Name: Medición de los efectos de las bacterias en C. Elegans Comportamiento El uso de un ensayo de retención de huevo (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-10-22T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 36 s
Description: Aprende a medir los efectos de bacterias en el comportamiento de C. elegans mediante el ensayo de retención de huevo (EIW). Este método cuantifica cambios en la conducta de oviposición frente a patógenos.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Los autores desean agradecer a junio Middleton para el suministro de E. cepas faecalis y de orientación con cultivo de bacterias. C. elegans fueron proporcionados por la CGC, que es financiado por el NIH Oficina de Programas de Infraestructura de Investigación (P40 OD010440).

1) Preparación de nematodos Medio de Crecimiento (NGM) <ol><li> Para hacer 50 platos, añadir 1,5 g de NaCl, 8,5 g Agar ultrapura, y 1,25 g de peptona al 1 Lflask. </li><li> Añadir 487,5 ml de H 2 O al matraz. Agitar suavemente para mezclar y cubrir la apertura del frasco con un trozo de papel de aluminio. </li><li> Esterilizar la solución en autoclave a condiciones estándar (121 psi, 120 ° C, 20 min). </li><li> Dejar que la solución se enfríe a 45 ° C en un baño de agua. </li><li> A la solución, agregue el siguiente en orden: 500 l de colesterol a 5 mg / ml solución madre (en etanol), 500 l 1 M CaCl2, 500 l 1 M MgSO4, y 12,5 ml KPO4 tampón (54,15 g KH 2 PO 4 y 17,8 g K 2 HPO 4 en 500 ml de H 2 O), como se describe en el 18. </li><li> Uso de pipetas estériles, añadir 10 ml de solución de agar a cada 60 mm de placa de Petri de poliestireno. Permita que el medio a solidificarse a temperatura ambiente Overnight. </li></ol> 2) Preparación de B caldo de E. coli Medios <ol><li> Para hacer cinco 100 ml de cultivos, añadir 5,0 g de Bacto triptona, 2,5 g de extracto de levadura, 5,0 g de NaCl a un vaso de precipitados. </li><li> Añadir agua destilada estéril hasta un volumen final de 500 ml. Calentar la solución en una placa caliente, mientras se agita, hasta que los solutos se han disuelto. </li><li> Verter 100 ml de caldo de B en cinco botellas de vidrio (por lo menos 200 ml de volumen). </li><li> Esterilizar en autoclave las soluciones en condiciones normales (121 psi, 120 ° C, 20 minutos). </li><li> Permitir caldo B se enfríe a temperatura ambiente antes de su uso. </li></ol> 3) Siembra C. Placas Mantenimiento elegans <ol><li> Después de permitir que NGM placas se sequen a temperatura ambiente durante al menos una semana, uno inocular 100 ml de caldo de cultivo B con unas pocas colonias de E. coli (OP50). </li><li> Crecer E. cultura coli a 37 ° C durante la noche. </li><li> Pipeta una o dos gotas (aproximadamente 10081; l) de OP50 cultura en el centro de cada placa de NGM. Las placas se apilan normalmente tapa hacia arriba. Cuando pipeteado (siembra), comenzar con la pipeta la cultura sobre la placa en la parte inferior de la pila. Su forma de trabajo de cada pila. Trate de no mover las placas después de la siembra, ya que es importante que la cultura no se acerque demasiado a los bordes de la placa. </li><li> Permitir a las placas sembradas se sequen a temperatura ambiente durante al menos una semana antes de usar. </li><li> Placas sembradas se almacenan (invertida) en recipientes de plástico sellados a temperatura ambiente. </li></ol> 4) Mantenimiento C. elegans cepas <ol><li> Para mantener bien alimentados C. stocks elegans, un gusano utilizan elegir para pasar tres L4s o adultos grávidas a una nueva, sin semillas NGM placas cada 3-4 días. </li><li> Placas Tienda (invertida) preferentemente dentro de un incubador a 15 - 22 º C. Culturas en los ensayos descritos fueron almacenadas a 20 ° C. C. elegans desarrollo es dependiente de la temperatura. Como maintenana vez que aumenta la temperatura, el tiempo entre las etapas de desarrollo disminuye. </li></ol> 5) Preparación de agar de tripticasa de soja (TSA) E. faecalis Cultura Medios <ol><li> Para 50 placas, mida 500 ml de agua destilada estéril en un frasco y llevar a ebullición, mientras se agita, en una placa calefactora. </li><li> Añadir 20 g de agar TSA en polvo a un matraz y permita que la solución para disolver. </li><li> Esterilizar en autoclave las soluciones en condiciones normales (121 psi, 120 ° C, 20 minutos). </li><li> Dejar que la solución se enfríe a 45 ° C en un baño de agua. </li><li> Uso de pipetas estériles, añadir 10 ml de solución de agar a cada 60 mm de placa de Petri de poliestireno. Permita que el medio se solidifican a temperatura ambiente durante la noche. </li></ol> 6) Preparación de caldo de soja tripticasa (TSB) E. faecalis Cultura Medios <ol><li> Para hacer 250 tubos de cultivo, mida 500 ml de agua destilada estéril en un frasco y acogedor en una placa calefactora con agitación. </li&gt; <li> Añadir 15 g de polvo de agar TSB al matraz y permitir que el polvo se disuelva. </li><li> Esterilizar en autoclave las soluciones en condiciones normales (121 psi, 120 ° C, 20 minutos). </li><li> Deje que la solución se enfríe a temperatura ambiente, a continuación, pipeta 2 ml en tubos de ensayo, 5 ml estériles. </li></ol> 7) Elaboración de medios de infusión cerebro corazón (BHI), con estreptomicina, por E. faecalis Cultura <ol><li> Medir 500 ml de agua destilada estéril en un frasco y llevar a ebullición, mientras se agita, en una placa calefactora. </li><li> Añadir 26 g de medio BHI en el matraz y permita que la solución para disolver. </li><li> Esterilizar en autoclave las soluciones en condiciones normales (121 psi, 120 ° C, 20 minutos). </li><li> Deje que la solución se enfríe a 45 ° C en un baño de agua. </li><li> Utilizando una técnica estéril, añadir 0,5 ml de una solución madre de estreptomicina y agitar para mezclar 10 mg / ml. </li><li> Añadir 10 ml de la solución a cada uno de 60 mm de placa de Petri de poliestireno. </li><li&gt; Permita que el medio para solidificar a temperatura ambiente durante la noche. Placas Tienda (invertida) a 4 ° C hasta pocas horas antes de su uso. </li></ol> 8) Mantener E. faecalis cepas <ol><li> Para mantener E. stocks faecalis, use un asa estéril de racha colonias individuales en placas de agar de soja tríptico separados (TSA). </li><li> Los cultivos a 37 ° C durante la noche. Placas Tienda (invertida) en una bolsa sellada o caja a temperatura ambiente durante varias semanas. </li></ol> 9) Preparar E. Placas faecalis para EIW Ensayo <ol><li> Inocular 2 ml de un cultivo TSB con una colonia de E. faecalis y se incuba durante la noche a 37 ° C. </li><li> Pipetear 20 l de E. cultura faecalis en el centro de una placa de BHI-estreptomicina preparado, y se incuban durante la noche a 37 ° C. </li></ol> 10) Preparación de E. Placas coli para EIW ensayo (placas de control) <ol><li> Inocular un ml B-bro 100ª cultivo con una colonia de E. OP50 coli y se incuban durante la noche a 37 ° C </li><li> Pipetear 20 l de la cultura OP50 en el centro de una placa de NGM cabeza de serie y permitir que las placas sembradas se sequen a temperatura ambiente durante la noche. </li></ol> 11) Egg en el Ensayo Gusano <ol><li> Elige 15-20 organizado-L4 C. elegans (Figura 1) en el centro de un césped de bacterias en un preparado BHI-Strep-E. placa faecalis. Tenga cuidado de no transferir una gran cantidad de OP50 a la placa BHI. Elija el mismo número de L4s a un control NGM-OP50 plato. </li><li> Incubar las placas durante 40 horas a 20 ° C. </li><li> Prepare una solución de lejía al 20%. Mezclar una lejía comercial (6,0% de hipoclorito de sodio) con el volumen apropiado de agua destilada. </li><li> Añadir 10 l gotas de lejía por diez lugares distintos en una tapa de plástico (de un gusano o placa bacteriana). </li><li> Con una selección de gusano, transferir un gusano en cada gota de lejía. Agite suavemente la punta de larecoger en la gota cloro para asegurarse de que el gusano se ha lavado de la final de la selección (confirmar al ver la gota en un microscopio). </li><li> Permitir la cutícula para disolver durante aproximadamente 10 minutos o hasta que los gusanos se abrieron de golpe, la expulsión de los huevos (Figura 2). Tenga cuidado de no trasladar los huevos a la plancha. </li><li> El uso de un microscopio de disección, contar los huevos en cada gota de lejía. </li></ol>

<ol><li>Horvitz, H. R., Chalfie, M., Trent, C., Sulston, J. E., Evans, P. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Serotonin+and+octopamine+in+the+nematode+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Serotonin and octopamine in the nematode Caenorhabditis elegans.</a> Science. 216, 1012-1014 (1982).</li>
<li>Sawin, E. R. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Genetic+and+cellular+analysis+of+modulated+behaviors+in+Caenorhabditis+elegans+%5B%5D%22">Genetic and cellular analysis of modulated behaviors in Caenorhabditis elegans [dissertation]</a>. , Massachusetts Institute of Technology. Cambridge, MA. (1996).</li>
<li>Trent, C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Genetic+and+behavioral+studies+of+the+egg-laying+system+of+Caenorhabditis+elegans+%5B%5D%22">Genetic and behavioral studies of the egg-laying system of Caenorhabditis elegans [dissertation]</a>. , Massachusetts Institute of Technology. Cambridge, MA. (1982).</li>
<li>Chase, D. L., Koelle, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+analysis+of+RGS+protein+function+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Enzymol%22%5BJournal%5D)">Genetic analysis of RGS protein function in Caenorhabditis elegans.</a> Methods Enzymol. 389, 305-320 (2004).</li>
<li>Trent, C., Tsuing, N., Horvitz, H. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Egg-laying+defective+mutants+of+the+nematode+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Egg-laying defective mutants of the nematode Caenorhabditis elegans.</a> Genetics. 104, 619-647 (1983).</li>
<li>Weinshenker, D., Garriga, G., Thomas, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+and+pharmacological+analysis+of+neurotransmitters+controlling+egg+laying+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Genetic and pharmacological analysis of neurotransmitters controlling egg laying in Caenorhabditis elegans.</a> J. Neurosci. 15, 6975-6985 (1995).</li>
<li>Waggoner, L. E., Zhou, G. T., Schafer, R. W., Schafer, W. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Control+of+alternative+behavioral+states+by+serotonin+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Control of alternative behavioral states by serotonin in Caenorhabditis elegans.</a> Neuron. 21, 203-214 (1998).</li>
<li>Bany, A., Dong, M., Koelle, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+and+cellular+basis+for+acetylcholine+inhibition+of+Caenorhabditis+elegans+egg-laying+behavior%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Genetic and cellular basis for acetylcholine inhibition of Caenorhabditis elegans egg-laying behavior.</a> J. Neurosci. 23, 8060-8069 (2003).</li>
<li>Dempsey, C. M., Mackenzie, S. M., Gargus, A., Blanco, G., Sze, J. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Serotonin+%285HT%29%2C+fluoxetine%2C+imipramine+and+dopamine+target+distinct+5HT+receptor+signaling+to+modulate+Caenorhabditis+elegans+egg-laying+behavior%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Serotonin (5HT), fluoxetine, imipramine and dopamine target distinct 5HT receptor signaling to modulate Caenorhabditis elegans egg-laying behavior.</a> Genetics. 169, 1425-1436 (2005).</li>
<li>Leung, M. C., Williams, P. L., Bennedetto, A., Au, C., Helmcke, K. J., Aschner, M., Meyer, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Caenorhabditis+elegans%3A+an+emerging+model+in+biomedical+and+environmental+toxicology%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicol.+Sci%22%5BJournal%5D)">Caenorhabditis elegans: an emerging model in biomedical and environmental toxicology.</a> Toxicol. Sci. 106, 5-28 (2008).</li>
<li>Mylonakis, E., Aballay, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Worms+and+flies+as+genetically+tractable+animal+models+to+study+host-pathogen+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Infect.+Immun%22%5BJournal%5D)">Worms and flies as genetically tractable animal models to study host-pathogen interactions.</a> Infect. Immun. 73, 3833-3841 (2005).</li>
<li>Schafer, W. R. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSchafer%2C+WR+%22WormBook%22">WormBook</a>. , WormBook. (2005).</li>
<li>White, J., Southgate, E., Thomson, N., Brenner, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+structure+of+the+Caenorhabditis+elegans+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22Philos.+Trans.+R.+Soc.+Lond.+B.+Biol.+Sci%22%5BJournal%5D)">The structure of the Caenorhabditis elegans nervous system.</a> Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 314, 1-340 (1986).</li>
<li>Desai, C., Garriga, G., McIntire, S. L., Horvitz, H. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+genetic+pathway+for+the+development+of+the+Caenorhabditis+elegans+HSN+motor+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">A genetic pathway for the development of the Caenorhabditis elegans HSN motor neurons.</a> Nature. 336, 638-646 (1988).</li>
<li>Garsin, D. A., Sifri, C. D., Mylonakis, E., Qin, X., Singh, K. V., Murray, B. E., Calderwood, S. B., Ausubel, F. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+model+host+for+identifying+Gram-positive+virulence+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">A simple model host for identifying Gram-positive virulence factors.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 98, 10892-10897 (2001).</li>
<li>Aballay, A., Yorgey, P., Ausubel, F. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Salmonella+typhmurium+proliferates+and+establishes+a+persistent+infection+in+the+intestine+of+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">Salmonella typhmurium proliferates and establishes a persistent infection in the intestine of Caenorhabditis elegans.</a> Curr. Biol. 10, 1539-1542 (2000).</li>
<li>O'Quinn, A. L., Wiegand, E. M., Jeddeloh, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Burkholderia+pseudomallei+kills+the+nematode+Caenorhabditis+elegans+using+an+endotoxin-mediated+paralysis%5BTitle%5D)+AND+%22Cell.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Burkholderia pseudomallei kills the nematode Caenorhabditis elegans using an endotoxin-mediated paralysis.</a> Cell. Microbiol. 3, 381-393 (2001).</li>
<li>Brenner, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetics+of+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Genetics of Caenorhabditis elegans.</a> Genetics. 77, 71-94 (1974).</li>
<li>Harvey, S. C., Shorto, A., Orbidans, H. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+genetic+analysis+of+life-+history+traits+of+Caenorhabditis+elegans+in+stressful+environments%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Evol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Quantitative genetic analysis of life- history traits of Caenorhabditis elegans in stressful environments.</a> BMC Evol. Biol. 8, 15(2008).</li>
<li>Harvey, S. C., Orbidans, H. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((All+eggs+are+not+equal%3A+the+maternal+environment+affects+progeny+reproduction+and+developmental+fate+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">All eggs are not equal: the maternal environment affects progeny reproduction and developmental fate in Caenorhabditis elegans.</a> PLoS One. 6, e25840(2011).</li>
<li>Klass MR, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aging+in+the+nematode+Caenorhabditis+elegans%3A+major+biological+and+environmental+factors+influencing+life+span%5BTitle%5D)+AND+%22Mech.+Ageing.+Dev%22%5BJournal%5D)">Aging in the nematode Caenorhabditis elegans: major biological and environmental factors influencing life span.</a> Mech. Ageing. Dev. 6, 413-429 (1977).</li>
</ol>

Los autores declaran que no tienen intereses financieros en competencia.

Los pasos más importantes en la realización con éxito este ensayo son: 1) el uso de acciones bien alimentados de C. elegans, 2) cultivar tipos individuales de bacterias en la placa de ensayo, 3) identificar con precisión por etapas L4 gusanos para la exposición a E. faecalis, 4) mantener el tiempo de exposición a E. faecalis consistentes en todos los juicios y 5) el tiempo de blanqueo no debe exceder de diez minutos para evitar la desintegración de huevo. Para este...

Caenorhabditis elegans, un gusano redondo microscópica, de vida libre, es un organismo modelo utilizado tradicionalmente para estudiar los procesos de desarrollo y la señalización celular, debido a su anatomía transparente, el desarrollo bien caracterizado, totalmente secuenciado del genoma, en tiempo de generación corto, y la homología genética de los seres humanos . Más recientemente, C. elegans se ha convertido en un organismo modelo en el campo de la toxicología del medio ambiente y la inmunidad innata 10, 11. Estos gusanos hermafroditas auto-fertilizantes alcanzan la madurez sexual a los dos o tres días de la eclosión del huevo. Durante su ciclo de vida, C. elegans pasa por cuatro estadios larvales (L1-L4), antes de llegar a la edad adulta. Un aislado hermafrodita puede producir, en promedio, 300 crías dentro de los tres días de la fecundidad alta. En la madurez reproductiva C. elegans hermafroditas, los huevos fertilizados son retenidos dentro del útero durante varias horas antes de ser establecido. Lanúmero normal de los huevos almacenados en el útero a la vez (durante el pico fecundidad) es de entre diez y quince 12. El número de huevos en el útero es una función tanto de la tasa de producción de huevos y la tasa de puesta de huevos. Los huevos fertilizados son expulsados ​​del útero por la contracción de los músculos vulvares dieciséis dispuestas alrededor de la abertura de la vulva 13. Motoneuronas Hermafrodita específicos (HSN &#39;s) y neuronas motoras VC sinapsis en los músculos vulvares que afectan a la contracción muscular y por lo tanto la puesta de huevos comportamiento 5,7,13,14. La expulsión de los huevos desde el útero se produce debido a la actividad coordinada de las neuronas y los músculos. Cultivos de laboratorio de C. elegans se plantean típicamente en una dieta de no patógenas de Escherichia coli OP50. En el medio natural, C. elegans entran en contacto con una variedad de fuentes de alimentos, tales como bacterias patógenas, que pueden ser potencialmente dañinos. Cuando se expone a sustancias nocivas enel medio ambiente, C. elegans retienen los huevos hasta que se convierte en el medio ambiente más favorable. Es de suponer que esta retención de huevo es un esfuerzo para proteger a sus crías. En este huevo en el ensayo, C. gusano (EIW) elegans están expuestos a las bacterias potencialmente patógenas, Enterococcus faecalis, que se encuentra en el medio ambiente. La exposición a formas patógenas de E. faecalis puede causar una infección intestinal persistente e incluso la muerte en C. elegans 15. La exposición a otras formas de bacterias patógenas han sido demostrado que afectan a la retención de huevo 16,17, sin embargo, el efecto no se cuantificó. Además, el efecto de las cepas patógenas de E. ligeramente faecalis, cepas que no son inmediatamente letal, en el comportamiento de puesta de huevos no se ha estudiado. EIW ensayos implican contando el número de huevos retenidos en el útero de C. elegans 4. A pesar de que C. elegansson transparentes, los huevos se acumulan en el útero pueden ser difíciles de cuantificar en un animal intacto. El ensayo consiste en EIW blanqueo grávido adultos C. elegans que fueron expuestos a las bacterias por un período fijo de tiempo. La solución de cloro se disuelve la cutícula exterior dejando detrás de los huevos. Los huevos son de refracción a los efectos de cloro debido a la presencia de una cáscara de huevo. Después del blanqueo, uno es muy fácilmente capaz de contar el número de óvulos liberados desde el útero de los gusanos a blanqueo. El ensayo descrito es un método simple, barato y rápido para cuantificar el número de huevos en el útero de una sola vez, y por lo tanto cuantificar los efectos de E. faecalis sobre la retención de huevos. Este ensayo se puede utilizar para cuantificar el efecto de otros tipos de bacterias, toxinas ambientales o fármacos sobre la retención de huevo. Este ensayo también tiene el potencial para ser utilizado como una pantalla para la patogenicidad bacteriana.

<table><tbody><tr><td>Agar, ultrapuro</td><td>Affymetrix</td><td>10906</td><td></td></tr><tr><td>Bacto Peptona</td><td>Becton Dickinson</td><td>211677</td><td></td></tr><tr><td>Bacto Triptona</td><td>Becton Dickinson</td><td>211705</td><td></td></tr><tr><td>Brain Heart Infusion medio deshidratado</td> Carolina <td>Biological Supply</td><td>781781</td><td></td></tr><tr><td>C. elegans, cepa N2</td><td>Caenorhabditis Genetics Center</td><td></td><td>http://www.cbs.umn.edu/cgc</td></tr><tr><td>Colesterol</td><td>Alfa Aesar</td><td>A11470</td><td></td></tr><tr><td>Placas de cultivo para C. elegans</td><td>Tritech Research Inc.</td><td>T3308</td><td></td></tr><tr><td>Placas de cultivo para cepas de E. faecalis</td><td>Fisher Scientific-Fisherbrand</td><td>875713</td><td></td></tr><tr><td>E. coli (OP50)</td><td>Caenorhabditis Genetics Center</td><td></td><td>http://www.cbs.umn.edu/cgc</td></tr><tr><td>E. faecalis</td><td></td><td></td><td>proporcionadas por J. Middleton. Todos los aislados se confirmaron como enterococos</td></tr><tr><td colspan="4">al observar crecimiento en agar enterococos (BBL) y en caldo de NaCl al 6%;</td></tr><tr><td colspan="4"> todas las cepas crecieron a 44.5 &ordm; C y fueron catalasa negativa y esculina hidrolizada. Un simplificado&nbsp; clave dicotómica basada en reacciones de pigmentación y fermentación para seis azúcares&nbsp; (arabinosa, manitol, metil-&alfa;-D-glucopiranósido (MGP), ribosa, sorbosa y sorbitol) permitidos&nbsp; identificación presuntiva de todos los E. faecalis cepas (Efs carece de pigmentación y es arabinosa, MGP&nbsp; y sorbose negativo y sorbitol, manitol y ribosa positivos). Todas las cepas presuntas de Efs&nbsp; confirmaron utilizando el sistema API 20 STREP (Biomerieux). </td></tr><tr><td>Microscopio</td><td>Motic</td><td>SMZ 168B</td><td>cualquier microscopio con iluminación transmitida y aumento de 50X debería ser suficiente</td></tr><tr><td>Sulfato de estreptomicina</td><td>Fisher BioReagents</td><td>BP910-50</td><td></td></tr><tr><td>Agar de soja tríptico (medio de agar de digestión de soja-caseína), Difco</td><td>Becton Dickinson</td><td>236950</td><td></td></tr><tr><td>Caldo de soja tripticasasa (medio de digestión de soja-caseína), BBL</td><td>Becton Dickinson</td><td>211768</td><td></td></tr><tr><td>extracto de levadura</td><td>Acros</td><td>61180-1000</td><td></td></tr></tbody></table>

medición de los efectos de las bacterias en<em&gt; c. elegans</em&gt; comportamiento el uso de un ensayo de retención de huevo

Measuring the Effects of Bacteria on C. Elegans Behavior Using an Egg Retention Assay

C. elegans comportamiento de puesta de huevos se ve afectada por señales ambientales tales como la osmolaridad 1 y la vibración 2. Ante la falta total de alimentos C. elegans también dejan la puesta de huevos y retienen los huevos fertilizados en el útero 3. Sin embargo, el efecto de diferentes fuentes de alimentos, especialmente bacterias patógenas y en particular de Enterococcus faecalis, en el comportamiento de puesta de huevos no está bien caracterizado. El ensayo de huevo-en-gusano (EIW) es una herramienta útil para cuantificar los efectos de diferentes tipos de bacterias, en este caso E. faecalis, en el comportamiento de puesta de huevos. EIW ensayos implican contando el número de huevos retenidos en el útero de C. elegans 4. El ensayo consiste en EIW blanqueo etapas, grávido adultos C. elegans para quitar la cutícula y se separan los huevos retenidos desde el animal. Antes de blanqueo, los gusanos están expuestos a las bacterias (o cualquier tipo de señal ambiental) Durante un período de tiempo fijo. Después del blanqueo, uno es muy fácilmente capaz de contar el número de huevos retenidos en el interior del útero de los gusanos. En este ensayo, un aumento cuantificable en la retención de huevo después de E. la exposición faecalis se puede medir fácilmente. El ensayo EIW es un ensayo de comportamiento que puede ser utilizado para la detección de bacterias potencialmente patógenas o la presencia de toxinas del medio ambiente. Además, el ensayo de EIW puede ser una herramienta para la detección de drogas que afectan neurotransmisor de señalización ya que el comportamiento puesta de huevos es modulada por los neurotransmisores como la serotonina y la acetilcolina 5-9.

Este ensayo permite cuantificar el número de huevos retenidos en C. elegans después de la exposición a E. faecalis. L4 escena gusanos (caracterizado por el espacio abierto transparente por encima de su vulva, Figura 1) fueron expuestos a E. faecalis a través de la edad adulta. Después de cuarenta horas de exposición a E. faecalis, se llevó a cabo el blanqueo. A medida que la cutícula se desintegró en la gota de lejía, los huevos se hicieron más evidentes (Figu...

Un ensayo de huevo-en-gusano (EIW) es un método útil para cuantificar el comportamiento de puesta de huevos. Las alteraciones de la postura de huevos pueden ser una respuesta de comportamiento del organismo modelo<em&gt; Caenorhabditis elegans</em&gt; A sustancias ambientales potencialmente nocivas, tales como las producidas por bacterias patógenas.

Medición de los efectos de las bacterias en<em&gt; C. Elegans</em&gt; Comportamiento El uso de un ensayo de retención de huevo

C. elegans egg-laying behavior is  affected by environmental cues such as osmolarity1 and  vibration2. In the total absence of food C. elegans also cease ...

measuring-effects-bacteria-on-c-elegans-behavior-using-an-egg

Research

Investigación

JoVE Journal

Biology

Biología

C. elegans El comportamiento de puesta de huevos puede proporcionar información importante en estudios de desarrollo, reproductivos y anatómicos. Este video presenta los pasos importantes de un ensayo de puesta de huevos y muestra un experimento de muestra en el que se prueba la toxicidad reproductiva de un medicamento.

Ensayo de puesta de huevos: un método para cuantificar el comportamiento de puesta de huevos de C. elegans

Un método para evaluar cuantitativamente la respuesta quimiotáctica de...

C. elegans Ensayo de quimiotaxis

C. elegans es un modelo útil para estudiar los efectos del etanol en el comportamiento. Presentamos un ensayo de comportamiento que cuantifica los efectos del etanol en la velocidad de locomoción de los gusanos rastreros; tanto la sensibilidad inicial como el desarrollo de tolerancia funcional aguda al etanol pueden medirse con este ensayo.

Un ensayo para medir los efectos del etanol sobre la velocidad de locomoción<em&gt; Caenorhabditis elegans</em

Presentamos una configuración de grabación de comportamiento y un protocolo que permite el análisis automatizado del nematodo, la preferencia de Caenorhabditis elegans por compuestos solubles en un ensayo basado en la población. Este artículo describe la construcción de una cámara de comportamiento, el protocolo de ensayo conductual y el uso de software de análisis de vídeo.

Análisis Automatizado de un Ensayo de Preferencia Chemosensorial Basada en Población de Nematodo

Se describe un protocolo básico para evaluar la toxicidad de productos químicos en un animal modelo, elegans de Caenorhabditis. El método es conveniente y útil para el desarrollo de productos farmacéuticos, así como para la evaluación del riesgo de diversos contaminantes ambientales.

Medir el efecto de productos químicos sobre el crecimiento y reproducción de Caenorhabditis elegans

Aquí, presentamos el nematodo Caenorhabditis elegans como modelo para estudiar la interacción microbiana host versátil.

El nematodo Caenorhabditis Elegans - un modelo versátil en Vivo para el estudio de las interacciones huésped-microbio

Este protocolo describe cómo medir la permeabilidad intestinal de Caenorhabditis elegans. Este método es útil para la investigación biológica básica sobre la salud intestinal relacionada con la interacción entre las bacterias intestinales y su huésped y para la detección para identificar agentes probióticos y químicos para curar el síndrome del intestino con fugas y enfermedades inflamatorias intestinales.

Medición de los efectos de las bacterias y los productos químicos en la permeabilidad intestinal de los ceganes

Caenorhabditis elegans sirve como un excelente sistema modelo con métodos robustos y de bajo costo para estudiar la duración de la salud, la vida útil y la resistencia al estrés.

Encuesta de métodos de bajo costo para medir la esperanza de vida y la salud en Caenorhabditis elegans

Aquí, presentamos un método general para determinar la viabilidad embrionaria y el número total de embriones producidos (cría) utilizando el organismo modelo C. elegans.

Medición de la viabilidad embrionaria y el tamaño de la cría en Caenorhabditis elegans

Este protocolo proporciona un procedimiento sencillo y de bajo coste para cuantificar la tasa de letalidad embrionaria en Caenorhabditis elegans. Permite la detección sencilla de anomalías embrionarias en poblaciones sin equipos especializados ni experiencia en recogida de lombrices. El protocolo puede utilizarse para cuantificar los efectos de mutaciones genéticas, caídas genéticas mediadas por interferencia de ARN y dieta.

Cuantificación de la tasa de letalidad embrionaria en Caenorhabditis elegans

Aprende a medir los efectos de bacterias en el comportamiento de C. elegans mediante el ensayo de retención de huevo (EIW). Este método cuantifica cambios en la conducta de oviposición frente a patógenos.

Medición de los efectos de las bacterias en

Explorar más videos