Name: En la migración celular y la invasión ensayos in vitro (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-06-01T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 55 s
Description: Aprenda métodos de ensayo de cierre de herida y transwell para estudiar la migración e invasión celular in vitro. Estas técnicas accesibles permiten analizar la motilidad celular en investigaciones de biología del cáncer e inmunología.

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Los autores agradecen a Mike Myles, Sam Saunders y C.W. Elton de los Servicios Multimedia y de Tecnología de la ECU por proporcionar asistencia en la producción de vídeo. Agradecemos el apoyo de la subvención del Centro de Biotecnología de Carolina del Norte, Golfers against Cancer, Brody Brothers Endowment Fund, American Heart Association y ECU/Vidant Cancer Research and Education Fund (L.V.Y. y M.J.R.).

1. Ensayo de cierre de la herida Cultivo Celular <ol><li> Separar las células de la placa de cultivo de tejidos usando 0,25% de solución de tripsina-EDTA. Precipitar las células en un tubo cónico de 15 ml por centrifugación, aspirar el sobrenadante, y las células en medio de cultivo re-suspenden. Placa del número apropiado de células en una placa de 6 pocillos para el 100% de confluencia en 24 horas. Nota: Se pueden necesitar exámenes para determinar el tiempo y el número de células para lograr el 100% de confluencia por el tipo celular y el tamaño de la siendo bien utilizado (por ejemplo, 1 x 10 6 células de melanoma B16F10 se sembraron en un pocillo de una placa de 6 pocillos 24 horas antes de la generación de la herida). Alternativamente, se pueden utilizar de 12 pocillos o placas de 24 pocillos. Nota: Si está disponible, las células pueden ser sembradas en una cultura-Insert (de ibidi LLC) en una placa de cultivo de tejido tratado de hacer la herida previamente fundido. Una cultura-Insert puede proteger la superficie de la placa de cultivo de tejidos del daño causado por la punta de la pipeta. Si una cultura-Insert se utiliza el paso de omisión1.2. </li><li> En un entorno estéril (típicamente una campana de bioseguridad) utiliza una punta de pipeta 200 l para presionar con firmeza contra la parte superior de la placa de cultivo de tejidos y rápidamente crea una herida vertical de abajo a través de la monocapa de células. Una punta de pipeta de tamaño diferente puede ser utilizado para hacer el tamaño de la herida que se desea. No use fuerza excesiva contra la placa de cultivo de tejidos con la punta de la pipeta, ya que puede dañar la superficie. Si la herida es pre-fundido, este paso se puede omitir. </li><li> Aspirar con cuidado los medios de comunicación y los restos celulares. Agregar lentamente suficiente medio de cultivo contra la pared del pozo para cubrir la parte inferior del pozo y evitar separar las células adicionales. Después de la generación y la inspección de la herida se debe tomar una imagen inicial. Coloque la placa de cultivo de tejido en una incubadora a la temperatura adecuada y la concentración de CO 2 (típicamente 37 ° C y 5% de CO 2). </li><li> En varios momentos de la hora, por ejemplo, cada 3 horas, retire la placa de la incuo y lo coloca bajo un microscopio invertido para tomar una imagen instantánea y para verificar el cierre de heridas. Si el tiempo transcurrido microscopía está disponible, tomar una foto cada X número de minutos (por lo general a partir de cada 5 minutos) para cualquier duración de tiempo en una temperatura y CO 2 cámara controlada. Dependiendo del tipo de célula, el tiempo de cierre de la herida puede variar. </li><li> Para analizar los resultados de las imágenes de captura, medir la distancia de un lado de la herida al otro usando una barra de escala. Analizar y cierre claramente presente la herida en el tiempo utilizando un gráfico de dispersión o gráfico de barras, por ejemplo, la Figura 1. </li><li> Para analizar las imágenes con lapso de tiempo, importar las imágenes en el software ImageJ (disponible gratuitamente en http://rsb.info.nih.gov/ij/) para hacer un video. Para ello ImageJ abierto, haga clic en Archivo, Importar y, Secuencia de imágenes. Busque el archivo con imágenes; haga clic en la primera foto en el archivo. Guardar vídeo seleccionando Archivo, Guardar como, y AVI. Las células individuales que migran se pueden observar a characterize movimiento direccional. Además, las características morfológicas, tales como la formación de lamelipodios y posterior retracción del borde pueden ser estudiados como así (Figura 2 y de vídeo adicional). </li></ol> 2. Migración celular y la invasión Transwell Ensayo <ol><li> En un entorno estéril (típicamente una campana de bioseguridad) separar las células de la placa de cultivo de tejidos utilizando un tampón no enzimático de disociación de células o 0,25% de solución de tripsina-EDTA, las células de pellets por centrifugación, y aspirar el medio existente dejando las células sedimentadas. Volver a suspender las células en medio de cultivo celular libre de suero que contiene 0,1% de BSA (albúmina de suero bovino). Nota: Dependiendo de la línea celular que se investiga 0,25% de tripsina-EDTA puede afectar a la migración celular y la invasión debido a la escisión de varios receptores en la superficie de la célula 17. Nota: El número de células por ml depende del tamaño de las células. Será necesario realizar más pruebas para determinar una densidad de siembra que prociona los mejores resultados. Típicamente 1 x 10 6 células / ml es un buen punto de partida para la mayoría de tipos de células cuando se utiliza el 24 pocillos Transwell insertar. Hay una gama de tamaños de inserto Transwell y el número de células añadidas se debe ajustar para en consecuencia. </li><li> Placa de 100 l de solución de células en la parte superior de la membrana de filtro en un inserto de Transwell y se incuba durante 10 minutos a 37 ° C y 5% de CO 2 para permitir que las células se colocan abajo. Nota: El tamaño de poro particular de la membrana Transwell utilizado depende del tamaño individual de las células en la muestra. Por ejemplo, si las células son demasiado pequeñas que pueden pasar a través de los poros sin la necesidad de facilitar la migración o si son demasiado grande no puede encajar a través de los poros. Hay varias inserciones Transwell con tamaños de poro que varían desde 3 m, 5 m, y 8 m para ensayos de migración celular. Los insertos Transwell están disponibles comercialmente de compañías tales como Corning. Nota: El transwell mensayo a migración se puede modificar fácilmente para realizar el ensayo de invasión celular. Para ello, agregue la matriz extracelular (ECM) de materiales en la parte superior de la membrana transwell y luego añadir las células en la parte superior de la ECM. Por ejemplo, Matrigel se descongela y se licua en hielo, y luego 30-50 l de Matrigel se añade a un 24-así Transwell insertar y solidificó en una incubadora a 37 ° C durante 15-30 minutos para formar una capa de gel delgada. Solución de células se añade en la parte superior de la capa de Matrigel para simular invasión a través de la matriz extracelular. Nota: Existen claras diferencias entre la migración celular transwell y los ensayos de invasión celular transwell. El ensayo de migración de células Transwell mide la capacidad quimiotáctica de las células hacia una quimio-atrayente. El ensayo de invasión de células Transwell, sin embargo, mide tanto la quimiotaxis de células y la invasión de células a través de la matriz extracelular, un proceso que se encuentra comúnmente en la metástasis del cáncer o el desarrollo embrionario. </li><li> Con una pipeta, muy carefañadir ully 600 l de la quimio-atrayente deseado en la parte inferior de la cámara baja en una placa de 24 pocillos. Añadir la quimio-atrayente sin mover el inserto transwell y evitar la generación de burbujas. Asegúrese de que el líquido-quimio atrayente en el pozo inferior hace contacto con la membrana en el pocillo superior para formar un gradiente quimiotáctico. El tiempo de incubación depende del tipo de célula y la quimio-atrayente utilizado. Nota: Se pueden necesitar pruebas adicionales para determinar el período de incubación. Nota: Para las células adherentes, las células migradas se adjunte al otro lado de la membrana 1,8. La cuantificación de células migradas se puede realizar siguiendo los pasos 2.4 a 2.8 (pasos 2.4 a 2.8 no necesita ser realizado en un ambiente estéril). Para las células no adherentes, las células migraron caerán en los medios de comunicación en la cámara baja. El número de células migradas se puede contar mediante el uso de hemocitómetro o citómetro de flujo 5. </li><li> Retire el inserto transwell de la placa. Utilice un aplicador con punta de algodón tantas veces como sea necesario para remover cuidadosamente los medios de comunicación y las células restantes que no han migrado desde la parte superior de la membrana sin dañarlo. </li><li> Añadir 600-1.000 l de etanol al 70% en un pocillo de una placa de 24 pocillos. Coloque el inserto Transwell en el etanol al 70% durante 10 minutos para permitir la fijación de células. Eliminar Transwell inserto de la placa de 24 pocillos y utilizar un aplicador con punta de algodón para eliminar el etanol restante desde la parte superior de la membrana. Permita que la membrana transwell se seque (normalmente 10-15 minutos). </li><li> Añadir 600-1.000 l de 0,2% de cristal violeta en un pocillo de una placa de 24 pocillos y la posición de la membrana en él para la tinción. Se incuba a temperatura ambiente durante 5-10 minutos. </li><li> Retire suavemente el cristal violeta en la parte superior de la membrana con una punta de pipeta o punta de algodón aplicador. Con mucho cuidado, para evitar el lavado de células fijadas, sumergir la membrana en agua destilada tantas veces como sea necesario para eliminar el exceso viole cristalt. Permita que la membrana transwell se seque. </li><li> Ver debajo de un microscopio invertido y contar el número de células en diferentes campos de visión para obtener una suma promedio de células que han migrado a través de la membrana hacia la quimio-atrayente y unidos en la parte inferior de la membrana (Figura 3). </li></ol>

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<li>Cortesio, C. L., Boateng, L. R., Piazza, T. M., Bennin, D. A., Huttenlocher, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Calpain-mediated+proteolysis+of+paxillin+negatively+regulates+focal+adhesion+dynamics+and+cell+migration%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Calpain-mediated proteolysis of paxillin negatively regulates focal adhesion dynamics and cell migration.</a> J. Biol. Chem. 286 (12), 9998-10006 (2011).</li>
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</ol>

Los autores declaran que no tienen intereses financieros contrapuestos.

La migración celular es un aspecto importante para estudiar en la investigación del cáncer y también se puede aplicar a los estudios de curación de desarrollo, inmunológicos y de la herida. El cultivo de células de ensayo de la herida cierre y ensayos de la migración celular y la invasión Transwell revelar información detallada de comportamientos migratorios celulares y se puede utilizar para investigar los mecanismos moleculares de la migración de células 1,2,10,14. Nuestro estudio utilizó estos ensayos de l...

La motilidad es una característica esencial de las células vivas. La migración celular está implicado en la concepción de la vida, el desarrollo embrionario, la respuesta inmune, y muchos procesos patológicos, tales como la metástasis del cáncer y la inflamación 1-9. Por lo tanto, los métodos para estudiar el comportamiento migratorio de células son las herramientas de investigación de gran utilidad para una amplia gama de disciplinas en las ciencias biomédicas, biología, bioingeniería y otros campos relacionados. El estudio de la migración celular en la investigación del cáncer es de particular interés como la principal causa de muerte en los pacientes de cáncer está relacionado con la progresión metastásica. Con el fin de cáncer se propague y difundir a través del cuerpo, las células cancerosas deben migrar e invadir a través de la matriz extracelular (ECM), intravasate en circulación de la sangre, adjuntar a un sitio distante, y finalmente extravasación para formar focos distantes 1,10-12. Varios métodos biológicos se pueden emplear para estudiar estos eventos en detalle. El cultivo de células de la herida-cierre de unensayos d la migración y la invasión transwell se utilizan ampliamente en la comunidad científica de 1,10. Estas pruebas pueden proporcionar los datos necesarios que puedan permitir una comprensión de lo bien que un tipo particular de célula de forma espontánea puede migrar o responder a una quimio-atrayente y direccionalmente migrar hacia ella. Varios fenotipos migratorias se han descrito. Las células pueden migrar en forma de una sola célula, como se ve en mesenquimales o movimiento ameboide como o por el movimiento multicelular marcado la migración colectiva de células o streaming de 13. El método de movimiento utilizado en células móviles se puede observar fácilmente usando el ensayo de cierre de la herida cultivo celular. Entre las numerosas formas de estudiar la migración celular, el ensayo de cierre de la herida celular es uno de los más sencillos. Este método es útil para determinar la capacidad de migración de masas de células enteras. Cuando se toma un paso más allá que puede ser utilizado para observar las características morfológicas de células individuales durante la migración 14. Tras el análisis de la cierre de la herida muchos fenotipos pueden ser revelados. Medición de la distancia de cierre con el tiempo cuando se compara con un control puede revelar cambios específicos de migración o un fenotipo migratorio deteriorado que no se conocía previamente. Por otra parte, la formación de un solo lamellipodium celular, retracción de la cola, y el movimiento direccional pueden dar pistas de lo que puede verse afectada o el incremento en las células de interés 14. La migración Transwell y ensayos de invasión se pueden usar para analizar la capacidad de las células individuales para responder direccionalmente a varios quimioatrayentes si son quimiocinas, factores de crecimiento, lípidos, nucleótidos o 4,5,8,15,16. También se puede evaluar la capacidad migratoria diferencial debido a la sobre-expresión de un receptor de 1,14. Estos ensayos también se pueden utilizar para identificar y caracterizar los principales reguladores de la migración celular, tales como la familia Rho de pequeñas GTPasas 2. A raíz de estos cortos y de fácil accespruebas bles, el modo de la migración celular y la capacidad de una célula para invadir en una matriz de 3-D también se pueden determinar.

<table><tbody><tr><td>Dulbecco' s medio Eagle modificado (DMEM)</td><td>Gibco</td><td>11995-073</td><td></td></tr><tr><td>Suero fetal bovino (FBS)</td><td>Gemini</td><td>100106</td><td></td></tr><tr><td>Albúmina sérica bovina (BSA)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A4503-50G</td><td></td></tr><tr><td>Tripsina EDTA 0.25%</td><td>Gibco</td><td>25200-056</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco' Solución salina tamponada con fosfato (DPBS)</td><td>Gibco</td><td>14190-250</td><td></td></tr><tr><td>Violeta cristalino</td><td>Sigma</td><td>C0775-100G</td><td>Disuelto en agua al 0,2%</td></tr><tr><td>Tampón de disociación celular</td><td>Gibco</td><td>13151-014</td><td></td></tr><tr><td>Incubadora de cultivo celular</td><td>Thermo Fisher Scientific Model</td><td></td><td># 3145</td></tr><tr><td>Campana de bioseguridad SterilGARD</td><td>The Baker Company, Inc.&nbsp;</td><td></td><td>Modelo # VBM-600</td></tr><tr><td>EVOS Microscopio invertido Fl</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td></td><td>Modelo # AMF-4302-US</td></tr><tr><td>Placa de cultivo de tejidos</td><td>Becton Dickinson</td><td>353046</td><td>El número de catálogo varía según el tipo de placa de cultivo</td></tr><tr><td>Inserto Corning Transwell Fisher</td><td></td><td>07-200-150</td><td>El número de catálogo varía según el tamaño de poro de la membrana</td></tr></tbody></table>

en la migración celular y la invasión ensayos in vitro

In vitro Cell Migration and Invasion Assays

La migración es una propiedad clave de las células vivas y es fundamental para el desarrollo normal, la respuesta inmunitaria y los procesos de enfermedad como la metástasis del cáncer y la inflamación. Los métodos para examinar la migración celular son muy útiles e importantes para una amplia gama de investigaciones biomédicas, como la biología del cáncer, la inmunología, la biología vascular, la biología celular y la biología del desarrollo. Aquí usamos la migración e invasión de células tumorales como ejemplo y describimos dos ensayos relacionados para ilustrar los métodos comúnmente utilizados y de fácil acceso para medir estos procesos. El primer método es el ensayo de cierre de heridas de cultivo celular en el que se genera un rasguño en una monocapa celular confluente. La velocidad de cierre de la herida y la migración celular se pueden cuantificar tomando imágenes instantáneas con un microscopio invertido regular en varios intervalos de tiempo. Se puede documentar un comportamiento migratorio celular más detallado utilizando el sistema de microscopía de lapso de tiempo. El segundo método descrito en este trabajo es el ensayo de migración e invasión de células transwell que mide la capacidad de motilidad e invasividad celular hacia un gradiente quimio-atrayente. Nuestro objetivo es describir estos métodos de una manera altamente accesible para que los procedimientos puedan realizarse con éxito en laboratorios de investigación, incluso solo con una configuración básica de biología celular.

El ensayo de cierre de la herida y el ensayo de migración de células Transwell que aquí se presenta se realizaron con células de melanoma de ratón B16F10 como un sistema modelo. En el ensayo de cierre de la herida, B16F10 células se sembraron en una placa de cultivo tisular de 6 pocillos y se cultivaron hasta 100% de confluencia en 24 horas. Una herida de aproximadamente 700 m de ancho se ha generado utilizando una punta de pipeta y el cierre de la herida (migración celular) fue grabado usando la microscopía de lapso de...

De uso general, se describen métodos muy accesibles para el examen de la migración celular y la invasión in vitro. El primer método es el ensayo de cierre de la herida de células que mide la motilidad celular. El segundo método es la migración y la invasión de ensayo Transwell que evalúa la quimiotaxis y la capacidad invasiva de las células.

En la migración celular y la invasión ensayos in vitro

Migration is a key property of live cells and critical for normal development, immune response, and disease processes such as cancer metastasis and ...

La migración celular es un proceso altamente dinámico. Es importante para varias funciones fisiológicas, como el desarrollo embrionario normal, la respuesta inmunitaria, así como para procesos de enfermedad. Por ejemplo, la metástasis del cáncer y la inflamación.El estudio de la migración celular es importante para una amplia gama de ciencias biomédicas, como la biología del cáncer, la inmunología, la biología celular y la biología del desarrollo. La migración celular puede dividirse en cuatro pasos mecánicamente independientes: extensión, formación de nuevas adhesiones, contracción del cuerpo celular y, por último, desprendimiento del extremo posterior. A continuación, describiremos dos métodos sencillos para estudiar cuidadosamente la naturaleza dinámica de la migración celular in vitro.El primer método es un ensayo de cultivo celular de exclusión. Este ensayo es comúnmente utilizado y altamente accesible para laboratorios con instalaciones básicas. El ensayo de cultivo celular de exclusión es un método en el que, mediante la punta de una pipeta, se generan rasguños sobre una monocapa de células confluentes, y con el tiempo la monocapa celular cierra la herida previamente realizada.La dinámica de la migración celular puede estudiarse en detalle mediante fotografía de lapsos de tiempo o mediante imágenes instantáneas. Puede medirse la distancia y, con el tiempo, calcularse la velocidad a la que se desplazaron las células. El segundo método relacionado, el ensayo de migración e invasión celular en transbien, también es muy accesible tras el siembra de células sobre una membrana de transbien.También conocida comúnmente como cámara de Boyden. Pueden medirse sus capacidades de migración hacia un gradiente de quimioatractivo. Ambos procedimientos experimentales, muy accesibles, son extremadamente valiosos en muchas áreas de investigación.Capítulo dos, cultivo celular en recinto, ensayo. Hola, mi nombre es Calvin Justice. Soy estudiante de posgrado en el laboratorio del Dr. Yang del Departamento de Oncología en la Escuela de Medicina Brody de la Universidad East Carolina.Y hoy demostraré dos procedimientos que miden las capacidades de migración e invasión de células in vitro. Comencemos ahora con el cultivo celular. Ensayo de las células utilizadas en el cultivo celular.El ensayo puede cultivarse en placas de cultivo de tejidos utilizando técnicas convencionales de cultivo celular. Para comenzar, aspire el medio de crecimiento utilizado para cultivar las células, lave una vez con PBS, luego agregue dos mililitros de tripsina-EDTA al 0,25% a la placa e insértela en el incubador durante tres minutos. Retire la placa del incubador y agregue tres mililitros de DMM suplementado con 10% FBS.Retire el medio de la placa y colóquelo en un tubo cónico de 15 mililitros. Centrifugue durante cinco minutos a 1500 RPM. Después de la centrifugación, re suspenda las células en dos mililitros de DMM suplementado con 10% FBS.Luego, cuente las células con un hemocitómetro. Una vez finalizado el conteo, siembre un número de células que alcance confluencia dentro de 24 horas. Coloque la placa en el incubador durante 24 horas para permitir la adhesión y la expansión celular.Retire la placa del incubador y obsérvela bajo el microscopio para asegurarse de que la placa esté 100 % confluente. A continuación, dentro de la cabina de seguridad biológica, utilice la punta de pipeta con cuidado sin dañar la placa de cultivo celular, y realice una herida desde la parte superior del pocillo hasta la inferior. Después de crear la herida con la punta de pipeta, aspire el medio y lave suavemente con dos mililitros de medio de crecimiento.En este caso, DMEM suplementado con 10 %FES para eliminar cualquier resto existente; nuevamente, aspire el medio. Finalmente, agregue dos mililitros de medio de crecimiento y, si está disponible, coloque la placa en una cámara controlada de temperatura y CO₂ ubicada debajo del microscopio. Una capacidad de fotografía de intervalos en este caso.La función de lapso de tiempo no está disponible. Tome una imagen inicial de la ubicación de la marca y del pocillo, y coloque la placa en el incubador. Si se dispone de fotografía de lapso de tiempo, configure las funciones de lapso de tiempo en el microscopio.Configuraremos nuestro intervalo de tiempo para 16 horas. Tras tomar una imagen cada cinco minutos durante 16 horas, la placa puede retirarse de la cámara y las imágenes adquiridas a lo largo de la duración del experimento pueden guardarse en una unidad flash. Inserte el USB en la computadora y abra el programa Image J.Haga clic en el archivo. Importe una secuencia de imágenes. Busque las imágenes que se tomaron durante el experimento.Haga clic en el primer archivo y luego en abrir. Aparecerán las opciones de secuencia siguiente. Seleccione la primera imagen de su lista de fotos e inserte los incrementos que necesitará para el video.Ahora verá las opciones del lector de VI. Elija la mejor opción, experimente y haga clic. Bien. El programa Image J creará ahora un video, guarde el video, haga clic en archivo, guarde como un VI o cualquier otra opción que pueda adaptarse a su experimento.El video puede luego analizarse en el estudio celular para identificar características de migración que puedan ser de interés. Las características posibles que pueden estudiarse son la extensión podal, la contracción del cuerpo celular y la desprendimiento del extremo posterior. En ausencia de fotografía con pérdida de tiempo, se puede retirar la placa que fue colocada en el incubador durante 12 a 16 horas tras la imagen inicial.El área que se fotografió inicialmente debe volver a fotografiarse y se debe agregar una barra de escala para realizar mediciones adicionales. Después de medir el ancho inicial de la herida generada en la primera foto, el ancho medido en píxeles debe convertirse a micrómetros utilizando la barra de escala. A continuación, el ancho de la herida en las imágenes finales debe medirse en píxeles en la misma zona que antes, y nuevamente debe convertirse a micrómetros usando la barra de escala.El paso final consiste en restar el ancho final del ancho inicial para obtener el ancho total que la herida cerró dentro del período de tiempo establecido. La distancia final de migración medida debe dividirse entre el tiempo establecido para obtener la velocidad de cierre en micrómetros por hora. El método de instantánea puede repetirse en numerosos pocillos de diferentes tamaños para un análisis más cuantitativo de la migración celular, capítulo tres, ensayo de migración e innovación celular a través de pocillos.Para comenzar, primero debe cultivar las células de interés en una placa de cultivo de tejidos para el procedimiento. A continuación, lave una vez con PBS y separe las células de interés de la placa de cultivo de tejidos mediante tampón de disociación celular o tripsina. Además, le sugerimos que lea la bibliografía sobre cómo la tripsina puede afectar las células que está estudiando, ya que su uso podría influir en sus resultados.Después de la centrifugación de desprendimiento a 1500 RPM durante cinco minutos, retire y aspire el medio existente, luego resuspenda las células en BSA al 0,1 %. Abra el paquete del inserto Transwell y colóquelo en el pocillo diseñado para su tamaño específico. Si está realizando primero el ensayo de invasión Transwell, agregue matrigel en la parte superior del inserto e incube durante 30 minutos antes de pasar al siguiente paso.Coloque 100 microlitros de solución celular sobre la membrana del transbien. Incube durante 10 minutos para permitir que las células se asienten. El número de células sembradas depende del tipo celular y podrían ser necesarios experimentos posteriores.Para determinar este número, utilice una pipeta para agregar cuidadosamente el quimioatractivo deseado debajo del inserto hasta el fondo del pocillo. Intente no retirar el inserto. El tiempo de incubación depende del tipo de célula.Retire el inserto transwell después de la incubación y use un aplicador con punta de algodón tantas veces como sea necesario para eliminar suavemente el medio en exceso y las células que no han migrado hacia la membrana desde la parte superior de esta. Tenga cuidado de no dañar la membrana. Añada de 600 a 1000 microlitros de etanol al 70 % en la cámara inferior de un pozo vacío.Coloque el inserto en el pocillo con etanol al 70 % e incube durante 10 minutos para permitir la fijación celular. Nuevamente, utilice un aplicador de algodón tantas veces como sea necesario para eliminar el etanol restante en las células que no han migrado a través de la membrana desde la parte superior de esta. Añada entre 600 y 1000 microlitros de violeta de cristal al 0,2 % a un pocillo y coloque el inserto dentro para la tinción celular.Incubar durante 10 minutos. Generalmente, elimine el exceso de colorante de cristal violeta de la parte superior de la membrana. Luego, con mucho cuidado para evitar lavar las células migradas, sumerja la membrana en agua destilada tantas veces como sea necesario para eliminar el cristal violeta restante.Deje secar la membrana para observar las células mediante un microscopio. La membrana puede retirarse cuidadosamente con el escalpelo y colocarse sobre un portaobjetos de vidrio, o puede observar las células con los insertos aún en el pocillo. Utilizando un microscopio invertido, se debe tomar una imagen de varios campos de visión.Para obtener una buena representación del número de células migradas, se puede contar el número de células utilizando la herramienta de conteo de Adobe Photoshop. Los datos acumulados pueden insertarse en un gráfico de barras para lograr la mejor representación de sus resultados. Capítulo cuatro, resultados representativos.A continuación, le mostraremos algunos resultados representativos del ensayo de cultivo celular de inclusión y del ensayo de migración celular en transbien. Dos métodos relacionados para examinar la motilidad celular, descritos en este video. Comenzaremos con el ensayo de cultivo celular de inclusión. Aquí presentamos imágenes tomadas a las 0, 4, 8 y 12 horas.Como puede observarse, tras la generación de la herida se pueden tomar imágenes y, con el tiempo, medir la distancia de cierre de la herida. Presentamos nuestros datos mediante un diagrama de dispersión y, utilizando el método discutido previamente, determinamos la velocidad de cierre de la herida a lo largo del tiempo. Además, la migración individual de las células también puede estudiarse en detalle mediante fotografía de lapso de tiempo.En este caso, ampliamos la imagen para observar células individuales durante el cierre de la herida, rastreamos su migración a lo largo del tiempo y observamos sus movimientos. Características como la extensión del borde delantero, la retracción del extremo posterior y el movimiento general pueden examinarse en detalle. Ahora revisará algunos resultados del ensayo de migración celular transversal. Aquí mostramos dos imágenes que fueron tomadas de la membrana tras el ensayo de migración celular en transbien.La primera imagen muestra los resultados sin quimioatractivo, donde hubo poca o ninguna migración celular a través de la membrana. La segunda imagen muestra los resultados con quimioatractivo, donde se observó un aumento de la migración celular hacia la membrana. A la derecha, mostramos los resultados cuantitativos de nuestro experimento mediante un gráfico de barras con barras de error que representan el error estándar.Capítulo cinco, conclusión: los datos acumulados tras el ensayo de cierre celular en el ensayo de migración o invasión celular transversal revelan las capacidades de migración de las células en un entorno 2D o en un entorno 3D. Estos resultados pueden compararse con otros para revelar potencialmente datos previamente desconocidos y también pueden correlacionarse con otros ensayos bioquímicos. Estas dos pruebas relacionadas y comúnmente utilizadas son valiosas y fácilmente accesibles para los laboratorios de biología celular más básicos.Le agradecemos por acompañarnos hoy y le deseamos mucha suerte en sus futuros empeños científicos.

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