Name: La detección de anormalidades en la vasculatura coroidea en un modelo de ratón de la relacionada con la edad degeneración macular por Time-curso de indocianina verde Angiografía (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-02-19T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 24 s
Description: Aprende a detectar anomalías vasculares coroideas en modelos murinos de degeneración macular relacionada con la edad mediante angiografía con verde de indocianina en tiempo real. Este método estandarizado permite caracterizar lesiones coroideas con alta resolución.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Este trabajo fue apoyado por el NIH subvención 1R01EY022901, el Premio de Desarrollo de Carreras de Investigación para Prevención de la Ceguera (RPB), CMReeves &amp; MA Fundación Reeves, Fundación E. Matilda Ziegler para Ciegos, Caballeros Templarios Eye Foundation, y una subvención sin restricciones al Departamento de Oftalmología en la Universidad de Utah de RPB. Agradecemos Balamurali Ambati para la asistencia técnica en la multimodalidad Imaging System Spectralis y Tao Zhang para los debates y los comentarios sobre el manuscrito.

1. Preparación de Instrumentos <ol><li> El procedimiento se realiza en una sala de procedimientos en una instalación para animales. </li><li> Use mascarillas, gorros de pelo, batas quirúrgicas, los pies cubiertas estériles y guantes antes de comenzar el experimento. </li><li> Caliente el agua en un vaso de precipitados a ~ 40 ° C sobre una placa caliente. </li><li> Coloque una almohadilla azul estéril en la parte superior de una almohadilla eléctrica que se utilizará más adelante para mantener la temperatura corporal del ratón durante la exploración. Encienda la almohadilla térmica. </li><li> Prepare el sistema de imágenes: <ol><li> Quite la cubierta de polvo y encender el láser. </li><li> Saque la lente de 55 ° y montarlo en la máquina. </li><li> Abra el software de imagen de la computadora e ingrese la información del ratón para obtener imágenes bajo la hoja de un nuevo paciente (por ejemplo, el genotipo, la edad, etc.). En &quot;Tipo de dispositivo&quot;, seleccione el modo de infrarrojos (IR). </li></ol></li></ol> Nota: Se ha informado de que el uso Of una lente asférica de doble externa puede mejorar la calidad de imagen 17-20 aunque no tenemos ningún problema en la obtención de imágenes de alta calidad por IV-ICGA sin usar lentes externas (ver resultados representativos, Figuras 1-4). 2. Vena de la cola de inyección de ICGA <ol><li> Dilata los ojos de ratones con 1% solución oftálmica de tropicamida y esperar 5 min. </li><li> Pesar el ratón para determinar la cantidad de anestesia (ketamina / xilazina / Acepromazina 65-100/10-20/1-3 mg / kg) es necesario. </li><li> Recuperar una jeringa estéril de 1 ml junto con una aguja de calibre 32. Inyectar el ratón por vía intraperitoneal con los anestésicos (13 mg / ml de ketamina, 2,6 mg / ml de xilazina 0,3 mg / ml de Acepromazina en PBS estéril). Espere hasta que el ratón está totalmente anestesiado (~ 5 min). </li><li> Coloque la cola del ratón en 40 ° C el agua caliente para causar vasodilatación de la vena. </li><li> Recuperar una jeringa de 1 ml con una aguja de calibre 32. Extraer la cantidad deseada de ICG, típicamente 50 l de 1 mg / ml de ICG, que es estéril filtrada con un filtro de jeringa de 0,2 M en un tubo estéril, por un 25 g de ratón (2 mg / kg). Tenga cuidado de no introducir el aire en la jeringa. </li><li> Limpie la cola con un algodón con alcohol para esterilizar el área a ser inyectada. </li><li> Sostenga la cola con una mano para que la vena lateral de la cola es ascendente. Con el bisel de la aguja hacia arriba, inyectar la aguja ~ 2 mm en la vena en un ángulo mínimo. Tenga cuidado de no perforar la vena. Dibujar atrás de la jeringa ligeramente y buscar los rastros de flujo sanguíneo en el cubo de la aguja, lo que indica que la aguja se inserta con éxito en la vena. </li><li> Lentamente inyectar ICG en la vena. Debe haber un mínimo de resistencia al inyectar. Retire la aguja y aplique una gasa con alcohol directamente en el sitio de inyección para ~ 5-10 segundos para detener cualquier sangrado. El ratón está entonces listo para formación de imágenes. Con el fin de captar la primera fase (0-4 min después de la inyección), es essential a la imagen con el ratón rápidamente. </li></ol> Nota: los ojos del ratón pueden conseguir fácilmente en seco y pueden desarrollar cataratas bajo anestesia. Es importante mantener el ojo húmedo mediante la aplicación de PBS estéril durante el procedimiento. Limpie el exceso de PBS con un hisopo de algodón estéril antes de la grabación ICGA. Otros laboratorios han utilizado una lente de contacto para evitar la deshidratación de la córnea 17-20. 3. ICG angiografía <ol><li> Comience a tomar imágenes de 30-40 segundos después de la inyección de ICG, que permite la captura de la primera fase de llenado de la coroides hasta circulaciones retina y la coroides son a su máximo brillo (0-4 min). La vasculatura retinal se visualiza mejor en foco ~ 35-45 dioptrías y la vasculatura coroidea se visualiza al 10-15 dioptrías. Nota: Durante el primer examen de un modelo animal, se recomienda para capturar imágenes desde todos los ángulos (nasal, temporal, dorsal y ventral) para identificar todos los posibles abnormalities en la vasculatura. Durante la primera fase, las arterias y las venas coroideas medianas y grandes son bien visualizadas. En el modelo animal utilizado en este protocolo, las lesiones coroideas (por ejemplo polipoideas dilataciones) pueden comenzar a aparecer 1 min en la fase temprana. </li><li> Ajuste el enfoque de la imagen sobre la vasculatura. Control para el brillo y enfoque utilizando el módulo de control y mando de enfoque, respectivamente. Estos valores son ajustables digitalmente y son fácilmente mantienen constantes. Mantenga la distancia desde el ojo del ratón a la constante de lente de la cámara para asegurar la calidad de la imagen es reproducible utilizando la técnica que sigue. Nota: Dado que el dispositivo sólo puede imagen una porción de la parte posterior del ojo, tratamos de mantener el enfoque, el brillo y la distancia entre la lente de la cámara y el ojo del ratón constante a medida que la imagen de toda la parte posterior del ojo desde distintos ángulos. La clave para esto es para alinear la luminiscencia de forma circular emitida por el ICG a través del ojo con el campo de la vieW de la cámara. Esto se logra haciendo que de izquierda a derecha, de arriba a abajo, y en-y-hacia fuera los ajustes de la posición de la cámara hasta que la imagen tiene áreas oscuras. Cuando la luminiscencia y el campo de visión de la cámara están alineados, la distancia desde el ojo a la lente será reproducible para el siguiente grupo de imágenes, así como a una distancia óptima para la formación de imágenes de calidad. </li><li> Una vez que la vasculatura está enfocado, capturar los cuadros de imagen pulsando el botón redondo de color negro en el módulo de adquisición. El botón redondo de color negro también se puede utilizar para reducir o aumentar la señal de ICG para la mejor calidad de imagen. </li><li> Determinar el ángulo de visión óptimo y la profundidad de enfoque para imagen lesiones coroideas. Es importante mantener la posición del ojo, la profundidad de enfoque, y otros ajustes de dispositivos fijos para toda la ICGA tiempo-curso. Las imágenes se guardan pulsando el botón adquieren en el panel de la pantalla táctil del módulo de adquisición. </li><li> Adquirir imágenes en la fase media de 6-15 min popainyección er. Nota: Tanto la coroides y los vasos de la retina se distinguen menos. Vasculatura coroidea aparece fluorescencia difusa. Lesiones coroideas expositoras hiperfluorescencia emergen en contraste con el desvanecimiento normal circundante fluorescencia de fondo. </li><li> Adquirir imágenes en la fase tardía en 17-25 min después de la inyección. Nota: Hiperfluorescencia desvanece. Ambos vasos coroideos y la retina ya no son visibles. La cabeza del nervio óptico se vuelve negro. Lesiones coroideas hiperfluorescentes tienen máximo contraste con el fondo decoloración. </li><li> Después de terminar la adquisición de las imágenes, aplicar un gel transparente lubricante ocular para los ojos de ratones y dejar el ratón sobre una almohadilla térmica para la recuperación. </li><li> Ratones Vuelva a sus jaulas y zona de espera. Exportación de imágenes como archivos TIFF o JPEG para su posterior análisis. </li></ol> Nota: El tiempo de cada fase no es absoluta. Encontramos que el momento de eafase ch podría cambiar dependiendo de la cantidad de ICG inyectado. Más ICG tiende a prolongar cada fase. La mejor manera de definir una fase es de acuerdo con las características principales de cada fase que aparece arriba.

<ol><li>Duane, T. D., Tasman, W., Jaeger, E. A. Chapter 4a, Indocyanine Green Angiography. Duane's clinical ophthalmology on CD-ROM. , Lippincott Williams & Wilkins. Philadelphia. (2002).</li>
<li>Alfaro, D. V. Age-related macular degeneration : a comprehensive textbook. , Lippincott Williams & Wilkins. (2006).</li>
<li>Yannuzzi, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Indocyanine+green+angiography%3A+a+perspective+on+use+in+the+clinical+setting%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Indocyanine green angiography: a perspective on use in the clinical setting.</a> Am. J. Ophthalmol. 151, 745-751 (2011).</li>
<li>Destro, M., Puliafito, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Indocyanine+green+videoangiography+of+choroidal+neovascularization%5BTitle%5D)+AND+%22Ophthalmology%22%5BJournal%5D)">Indocyanine green videoangiography of choroidal neovascularization.</a> Ophthalmology. 96, 846-853 (1989).</li>
<li>Scheider, A., Schroedel, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+resolution+indocyanine+green+angiography+with+a+scanning+laser+ophthalmoscope%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">High resolution indocyanine green angiography with a scanning laser ophthalmoscope.</a> Am. J. Ophthalmol. 108, 458-459 (1989).</li>
<li>Guyer, D. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Digital+indocyanine-green+angiography+in+chorioretinal+disorders%5BTitle%5D)+AND+%22Ophthalmology%22%5BJournal%5D)">Digital indocyanine-green angiography in chorioretinal disorders.</a> Ophthalmology. 99, 287-291 (1992).</li>
<li>Yannuzzi, L. A., Slakter, J. S., Sorenson, J. A., Guyer, D. R., Orlock, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Digital+indocyanine+green+videoangiography+and+choroidal+neovascularization%5BTitle%5D)+AND+%22Retina%22%5BJournal%5D)">Digital indocyanine green videoangiography and choroidal neovascularization.</a> Retina. 12, 191-223 (1992).</li>
<li>Regillo, C. D., Benson, W. E., Maguire, J. I., Annesley, W. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Indocyanine+green+angiography+and+occult+choroidal+neovascularization%5BTitle%5D)+AND+%22Ophthalmology%22%5BJournal%5D)">Indocyanine green angiography and occult choroidal neovascularization.</a> Ophthalmology. 101, 280-288 (1994).</li>
<li>Scheider, A., Kaboth, A., Neuhauser, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+of+subretinal+neovascular+membranes+with+indocyanine+green+and+an+infrared+scanning+laser+ophthalmoscope%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Detection of subretinal neovascular membranes with indocyanine green and an infrared scanning laser ophthalmoscope.</a> Am. J. Ophthalmol. 113, 45-51 (1992).</li>
<li>Kuck, H., Inhoffen, W., Schneider, U., Kreissig, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diagnosis+of+occult+subretinal+neovascularization+in+age-related+macular+degeneration+by+infrared+scanning+laser+videoangiography%5BTitle%5D)+AND+%22Retina%22%5BJournal%5D)">Diagnosis of occult subretinal neovascularization in age-related macular degeneration by infrared scanning laser videoangiography.</a> Retina. 13, 36-39 (1993).</li>
<li>Imamura, Y., Engelbert, M., Iida, T., Freund, K. B., Yannuzzi, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polypoidal+choroidal+vasculopathy%3A+a+review%5BTitle%5D)+AND+%22Surv.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Polypoidal choroidal vasculopathy: a review.</a> Surv. Ophthalmol. 55, 501-515 (2010).</li>
<li>Ciardella, A. P., Donsoff, I. M., Yannuzzi, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polypoidal+choroidal+vasculopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Ophthalmol.+Clin.+N.+Am%22%5BJournal%5D)">Polypoidal choroidal vasculopathy.</a> Ophthalmol. Clin. N. Am. 15, 537-554 (2002).</li>
<li>Spaide, R. F., Yannuzzi, L. A., Slakter, J. S., Sorenson, J., Orlach, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Indocyanine+green+videoangiography+of+idiopathic+polypoidal+choroidal+vasculopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Retina%22%5BJournal%5D)">Indocyanine green videoangiography of idiopathic polypoidal choroidal vasculopathy.</a> Retina. 15, 100-110 (1995).</li>
<li>Coppens, G., Spielberg, L., Leys, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polypoidal+choroidal+vasculopathy%2C+diagnosis+and+management%5BTitle%5D)+AND+%22Bull.+Soc.+belge+d%27Ophtalmol.%22%5BJournal%5D)">Polypoidal choroidal vasculopathy, diagnosis and management.</a> Bull. Soc. belge d'Ophtalmol.. , 39-44 (2011).</li>
<li>Tsujikawa, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pigment+epithelial+detachment+in+polypoidal+choroidal+vasculopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Pigment epithelial detachment in polypoidal choroidal vasculopathy.</a> Am. J. Ophthalmol. 143, 102-111 (2007).</li>
<li>Jones, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+expression+of+multifunctional+serine+protease%2C+HTRA1%2C+in+retinal+pigment+epithelium+induces+polypoidal+choroidal+vasculopathy+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Increased expression of multifunctional serine protease, HTRA1, in retinal pigment epithelium induces polypoidal choroidal vasculopathy in mice.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108, 14578-14583 (2011).</li>
<li>Alex, A. F., Heiduschka, P., Eter, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retinal+fundus+imaging+in+mouse+models+of+retinal+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Retinal fundus imaging in mouse models of retinal diseases.</a> Methods Mol. Biol. 935, 41-67 (2013).</li>
<li>Seeliger, M. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+confocal+imaging+of+the+retina+in+animal+models+using+scanning+laser+ophthalmoscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Vision+Res%22%5BJournal%5D)">In vivo confocal imaging of the retina in animal models using scanning laser ophthalmoscopy.</a> Vision Res. 45, 3512-3519 (2005).</li>
<li>Fischer, M. D., Zhour, A., Kernstock, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phenotyping+of+mouse+models+with+OCT%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Phenotyping of mouse models with OCT.</a> Methods Mol. Biol. 935, 79-85 (2013).</li>
<li>Jian, Y., Zawadzki, R. J., Sarunic, M. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adaptive+optics+optical+coherence+tomography+for+in+vivo+mouse+retinal+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomed.+Opt%22%5BJournal%5D)">Adaptive optics optical coherence tomography for in vivo mouse retinal imaging.</a> J. Biomed. Opt. 18, 56007 (2013).</li>
<li>Ciardella, A. P., Donsoff, I. M., Huang, S. J., Costa, D. L., Yannuzzi, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polypoidal+choroidal+vasculopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Surv.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Polypoidal choroidal vasculopathy.</a> Surv. Ophthalmol. 49, 25-37 (2004).</li>
<li>Sasahara, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polypoidal+choroidal+vasculopathy+with+choroidal+vascular+hyperpermeability%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Polypoidal choroidal vasculopathy with choroidal vascular hyperpermeability.</a> Am. J. Ophthalmol. 142, 601-607 (2006).</li>
<li>Silva, R. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polypoidal+choroidal+vasculopathy+and+photodynamic+therapy+with+verteporfin%5BTitle%5D)+AND+%22Graefes+Arch.+Clin.+Exp.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Polypoidal choroidal vasculopathy and photodynamic therapy with verteporfin.</a> Graefes Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. 243, 973-979 (2005).</li>
<li>Yannuzzi, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polypoidal+choroidal+vasculopathy+masquerading+as+central+serous+chorioretinopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Ophthalmology%22%5BJournal%5D)">Polypoidal choroidal vasculopathy masquerading as central serous chorioretinopathy.</a> Ophthalmology. 107, 767-777 (2000).</li>
<li>Janssen, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Abnormal+vessel+formation+in+the+choroid+of+mice+lacking+tissue+inhibitor+of+metalloprotease-3%5BTitle%5D)+AND+%22Invest.+Ophthalmol.+Vis.+Sci%22%5BJournal%5D)">Abnormal vessel formation in the choroid of mice lacking tissue inhibitor of metalloprotease-3.</a> Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 49, 2812-2822 (2008).</li>
<li>Ding, X., Patel, M., Chan, C. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+pathology+of+age-related+macular+degeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Prog.+Retin.+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Molecular pathology of age-related macular degeneration.</a> Prog. Retin. Eye Res. 28, 1-18 (2009).</li>
<li>Grossniklaus, H. E., Kang, S. J., Berglin, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+choroidal+and+retinal+neovascularization%5BTitle%5D)+AND+%22Prog.+Retin.+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Animal models of choroidal and retinal neovascularization.</a> Prog. Retin. Eye Res. 29, 500-519 (2010).</li>
<li>Pennesi, M. E., Neuringer, M., Courtney, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+age+related+macular+degeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Aspects+Med%22%5BJournal%5D)">Animal models of age related macular degeneration.</a> Mol. Aspects Med. 33, 487-509 (2012).</li>
<li>Elizabeth Rakoczy, P., Yu, M. J., Nusinowitz, S., Chang, B., Heckenlively, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+models+of+age-related+macular+degeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Mouse models of age-related macular degeneration.</a> Exp. Eye Res. 82, 741-752 (2006).</li>
</ol>

YF es un inventor de dos patentes pendientes que son relevantes para el modelo de ratón AMD usado en este trabajo. SK, ZB y ADJ tienen nada que revelar.

En este estudio, hemos demostrado el uso de ICGA a imagen lesiones coroideas en ratones transgénicos HtrA1. Las características de los principios, mediados y finales de las fases de ICGA en nuestro modelo de ratón coincide con el curso temporal bien en los estudios humanos 1. Esto es importante para hacer mejores comparaciones entre patología y animales fenotipos humanos, que son de gran valor para la investigación sobre los mecanismos fisiopatológicos y las estrategias de tratamiento de condiciones relaciona...

Angiografía con verde indocianina (ICGA) es una prueba de diagnóstico para problemas de imagen relacionados con los vasos sanguíneos en el ojo. El espectro de absorción de ICG oscila desde 790 hasta 805 nm, mientras que el espectro de emisión oscila desde 770 hasta 880 nm con la emisión máxima a 835 nm 1. Esto es diferente de la otra tinte popular, fluoresceína de sodio, cuyo espectro cae en el rango visible. El espectro infrarrojo permite ICG para penetrar a través de epitelio pigmentario de la retina (RPE), de fluido serosanguinolento, y exudados lipídicos, todo lo cual puede bloquear fácilmente la visualización por angiografía con fluoresceína base de sodio-fluoresceína (FA). ICG es del 98% unido a proteínas en el sistema vascular que resulta en menos extravasación, lo que permite mejorar la imagen de los vasos de la coroides y lesiones coroideas 1,2. ICGA es casi la única opción para visualizar la vasculatura coroidea, que es posterior al RPE. La figura 1 muestra la comparación de ICGA y FA en la vasculatura de formación de imágenes en ojos de ratón. FA puede be utilizado para la imagen de la vasculatura de la retina así pero no la vasculatura coroidea. En contraste, ICGA se puede utilizar para la imagen tanto de la retina y la vasculatura coroidea. ICGA se realiza con sistemas de imágenes digitales de alta resolución o oftalmoscopios láser de barrido (SLO), junto con las cámaras de vídeo sensibles a los infrarrojos, que vamos a utilizar en este estudio. En la clínica, ICGA se ha recomendado en el diagnóstico de una serie de trastornos coriorretinianas involucra la vasculatura coroidea incluyendo vasculopatía coroidal polipoidea (PCV), Retina angiomatosas Proliferación (RAP), estrías angioides, viteliforme distrofia macular, coriorretinopatía serosa central, hemangioma de coroides, la retina hemorragia macroaneurismas arteriolares, tumores coroideos, y ciertas formas de uveítis posterior 1,3. La combinación de ICGA con FA y la tomografía de coherencia óptica (OCT) proporciona potentes herramientas para los médicos en el diagnóstico y manejo de exudativa macular relacionada con la edaddegeneración (AMD) 4-10. ICGA es especialmente útil para el diagnóstico de afecciones que implican la coroides. De hecho, ICGA es considerado el estándar de oro para el diagnóstico de PCV, una variante de la DMAE exudativa 11-13. PCV se caracteriza por una red de vasos ramificados con dilataciones polipoideas terminales en la vasculatura coroidea 11-13. PCV se asocia frecuentemente con destacamentos serosanguinolento recurrentes del EPR y la retina con fugas y el sangrado de los componentes polipoideas 11,14,15. Recientemente hemos informado de la generación del primer modelo animal PCV por transgénica que expresa HTRA1 humana, una serina proteasa multifuncional, en el ratón epitelio pigmentario retiniano (EPR) 16. Hemos demostrado que el aumento de HTRA1 indujo rasgos característicos del PCV, por ejemplo, lesiones polipoideas. Aquí hemos demostrado el uso del tiempo-por supuesto ICGA por inyección en la vena de la cola en la investigación de AMD utilizando nuestro modelo de ratón HTRA1. Nuestros datos sugieren que losIV-ICGA es superior a IP (o subcutánea (SC))-ICGA que se utilizan actualmente en el campo de 17,18 para la caracterización de las lesiones en la coroides. Declaración sobre Investigación Animal Los experimentos con animales se realizaron de acuerdo a los protocolos aprobados por el Cuidado de Animales institucional y el empleo Comisión (IACUC) y se llevaron a cabo de conformidad con la Declaración de ARVO para el uso de animales en Oftálmica y Vision Research.

<table><tbody><tr><td>Sistema de imagen multimodal Spectralis</td><td>Heidelberg Engineering, Alemania</td><td>SPECTRALIS HRA+OCT</td><td></td></tr><tr><td>Solución oftálmica de tropicamida (1%)</td><td>Bausch & Lomb</td><td>NDC 24208-585-64</td><td>para la dilatación de las pupilas</td></tr><tr><td>GenTeal Gel</td><td>Genteal</td><td>NDC 58768-791-15</td><td>&nbsp; gel lubricante transparente para los ojos&nbsp;</td></tr><tr><td>Ketamina</td><td>Vedco Inc</td><td>NDC 50989-996-06</td><td></td></tr><tr><td>Xilacina</td><td>Lloyd Laboratories</td><td>NADA 139-236</td><td></td></tr><tr><td>Acepromazine</td><td>Vedco Inc</td><td>NDC 50989-160-11</td><td></td></tr><tr><td>32-G Needle</td><td>Steriject</td><td>PRE-32013</td><td></td></tr><tr><td>Jeringa de 1 ml</td><td>BD</td><td>309659</td><td></td></tr><tr><td>Indocianine Green</td><td>Pfaltz & Bauer</td><td>I01250</td><td></td></tr></tbody></table>

la detección de anormalidades en la vasculatura coroidea en un modelo de ratón de la relacionada con la edad degeneración macular por time-curso de indocianina verde angiografía

Detecting Abnormalities in Choroidal Vasculature in a Mouse Model of Age-related Macular Degeneration by Time-course Indocyanine Green Angiography

Indocianina verde Angiografía (o ICGA) es una técnica realizada por los oftalmólogos para diagnosticar anormalidades de la coroides y la vasculatura de la retina de varias enfermedades oculares como la degeneración macular asociada a la edad (DMAE). ICGA es especialmente útil para la imagen de la vasculatura coroidea posterior del ojo debido a su capacidad de penetrar a través de la capa pigmentada con su espectro infrarrojo. Curso temporal ICGA puede dividirse en etapas temprana, media y fases finales. Las tres fases proporcionan información valiosa sobre la patología de los problemas de los ojos. Aunque el tiempo-curso ICGA por vía intravenosa (IV) de inyección se utiliza ampliamente en la clínica para el diagnóstico y manejo de problemas coroideo, ICGA por inyección intraperitoneal (IP) se utiliza comúnmente en la investigación con animales. Aquí hemos demostrado la técnica para obtener imágenes de alta resolución ICGA tiempo-por supuesto en ratones mediante la inyección de cola vena y confocal de barrido láser oftalmoscopia. Se utilizó esta técnica para la imagen de la coroides lesiones en un modelo de ratón de la degeneración macular relacionada con la edad. Aunque es mucho más fácil introducir ICG a la vasculatura del ratón a través de IP, nuestros datos indican que es difícil obtener imágenes reproducibles curso temporal ICGA por IP-ICGA. Por el contrario, a través de inyección ICGA vena de la cola proporciona imágenes tiempo-por supuesto ICGA alta calidad comparables a los estudios en humanos. Además, demostramos que ICGA realizó en ratones albinos da imágenes más claras de los vasos coroideos que la realizada con ratones pigmentados. Nosotros sugerimos que el tiempo-por supuesto-IV ICGA debería convertirse en una práctica habitual en la investigación AMD basado en modelos animales.

Se realizó curso de tiempo ICGA en HtrA1 ratones transgénicos y sus compañeros de camada WT de control, ambos de los cuales están en el fondo CD1. El fondo CD1 albino fue seleccionado para facilitar la angiografía con verde indocianina (ICGA) de imágenes (ver Discusión). Algunos aneurisma como dilataciones comenzó a aparecer en la primera fase en el ratón HTRA1 (Figura 2, una flecha roja indica la dilatación en el extremo de un recipiente y un círculo rojo indica una lesión polipoidea tipo cluster). Vas...

Indocianina verde Angiografía (o ICGA) realizado por inyección en la vena de la cola proporciona imágenes de curso temporal ICGA alta calidad para caracterizar las anormalidades en la coroides ratón.

La detección de anormalidades en la vasculatura coroidea en un modelo de ratón de la relacionada con la edad degeneración macular por Time-curso de indocianina verde Angiografía

Indocyanine Green&#160;Angiography (or ICGA) is a technique performed by ophthalmologists to diagnose abnormalities of the choroidal and retinal ...

El objetivo general de este procedimiento es detectar anomalías en la vascularización coroidea en modelos murinos de degeneración macular asociada a la edad mediante el curso temporal de endo en verde y geografía. Esto se logra primero preparando los animales y el tinte para inyección. El segundo paso consiste en realizar inyecciones intravenosas en la cola con incy en verde.A continuación, se adquieren imágenes del ojo en las fases temprana, media y tardía de la angiografía con indocianina verde, las cuales luego se exportan y analizan. En última instancia, el curso temporal de la angiografía con indocianina verde puede utilizarse como un procedimiento estándar para caracterizar diversos tipos de lesiones en la coroides de la degeneración macular asociada a la edad. Modelos murinos.La principal ventaja de esta técnica frente a nuestros métodos existentes, como la inyección intraperitoneal de endosigina verde, es que proporciona imágenes de alta calidad a lo largo del tiempo que son comparables con los estudios en humanos. Para comenzar el procedimiento, vístase con la indumentaria adecuada para trabajar con animales. Esto incluye ponerse batas quirúrgicas, fundas estériles para los pies, gorros para el cabello, mascarillas faciales y guantes. Luego, prepare la almohadilla calefactora que se utilizará durante la obtención de imágenes encendiendo el sistema, ajustando la temperatura a 37 grados Celsius y cubriéndola con una almohadilla azul estéril.A continuación, encienda una placa calefactora y caliente un vaso de precipitados con agua hasta 40 grados Celsius. Prepare el sistema de imagenología antes de la inyección en la vena caudal precalentando el láser y colocando una lente de 55 grados en el equipo. Luego, abra el software de imagenología e ingrese la información de identificación del ratón para la imagenología en una nueva hoja de paciente.En el tipo de dispositivo, seleccione el modo infrarrojo. Con el sistema de imagen configurado, dilate los ojos del ratón con una solución oftálmica de tropicamida al 1 % y espere cinco minutos. Durante este tiempo, pese al ratón para determinar la cantidad de anestesia necesaria.Luego, inyecte una mezcla de ketamina, xilazina y acepromazina por vía intraperitoneal según se describe en el protocolo de texto adjunto. Espere aproximadamente cinco minutos hasta que el ratón esté completamente anestesiado. En lugar de cubrir los ojos del ratón anestesiado con pomada oftálmica, aplique PBS estéril en los ojos cada dos minutos o inserte lentes de contacto especializados para evitar que se sequen y desarrollen cataratas.Una vez anestesiado, coloque la cola del ratón en agua a 40 grados Celsius durante 20 a 30 segundos para dilatar la vena de la cola. Luego, utilice una jeringa de un mililitro equipada con una aguja de calibre 32 para aspirar dos microlitros por gramo de peso corporal de una solución de verde de indocianina de un miligramo por mililitro. Tenga cuidado de no introducir burbujas de aire en la jeringa.A continuación, sostenga la cola con una mano de modo que la vena lateral de la cola quede hacia arriba y limpie la cola con un hisopo de alcohol para esterilizar la zona que se va a inyectar. Luego, inserte la aguja aproximadamente dos milímetros dentro de la vena con un ángulo mínimo, con el bisel de la aguja orientado hacia arriba. Retire ligeramente el émbolo de la jeringa y observe si hay trazas de flujo sanguíneo hacia el conector de la aguja, lo que indica que la aguja se insertó correctamente en la vena.Luego, inyecte lentamente la solución de verde de indocianina. Debe haber una resistencia mínima al inyectar después de la inyección. Retire la aguja y aplique una torunda de alcohol directamente en el sitio de inyección durante cinco a 10 segundos para detener cualquier sangrado.A continuación, el ratón está listo para la obtención de imágenes tras la inyección en la vena de la cola. Transfiera rápidamente el ratón al sistema de obtención de imágenes previamente preparado para tomar imágenes durante la fase temprana del llenado coroideo. Primero, configure la imagen y enfoque la vasculatura de interés.Enfoque entre 35 y 45 dioptrías para la vasculatura retiniana y entre 10 y 15 dioptrías para la vasculatura coroidea. Luego, controle el brillo mediante el módulo de control, ajuste los valores de enfoque y brillo digitalmente y, una vez establecidos, manténgalos constantes para ese tipo de toma. Además, mantenga constante la distancia entre el ojo del ratón y la cámara.Para garantizar una calidad de imagen reproducible. Realice la evaluación inicial mediante la obtención de imágenes de toda la parte posterior del ojo desde diferentes ángulos. Comience alineando la luminiscencia con forma circular emitida por el colorante verde de indocianina con el campo de visión de la cámara.Para lograr esto, realice ajustes de izquierda a derecha, de arriba hacia abajo y de entrada y salida. Ajuste la posición de la cámara hasta que toda la imagen esté enfocada y no presente áreas oscuras. Registre la configuración óptima del dispositivo para procedimientos repetidos.Una vez que la vascularización esté enfocada, capture los fotogramas de la imagen presionando el botón negro redondo en el módulo de adquisición. Este botón también puede utilizarse para reducir o intensificar la señal de indoc y verde para obtener la mejor calidad de imagen. Para examinar un área específica de la lesión basándose en los resultados del cribado previo, configure el sistema de imagen con el ángulo óptimo y los ajustes del dispositivo determinados anteriormente.Mantenga fija la posición del ángulo de visión del ojo, la profundidad de enfoque y otros ajustes del dispositivo durante todo el tiempo del procedimiento. Guarde las imágenes presionando el botón de adquisición en el panel táctil del módulo de adquisición. Continúe adquiriendo imágenes en la fase temprana hasta que la circulación retiniana y coroidea alcance el brillo máximo.Esto puede tardar hasta cuatro minutos. Luego, continúe adquiriendo imágenes en la fase intermedia entre los seis y los quince minutos posteriores a la inyección. Como puede observarse aquí, los vasos coroideos se vuelven menos definidos en esta fase y aparecen como una fluorescencia difusa.Además, las lesiones coroideas que presentan hiperfluorescencia emergente adquieren imágenes en la fase tardía entre los 17 y 25 minutos posteriores a la inyección. Durante esta fase, la hiperfluorescencia desaparece y los vasos ya no son visibles. Asimismo, la cabeza del nervio óptico se vuelve negra y las lesiones coroideas presentan un contraste máximo con el fondo que se está atenuando.Después de finalizar la adquisición de imágenes, aplique un lubricante transparente IGEL a los ojos del ratón y deje al ratón sobre una almohadilla calefactora para su recuperación. Una vez que hayan recuperado cierto movimiento, devuelva los ratones a sus jaulas y al área de alojamiento. Finalmente, exporte todas las imágenes como archivos de imagen o archivos de video para su posterior análisis.Se muestra aquí una comparación de la angiografía con fluoresceína basada en fluoresceína sódica y la angiografía con endocit en verde en la visualización de la vasculatura retiniana y coroidea del ratón. Si bien los vasos retinianos pueden observarse mediante FA e ICGA, los vasos coroideos solo pueden verse con ICGA. A continuación se presentan imágenes de la vasculatura coroidea obtenidas tras la inyección intravenosa en la cola de endocit en verde en ratones de tipo salvaje.No se encontraron dilataciones ni lesiones en ninguna de las etapas de imagen en el ratón transgénico HT A uno. Sin embargo, tanto dilataciones como lesiones de tipo pólipos en racimo se observaron en la etapa temprana, y aparecieron varias lesiones adicionales en la fase media que se hicieron más evidentes en la etapa tardía. Para comparar entre la inyección en vena caudal y la inyección intraperitoneal de verde de indocianina respecto a la calidad de imagen, se realizaron imágenes a ratones transgénicos HRA uno adicionales tras la inyección IP. La vascularización coroidea es mayormente invisible cinco minutos después de la inyección en ambos ratones, y es invisible más de 12 minutos después en el ratón.En los paneles inferiores, además de la raíz de inyección, el color del pigmento influye también en la calidad de las imágenes. Aquí se compararon un ratón pigmentado y un ratón albino utilizando un curso temporal de IV incy en verde, una geografía. El ratón albino presentó imágenes mucho más nítidas de los vasos coroideos grandes y pequeños en las fases temprana e intermedia, y proporcionaría un buen fondo de cría para estudios posteriores en esta área tras su desarrollo.Esta técnica allanó el camino para que los investigadores en el campo de la investigación de la visión exploraran anomalías coroideas en modelos murinos.

detecting-abnormalities-choroidal-vasculature-mouse-model-age-related

Research

Investigación

JoVE Journal

Medicine

Medicina

La activación de la microglia y microgliosis son respuestas clave a la neurodegeneración crónica. A continuación, presentamos los métodos para in vivo, visualización a largo plazo de la retina células microgliales CX3CR1-GFP + por oftalmoscopía confocal y de umbral y los análisis morfométricos para identificar y cuantificar su activación. Hacemos un seguimiento de los cambios microgliales durante las primeras etapas del glaucoma relacionada con la edad.

En Vivo Dinámica de Retina Microglial Activación Durante Neurodegeneración: Confocal oftalmoscópico Imaging y Morfometría celular en el ratón Glaucoma

Este protocolo describe cómo alta resolución técnicas imagenológicas como una tomografía de coherencia óptica de dominio espectral y exploración oftalmoscopia de láser puede ser utilizada en pequeños roedores, utilizando un sistema de plataforma imagen oftálmica, para obtener información sobre espesor retiniano y microglía células distribución, respectivamente.

En Vivo Proyección de imagen de ratones de reportero Cx3cr1gfp/gfp con tomografía de coherencia óptica de dominio espectral y exploración oftalmoscopia de láser

Presentamos la utilidad de la proyección de imagen longitudinal en vivo en el seguimiento de los cambios morfológicos del neovascularization coroides laser-inducida en ratones.

En Vivo La proyección de imagen multimodal y análisis del modelo de neovascularización coroidea inducida por láser Mouse

Aquí, describimos el uso de la tomografía de coherencia óptica de dominio espectral (SD-OCT) para visualizar estructuras retinianas y oculares in vivo en modelos de degeneración retiniana, glaucoma, retinopatía diabética y miopía.

Evaluaciones estructurales in vivo de enfermedades oculares en modelos de roedores mediante tomografía de coherencia óptica

Este protocolo presenta el ensayo de brotación coroides, un modelo ex vivo de proliferación microvascular. Este ensayo se puede utilizar para evaluar las vías implicadas en la proliferación de micro vasos corooidales y evaluar los tratamientos farmacológicos utilizando tejido de ratón de tipo salvaje y modificado genéticamente.

Un ensayo ex vivo de brotes de coroides de angiogénesis microvascular ocular

Este protocolo describe un método detallado para la preparación y tinción de inmunofluorescencia de ratones montados planos de retina y análisis. El uso de la angiografía con fondo de ojo de fluoresceína (FFA) para crías de ratones y el procesamiento de imágenes también se describen en detalle.

Monitoreo del crecimiento dinámico de los vasos retinianos en un modelo de ratón con retinopatía inducida por oxígeno

Aquí, describimos una técnica de imagen in vivo utilizando tomografía de coherencia óptica para facilitar el diagnóstico y la medición cuantitativa de la retinopatía en ratones.

Aplicación de la tomografía de coherencia óptica a un modelo de retinopatía en ratones

Aquí, presentamos tres protocolos de análisis de datos para imágenes de angiografía fluoresceínica (AF) y tomografía de coherencia óptica (OCT) en el estudio de la oclusión de la vena retiniana (OVR).

In vivo Lecturas de lesiones vasculares en la retina del ratón para promover la reproducibilidad

Actualmente, la angiografía con fluoresceína (AF) es el método preferido para identificar patrones de fuga en modelos animales de neovascularización coroidea (NVC). Sin embargo, la AF no proporciona información sobre la morfología vascular. Este protocolo describe el uso de la angiografía con verde de indocianina (ICGA) para caracterizar diferentes tipos de lesiones de NVC inducida por láser en modelos de ratón.

Caracterización de la morfología vascular de la degeneración macular neovascular asociada a la edad mediante angiografía con verde de indocianina

A fin de comprender los mecanismos moleculares de los daños en el desarrollo inducido por etanol, hemos desarrollado un modelo de pez cebra de la exposición de etanol y están explorando las alteraciones físicas, celulares y genéticos que se producen después de la exposición de...

Evaluación de los cambios teratogénicos en un modelo de pez cebra de la exposición fetal al alcohol

Aprende a detectar anomalías vasculares coroideas en modelos murinos de degeneración macular relacionada con la edad mediante angiografía con verde de indocianina en tiempo real. Este método estandarizado permite caracterizar lesiones coroideas con alta resolución.

La detección de anormalidades en la vasculatura coroidea en un modelo de ratón de la relacionada con la edad degeneración macular por Time-curso de indocianina verde Angiografía (Video) | JoVE Journal

La detección de anormalidades en la vasculatura coroidea en un modelo de ratón de la relacionada con la edad degeneración macular por Time-curso de indocianina verde Angiografía

Explorar más videos