Name: Un método sensible para cuantificar las células cancerosas senescentes (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-08-02T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 18 s
Description: Aprenda a cuantificar células senescentes en cáncer mediante citometría de flujo con doxorrubicina. Este método sensible y rápido supera las limitaciones del ensayo β-galactosidasa estándar.

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Agradecemos a la SF 4206 ICORE (Université de Caen) para el uso de la instalación citometría. JC recibió becas post-doctorales del Consejo de Radioprotección d&#39;EDF y Conseil Régional de Basse-Normandie. Estos datos forman parte de los proyectos financiados por la Ligue Nationale Contre le Cancer - Comités de l&#39;Orne et du Calvados.

1. Preparación de C12FDG, bafilomicina A1, y cultivo celular <ol><li> Disolver el polvo de C 12 FDG en sulfóxido de dimetilo (DMSO) a una concentración final de 20 mM. Alícuota y almacenar a -20 ° C. DMSO se debe utilizar con las condiciones de seguridad adecuadas. </li><li> Disolver el polvo de bafilomicina A1 en DMSO a una concentración final de 0,1 mM. Alícuota y almacenar a - 20 ° C. Bafilomicina se debe utilizar con las condiciones de seguridad adecuadas. </li><li> Cultivar línea de medio RPMI 8226 celular, u otras líneas celulares adherentes o no, en medios que contienen 10% de suero fetal bovino y 1% de antibióticos, a 37 ° C, 5% de CO 2. Calcular el número de células necesarias para el experimento. Con el fin de grabar un número suficiente de eventos durante el análisis de citometría de flujo, se requieren células de 5 x 10 5. Para determinar el porcentaje de células senescentes, se requieren tres muestras de células: muestra sin etiqueta, las células no tratadas teñidas con C 12 FDG, las células tratadas se tiñeron conC 12 FDG. </li><li> Semilla de la células 24 horas antes de realizar el experimento para que las células se encuentran en la fase logarítmica de la curva de la proliferación celular. </li></ol> 2. La inducción de la senescencia <ol><li> Inducir la senescencia de las células cancerosas mediante la adición de un fármaco quimioterapéutico. La concentración de fármaco y la duración del tratamiento deben ser adaptadas al tipo celular probado. Comenzar con un tratamiento de 48 horas a la concentración final de 50 nM doxorrubicina para una concentración de células en alrededor de 10 6 células / ml. No se olvide de incluir la muestra sin tratar (control negativo). </li></ol> 3. Bafilomicina A1 Tratamiento <ol><li> Comprobar la viabilidad celular por las células de mezcla con azul de tripano (v / v), como el fármaco quimioterapéutico usado en el paso anterior podría conducir a la apoptosis de las células. Se envasa en una cámara de Malassez y contar el número de células azules (células muertas) y de glóbulos blancos (células vivas). Si el porcentaje de viabilidad es de menos de 70%, las células muertas pueden ser realesoved utilizando un kit adecuado para garantizar que las células muertas no sesga el análisis posterior. </li><li> Retire el medio de cultivo y reemplazarlo por el medio de cultivo fresco precalentado. Se tratan las células con una concentración final de 100 nM de bafilomicina A1. Bafilomicina A1 se utiliza para neutralizar el pH ácido de los lisosomas. Incubar 1 hora a 37 ° C, 5% de CO 2. </li></ol> 4. C 12 FDG tinción <ol><li> Disolver C 12 FDG en el medio de cultivo fresco precalentado a una concentración final de 2 mM. </li><li> Añadir el compuesto a las células a una concentración final de 33 mM y se incuba 2 horas a 37 ° C, 5% de CO 2. Si el uso de las células no adherentes, centrifugar las células a 300 xg durante 5 min a 4 ° C (la velocidad podría tener que ser ajustado para el tipo de célula utilizada), se lava 2 veces con PBS. Resuspender el sedimento celular en 500 l de PBS frío. Si el uso de células adherentes, retire el papel y lavar 2 veces con PBS. Recoger las células adherentes utilizando una solución de tripsina y se centrifugalas células a 300 xg durante 5 min a 4 ° C (la velocidad podría tener que ser ajustado para el tipo de célula utilizado). Resuspender el sedimento celular en 500 l de PBS frío. En ambos casos, la concentración celular debe ser de aproximadamente 10 6 células / ml. </li><li> Realizar un co-inmunomarcaje para caracterizar aún más la población de células senescentes. </li></ol> 5. Análisis de citometría de flujo <ol><li> Calibrar el citómetro de flujo utilizando las bolas de control recomendadas por el fabricante del citómetro de flujo. Para todas las medidas, por lo menos 10 4 eventos tienen que ser registrados. </li><li> Ejecute la primera muestra que contiene células no marcadas. Prepare una visualización Canal dispersión frontal de dos parámetros gráficos (FSC) frente a Canal dispersión lateral (SSC). Ajuste los tubos fotomultiplicadores (PMT) y definir una región de interés excluyendo las células muertas y los desechos celulares que podrían haber aparecido durante la preparación de la muestra. Puerta de esta región de interés en un histograma de un parámetro FL1 mostrar en la escala logarítmicadel eje de las x y el número de eventos en el eje y. El número total de eventos representa el número de células analizadas. Ajuste el PMT para que las células no marcadas aparecen en la primera década en la escala logarítmica de el eje x. Determinar la autofluorescencia de las células si es necesario. </li><li> Ejecutar la segunda muestra que contiene células no tratadas. En el histograma de un parámetro que muestra FL1 (fluorescencia de C 12 FDG), coloque el cursor después de la población con poca etiqueta. Este límite permitirá discriminación entre células no senescentes (células débilmente marcadas) y las células senescentes (células intensamente marcadas). </li><li> Ejecute la tercera muestra que contiene células tratadas. Con mucha células marcadas, es decir, células senescentes aparecen por encima del umbral determinado en el paso anterior. Evaluar el porcentaje de células senescentes dividiendo el número de eventos brillantes por el número total de eventos. Si es necesario, la actividad de la β-galactosidasa también se puede estimar usando la media de fluorescenciaintensidad. </li></ol>

<ol><li>Hayflick, L., Moorhead, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+serial+cultivation+of+human+diploid+cell+strains%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Cell+Research%22%5BJournal%5D)">The serial cultivation of human diploid cell strains.</a> Experimental Cell Research. 25, 585-621 (1961).</li>
<li>Campisi, J., d'Adda di Fagagna, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+senescence%3A+when+bad+things+happen+to+good+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Review+Molecular+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Cellular senescence: when bad things happen to good cells.</a> Nature Review Molecular Cell Biology. 8 (9), 729-740 (2007).</li>
<li>Shay, J. W., Roninson, I. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hallmarks+of+senescence+in+carcinogenesis+and+cancer+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">Hallmarks of senescence in carcinogenesis and cancer therapy.</a> Oncogene. 23 (16), 2919-2933 (2004).</li>
<li>Bartkova, J., Rezaei, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oncogene-induced+senescence+is+part+of+the+tumorigenesis+barrier+imposed+by+DNA+damage+checkpoints%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Oncogene-induced senescence is part of the tumorigenesis barrier imposed by DNA damage checkpoints.</a> Nature. 444 (7119), 633-637 (2006).</li>
<li>Takacova, S., Slany, R., Bartkova, J., Stranecky, V., Dolezel, P., Luzna, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+damage+response+and+inflammatory+signaling+limit+the+MLL-ENL-induced+leukemogenesis+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Cell%22%5BJournal%5D)">DNA damage response and inflammatory signaling limit the MLL-ENL-induced leukemogenesis in vivo.</a> Cancer Cell. 21, 517-531 (2012).</li>
<li>Krtolica, A., Parrinello, S., Lockett, S., Desprez, P. Y., Campisi, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Senescent+fibroblasts+promote+epithelial+cell+growth+and+tumorigenesis%3A+a+link+between+cancer+and+aging%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Senescent fibroblasts promote epithelial cell growth and tumorigenesis: a link between cancer and aging.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 98, 12072-12077 (2001).</li>
<li>Coppe, J. P., Patil, C. K., Rodier, F., Sun, Y., Munoz, D. P., Goldstein, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Senescence-associated+secretory+phenotypes+reveal+cell-nonautonomous+functions+of+oncogenic+RAS+and+the+p53+tumor+suppressor%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Biology%22%5BJournal%5D)">Senescence-associated secretory phenotypes reveal cell-nonautonomous functions of oncogenic RAS and the p53 tumor suppressor.</a> PLoS Biology. 6, 2853-2868 (2008).</li>
<li>Roninson, I. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumor+cell+senescence+in+cancer+treatment%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Research%22%5BJournal%5D)">Tumor cell senescence in cancer treatment.</a> Cancer Research. 63 (11), 2705-2715 (2003).</li>
<li>Dimri, G. P., Lee, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+biomarker+that+identifies+senescent+human+cells+in+culture+and+in+aging+skin+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">A biomarker that identifies senescent human cells in culture and in aging skin in vivo.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 92 (20), 9363-937 (1995).</li>
<li>Kurz, D. J., Decary, S., Hong, Y., Erusalimsky, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Senescence-associated+%28beta%29-galactosidase+reflects+an+increase+in+lysosomal+mass+during+replicative+ageing+of+human+endothelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cell+Science%22%5BJournal%5D)">Senescence-associated (beta)-galactosidase reflects an increase in lysosomal mass during replicative ageing of human endothelial cells.</a> Journal of Cell Science. 113, 3613-3622 (2000).</li>
<li>Debacq-Chainiaux, F., Erusalimsky, J. D., Campisi, J., Toussaint, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protocols+to+detect+senescence-associated+beta-galactosidase+%28SA-betagal%29+activity%2C+a+biomarker+of+senescent+cells+in+culture+and+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Protocols to detect senescence-associated beta-galactosidase (SA-betagal) activity, a biomarker of senescent cells in culture and in vivo.</a> Nature Protocols. 4 (12), 1798-1806 (2009).</li>
<li>Cahu, J., Bustany, S., Sola, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Senescence-associated+secretory+phenotype+favors+the+emergence+of+cancer+stem-like+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Death+and+Disease%22%5BJournal%5D)">Senescence-associated secretory phenotype favors the emergence of cancer stem-like cells.</a> Cell Death and Disease. Dec 20, 3-e446(2012).</li>
</ol>

No hay conflictos de interés declarado.

Presentamos aquí un método basado en citometría de flujo para cuantificar la senescencia celular en las células cancerosas vivas. Este método se basa en el uso del compuesto permeable a la membrana, el C 12 FDG, y por lo tanto se puede utilizar en cualquier tipo de células y después de varios tratamientos, siempre y cuando el compuesto es absorbido por las células. Tras la captación celular, el C 12 FDG es hidrolizado por la β-galactosidasa, enriquecido en los lisosomas de las células senescentes. ...

Desde principios de los años sesenta y su descubrimiento por Hayflick y Moorhead, senescencia sigue siendo una curiosidad celular 1. Las células humanas no proliferan indefinidamente y, por senescencia, Hayflick y Moorhead acuñaron el proceso celular de envejecimiento. La senescencia es una detención del ciclo celular estable en el que las células permanecen metabólicamente activa en oposición a la muerte celular. Hasta la fecha, cuatro mecanismos celulares se han mostrado para inducir la senescencia: acortamiento de los telómeros, daño en el ADN, perturbación de la cromatina, y la expresión anormal de oncogenes mitógenos 2. Esto indica que no sólo las células normales, pero también las células cancerosas son capaces de someterse a la senescencia 3. Como cuestión de hecho, las células de cáncer sometidos a la senescencia, se mostró a constituir una barrera para la progresión del tumor 4-5. Sin embargo, varios informes han señalado que, en determinadas circunstancias, la senescencia celular también puede promover la malignidad 6-7. El estudio de la senescencia de cáncer cells está a punto de convertirse en un impulso en la investigación del cáncer tal como se utilizan actualmente los fármacos quimioterapéuticos pueden conducir a la senescencia de las células cancerosas no sólo in vitro sino también in vivo 8. El ensayo principal para investigar la presencia de células senescentes es el ensayo de β-galactosidasa a pH ácido. Este ensayo histoquímico refleja el aumento en la biogénesis lisosomal que ocurre en la mayoría de las células senescentes. Brevemente, exógeno X-gal, aplicada a las células, se escinde por la β-galactosidasa enriquecido en los lisosomas de las células senescentes, dando lugar a un color azul 9. Las células senescentes azules a continuación, pueden ser cuantificados con un microscopio de campo brillante. Aunque es muy popular, el ensayo de β-galactosidasa presenta mayores inconvenientes. En primer lugar, este ensayo se lleva a cabo en células fijadas. En segundo lugar, es mucho tiempo, ya que es necesario cuantificar el grado de senescencia contando un número significativamente alto de células senescentes bajo un microscopio. En tercer lugar, este ensayono es sensible como la discriminación entre las células senescentes y no senescentes se basa enteramente en el observador. Se discuten aquí un ensayo de citometría basada sin explotar, rápida y sensible para evaluar la presencia de células senescentes en vivo. Este ensayo se basa en la hidrólisis de una molécula de membrana permeable, la 5-dodecanoylaminofluorescein di-β-D-galactopiranósido (C 12 FDG), por β-galactosidasa enriquecida en células senescentes. Después de la hidrólisis y de excitación láser, el C 12 FDG emite fluorescencia verde y por lo tanto puede ser detectada por citometría de flujo 10, 11. La detección de las células senescentes a través de citometría de flujo ofrece la gran ventaja de ser rápido y sensible. Además, la detección de las células senescentes por citometría de flujo se puede acoplar con la detección de otros marcadores celulares. Este ensayo se puede usar para detectar las células senescentes dentro de una población de células cancerosas tratadas con quimioterapia y se puede ajustar de forma rutinariaarriba en secciones de tejido, después de la disociación celular, en la clínica.

<table><tbody><tr><td>5-dodecanoilaminofluoresceína di-&#946;-D-galactopiranósido </td><td>Invitrogen</td><td>D-2893</td><td></td></tr><tr><td>Dimetilsulfóxido Sigma </td><td></td><td>D2650</td><td></td></tr><tr><td>Bafilomicicina A1</td><td>Sigma</td><td>B1793</td><td></td></tr><tr><td>Doxorrubicina</td><td>Sandoz</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Azul de tripán</td><td>Sigma</td><td>T8154</td><td></td></tr><tr><td>RPMI 1640 medio de cultivo celular</td><td>Lonza</td><td>BE12-702</td><td></td></tr><tr><td>Suero fetal de ternera PAA</td><td>Laboratories GmBH</td><td>A15 101</td><td></td></tr><tr><td>Antibióticos</td><td>Gibco</td><td>5290-018</td><td></td></tr><tr><td>Citómetro de flujo Gallios</td><td>Beckman Coulter</td><td>A94291</td><td></td></tr></tbody></table>

un método sensible para cuantificar las células cancerosas senescentes

A Sensitive Method to Quantify Senescent Cancer Cells

Las células humanas no proliferan indefinidamente. Al señales externas y / o intrínsecos, las células pueden morir o introduzca un detención del ciclo celular estable llamado senescencia. Varios mecanismos celulares, tales como el acortamiento de los telómeros y la expresión anormal de oncogenes mitógenos, se ha demostrado que causa la senescencia. La senescencia no está restringida a las células normales, las células cancerosas también se ha informado de senescencia. Fármacos quimioterapéuticos han demostrado inducir la senescencia en células de cáncer. Sin embargo, hay controversia sobre la senescencia previene o promueve la tumorigénesis. Como el tiempo podría ser específica del paciente, un método rápido y sensible para evaluar la senescencia en células de cáncer pronto será necesaria. Para este fin, el ensayo de β-galactosidasa estándar, el método utilizado actualmente, presenta importantes inconvenientes: es mucho tiempo y no es sensible. Se propone aquí un ensayo de citometría de flujo basada en la senescencia de estudiar en liVE células. Este ensayo ofrece la ventaja de ser rápido, sensible, y puede ser acoplado a la inmunomarcación de diversos marcadores celulares.

Mieloma múltiple, un tumor maligno hematológico, se utilizó para evaluar la senescencia inducida por un procedimiento quimioterapéutico. Para ello una línea de células MM disponible en el mercado (RPMI 8226) fue tratado durante 2 días con doxorrubicina, un medicamento quimioterapéutico. Las células se sometieron luego a tratamiento bafilomicina A1 y ​​se incubaron adicionalmente con C 12 FDG. Las células se analizaron por citometría de flujo. Figura 1 ilustra los diferentes pasos y muestra qu...

Si senescencia previene o promueve la tumorigénesis sigue siendo controvertido. Como los fármacos quimioterapéuticos pueden inducir a las células cancerosas a la senescencia, el estudio de la senescencia es esencial para proponer nuevas terapias. Sin embargo, el ensayo de β-galactosidasa estándar y ampliamente utilizado presenta importantes inconvenientes. Proponemos aquí un ensayo de citometría basada rápido y sensible para cuantificar el flujo de la senescencia.

Un método sensible para cuantificar las células cancerosas senescentes

Human cells do not indefinitely proliferate. Upon external and/or intrinsic  cues, cells might die or enter a stable cell cycle arrest called senescence. ...

El objetivo general de este procedimiento es cuantificar la senescencia celular de manera rápida y sensible. Aquí demostramos la utilidad de este método en la selección de fármacos quimioterapéuticos potenciales. Primero, inducir la senescencia celular.Se añade el fármaco quimioterapéutico doxorubicina a células cancerosas. A continuación, se aplica Bain A uno para neutralizar el pH ácido de los lisosomas celulares. Luego se añade el sustrato permeable a la célula beta galacto C 12 FDG tras la captación celular.La C 12 FDG se hidroliza y fluoresce. Dado que la beta GCSE está enriquecida en los lisosomas de las células senescentes, estas se vuelven más fluorescentes que las células no senescentes. Para cuantificar la diferencia en fluorescencia, las células se analizan mediante citometría de flujo; el análisis de los datos resultantes permite cuantificar el porcentaje de células cancerosas senescentes bajo diferentes condiciones de tratamiento.La principal ventaja de esta técnica frente a métodos existentes como la prueba de beta galactosa es que facilita la cuantificación rápida y sensible de células senescentes. De hecho, tuvimos la idea inicial para este método cuando experimenta

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Este video ilustra un ensayo basado en citometría de flujo para cuantificar células cancerosas senescentes inducidas por la terapia con marcadores de senescencia duales. La detección y cuantificación de células senescentes implica el uso de un sustrato de β-galactosidasa. El sustrato es escindido por la β-galactosidasa lisosomal activa dentro de las células senescentes, produciendo un producto fluorescente que, junto con gránulos de lipofuscina autofluorescente, marca las células cancerosas...

Cuantificación basada en citometría de flujo de células cancerosas senescentes inducidas por terapia

La senescencia celular, el estado irreversible de la detención del ciclo celular, puede ser inducida por diferentes tipos de estrés celular. A continuación, describimos protocolos para inducir senescencia y métodos celular para evaluar marcadores de senescencia.

Técnicas para inducir la senescencia celular y cuantificar

Aquí, discutimos una serie de protocolos para la inducción y validación de senescencia celular en células cultivadas. Nos enfocamos en diferentes estímulos de inducción de senescencia y describir la cuantificación de los marcadores comunes asociados a senescencia. Proporcionamos detalles técnicos utilizando fibroblastos como modelo, pero los protocolos se adaptan a varios modelos de celulares.

Inducción y validación de senescencia celular en las células humanas primarias

ROS intracelular se ha demostrado para desempeñar un papel importante en la inducción de senescencia celular. Aquí, describimos un análisis sensible para cuantificar los niveles ROS durante la senescencia celular. También ofrecemos protocolos para evaluar el fenotipo secretor asociados a senescencia, que supuestamente contribuye a diferentes disfunciones relacionadas con la edad.

Una medida cuantitativa de especies reactivas de oxígeno y senescencia asociada a fenotipo secretor en fibroblastos humanos normales durante la senescencia inducida por el oncogén

La senescencia celular es el factor clave en el desarrollo de patologías crónicas relacionadas con la edad. La identificación de las terapias que se dirigen a las células senescentes son prometedoras para extender el envejecimiento saludable. Aquí, presentamos un nuevo ensayo para la identificación de senoterapéuticos basado en la medición de la actividad de senescencia asociada a la galactosidasa en células individuales.

Ensayo de cribado basado en sA-Galactosidasa para la identificación de medicamentos senoterapéuticos

Este protocolo describe el flujo de trabajo para el etiquetado metabólico de células senescentes y no en división con SILAC pulsado, análisis de espectrometría de masas no dirigido y un cálculo simplificado de las vidas medias de las proteínas.

Medición de las tasas de recambio de proteínas en células cultivadas senescentes y no divisorias con etiquetado metabólico y espectrometría de masas

Aquí presentamos un método basado en citometría de flujo para la visualización y cuantificación de múltiples marcadores asociados a la senescencia en células individuales.

Detección simultánea basada en imágenes y citometría de flujo de múltiples marcadores de senescencia fluorescente en células cancerosas senescentes inducidas por terapia

Se presenta un protocolo para la cuantificación citométrica de flujo fluorescente de células cancerosas senescentes inducidas por fármacos de quimioterapia en cultivo celular o en modelos tumorales murinos. Los procedimientos opcionales incluyen la co-inmunotinción, la fijación de muestras para facilitar el análisis de lotes grandes o puntos de tiempo, y el enriquecimiento de células senescentes viables mediante clasificación citométrica de flujo.

Sonda de β-galactosidasa asociada a senescencia fluorescente de color rojo lejano para la identificación y el enriquecimiento de células tumorales senescentes mediante citometría de flujo

Este estudio evalúa los efectos proliferativos de los factores de fenotipo secretor asociado a la senescencia (SASP) de las células HeLa senescentes en células HeLa no senescentes utilizando tres modelos in vitro con monitoreo en tiempo real. Las ventajas y limitaciones de cada método se compararon sistemáticamente para comprender mejor las interacciones célula-célula en el cáncer.

Evaluación del efecto de los factores SASP en la proliferación de células cancerosas mediante un análisis comparativo de tres metodologías distintas

Este protocolo presenta microscopía confocal de luz reflejada para la detección objetiva y unicelular de la actividad beta-galactosidasa asociada a la senescencia (SA-β-gal) en la fracción vascular estromal aislada del tejido adiposo humano. El método es compatible con inmunocitoquímica, incorpora controles de pH para la evaluación cuantitativa y, además, ofrece una alternativa más sensible y menos subjetiva a la tinción convencional de SA-β-gal.

Detección de senescencia usando luz reflejada en la fracción vascular estromal adiposa

Este artículo presenta un protocolo LysoTracker de células vivas para medir la remodelación lisosomal durante la senescencia en fibroblastos humanos IMR-90.

Perfilado lisosomal con LysoTracker para la evaluación cuantitativa de la senescencia celular en fibroblastos humanos

Aprenda a cuantificar células senescentes en cáncer mediante citometría de flujo con doxorrubicina. Este método sensible y rápido supera las limitaciones del ensayo β-galactosidasa estándar.

Un método sensible para cuantificar las células cancerosas senescentes

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