después de la exposición a RF. Permita que los ratones se recuperen en una cámara tibia hasta que recuperen la conciencia. Repita los tratamientos dos veces por semana durante tres semanas.Luego, sacrificar a los ratones 48 horas después de la última exposición a RF y procesar los tumores. El calentamiento por RF de las nanopartículas de oro purificadas se determinó por la diferencia en hrs entre ellas y la solución tampón de agua desionizada de fondo. Los resultados fueron los esperados tanto para nanopartículas de cinco nanómetros como para las de 10 nanómetros.Las nanopartículas de oro purificadas se integraron en células Hep tres B derivadas de carcinoma hepatocelular humano. Cuando tales células se exponen a un campo de radiofrecuencia, normalmente presentan una viabilidad menor que aquellas expuestas a radiofrecuencia sin nanopartículas internalizadas. La figura tres muestra un escenario idealizado en el que las nanopartículas de oro utilizadas tienen una toxicidad limitada por sí mismas, pero excelentes propiedades citotóxicas inducidas por radiofrecuencia; consulte la literatura para una revisión exhaustiva de los resultados in vitro hasta la fecha utilizando diversos tipos de nanomateriales.Las células Hep tres B. de cáncer de hígado se utilizaron para generar tumores en la espalda de ratones desnudos babsi. Estos tumores se inyectaron con nanopartículas de oro suspendidas en PBS, seguido de exposición a radiofrecuencia. El análisis posterior al tratamiento reveló que el tratamiento controló el crecimiento tumoral y redujo la masa tumoral.Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo evaluar nanopartículas para su uso en hipotermia mediada por RF, determinando sus propiedades de respuesta a RF y su comportamiento en solución in vitro e in vivo. No olvide que trabajar con campos eléctricos RF de alta potencia puede ser extremadamente peligroso. Nunca toque ni introduzca las manos dentro de un campo eléctrico activo.Realice mediciones del campo eléctrico y, si es necesario, utilice un blindaje adecuado como una jaula de Faraday. En general, minimice siempre su exposición a campos eléctricos intensos sostenidos.

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