Name: Monitoreo La activación del antiviral Pattern Recognition Receptores RIG-I Y PKR Por Limited proteasa Digestión y PÁGINA Nativo (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-07-29T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 43 s
Description: Aprende a monitorear los cambios conformacionales de RIG-I y PKR durante infecciones virales mediante digestión limitada con tripsina y PAGE nativa. Este método permite analizar la oligomerización de estos receptores de reconocimiento de patrones en células A549.

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Agradecemos a Alejandro Brun de CISA-INIA para proporcionar anti-sueros Rift La fiebre del valle Virus. El trabajo en nuestros laboratorios se apoya en Forschungsförderung joya. § 2 Abs. 3 Kooperationsvertrag Universitätsklinikum Giessen und Marburg, la Escuela de Graduados de Leibniz para las enfermedades virales emergentes (Eidis), la DFG Sonderforschungsbereich (SFB) 1021, y la DFG Schwerpunktprogramm (SPP) 1596.

1. Siembra de células A549 para la infección <ol><li> Cultivar un matraz T75 de células A549 a 37 ° C y 5% de CO2 en medio de cultivo celular (DMEM suplementado con 10% de FCS, 526,6 mg / l de L-glutamina, 50.000 U / l de penicilina, y 50 mg / l de estreptomicina). </li><li> Antes de comenzar a cosechar las células, calentar medio de cultivo celular, PBS y 0,05% de tripsina-EDTA en un baño de agua calentado a 37 ° C. </li><li> Se retira el medio y se lavan las células con 10 ml de PBS. Retire la PBS de nuevo. </li><li> Añadir 3 ml de tripsina-EDTA y distribuir por igual en el matraz. 5% de CO 2 Transferir el matraz en un incubador con 37 ° C y. </li><li> Cuando se separan todas las células, añadir 7 ml de medio de cultivo celular, resuspender las células, y transferir la suspensión de células en un tubo Falcon de 15 ml. </li><li> Centrifugar las células a 800 xg durante 5 min a TA, eliminar el sobrenadante y resuspender el pellet en 10 ml de medio de cultivo celular fresco. </li><li> Contar las células con una cámara de recuento. </li><li> Añadir 2,5 x 10 6 células en 5 ml de medio de cultivo celular en dos matraces T25 cada uno. Incubar durante 16 horas a 37 ° C y 5% de CO 2. Un matraz sirve para el control de maqueta y uno para la infección Cl 13. </li></ol> 2. Infección con Clone fiebre de Rift Valley Virus 13 (Cl 13) <ol><li> NOTA: Cl 13 es un mutante de virus atenuado que en Alemania se puede manejar bajo BSL-2 condiciones. Consulte las normativas nacionales pertinentes. Otros inductores de IFN típicos serían virus Sendai (cepa Cantell) o el virus de la enfermedad de Newcastle. </li><li> , Medio libre de suero Pre-caliente PBS, y el medio de cultivo celular que contiene 5% de FCS. </li><li> Preparar 1.25 x 10 7 PFU / ml de Cl 13 en medio libre de suero para infectar a 2,5 x 10 6 células A549 con una multiplicidad de infección (MOI) de 5. Preparar un poco (aproximadamente 10%) mayor cantidad de la necesaria para tener en cuenta errores de pipeta. </li><li> Lavar las células con PBS como se describe en 1.3. </li><li> Añadir 1 ml de la dilución o Cl 13de medio libre de suero (control no infectado, maqueta) a las células, y se incuba durante 1 hora a 37 ° C y 5% de CO 2. Mueva el frasco cuidadosamente cada 15 minutos para asegurar la distribución equitativa de la Cl 13 dilución y medio libre de suero, respectivamente. </li><li> Después de 1 h de infección, retire la inoculación, añadir 5 ml de medio de cultivo de células pre-calentado con 5% de FCS, y se incuba durante 5 horas a 37 º C y 5% de CO 2. </li></ol> 3. Preparación de lisados ​​de células <ol><li> Preparar PBS / 0,5% de Triton X-100 a 4 ° C. No agregue inhibidores de la proteasa de serina. </li><li> Lavar las células con PBS frío y añadir 10 ml de PBS fresca. </li><li> Raspar las células fuera, transferir la suspensión de células en un tubo Falcon, y centrifugar a 800 xg durante 5 min a TA. </li><li> Eliminar el sobrenadante y resuspender el sedimento celular en 30 l de PBS / 0,5% de Triton X-100. Transferir el lisado en un tubo nuevo de 1,5 ml y se incuba durante al menos 10 min a 4 ° C. </li><li> Centrifugar el lisado a 10,000 xg durante 10 min a 4 ° C y transferir el lisado celular clarificado (sobrenadante) en un tubo fresco. </li><li> Determinar la concentración de proteína por el ensayo de Bradford como se describe en otra parte 33. </li><li> Almacenar a -20 ° C o proceder a la digestión de tripsina (4,1) o PAGE nativa (5.1). </li></ol> 4. Determinación de Cambios conformacionales de Reconocimiento de Patrones Receptores <ol><li> Tratamiento TPCK-tripsina de lisados ​​de células <ol><li> Diluir L-1-tosilamido-2-feniletil clorometil cetona tratada con (TPCK) tripsina en PBS a una concentración de trabajo final de 2 mg / l. </li><li> Ajuste en dos nuevos tubos una concentración final de proteína de 25 g de cada proteína lisado (mock o Cl 13) en un volumen final de 9 l con PBS. Por lo tanto, debería ser de cuatro tubos con 25 g de lisado de cada uno, dos veces simuladas y dos veces Cl 13 infección. Un juego como el control de entrada (sin tratar) y otro para el tratamiento con TPCK-tripsina. </li><li> Añadir 1 l de PBS (sin tratar)o 1 l de 2 mg / l de TPCK-tripsina (concentración final: 0,2 g / l) a los lisados ​​de células y mezclar las reacciones mediante pipeteo. NO congelar y descongelar alícuotas-TPCK tripsina, porque va a poner en peligro la eficiencia de la digestión. </li><li> Incubar los lisados ​​a 37 ° C durante 25 min. Detener la reacción mediante la adición de 5x tampón de desnaturalización de la muestra (250 mM Tris-HCl pH 6,8, 10% de SDS, 50% de glicerol, 25% β-mercaptoetanol, 0,5% azul de bromofenol) y mediante ebullición durante 5 min a 95 ° C. Es importante no extender el tiempo de incubación con tripsina. En caso de que no hay fragmentos resistentes a la proteasa son detectables, el tiempo de digestión con tripsina se debe acortar. </li><li> Después de la ebullición, las muestras se pueden almacenar a -20 ° C. </li></ol></li><li> SDS poliacrilamida electroforesis en gel (PAGE) y transferencia Western <ol><li> Cargar las muestras en un dodecil sulfato de sodio (SDS) en gel de poliacrilamida que contiene un apilamiento de 5% en un gel de resolución 12%. Separar las proteínas a 25 mA por gel hastael azul de bromofenol se agote. </li><li> Activar una membrana de fluoruro de polivinilideno (PVDF) durante 30 segundos con metanol y ponerlo en tampón de transferencia (48 mM Tris, 39 mM glicina, 1,3 mM de SDS, 20% de metanol). </li><li> Preparar la transferencia con un sistema de transferencia semiseco y permitir la transferencia de las proteínas a 10 V durante 1 hora. Tome la membrana, enjuáguelo brevemente con agua y deje que se seque. </li><li> Reactivar la membrana por poco transfiriendo en metanol. Lavar durante 5 min con TBS. Se bloquea con 10% de leche desnatada en TBS durante 1 hora a temperatura ambiente o a 4 º CO / N. Lavar la membrana 3x durante 5 minutos cada uno con TBS. </li><li> Preparar la dilución de anticuerpo como se recomienda en la tabla 1 y se incuba la membrana durante 1 hora a temperatura ambiente o a 4 º CO / N. </li><li> Lavar la membrana 3x durante 10 min cada uno con TBS-T. Añadir el anticuerpo secundario apropiado acoplado con peroxidasa de rábano picante a una dilución 1:20.000 en 1% de leche desnatada en TBS. Incubar 45 min a TA. </li><li> Lavar la membrana 3x durante 10 min cada uno con TBS-T, y Otiempo adicional ne con TBS. </li><li> Para la detección de la señal de utilizar un kit de quimioluminiscencia comercial y un sistema de imágenes de gel digital. </li></ol></li><li> Coomassie Brilliant tinción azul G-250 <ol><li> Realice SDS-PAGE como se describe en el punto 4.2.1. Cargue las muestras en un gel de poliacrilamida SDS y corren el gel a 25 mA por gel hasta azul de bromofenol se agote. </li><li> Realice brillante coloración azul de Coomassie G-250 a RT. ¿Todas las incubaciones con agitación constante. </li><li> Transferir el gel a la solución de fijación que contiene 40% de metanol y ácido acético al 10% durante 30 min. </li><li> Cambiar el buffer para solución decolorante (25% de etanol y ácido acético al 8%) y se incuba durante 5 min. </li><li> Tinción del gel con 0,2% de Coomassie Azul Brillante G-250 en 40% de metanol y ácido acético al 10% durante 1 hora. </li><li> Destain el gel con la solución decolorante y el intercambio de la memoria intermedia después de 10 min, 30 min, y 60 min. </li><li> Almacenar el gel en 25% de etanol, ácido acético 8%, y 4% de glicerol a 4 ° C. </li&gt; <li> Realice imagen y el análisis como se describe en 4.2.8. </li></ol></li></ol> 5. Análisis de oligoméricas Unidos de Reconocimiento de Patrones Receptores <ol><li> PÁGINA Nativo <ol><li> Preparar 50 g de lisado de células en un volumen final de 10 l con PBS y añadir 5 x tampón de muestra nativo (250 mM de Tris-HCl pH 6,8, 1% de desoxicolato de sodio, 50% de glicerol, 0,5% azul de bromofenol) a una concentración final de 1x. </li><li> Cargar las muestras inmediatamente en un gel de poliacrilamida nativo con 5% como el apilamiento y 8% como gel de resolución. Cualquier retraso se traducirá en una pérdida de complejos nativas 34. </li><li> Correr el gel a 20 mA por gel a 4 ° C con 50 mM de Tris-NaOH pH 9,0, 384 mM de glicina como como ánodo y 50 mM de Tris pH 8,3, 384 mM de glicina, 1% de desoxicolato de sodio como tampón de cátodo. Después de 1,5 a 2 horas (banda azul de bromofenol haya abandonado el gel de aproximadamente 45 min antes) la electroforesis ha terminado. </li></ol></li><li> Western Blotting <ol><li> Activar un PolyVinylidene fluoruro (PVDF) membrana durante 30 segundos con metanol y se puso en tampón de Towbin (25 mM de Tris, 192 mM glicina, 0,1% de SDS, 20% metanol). </li><li> Montar una cámara blot húmedo de acuerdo con las instrucciones del fabricante y llene el tanque con tampón Towin. </li><li> Realice la transferencia de 250 mA durante 1,5 horas a 4 ° C. </li><li> Cuando secante proseguir de la forma descrita a partir de 4.2.3 a. </li></ol></li></ol>

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</ol>

No hay conflictos de interés declarado.

Detección de la presencia de virus y la activación del sistema de tipo antiviral I IFN son cruciales para la respuesta inmune innata de éxito 22. La detección de virus es por ello mediado por los receptores de reconocimiento de patógenos (PRRS) como RIG-I y PKR, lo que permite una respuesta rápida y la activación de mecanismos de defensa antiviral. Aquí se describen dos métodos para evaluar directamente el estado de activación de RIG-I y PKR. Digestión con proteasa Limited como un...

Un evento crucial en la defensa del huésped antiviral es la detección rápida del patógeno por los receptores de reconocimiento de patrón de llamadas (PRRS) 1,2. La detección intracelular de la infección por virus de ARN depende de dos helicasas de ARN citoplásmico, RIG-I (ácido retinoico de genes inducibles I) y MDA5 (proteína asociada a la diferenciación del melanoma 5) 3-5. RIG-I está compuesta por dos dominios N-terminales de reclutamiento de caspasas (tarjetas), un tipo DECH-box RNA helicasa dominio central, y un dominio C-terminal (CTD) de 4,6. Considerando que el CTD y el dominio helicasa se requieren para el reconocimiento de la no auto RNAs (virales), las tarjetas median la señalización corriente abajo que conduce a establecimiento de un estado anfitrión antiviral. Si RIG-I está en el estado de silencio, es decir, en ausencia de un ligando de ARN específico, la segunda tarjeta interactúa con el dominio helicasa central y mantiene GAR-I en una conformación auto-inhibidor 7-11. RIG-I se une a corto doble-hebra (ds) de ARN que lleva un 5&#39;-trifosfato (5&#39;PPP), largo dsRNA, y polyU / UC-rica ARN, estructuras de firma clásicos que están presentes en los genomas de muchos virus de ARN 12-16. Dos características importantes de la activación de RIG-I son un cambio a una conformación cerrada 6,17 y la homo-oligomerización 6,18,19. El cambio conformacional mejora ARN vinculante, expone las tarjetas de señalización corriente abajo, y reconstituye un sitio ATPasa activa 8,9,11,20. La formación de complejos oligoméricos RIG-I conduce a una mayor captación de las moléculas adaptadoras de señalización aguas abajo para formar una plataforma para la transducción de señales antiviral 11. La cadena de señalización regulada por el RIG-I se activa con el tiempo el factor de transcripción IRF-3 para la regulación de interferón genes (IFN-alpha/beta) y por lo tanto la expresión génica de los genes de interferón estimulado (ISGs) para una respuesta antiviral completa 21,22 . Uno de los mejor caracterizados ISGs es la proteinuria ARN-activadon quinasa (PKR) 23. PKR pertenece a la familia de iniciación de la traducción eucariótica factor de 2 alfa (eIF2α) quinasas y se compone de un dominio de ARN de doble cadena de unión y un dominio C-terminal de la quinasa N-terminal. El dominio quinasa constituye la interfaz de dimerización crucial para la activación de PKR y lleva a cabo las funciones catalíticas de la proteína. La unión de PKR a dsRNA viral conduce a su cambio conformacional que permite la dimerización y auto-fosforilación en Thr 446, entre otros residuos. PKR continuación, media la fosforilación de eIF2α, bloqueando de este modo la traducción de los ARNm viral 23-27. Tanto RIG-I y PKR sufrir importantes reajustes estructurales, forman complejos oligómeros y son después de la traducción modificado por fosforilación / desfosforilación y ubiquitinación 10,11,19,23,24,26-29. Para una mejor comprensión de lo que las estructuras de ARN virales están activando RIG-I y PKR (y en qué etapa antagonistas virales podrían be interferir), es importante determinar con precisión el estado de activación. Para ambos parentales que se ha descrito anteriormente que la activación conduce a la aparición de fragmentos de proteína resistente a tripsina 6,17,30 y oligómeros de orden superior 6,18,19. Sin embargo, dada la gran cantidad de literatura sobre estos factores clave de la respuesta del huésped antiviral 1,2,24, la aplicación de métodos directos parece relativamente rara. En la esperanza de estimular el uso más amplio, ofrecemos protocolos convenientes y sensibles para analizar con firmeza los estados de activación de RIG-I y PKR. El IFN competente línea celular humana A549 está infectado con un activador establecida de RIG-I y PKR, el virus de la fiebre del Valle del Rift atenuada clon mutante 13 (Cl 13) 31,32. Después de un procedimiento de lisis simple, los extractos de células infectadas se prueban por digestión análisis de transferencia limitada tripsina / Western para evaluar conmutación conformacional, y por azul electroforesis nativa en gel de poliacrilamida (PAGE) / Analys Western blotes medir la formación de oligómeros.

<table><tbody><tr><td colspan="4">Cultivo celular</td></tr><tr><td>Dulbecco' Águila modificada' s medio (DMEM)</td><td>Gibco</td><td>21969-035</td><td></td></tr><tr><td>OptiMEM</td><td>Gibco</td><td>31985-47</td><td></td></tr><tr><td>L-glutamina</td><td>PAA</td><td>25030-024</td><td></td></tr><tr><td>Penicilina-estreptomicina</td><td>PAA</td><td>15070-063</td><td></td></tr><tr><td>Suero fetal de ternera (FCS)</td><td>PAA</td><td>10270</td><td></td></tr><tr><td>0.05% Tripsina-EDTA</td><td>Gibco</td><td>25300-054</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Chemicals</td></tr><tr><td>L-1-tosylamido-2-feniletil clorometilcetona tratada (TPCK) con tripsina</td><td>Sigma Aldrich</td><td>T1426</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Antibodies</td></tr><tr><td>Mouse monoclonal anticuerpo anti-RIG-I (ALME-1)</td><td>Enzo Life Sciences</td><td>ALX-804-849-C100</td><td>WB: 1:500 en leche desnatada al 1% en ratón TBS</td></tr><tr><td> anti-PKR monoclonal (B10)</td><td>Santa Cruz</td><td>sc-6282</td><td>WB: 1:500 en leche desnatada al 1% en TBS</td></tr><tr><td>Anti-P-PKR monoclonal de conejo (Thr446)</td><td>Epítomics</td><td>1120-1</td><td>WB: 1:1.000 en 5% BSA en TBS</td></tr><tr><td>Anti-3 policlonal de conejo anti-IRF-3</td><td>Santa Cruz</td><td>sc-9082</td><td>WB: 1:500 en leche desnatada al 1% en TBS</td></tr><tr><td>Anti-P-IRF-3 monoclonal de conejo (Ser386)</td><td>IBL</td><td>og-413</td><td>WB: 1:100 en leche desnatada al 1% en TBS</td></tr><tr><td>Suero hiperinmune anti-RVFV de conejo "C2" (MP-12)</td><td>Amablemente proporcionado por Alejandro Brun CISA-INIA</td><td></td><td>WB: 1:2.000 en leche desnatada al 1% en TBS</td></tr><tr><td>Ratón monoclonal anti-beta-actina (8H10D10)</td><td>Señalización celular</td><td>3700</td><td>WB: 1:1.000 en leche desnatada al 1% en TBS</td></tr><tr><td>Macho anticonejo conjugado con peroxidasa policlonal</td><td>Thermo Fisher</td><td>0031460 1892914</td><td>WB: 1:20.000 en leche desnatada al 1% en TBS</td></tr><tr><td>Thermo Fisher 0031430 1892913 WB de cabra conjugado con peroxidasa policlonal conjugada con peroxidasa</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

monitoreo la activación del antiviral pattern recognition receptores rig-i y pkr por limited proteasa digestión y pÁgina nativo

Monitoring Activation of the Antiviral Pattern Recognition Receptors RIG-I And PKR By Limited Protease Digestion and Native PAGE

Las defensas del huésped a la infección por virus dependen de una detección rápida por los receptores de reconocimiento de patrones (PRRS) del sistema inmune innato. En el citoplasma, los derechos y responsabilidades parentales RIG-I y PKR se unen a ligandos específicos de ARN viral. Esta primera media la conmutación conformacional y oligomerización y, a continuación, permite la activación de una respuesta antiviral de interferón. Si bien los métodos para medir la expresión de genes antivirales de acogida están bien establecidos, los métodos para supervisar directamente los estados de activación de RIG-I y PKR son sólo parcialmente y menos bien establecidos. Aquí se describen dos métodos para controlar RIG-I y PKR estimulación tras la infección con un inductor de interferón establecido, el virus de la fiebre del Valle del Rift clon mutante 13 (Cl 13). Digestión con tripsina Limited permite analizar las alteraciones en la sensibilidad a la proteasa, lo que indica cambios conformacionales de los derechos y responsabilidades parentales. La digestión con tripsina de lisados ​​de simulacros de las células infectadas como resultado una rápida degradación de RIG-I y PKR, whereas Cl 13 infección conduce a la aparición de un fragmento resistente a la proteasa RIG-I. También PKR muestra una resistencia parcial inducida por el virus de la digestión de la tripsina, que coincide con su fosforilación en Thr sello 446. La formación de RIG-I y oligómeros PKR fue validado por electroforesis en gel de poliacrilamida nativa (PAGE). Tras la infección, existe una fuerte acumulación de RIG-I y complejos oligoméricos PKR, mientras que estas proteínas se mantuvieron como monómeros en muestras infectados de forma simulada. Digestión con proteasa Limited y PAGE nativa, tanto acopladas a análisis de Western blot, permiten una medición sensible y directa de dos diversas etapas de RIG-I y la activación de PKR. Estas técnicas son relativamente fácil y rápido de realizar y no requieren equipos costosos.

El reconocimiento de un agonista viral RIG-I o PKR desencadena conmutación conformacional 6,17,30 y oligomerización 6,18,27. Estamos analizarse estos dos marcadores de activación por digestión con proteasa limitada y electroforesis en gel de poliacrilamida nativa (PAGE), respectivamente. Células A549 humanas fueron infectadas con el clon de virus de la fiebre del Valle del Rift 13 (Cl 13), que se caracteriza por una mutación del antagonista de IFN NSS 35,36. ...

Defensas innatas a las infecciones por virus son provocados por los receptores de reconocimiento de patrones (RRP). Los dos PRRs citoplasmáticos RIG-I y PKR se unen a los ARN virales de firma, cambio de conformación, oligomerize y activar la señalización antiviral. Se describen procedimientos que permiten controlar cómodamente el cambio conformacional y la oligomerización de estos derechos y responsabilidades parentales citoplasmáticos.

Monitoreo La activación del antiviral Pattern Recognition Receptores RIG-I Y PKR Por Limited proteasa Digestión y PÁGINA Nativo

Host defenses to virus infection are dependent on a rapid detection by pattern recognition receptors (PRRs) of the innate immune system. In the cytoplasm, ...

Las defensas innatas contra infecciones virales son activadas por receptores de reconocimiento de patrones o PRR. Presentes en las células del sistema inmunitario innato durante una infección. Los PRR citoplasmáticos RIG-I y PKR se unen a ARN virales característicos, cambian su conformación al unirse a los ligandos y activan señales antivirales. Para monitorear los cambios conformacionales de RIG-I y PKR y su ligandización in vitro, se infectan células humanas A549 con el virus de la fiebre del Valle de Rift.Clone 13 para estimular la activación de los PRR. Luego se preparan lisados celulares de células control e infectadas para analizar los cambios conformacionales de rig eye y PKR. Se realiza una digestión limitada con tripsina.Si han ocurrido cambios conformacionales en la estructura de la proteína, esta será más resistente a la digestión y se observarán bandas mediante el análisis por inmunotransferencia. Para analizar la formación de todos los complejos nativos, se realiza electroforesis nativa seguida de análisis por inmunotransferencia. Si ha ocurrido toda la ligamentización, se observan complejos más altos de todas las formas ligadas y complejos PKR. La principal ventaja de

monitoring-activation-antiviral-pattern-recognition-receptors-rig-i

Research

Investigación

JoVE Journal

Immunology and Infection

Inmunología e Infección

Se describe un protocolo para identificar las principales funciones de las moléculas de señalización de acogida en la replicación lítica de un modelo herpesvirus, virus herpes gamma 68 (γHV68). La utilización de cepas de ratón modificados genéticamente y los fibroblastos embrionarios de γHV68 replicación lítica, el protocolo permite tanto la caracterización fenotípica y molecular de las interacciones interrogatorio virus-huésped durante la replicación viral lítico.

Disección de Host-virus Interacción en la replicación lítica de un Herpesvirus Modelo

Source: Mateer, E., et al., Confocal Imaging of Double-Stranded RNA and Pattern Recognition Receptors in Negative-Sense RNA Virus Infection. J. Vis. Exp. (2019)This video demonstrates the confocal imaging of viral double-stranded RNA (dsRNA) and cytoplasmic pattern recognition receptors (PRRs) in virus-infected epithelial cells. It highlights how antibody-based fluorescent labeling reveals the interaction between viral replication intermediates and host immune sensors.

Visualization of Viral Double-Stranded RNA and Host Pattern Recognition Receptors in Infected Epithelial Cells

Se describe un protocolo para medir la producción de citoquinas antivirales en ratones infectados con un virus herpes modelo, murino herpesvirus gamma 68 (γ HV68) que está relacionado con estrechamente a sarcoma de herpesvirus asociado de Kaposi humano (VHSK) y virus de Epstein-Barr (EBV). La utilización de cepas de ratones genéticamente modificados y los fibroblastos de embriones de ratón (MEFs), se evaluó la producción de citocina antiviral tanto in vivo como ex vivo. "Reconstituir" la...

La disección de señalización inmune innata en Evasion Viral de la producción de citoquinas

Aquí describimos un procedimiento que permite un análisis detallado de la activación dependiente de la fosforilación del factor de transcripción IRF3. Esto se logra mediante la combinación de un SDS-PAGE de alta resolución y un PAGE nativo acoplado a inmunoblots utilizando múltiples anticuerpos fosfoespecíficos.

Una alta resolución Método de Seguimiento activación fosforilación dependiente de IRF3

RNA de doble hebra producido durante la replicación de virus de ARN puede ser reconocido por los receptores de reconocimiento de patrón para inducir una respuesta inmune innata. Virus de ARN de sentido negativo, la interacción entre el bajo nivel dsARN y PRRs sigue siendo confusa. Hemos desarrollado un método de microscopia confocal para visualizar arenavirus dsARN y PRR en células individuales.

Proyección de imagen confocal de ARN bicatenario y receptores de reconocimiento de patrón en la infección por Virus de ARN de sentido negativo

Presentamos aproximaciones experimentales para estudiar interactianos de RNA de doble cadena RNA Unión proteína quinasa RNA-activado (PKR) durante el ciclo celular mamífero con células HeLa. Este método utiliza formaldehído complejos RNA-PKR la reticulación y la inmunoprecipitación para enriquecer PKR-limite RNAs. Estos RNAs pueden analizarse más a través de la secuenciación de alto rendimiento o qRT-PCR.

Estudio de interactianos de ARN de la proteína quinasa activada por ARN durante el ciclo de la célula mamífera

Se describe un método nativo de mancha occidental para analizar la dmerización del factor regulador de interferón endógeno 5 en la línea de células dendríticas plasmáticas CAL-1. Este protocolo también se puede aplicar a otras líneas de celda.

Native Polyacrylamidde Gel Electrophesis Análisis de la dimerización endógena IRF5

Presentamos un protocolo general para identificar tramos cortos de secuencias de proteínas homolopégicos de patógenos de host (SSHHPS) incrustadas en la poliproteína viral. SSHHPS son reconocidos por proteasas virales y dirigen la destrucción dirigida de proteínas huésped específicas por varios virus del Grupo IV.

Análisis de SSHHPS Viral del Grupo IV utilizando métodos In Vitro y In Silico

Este protocolo describe un método integral para evaluar la activación de caspasas (caspasa-1, caspasa-3, caspasa-7, caspasa-8, caspasa-9 y caspasa-11) en respuesta a modelos de infección, insultos estériles y cáncer tanto in vitro como in vivo (en ratones) para determinar el inicio de vías de muerte celular, como piroptosis, apoptosis, necroptosis y PANoptosis.

Evaluación de la activación de la caspasa para evaluar la muerte celular inmune innata

La amplificación de la señal de tiramida durante la tinción inmunofluorescente permite la detección sensible de RIPK3 y MLKL fosforilados durante la necroptosis inducida por ZBP1 después de la infección por HSV-1.

Amplificación de la señal de tiramida para la tinción inmunofluorescente de la fosforilación dependiente de ZBP1 de RIPK3 y MLKL después de la infección por HSV-1 en células humanas

Aprende a monitorear los cambios conformacionales de RIG-I y PKR durante infecciones virales mediante digestión limitada con tripsina y PAGE nativa. Este método permite analizar la oligomerización de estos receptores de reconocimiento de patrones en células A549.

Monitoreo La activación del antiviral Pattern Recognition Receptores RIG-I Y PKR Por Limited proteasa Digestión y PÁGINA Nativo

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