Name: Detección de barrera interrupción del tejido con un transistor orgánico Electroquímica (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-02-10T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 17 s
Description: Aprende a utilizar un transistor orgánico electroquímico (OECT) para detectar interrupciones en la barrera tisular gastrointestinal. Este método de bajo costo permite monitorear cambios en el flujo iónico y evaluar la integridad del tejido barrera en tiempo real.

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Los autores de este trabajo no tienen intereses financieros en competencia.

1. PEDOT: PSS Preparación de la solución <ol><li> Para 50 ml de PEDOT: PSS, añadir glicol de etileno (aumenta la conductividad) en una relación en volumen de 1:4 (glicol de etileno a PEDOT: PSS), 0,5 l / ml de ácido dodecilbencenosulfónico (DBSA) como un agente tensioactivo, y 10 mg / ml de 3-glicidoxipropiltrimetoxisilano (GOPS) como un agente de reticulación para promover la adhesión del polímero a la realización de la lámina de vidrio. </li></ol> 2. OECT Fabricación (Figura 3) <ol><li> Definir los contactos de fuente y drenaje de oro térmicamente evaporados a través de la litografía del despegue: <ol><li> Girar fotorresistente abrigo en un portaobjetos de vidrio limpio normal a 3.000 rpm durante 30 seg. Dimensiones de vidrio son en 3 x 1 pulg </li><li> Definir patrones mediante fotolitografía. Las dimensiones pueden ser modificadas, sin embargo las dimensiones mencionadas aquí, se mostró a conducir a la sensibilidad óptima. A continuación, utilice un desarrollador. </li><li> Evaporar 5 nm y 100 nm de cromo y oro, respectivamente. </li><li> Despegue la fotoprotección en una acbaño de Etone durante 1 hora, dejando el sustrato con la fuente y el drenaje área de contactos de Au solamente. </li></ol></li><li> La longitud deseada de la PEDOT: PSS canal es 1 mm. Esto se logra mediante el estampado utilizando una técnica de desprendimiento de parileno-C (Pa-C): <ol><li> Cargue 3,5 g de Pa-C en la configuración del recubrimiento. Uniformemente evaporar 2 micras de parileno-C en la parte superior del sustrato de Au con contactos. </li><li> Patrón del canal mediante fotolitografía: <ol><li> Haga girar fotoprotector abrigo a 3.000 rpm durante 30 segundos. </li><li> Utilice una máscara para iluminar canal y de contacto dorada de 20 segundos a los rayos UV, la resina fotosensible expuesta será soluble en el revelador. </li><li> Utilice desarrollador para abrir el área del canal en el fotorresistente. </li></ol></li><li> Etch la Pa-C en el área del canal por un paso de plasma 15 min (O 2 (50 sccm) y CHF 4 (3 sccm) de plasma a 160 W) con el fin de abrir el canal y el contacto de oro. </li></ol></li><li> Depositar el PEDOT: PSS solución mezcla de capa de la vuelta al500 rpm durante 45 segundos. Hornear durante 30 segundos a 110 ° C. </li><li> Peel-off de la Pa-C para revelar el PEDOT: PSS canal del sustrato debajo. Este canal debe superponerse ligeramente con la UA contactos establecidos en el Protocolo 1. </li><li> Muestras Hornear durante 1 hora a 140 ° C bajo condiciones atmosféricas. </li></ol> 3. Conjunto de dispositivo <ol><li> Hacer PDMS mediante la mezcla de dos soluciones (por lo general suministrados juntos en un kit) en una relación de 1:10 de solución de curado en solución de base. Hornear durante 1 hora a 120 ° C. </li><li> Diseña bien mediante el uso de una perforadora y cortar un cuadrado alrededor del área deseada. </li><li> Pegar un PDMS bien en la parte superior del canal, para dar lugar a una zona de canal de aproximadamente 6 mm 2. Asegúrese de que los contactos de fuente y drenaje no están cubiertos. </li><li> Hacer un soporte de plástico con un agujero en él (se puede utilizar el soporte para la inserción del cultivo celular) y luego pegarlo en la parte superior de los PDMS. Deje que se seque durante la noche. </li><li> Pruebe el bien para el escape de cargar previamente con water. </li><li> Suelde los cables eléctricos en el contacto de origen y de drenaje con estaño. </li></ol> 4. Cultivo Celular <ol><li> Preparar medios de cultivo celular como sigue: <ol><li> En DMEM, añadir 1% de glutamina, 10% suero bovino fetal, 0,5% de penicilina-estreptomicina, y 0,1% de gentamicina. </li><li> Esterilizar el medio de cultivo celular usando un dispositivo de filtro estéril. </li></ol></li><li> Mantener células Caco-2 entre el paso 49 y 68 a 37 ° C en una atmósfera humidificada de 5% de CO 2, en medios de cultivo celular. </li><li> Divida las células una vez por semana usando tripsina y la semilla a 1,5 x 10 4 células / inserción. </li><li> Cambie medios de cultivo celular dos veces por semana durante 3 semanas. </li></ol> 5. Mediciones con OECT <ol><li> Conectar un alambre de Ag / AgCl a un SourceMeter para su uso como el electrodo de puerta. Sumergir la punta en medios de cultivo celular, que se utiliza como electrolito, como se ilustra en la Figura 1a. </li><li> Conecte los cables de la fuente y el drenaje de tél SourceMeter (configuración de doble canal). </li><li> Aplicar un pulso cuadrado de voltaje positivo (V GS) entre la puerta y la fuente (utilizado como electrodo de referencia: tierra). Un voltaje constante negativa entre el drenaje y la fuente (V DS) se aplica y se mide corriente correspondiente (I DS). </li><li> Utilice una recopilación de datos programa en ejecución PC. Parámetros OECT inscritos en un programa de adquisición personalizado deberían ser las siguientes: V DS = -0.2 V, V GS = 0,3 V, V GS a tiempo = 2 seg, fuera de tiempo = 28 seg. </li><li> Lectura de corriente de fuente-drenaje (I DS) y la corriente de puerta (I GS). Llevar a cabo la medición durante varios minutos para asegurar una señal de línea de base estable. </li></ol> 6. La integración de las células con OECT para la Medición Nota: Antes del experimento, la integridad de la capa de células puede ser verificada mediante la medición de TER con un dispositivo de espectroscopia de impedancia. TER de cada 3 semanas de edad inse células Caco-2rt debe estar por encima de 400 Ω. cm 2. <ol><li> Durante el tiempo libre de la medición OECT: Retire el electrodo de puerta del electrolito, incorporar el inserto de cultivo celular, y vuelva a colocar el electrodo de puerta interior del inserto de cultivo celular. </li><li> Llevar a cabo una medición de línea de base con las células durante varios minutos para asegurar una señal estable. Esta línea de base se utilizará como para el cálculo del valor normalizado correspondiente a una monocapa intacta (0). </li></ol> 7. Preparación y Presentación de los compuestos tóxicos <ol><li> Preparar una solución 1 M de EGTA en agua DI, primero ajustando el pH de la solución a 7,4 con Tris base. </li><li> Añadir la solución EGTA en el volumen adecuado para obtener la concentración deseada (por ejemplo, entre 5 mM y 100 mM) teniendo en cuenta el volumen. La EGTA debe ser añadido en la cámara basal durante el tiempo libre. </li><li> Medir de forma continua durante 90 min como en el Protocolo 5. Si la medición es being lleva a cabo a temperatura ambiente, la estabilidad de las células no se mantendrá constante después de 90 min. </li><li> Al final de la carrera, rayar la capa de células para dar lugar a una destrucción completa de la capa de barrera y medida durante 15 minutos, este punto se podría hacer mediante la eliminación del filtro y sumergir el electrodo de puerta en los medios de comunicación. Esta línea de base se utilizará como para el cálculo del valor normalizado correspondiente a una monocapa destruido. </li></ol>

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Este proyecto es apoyado por el FP7-PEOPLE-2009-RG, Marie Curie Proyecto No. 256367 (CELLTOX) y la propuesta del Consejo Europeo de Investigación ERC-2010-STG No 258966 (IONOSENSE), así como una subvención conjunta por el Conseil Regional de Provenza-Alpes-Costa Azul y CDL Pharma para ST. Damos las gracias a George Malliaras útil para los debates relacionados con el diseño y la función OECT.

Esta técnica proporciona un nuevo método para integrar un transistor electroquímica orgánica con células vivas para medir la integridad del tejido de barrera. Las principales ventajas de esta técnica son la rapidez y sensibilidad, sino también el bajo coste del dispositivo para el control dinámico de tejido de barrera. Como este método utiliza células vivas, un punto crítico es que asegúrese de usar una monocapa, lo que representa una capa de barrera intacta. Los parámetros de la barrera deb...

El epitelio gastrointestinal es un ejemplo de tejido de barrera, que controla el paso de moléculas entre los diferentes compartimentos del cuerpo. El epitelio se compone de células columnares alargados unidos entre sí por complejos de proteínas que proporcionan una barrera física 1 contra patógenos y toxinas, mientras que permite el paso del agua y los nutrientes necesarios para sostener el cuerpo. Esta selectividad es debido a la polarización de las células epiteliales, lo que crea dos dominios de membrana diferentes: la parte apical de las células expuestas a la luz y la parte basal de las células ancladas en los tejidos subyacentes 2,3. Las uniones estrechas (TJ) son complejos de proteínas presentes en la parte apical de las células epiteliales y son parte de un complejo más amplio conocido como la unión apical 4. Flujo de iones a través del tejido de barrera puede ir ya sea a través de la transcelular (a través de la célula) o a través de un paracelular (entre dos células adyacentes) vía. La suma de losel transporte a través de ambas vías se conoce como la resistencia transepitelial. La unión apical es responsable de la regulación de los iones y moléculas que pasan a través de la barrera de 5,6 a través de una abertura específica y función de cierre. Una disfunción o alteración de estos complejos de proteínas es a menudo relacionado con la enfermedad 7-11. Además, muchos agentes patógenos / toxinas entéricos son conocidos para dirigirse específicamente a este complejo, entrando así al cuerpo y que conduce a la diarrea, muy probablemente como consecuencia de la desregulación masiva de flujo de iones / agua a través de la barrera 12-14. Tejido barrera también puede ser modificado cambiando el microambiente extracelular. Cadherina es una proteína crítica para la adhesión célula-célula, y está implicado en la formación de la unión apical. El calcio es necesario para la conformación estructural correctos de cadherina, y una disminución en el calcio extracelular se ha demostrado que resulta en la destrucción de la unión célula-célula y una abertura posterior de lavía paracelular entre las células 15. En este estudio, EGTA (ácido etilenglicol-bis (beta-aminoetil éter)-N, N, N &#39;, N&#39;-ácido acético TETRA), un quelante de calcio específico, fue utilizado para inducir una brecha en el tejido de barrera, ya que tiene ha demostrado que tienen un efecto rápido y drástico en paracelular flujo de iones a 16,17. Este quelante de calcio se utiliza en una monocapa confluente y diferenciada de la de la línea celular Caco-2. Cultivaron en insertos de cultivo de células, esta línea celular se sabe que se desarrollan las características del tracto gastrointestinal y se utiliza ampliamente por la industria farmacéutica para probar la absorción de fármacos 18,19. Métodos para monitorear la integridad del tejido barrera son abundantes. Estos métodos son a menudo óptico, basándose en la tinción de inmunofluorescencia de proteínas particulares que se sabe que en la unión apical 20, o basándose en la cuantificación de una molécula de trazador fluorescente que es normalmente impermeable al tejido barrera21,22. Sin embargo, los métodos de etiquetado libre (es decir, sin un fluoróforo / cromóforo) son preferibles como el uso de una etiqueta puede incurrir en artefactos, ya menudo aumenta el costo y tiempo de ensayo. Supervisión eléctrica, libre de marca de tejido barrera ha surgido recientemente como un método dinámico de supervisión 23. Por ejemplo recientes avances tecnológicos en la espectroscopia de impedancia eléctrica han permitido el desarrollo de un aparato de exploración disponibles comercialmente 24,25 que pueden medir la resistencia transepitelial (TER), una medición de la conductancia de iones a través de la capa de células. La electrónica orgánica ha creado una oportunidad única para interconectar el mundo de la electrónica y la biología 26,27 28,29 mediante el uso de polímeros conductores que pueden conducir tanto a portadores electrónicos e iónicos. Una nueva técnica para detectar infracciones en el tejido barrera utilizando la OECT 30-32 se introdujo recientemente. Este dispositivo se ha validado con las técnicas existentes nosed para evaluar integridad de la barrera de tejido, incluyendo inmunofluorescencia, ensayos de permeabilidad utilizando Lucifer amarillo y espectroscopia de impedancia usando el Cellzscope. En el caso de todos los compuestos tóxicos ensayados, la OECT se encontró para operar con una sensibilidad igual o mejor, y con el aumento de la resolución temporal, en comparación con las técnicas anteriores. En este dispositivo, de PEDOT: PSS, un polímero conductor que se ha demostrado ser estable y biocompatible 33,34, se utiliza como el material activo en el canal del transistor. La OECT está compuesta de drenaje y fuente electrodos a cada lado de un canal de polímero conductor. Este se coloca entonces en contacto con un electrolito, que forma una parte integral del dispositivo. Un electrodo de puerta se sumerge en el electrolito (Figura 1), y cuando se aplica una tensión de puerta positivo en la puerta, de cationes del electrolito son forzados dentro del canal, desdopado así el polímero conductor y que resulta en un cambio en la fuente-drenaje actual. El device es por lo tanto extremadamente sensibles a los cambios minutos en flujo iónico debido a la amplificación por el transistor. Una capa de células cultivadas en un inserto de cultivo celular se colocó entre el electrodo de puerta y del canal de polímero conductor. La presencia de una capa de células intactas actúa como barrera para los cationes de entrar en el polímero conductor, por lo tanto, en presencia de una monocapa intacta, la corriente disminuye de drenaje (Figura 2: transición de la región de A a B). En la presencia de un compuesto tóxico, el tejido de barrera perderá progresivamente su integridad, dejando que los cationes entran en la película de polímero y aumentando la corriente de drenaje (Figura 2: región C). Con esta técnica, la brecha en el tejido de barrera es visto por la modulación de la corriente de drenaje, que corresponde a la modulación del flujo a través de la monocapa. Este dispositivo es capaz de medir pequeñas variaciones en el flujo iónico con resolución temporal sin precedentes y la sensibilidad en tiempo real. Este Wil tecnologíal ser de interés en el campo de la toxicología de las pruebas de drogas, el diagnóstico de enfermedades o la investigación básica como el modelo de barrera puede ser adaptado fácilmente. Este método también ayudará a reducir la experimentación con animales, ya que permite la validación de los modelos in vitro para sustituir a los ensayos in vivo.

<table><tbody><tr><td>Clevios pH 1000</td><td>Heraus Clevios</td><td></td><td></td></tr><tr><td>AZ9260 resina</td><td>Cipec Specialties</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ácido dodecilbencenosulfónico (DBSA)</td><td>Acros Organic</td><td></td><td></td></tr><tr><td>3-Glycidoxypropyltrimethoxysilane (GOPS)</td><td>Sigma Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>24-well Inserto de cultivo celular suspendido Millicell&nbsp; PET 0.4 &mu; m Millipore</td><td>Dominique Dutscher</td><td>51705</td><td></td></tr><tr><td>24 pocillos Placa de cultivo celular BD Falcon</td><td>Dominique Dutscher</td><td>51705</td><td></td></tr><tr><td>Stericup-GPT PES 0.22 &mu; M</td><td>Dominique Dutscher</td><td>51246</td><td></td></tr><tr><td>Marca DMEM Avanzada GIBCO</td><td>Fisher Scientific</td><td>E3434T</td><td></td></tr><tr><td>FBS Heat Inact.</td><td>Fisher Scientific</td><td>E3387M</td><td></td></tr><tr><td>Penicilina Estreptomicina</td><td>Fisher Scientific</td><td>E3470C</td><td></td></tr><tr><td>GlutaMAX</td><td>Fisher Scientific</td><td>E3524T</td><td></td></tr><tr><td>Tripsina 0.05% EDTA</td><td>Fisher Scientific</td><td>E3513N</td><td></td></tr><tr><td>EGTA (Etilenglicol-bis(2-aminoetiléter)-N,N,N&prime;,N&prime;-ácido tetraacético)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>E4378</td><td></td></tr><tr><td>Etilenglicol, anhidro, 99.8%,</td><td>Sigma Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Caco-2 celdas</td><td>ATCC</td><td></td><td></td></tr><tr><td>PDMS</td><td>Dow Corning</td><td>SYLGARD 184 ELASTÓMERO</td><td></td>DE SILICONA</tr><tr><td>Au (99.99%)</td><td>NEYCO</td><td>AU3X6</td><td></td></tr><tr><td>Cromo (99.95%)</td><td>NEYCO</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Parylene C</td><td>Sistemas</td><td></td><td></td> de recubrimiento especiales</tr><tr><td>Alambre Ag/AgCl</td><td>Aparato</td><td></td><td></td>Harvard</tr><tr><td>Fotorresistente Cipec</td><td>Especialidades</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

detección de barrera interrupción del tejido con un transistor orgánico electroquímica

Sensing of Barrier Tissue Disruption with an Organic Electrochemical Transistor

El tracto gastrointestinal es un ejemplo de tejido de barrera que proporciona una barrera física contra la entrada de patógenos y toxinas, mientras que permite el paso de iones y moléculas necesarias. Una violación de esta barrera puede ser causada por una reducción en la concentración de calcio extracelular. Esta reducción en la concentración de calcio causa un cambio conformacional en las proteínas implicadas en el sellado de la barrera, lo que lleva a un aumento del flujo paracelular. Para imitar este efecto los quelantes de calcio ácido etilenglicol-bis (beta-aminoetil éter)-N, N, N &#39;, se utilizó ácido acético N&#39;-tetra (EGTA) en una monocapa de células conocidas para ser representativa del tracto gastrointestinal. Ya existen diferentes métodos para detectar la interrupción de la barrera de tejido, tales como ensayos de inmunofluorescencia y de permeabilidad. Sin embargo, estos métodos son mucho tiempo y costoso y no es adecuado para mediciones dinámicas o de alto rendimiento. Métodos electrónicos para la medición de tejido de barreraintegridad también existe para la medición de la resistencia transepitelial (TER), sin embargo, estos son a menudo costoso y complejo. El desarrollo de métodos rápidos, baratos y sensibles se necesita con urgencia como la integridad de los tejidos de barrera es un parámetro clave en el descubrimiento de fármacos y el diagnóstico de patógenos / toxina. El transistor de electroquímica orgánica (OECT) integrada con el tejido barrera de la formación de células se ha mostrado como un nuevo dispositivo capaz de monitorizar dinámicamente la integridad del tejido barrera. El dispositivo es capaz de medir las variaciones minutos en flujo iónico con resolución temporal sin precedentes y sensibilidad, en tiempo real, como un indicador de la integridad del tejido de barrera. Este nuevo método se basa en un dispositivo simple que puede ser compatible con las aplicaciones de cribado de alto rendimiento y fabricado a bajo costo.

Durante la primera etapa de la medición, la corriente de drenaje puede variar un poco, pero en la mayoría de los casos, debería permanecer estable (Figura 2, apartado a). Si la señal no es estable, el transistor debe ser desechado y sustituido. Esta comprobación de la estabilidad también asegura que las pérdidas iniciales en la conductividad del dispositivo no afectan a la medición posterior. Después de varios minutos de medición, el inserto con las células que forman el tejido de barrera se coloca en l...

El transistor orgánico electroquímico está integrado con células vivas y se utiliza para controlar el flujo de iones a través de la barrera epitelial intestinal. En este estudio, un incremento en el flujo de iones, relacionados con la alteración de las uniones estrechas, inducida por la presencia de la EGTA quelante de calcio (ácido etilenglicol-bis (beta-aminoetil éter)-N, N, N &#39;, N&#39;-tetra acético ácido), se mide.

Detección de barrera interrupción del tejido con un transistor orgánico Electroquímica

The gastrointestinal tract is an example of barrier tissue that provides a physical barrier against entry of pathogens and toxins, while allowing the ...

El objetivo general del siguiente experimento es desarrollar un diagnóstico sensible, rápido y de bajo costo para monitorear la salud del tejido de barrera. Esto se logra fabricando un transistor electroquímico orgánico, que puede monitorear de forma rápida y sensible los cambios en el flujo iónico en un electrolito mediante la medición de las variaciones en la corriente entre la fuente y el drenaje del transistor. Como segundo paso, se integra una capa de tejido de barrera sano cultivada sobre un filtro en el dispositivo OECT, lo que permite monitorear el flujo iónico a través de la capa de tejido de barrera, el cual estará parcialmente bloqueado si la capa celular está sana.Si se añade un compuesto tóxico que destruye o interrumpe la capa de tejido de barrera, el flujo iónico a través de la capa celular ya no estará bloqueado. Los resultados obtenidos muestran que el OECT puede detectar con éxito los efectos tóxicos de un compuesto modelo, lo que demuestra que podemos utilizar las mediciones del transistor como un diagnóstico para monitorear la salud del tejido de barrera. La principal ventaja de esta técnica frente a métodos existentes, como la espectroscopía de impedancia, es que los dispositivos electrónicos orgánicos tienen el potencial de producirse a bajo costo y, por lo tanto, son adecuados para ensayos de alto rendimiento.El procedimiento será demostrado por SHA FIA, una estudiante de posgrado, y Mark Hamir, un postdoctorado en mi laboratorio. Este método puede proporcionar información sobre las células del epitelio gastrointestinal, pero también puede aplicarse a otros sistemas, como la piel, el epitelio renal y la barrera de banda ancha. La demostración visual de este método es fundamental como un paso necesario para integrar una capa celular con un dispositivo.Requiere una manipulación cuidadosa para definir mediante litografía de levantado contactos de oro evaporados térmicamente como fuente y drenaje. Primero, aplique una resina fotosensible girando a 3000 RPM sobre un vidrio limpio normal de tres pulgadas por una pulgada. Gire a 3000 RPM durante 30 segundos y hornee las muestras durante 30 segundos a 110 grados Celsius.A continuación, defina los patrones mediante fotolitografía utilizando una máscara dedicada a los contactos de oro dentro de una cámara de evaporación. Depósitese cinco nanómetros y 100 nanómetros de cromo y oro, respectivamente. Posteriormente, retire la fotoresina.Sumerja en un baño de acetona durante una hora, dejando sobre el sustrato únicamente las zonas de contacto de oro de fuente y drenaje, de modo que la longitud deseada del canal de PSS-PDOT sea de un milímetro, lo cual se logra mediante un procedimiento de delineado usando la técnica de desprendimiento con Lene C. Ahora cargue 3,5 gramos de Lene C en el equipo de recubrimiento. Evapore uniformemente dos micrones de paralina C sobre el sustrato con contacto de oro para definir el canal mediante fotolitografía: aplique una capa de resist fotolitográfico por centrifugado a 3000 RPM durante 30 segundos y hornee el sustrato durante dos minutos a 110 grados Celsius.A continuación, defina los patrones utilizando una máscara dedicada al área del canal. La parte del fotoresist expuesta a UV se volverá soluble en el revelador posteriormente. Grave la Lene C en el área del canal exponiéndola a plasma de oxígeno durante 15 minutos en la cámara, con el fin de abrir el canal y el contacto de oro.Luego, deposite la solución de la mezcla de Pdot PSS mediante centrifugación a 500 RPM durante 45 segundos y hornee durante 30 segundos a 110 grados Celsius. Posteriormente, retire la Paraline C para revelar el canal de Pdot PSS del sustrato debajo. Este canal debe superponerse ligeramente con el contacto de oro.Hornee las muestras durante una hora a 140 grados Celsius en condiciones atmosféricas. En este procedimiento, prepare PDMS mezclando la solución de curado y la solución base en una proporción de uno a 10 y hornee durante una hora a 120 grados Celsius. A continuación, diseñe un pozo utilizando un perforador y corte un cuadrado alrededor del área deseada.Luego, pegue A-P-D-M-S firmemente en la parte superior del canal para obtener un área de canal de seis milímetros cuadrados. Fabricar un soporte de plástico con un orificio, luego pegarlo encima del PDMS y dejar secar durante la noche. A continuación, pruebe la cámara para detectar fugas prellenándola con agua.Comience este procedimiento preparando primero el medio de cultivo celular. A continuación, esterilice el medio de cultivo celular utilizando un dispositivo de filtro estéril. Luego, mantenga las células Caco-2 en el medio de cultivo celular entre el paso 49 y el 68 a 37 grados Celsius en una atmósfera húmeda de 5% CO₂.Divida las células una vez por semana utilizando tripsina y siembre a 1,5 veces 10 a la cuarta células por inserto. Al mismo tiempo, cambie el medio de cultivo celular dos veces por semana durante tres semanas. Ahora conecte un alambre de plata, cloruro de plata a un medidor de fuente para usarlo como electrodo de compuerta.A continuación, conecte la fuente y el drenaje al medidor de fuente. Luego sumerja la punta en el medio de cultivo celular, que se utiliza como electrolito. Aplique un voltaje positivo en pulso cuadrado entre la compuerta y la fuente.Luego aplique un voltaje constante negativo entre el drenaje y la fuente y mida la corriente correspondiente. Ingrese los parámetros del OECT en un programa de adquisición personalizado. Lea la corriente entre la fuente y el drenaje y la corriente de compuerta, y realice la medición durante varios minutos para asegurar una señal de línea base estable durante la integración celular en el período de inactividad de la medición del OECT.Retire el electrodo de puerta del electrolito, luego incorpore el inserto de cultivo celular y reemplace el electrodo de puerta dentro del inserto de cultivo celular. A continuación, realice una medición de línea base con las células durante varios minutos para asegurar una señal estable. Esta línea base se utilizará para el cálculo del valor normalizado correspondiente a una monocapa íntegra.En este procedimiento, agregue la solución de EGTA en el volumen apropiado para alcanzar la concentración deseada en la cámara basal durante el tiempo de inactividad, y realice la medición continuamente como se describió anteriormente durante 90 minutos. Si la medición se realiza a temperatura ambiente, la estabilidad de las células no permanecerá constante después de 90 minutos al final del experimento; raye la capa celular para provocar la destrucción completa de la capa de barrera y mida durante 15 minutos. Esta línea base se utilizará para el cálculo del valor normalizado correspondiente a una monocapa destruida.Aquí se muestra la descripción general de las dos mediciones INCI de la respuesta de corriente de drenaje a pulsos cuadrados en la compuerta a lo largo del tiempo. Esta sección corresponde al OECT operado antes de la integración, asegurando la estabilidad del dispositivo. Esta sección corresponde a la integración de las células formadoras de tejido de barrera, nuevamente, asegurando una señal estable antes de comenzar la prueba del compuesto tóxico.Esta sección corresponde a la adición de EGTA a las células de tejido de barrera, lo cual representa la evolución de la señal a lo largo del tiempo. Se muestra aquí la respuesta de la corriente de drenaje del OECT a un único pulso cuadrado. Esta figura muestra la respuesta transitoria del OECT antes y después de la adición de células formadoras de tejido de barrera cultivadas sobre un filtro, y esta figura muestra la respuesta transitoria del OECT después de la adición de un compuesto tóxico sobre un tejido de barrera y sin tejido de barrera.Este gráfico muestra los resultados normalizados típicos del OECT. Las respuestas normalizadas del OECT se midieron durante un período de 50 minutos tras la introducción del dispositivo, indicado por una celda con círculo vacío, la capa celular indicada por una cruz negra, EGTA 5 milimolar, indicado por un círculo azul oscuro, y EGTA 10 milimolar indicado por un círculo cian. Al realizar este procedimiento, es importante recordar no imaginar una capa celular con un electrodo de compuerta ni pipetear la solución con demasiada fuerza dentro del inserto de cultivo celular.No olvide que trabajar con células vivas requiere equipo de protección adecuado y que los artículos que entren en contacto con material de células vivas deben eliminarse como residuo biológico. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo integrar una capa de tejido de barrera con el OECT para monitorear toxicología.

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Investigación

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Bioengineering

Bioingeniería

Este artículo detalla la construcción de un multiplexado basado en el sensor de microagujas. El dispositivo está siendo desarrollado para el muestreo in situ y el análisis electroquímico de múltiples analitos en una manera rápida y selectiva. Tenemos la visión de la medicina clínica y la investigación biomédica utiliza para estos sensores de microagujas basadas en.

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Fabricación y validación de un sistema de órganos-en-viruta con electrodos integrados directamente cuantificar Transendothelial resistencia eléctrica

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Fabricación de un transistor de una pieza basado en óxido de indio y estaño activado por solución que permite una biodetección sensible

Aprende a utilizar un transistor orgánico electroquímico (OECT) para detectar interrupciones en la barrera tisular gastrointestinal. Este método de bajo costo permite monitorear cambios en el flujo iónico y evaluar la integridad del tejido barrera en tiempo real.

Detección de barrera interrupción del tejido con un transistor orgánico Electroquímica

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