Name: Paraplejia reproducible por la oclusión de la aorta torácica en un modelo murino de la médula espinal por isquemia-reperfusión (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-03-03T21:55:00.000+00:00
Duration: 5 min 59 s
Description: Aprende a inducir paraplejía reproducible mediante oclusión de la aorta torácica en un modelo murino de isquemia-reperfusión de la médula espinal. Este método permite estudiar los mecanismos de lesión neurológica.

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Nos gustaría dar las gracias a la Fundación de Cirugía Torácica para la Investigación y la Educación por su apoyo financiero a este proyecto.

1. Preparación preoperatoria y anestesia <ol><li> Asegúrese de seguir una técnica estéril durante todo el procedimiento. Coloque todos los instrumentos. </li><li> Girar en la cama control de la temperatura antes de la inducción de la anestesia de modo que pueda calentar a la temperatura apropiada (36,5 ° C). Potencia en el monitor de perfusión Doppler láser de modo que puede arrancar durante la inducción. </li><li> Coloque el ratón en la cámara de inducción. <ol><li> Controle cuidadosamente la frecuencia respiratoria del ratón durante la inducción. </li><li> Tan pronto como la frecuencia respiratoria se ha ralentizado visualmente, quitar el ratón de la cámara de inducción. </li><li> Realice pizca dedo del pie para evaluar la adecuación de la anestesia. </li></ol></li><li> Con el ratón adecuadamente anestesiado, el lugar del ratón en la posición supina. </li><li> Inserte cara en cono de la nariz y asegure todas las extremidades a la mesa de la calefacción. <ol><li> Preste especial atención a que las extremidades están asegurados en posición anatómica, sin deviatia un lado. Si el ratón está colocado de forma incorrecta, es difícil evitar la transección de la arteria torácica interna durante la esternotomía. </li></ol></li><li> El uso de máquinas de cortar o crema de depilación disponibles en el mercado, eliminar el vello del tórax en la línea media y la parte inferior izquierda la superficie ventral de la extremidad. <ol><li> Si se usa crema de depilación, evite dejar la crema en su lugar por más de 30 segundos, se pueden producir quemaduras como alcalinos. </li></ol></li><li> Valorar concentración vaporizador anestésico volátil para mantener la anestesia adecuada. <ol><li> Fracciones vaporizador esperados son entre 1-5% utilizando isoflurano con alto flujo de O2. </li><li> Concentración vaporizador anestésico volátil debe ajustarse para mantener la anestesia durante la estimulación quirúrgica, manteniendo la respiración espontánea. </li></ol></li></ol> 2. Colocación Laser Doppler sonda rectal <ol><li> Inserte la sonda rectal lubricado en el recto del ratón. Asegure en su lugar para operAting cama. </li><li> Ajuste la cama de calefacción para una temperatura rectal objetivo de 36,5 ° C. </li><li> Hacer de la pequeña incisión sobre la arteria femoral del ratón y diseccionar la piel lejos del tejido subcutáneo. </li><li> Inserte la sonda Doppler láser sobre la arteria femoral. </li><li> Ajuste las posiciones de la sonda hasta que el monitor de perfusión registra mayor que 800 unidades de perfusión. <ol><li> Sonda firmemente en su lugar. Sondas fijado en forma incorrecta puede tener mediciones falsamente baja perfusión. </li></ol></li></ol> 3. La disección del arco aórtico / arteria subclavia <ol><li> Haga una incisión en la piel 2 cm por encima de la horquilla esternal y suavemente diseccionar la piel lejos del tejido subcutáneo. </li><li> Diseccionar la glándula submandibular libre. <ol><li> Si se presenta sangrado, presionar con suavidad puede ser aplicado con un algodón. </li><li> Divida la glándula submandibular a través de la línea media en el plano avascular. </li></ol></li><li> Levante suavemente el esternón con pinzas y con el scissSRO hacen 1 cm esternotomía media a través de la línea media del esternón. Cualquier desviación de la línea media puede resultar en hemorragia de la arteria mamaria interna que será difícil de controlar. </li><li> Coloque 5-0 suturas de retracción en cada lado en el borde del esternón y retraer esternón asegurar lateralmente suturas a la cama en funcionamiento. Evite colocar suturas de retracción demasiado lateralmente para prevenir el neumotórax. </li><li> Utilizando disección roma músculos correa libre a lo largo tráquea. El músculo correa de la izquierda se puede dividir con tijeras para mejorar la exposición. </li><li> Diseccionar liberar el timo del tejido circundante. Continuar disección roma hasta que se visualizan los grandes vasos. Tenga mucho cuidado para evitar la entrada en el espacio pleural. </li><li> Coloque las abrazaderas vasculares en el arco aórtico y la arteria subclavia izquierda. </li><li> Verifique el flujo distal ha interrumpido de manera apropiada. Esto será visto como una reducción&gt; 90% en unidades de perfusión. <ol><li> Continuar oclusión de desirojo para 4-8 min. </li></ol></li><li> Sacar la pinza vascular y verificar hemostasia antes del cierre del pecho. </li></ol> 4. Cierre de esternotomía y la piel <ol><li> Retire la sutura de retracción en el lado izquierdo del ratón. </li><li> Cierre la esternotomía con la sutura de retracción derecha. <ol><li> Una sola sutura esternal (usando la puntada de retracción colocado previamente) es adecuada para el cierre esternal. Colocar otra puntada es innecesario y aumenta los riesgos de neumotórax y hemorragia. </li></ol></li><li> Cerrar la piel con el funcionamiento de 5-0 puntada. </li></ol> 5. Evaluación y Recuperación postoperatoria <ol><li> Transferir el ratón para jaula de recuperación. Jaula debe ser colocado sobre una almohadilla de calentamiento para aumentar la temperatura ambiente de la cámara de recuperación y reducir la pérdida de calor al medio ambiente. </li><li> Vigilar de cerca el ratón en busca de signos de dificultad respiratoria o la actividad convulsiva. Administrar la analgesia por directrices de la institución. Eutharatones nize inmediatamente si se observan convulsiones o dificultad respiratoria. <ol><li> CO 2 eutanasia cámara es nuestro método preferido. La dislocación cervical es otra opción si el CO 2 no está disponible. </li><li> La recuperación completa se puede esperar en 1-2 horas, dependiendo de la longitud de anestésico volátil y la concentración usada. </li></ol></li><li> Devuelva el ratón para jaula normal. Coloque los alimentos y el lugar de agua en el suelo de la jaula. </li><li> Evaluar el estado neurológico a intervalos de 12 h utilizando Basso Ratón Escala de Locomotion 8. </li></ol>

<ol><li>Conrad, M. F., Ye, J. Y., Chung, T. K., Davison, J. K., Cambria, R. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spinal+cord+complications+after+thoracic+aortic+surgery%3A+long-term+survival+and+functional+status+varies+with+deficit+severity%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vasc.+Surg%22%5BJournal%5D)">Spinal cord complications after thoracic aortic surgery: long-term survival and functional status varies with deficit severity.</a> J. Vasc. Surg. 48, 47-53 (2008).</li>
<li>Okita, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fighting+spinal+cord+complication+during+surgery+for+thoracoabdominal+aortic+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Gen.+Thorac.+Cardiovasc.+Surg%22%5BJournal%5D)">Fighting spinal cord complication during surgery for thoracoabdominal aortic disease.</a> Gen. Thorac. Cardiovasc. Surg. 59, 79-90 (2011).</li>
<li>Wong, D. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Delayed+spinal+cord+deficits+after+thoracoabdominal+aortic+aneurysm+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Thorac.+Surg%22%5BJournal%5D)">Delayed spinal cord deficits after thoracoabdominal aortic aneurysm repair.</a> Ann. Thorac. Surg. 83, 1345-1355 (2007).</li>
<li>Taira, Y., Marsala, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+proximal+arterial+perfusion+pressure+on+function%2C+spinal+cord+blood+flow%2C+and+histopathologic+changes+after+increasing+intervals+of+aortic+occlusion+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Effect of proximal arterial perfusion pressure on function, spinal cord blood flow, and histopathologic changes after increasing intervals of aortic occlusion in the rat.</a> Stroke. 27, 1850-1858 (1996).</li>
<li>Naslund, T. C., Hollier, L. H., Money, S. R., Facundus, E. C., Skenderis, B. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protecting+the+ischemic+spinal+cord+during+aortic+clamping.+The+influence+of+anesthetics+and+hypothermia%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Surg%22%5BJournal%5D)">Protecting the ischemic spinal cord during aortic clamping. The influence of anesthetics and hypothermia.</a> Ann. Surg. , 409-515 (1992).</li>
<li>Qayumi, A. K., Janusz, M. T., Lyster, D. M., Gillespie, K. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+model+for+investigation+of+spinal+cord+injury+caused+by+aortic+cross-clamping%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Invest.+Surg%22%5BJournal%5D)">Animal model for investigation of spinal cord injury caused by aortic cross-clamping.</a> J. Invest. Surg. 10, 47-52 (1997).</li>
<li>Lang-Lazdunski, L., Matsushita, K., Hirt, L., Waeber, C., Vonsattel, J. P., Moskowitz, M. A., Dietrich, W. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spinal+Cord+Ischemia%3A+Development+of+a+model+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Spinal Cord Ischemia: Development of a model in the mouse.</a> Stroke. 31, 208-213 (2000).</li>
<li>Basso, D. M., Fisher, L. C., Anderson, A. J., Jakeman, L. B., McTigue, D. M., Popovich, P. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Basso+Mouse+Scale+for+locomotion+detects+differences+in+recovery+after+spinal+cord+injury+in+five+common+mouse+strains%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Basso Mouse Scale for locomotion detects differences in recovery after spinal cord injury in five common mouse strains.</a> J. Neurotrauma. 23, 635-659 (2006).</li>
<li>Kwon, B. K., Tetzlaff, W., Grauer, J. N., Beiner, J., Vaccaro, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pathophysiology+and+pharmacologic+treatment+of+acute+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Spine.+J%22%5BJournal%5D)">Pathophysiology and pharmacologic treatment of acute spinal cord injury.</a> Spine. J. 4, 451-464 (2004).</li>
<li>Cheshire, W. P., Santos, C. C., Massey, E. W., Howard, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spinal+cord+infarction%3A+etiology+and+outcome%5BTitle%5D)+AND+%22Neurology%22%5BJournal%5D)">Spinal cord infarction: etiology and outcome.</a> Neurology. 47, 321-330 (1996).</li>
<li>Kakinohana, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Delayed+paraplegia+after+spinal+cord+ischemic+injury+requires+caspase-3+activation+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Delayed paraplegia after spinal cord ischemic injury requires caspase-3 activation in mice.</a> Stroke. 42 (8), 2302-2307 (2011).</li>
<li>Wang, Z., Yang, W., Britz, G. W., Lombard, F. W., Warner, D. S., Sheng, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+simplified+spinal+cord+ischemia+model+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci.+Methods%22%5BJournal%5D)">Development of a simplified spinal cord ischemia model in mice.</a> J. Neurosci. Methods. 189, 246-251 (2010).</li>
<li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((model+of+ischemic+spinal+cord+injury+with+delayed+paralysis+caused+by+aortic+cross-clamping%5BTitle%5D)+AND+%22Anesthesiology%22%5BJournal%5D)">model of ischemic spinal cord injury with delayed paralysis caused by aortic cross-clamping.</a> Anesthesiology. 113, 880-891 (2010).</li>
<li>Kang, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+systemic+hypothermia+on+a+murine+model+of+thoracic+aortic+ischemia+reperfusion%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vasc.+Surg%22%5BJournal%5D)">The effects of systemic hypothermia on a murine model of thoracic aortic ischemia reperfusion.</a> J. Vasc. Surg. 52, 435-443 (2010).</li>
<li>Li, J., Benashski, S., McCullough, L. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Post-stroke+hypothermia+provides+neuroprotection+through+inhibition+of+AMP-activated+protein+kinase%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Post-stroke hypothermia provides neuroprotection through inhibition of AMP-activated protein kinase.</a> J. Neurotrauma. 28 (7), 1281-1288 (2011).</li>
</ol>

Los autores declaran no tener intereses financieros en competencia.

Paraplejia secundaria a la médula reperfusión isquemia de la médula es el resultado de un complejo de patologías poco comprendidos 9. Si bien esto es más frecuente después de la cirugía de la aorta toracoabdominal, una variedad de otros insultos tales como las disecciones de aorta, traumatismos, fenómenos embólicos, vasculitis, y la hipotensión sistémica 10 puede resultar en paraplejia. Para lograr una mejor comprensión de esta lesión y proporcionar objetivos futuros para eliminar esta lesión, los ...

Parálisis de las extremidades inferiores sigue complicando intervenciones toracoabdominal. La lesión, conocida como la médula espinal lesión por isquemia-reperfusión (SCIR), resulta en la parálisis en hasta el 20% de los pacientes de alto riesgo 1. Auxiliares quirúrgicas como el bypass cardíaco izquierdo, lumbar fluido drena cerbrospinal, paro circulatorio hipotérmico y reimplantación de la arteria intercostal han reducido la incidencia de esta complicación 2, sin embargo, demasiados pacientes continúan siendo afectados. Clínicamente, la isquemia de la médula espinal y lesión por reperfusión se considera como inmediata o tardía parálisis después de la intervención 3. Sin embargo, nuestra comprensión de esta lesión ha sido sofocado por la falta de detalles mecanicista. Como resultado, algunas opciones están disponibles para atenuar el daño una vez que ha ocurrido. Así, hemos alistado un animal pequeño, modelo murino de isquemia de la médula espinal, y la lesión de reperfusión amejor caracterizar su patogénesis. La mayoría de los estudios hasta la fecha han utilizado modelos animales más grandes para caracterizar esta lesión, a saber, la rata 4, 5 conejo, cerdo y 6 modelos. Sin embargo, éstos están limitados por su coste, la complejidad, la reproducibilidad variable y, lo más importante, la falta de técnicas disponibles para la manipulación genética. El más fiable de estos modelos animales publicados implica pinzamiento cruzado de infrarrenal de la aorta abdominal en conejos. Sin embargo, anteriores humano neuronas espinales más a menudo obtienen su suministro vascular de las ramas más proximales 7. Anatomía vascular variable de la médula espinal en estos modelos añade a la dificultad en la transición de sus resultados en el uso clínico. Este manuscrito presenta un modelo para la paraplejía inmediata o retardada después de la oclusión de la aorta torácica que es clínicamente relevante y fácil de emplear. Exposición del arco aórtico a través de mini sternotomi es menos invasivo y puede provocar resultados altamente reproducibles con mínima morbilidad y mortalidad. Si bien este modelo en no sin problemas y matices técnicos, éstos se pueden superar con una cuidadosa disección y manipulación de tejidos para producir un modelo de parálisis de las extremidades posteriores que se puede implementar fácilmente.

<table><tbody><tr><td>Máquina de anestesia VMS MDS</td><td>Matrx</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Isoflurano</td><td>Vet One</td><td>13985-528-60</td><td>2.0% a través del cono nasal&nbsp;</td></tr><tr><td>cámara de inducción</td><td>Vet Equip</td><td>941444</td><td></td></tr><tr><td>cama calefactora</td><td>Vestavia Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Lazer Doppler Monitor</td><td>Moor Instruments</td><td>VMS-LDF1</td><td></td></tr><tr><td>5-0 Sutura, Poliéster</td><td>Surgidac</td><td>VD-551</td><td>Aguja cónica</td></tr><tr><td>Pinzas de microdisección Instrumentos</td> de <td>investigación biomédica</td><td>14-1030, 14-1060</td><td></td></tr><tr><td>Quirúrgico Instrumentos</td> Instrumentos <td></td><td>quirúrgicos finos</td><td>Pinzas, portaagujas</td></tr></tbody></table>

paraplejia reproducible por la oclusión de la aorta torácica en un modelo murino de la médula espinal por isquemia-reperfusión

Reproducable Paraplegia by Thoracic Aortic Occlusion in a Murine Model of Spinal Cord Ischemia-reperfusion

Fondo Parálisis de las extremidades inferiores sigue complicando las intervenciones de aorta. La falta de comprensión de la patología subyacente ha obstaculizado los avances para disminuir la incidencia de esta lesión. El modelo actual demuestra menor parálisis de las extremidades reproducible después de la oclusión de la aorta torácica. Métodos Ratones C57BL6 macho adultos fueron anestesiados con isoflurano. A través de una incisión cervicosternal la aorta fue expuesto. Las arterias aorta y subclavia izquierda torácica descendente se identificaron sin entrada en el espacio pleural. Esqueletonización de estas arterias fue seguido por el cierre inmediato (Sham) u oclusión de 4 min (isquemia moderada) o 8 min (isquemia prolongada). La esternotomía y la piel se cerraron y el ratón fue trasladado a la cama calentamiento para la recuperación. Después de la recuperación, el análisis funcional se obtuvo a los 12 intervalos h hasta las 48 h. Resultados jove_content Los ratones que fueron sometidos a cirugía simulada mostraron ningún déficit de las extremidades posteriores observable. Los ratones sometidos a isquemia moderada durante 4 min tuvieron déficit funcional mínima en 12 horas, seguido de la progresión a la parálisis completa a las 48 h. Los ratones sometidos a isquemia prolongada tenían una parálisis inmediata con ningún movimiento de las extremidades posteriores observable en cualquier punto en el postoperatorio. No había observado intraoperatoria o la mortalidad postoperatoria. Conclusión Reproducible inferior parálisis de las extremidades sean inmediatos o diferidos se puede lograr en un modelo murino. Además, mediante el uso de una esternotomía mediana y disección cuidadosa, las altas tasas de supervivencia, y reproducibilidad que se puede lograr.

Los ratones se sometieron a cirugía simulada (n = 3) o de oclusión aórtica para 4 (n = 3) a 8 min (n = 3). Los ratones después de la operación se calificaron por el Score Basso ratón (Figura 1). Los ratones que fueron sometidos a cirugía simulada no tenían déficits funcionales observables en cualquier momento después de la operación. Los ratones sometidos a isquemia moderada (4 min) tenían cerca de la función normal de las extremidades posteriores, a las 12 horas con el deterioro funcional progresivo a ...

La falta de comprensión mecanicista de la médula espinal lesión por isquemia-reperfusión ha obstaculizado otros aditamentos para prevenir la paraplejia después de las operaciones de aorta de alto riesgo. Por lo tanto, el desarrollo de modelos animales es imperativo. Este manuscrito demuestra menor parálisis de las extremidades reproducible después de la oclusión de la aorta torácica en un modelo murino.

Paraplejia reproducible por la oclusión de la aorta torácica en un modelo murino de la médula espinal por isquemia-reperfusión

Background
Lower extremity paralysis continues to complicate aortic interventions. The lack of understanding of the underlying pathology has hindered ...

El objetivo general del siguiente experimento es estudiar los efectos de la isquemia de la médula espinal en un modelo murino. Esto se logra primero insertando una sonda de láser doppler sobre la arteria femoral. A continuación, se realiza la esternotomía para acceder al arco aórtico y a la arteria subclavia izquierda.Luego se realiza una disección cuidadosa de la aorta y las arterias subclavias con el fin de reducir adecuadamente el flujo sanguíneo arterial hacia la médula espinal. Se obtienen los resultados. El cho, un déficit neurológico posoperatorio, que se basa en la puntuación del ratón Baso.La principal ventaja de esta técnica frente a otros métodos existentes, como la toracotomía lateral, es que no se viola el espacio pleural. Este método puede ayudar a responder preguntas sobre la fisiopatología de la médula espinal, la lesión por isquemia de perfusión y a proporcionar posibilidades para intervenciones farmacológicas. La implicación de esta técnica se extiende hacia terapias para prevenir la paraplejia tras isquemia medular. Aunque este método puede proporcionar información sobre la paraplejia, que complica la cirugía torácica, también puede aplicarse a otros procesos pat

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El procedimiento quirúrgico para la inducción de isquemia miembro posterior unilateral se demuestra, con la confirmación de la isquemia por imágenes de perfusión Doppler láser.

Modelo murino de isquemia Miembro Posterior

La insuficiencia respiratoria es la principal causa de muerte a raíz de una lesión de la médula espinal cervical. Tener un modelo animal preclínico reproducible, cuantificable y confiable de la insuficiencia respiratoria inducida por una lesión cervical parcial le ayudará a comprender la neuroplasticidad respiratoria y no respiratoria posterior y permiten probar estrategias de reparación putativos.

Un modelo murino de la médula espinal cervical Lesión en estudio post-lesional Respiratorio Neuroplasticidad

La fototrombosis es un procedimiento mínimamente invasivo y altamente reproducible para inducir isquemia focal en la médula espinal y sirve como modelo de lesión de la médula espinal en ratones.

Photothrombosis inducida por isquemia focal como un modelo de lesión de médula espinal en ratones

Este artículo describe un método para generar una lesión por compresión de la médula espinal (LME) reproducible en el ratón neonatal. El modelo proporciona una plataforma ventajosa para estudiar los mecanismos de plasticidad adaptativa que subyacen a la recuperación funcional espontánea.

Un ratón neonatal lesión de médula espinal de compresión Modelo

La comprensión de los mecanismos celulares y moleculares de la re-endotelización después de una lesión arterial denudación es de suma importancia en la prevención de la trombosis y la reestenosis de las arterias. Aquí se describe un protocolo para la denudación lesiones arteriales reproducible de la aorta abdominal infrarrenal. El procedimiento fue desarrollado para investigar los mecanismos subyacentes que regulan la regeneración endotelial utilizando modelos de ratón.

Reproducible lesión arterial Denudación por pinzamiento aórtico abdominal infrarrenal en un modelo murino

Este estudio demuestra la técnica para hacer un modelo mínimamente invasivo y fácilmente reproducible de la isquemia de la médula espinal en ratas. Se pueden producir varios grados de déficit motor de la extremidad posterior controlando el tiempo de oclusión aórtica.

El déficit motor reproducible después de la oclusión aórtica en un modelo de rata de la isquemia de la médula espinal

Obstrucción de filamento intraluminal de la arteria cerebral media es el modelo más frecuentemente utilizado en vivo del movimiento experimental en roedores. Una alternativa quirúrgica para permitir la reparación de la arteria carótida común se realiza aquí, lo que permite la reperfusión de la arteria carótida común y una reperfusión completa para el territorio de la arteria cerebral media.

Oclusión de la arteria Cerebral Media permitiendo la reperfusión mediante la reparación de la arteria carótida común en ratones

Un modelo murino de isquemia-reperfusión cerebral es establecido para investigar la patofisiología del accidente cerebrovascular. Distal, ligar la arteria cerebral media derecha y la arteria carótida común derecha y restablecer el flujo sanguíneo después de 10 o 40 min de isquemia.

Oclusión de los vasos dos ratón modelo de isquemia-reperfusión Cerebral

Este protocolo describe cómo crear una laminectomía precisa para la inducción de lesiones medulares estables de tipo transección en el modelo de ratón, con un daño colateral mínimo para la investigación de lesiones de la médula espinal.

Inducción de lesiones completas de la médula espinal de tipo transección en ratones

La microcirculación de la médula espinal juega un papel fundamental en la lesión de la médula espinal. La mayoría de los métodos no permiten la evaluación en tiempo real de la microcirculación de la médula espinal, que es esencial para el desarrollo de terapias dirigidas a la microcirculación. Aquí, proponemos un protocolo utilizando sondas Laser-Doppler-Flow Needle en un modelo animal grande de isquemia / reperfusión.

Evaluación en tiempo real de la microperfusión de la médula espinal en un modelo porcino de isquemia/reperfusión

Describimos cómo generar un modelo quirúrgico ampliamente utilizado de lesión por isquemia-reperfusión intestinal (IRI) en roedores. El procedimiento consiste en la oclusión de la arteria mesentérica superior seguida de la restauración del flujo sanguíneo. Este modelo es útil para los estudios que investigan las causas oclusivas de la IRI intestinal tanto en medicina veterinaria como humana.

Modelo en roedor de lesión por isquemia-reperfusión intestinal por oclusión de la arteria mesentérica superior

Aprende a inducir paraplejía reproducible mediante oclusión de la aorta torácica en un modelo murino de isquemia-reperfusión de la médula espinal. Este método permite estudiar los mecanismos de lesión neurológica.

Paraplejia reproducible por la oclusión de la aorta torácica en un modelo murino de la médula espinal por isquemia-reperfusión

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