26 de agosto de 2014
Este manuscrito describe un protocolo que aplica un perfil exhaustivo para el análisis de programas transcripcionales inducidos en núcleos cerebrales específicos de roedores siguiendo paradigmas conductuales. En este trabajo, este enfoque se ilustra en el contexto del perfil de genes inducidos en el núcleo accumbens (NAc) de ratones después de una exposición aguda a la cocaína, utilizando matrices de qPCR microfluídicas.
El objetivo general del siguiente experimento es estudiar la dinámica transcripcional y los núcleos cerebrales definidos en ratones tras una experiencia conductual. Esto se logra primero habituando a los animales y registrando su actividad locomotora tras la inyección de suero salino. Una vez habituados, se registra la actividad locomotora tras una dosis única de cocaína, se recolectan muestras del núcleo accumbens y luego se utilizan para el aislamiento de ARN y la preparación de ADNc.
A continuación, se realiza un análisis de QPCR para estudiar la expresión génica inducida por el comportamiento. Finalmente, se obtienen resultados que muestran la dinámica transcripcional tras la experiencia con cocaína. El protocolo será demostrado por el Dr. Hatu, el director del laboratorio, Dum Muer, un estudiante de posgrado del laboratorio, y Duran, un estudiante universitario del laboratorio. Durante tres días consecutivos, cada ratón se habitúa a los procedimientos de manipulación e inyección, organizándose los ratones en jaulas antes de iniciar el experimento, de modo que los ratones no sean transferidos entre jaulas en el futuro y nunca se dejen en aislamiento durante un período prolongado de tiempo.
30 minutos antes del inicio de la prueba, todas las jaulas de ensayo deben trasladarse al cuarto de comportamiento para permitir que los animales se aclimaten al entorno. Administre una inyección intraperitoneal de 250 microlitros de solución salina; inmediatamente después de la inyección, coloque el ratón en una cámara de comportamiento para monitorear la actividad locomotora durante 15 minutos. El ratón podría permanecer en la cámara de comportamiento durante 20 minutos.
Una actividad monitoreada desde los minutos dos hasta el 17. Repita estos pasos a la misma hora del día durante los dos días siguientes. En el cuarto día, administre una inyección única de cocaína o solución salina, según el grupo, y coloque inmediatamente al ratón en la cámara para monitorear la actividad motora local durante 20 minutos en puntos de tiempo seleccionados tras la exposición a la cocaína, extraiga el cerebro y colóquelo en una solución de LCR fría con hielo durante uno o dos minutos para enfriarlo y endurecerlo.
Tras retirar el cerebelo y absorber el exceso de líquido, pegue el cerebro sobre la platina de un vibroslice con la parte rostral orientada hacia arriba. Llene la cámara con A CSF frío con hielo y corte secciones de 200 micrones hasta identificar claramente el núcleo accumbens. Preste especial atención a la forma del cuerpo calloso, la ubicación y forma de la comisura anterior y los ventrículos durante el corte.
Una vez identificada la región correcta, corte dos secciones de 400 micrones de las cuales se disecará el núcleo accumbens bajo un estereoscopio. Utilice una hoja fina para separar el núcleo accumbens de las secciones. Cuatro pasadas rápidas de la hoja en la zona adecuada deben aislar inmediatamente el tejido apropiado.
Coloque el tejido aislado en 900 microlitros de reactivo de lisis y almacénelo a menos 80 grados Celsius hasta la extracción de ARN; comience por descongelar los tubos a 37 grados Celsius y homogenizar. Utilizando una aguja de 25 gauge, las primeras rondas pueden ser difíciles y requerir presionar el tejido contra la pared del tubo para homogenizarlo en fragmentos pequeños. Para asegurar una homogenización adecuada, aspire el lisado y colóquelo en una columna de giro mini kaya shredder y centrifugue.
Transfiera el lisado a un nuevo tubo microcentrífugo y extraiga el ARN según las instrucciones del fabricante. Tras la purificación del ARN, se realiza la transcripción inversa a ADNc, así como la preamplificación específica del blanco de las muestras con cebadores dirigidos contra el grupo de genes seleccionados para el análisis. Estos procedimientos se describen en la versión textual del protocolo.
Existen chips microfluídicos comerciales disponibles para análisis QPCR completo en formato 48 por 48, lo que permite analizar 48 muestras con 48 conjuntos de sondas, o en formato 96 por 96, en el cual se analizan 96 muestras con 96 sondas. En la mayoría de los casos, la elección del chip depende principalmente del número de muestras analizadas.
Primero, prepare la mezcla de muestra según el chip elegido para el experimento. Tenga cuidado al pipetear el reactivo de carga de la muestra con colorante de unión a ADN 20 X. Agite las soluciones de la mezcla de muestra durante un mínimo de 20 segundos y centrifugue durante al menos 30 segundos.
Las reacciones preparadas pueden almacenarse durante cortos períodos a cuatro grados Celsius hasta que el chip esté listo para la carga. A continuación, prepare la mezcla de ensayo, agite completamente la mezcla de muestra y centrifugue para precipitar todos los componentes. Como se mostró anteriormente, el chip IFC de matriz dinámica tiene entradas para muestras y ensayos, así como entradas especificadas para el fluido de la línea de control utilizado para presurizar las cámaras microfluídicas.
Primero, inyecte el fluido de la línea de control en cada acumulador del chip. A continuación, prepare el chip colocándolo en el controlador IFC y ejecutando el script adecuado. Cuando el script haya finalizado, retire el chip preparado del controlador IFC y pipetee cinco microlitros de cada ensayo.
Mezcle sobre el chip. Añada cinco microlitros de cada mezcla de muestra a sus entradas y devuelva el chip al controlador de IFC utilizando el software del controlador de IFC. Ejecute el script para cargar las muestras y los ensayos en el chip.
Una vez que el script de mezcla de carga haya finalizado, retire el chip cargado del controlador IFC. A continuación, coloque el chip en el termociclador y cree una nueva corrida de chip que incluya un análisis de curva de desnaturalización. Mediante el software del termociclador, asegúrese de que las cámaras de reacción sean reconocidas correctamente y permita que la reacción se complete por completo.
Un aumento en la actividad locomotora fue evidente tras una sola inyección aguda de cocaína. En esta sección coronal, líneas blancas gruesas marcaron la ubicación de los cortes realizados para definir los límites del núcleo accumbens. Durante la disección, las curvas de amplificación de los cebadores dirigidos contra CFOs y fosf B demuestran que los pares de cebadores amplifican su transcripción diana con una eficiencia aproximada del 100%.
En cada ciclo, los resultados muestran que la expresión inducida por la cocaína de CFO y de B fosforilada en el núcleo accumbens fue máxima una y dos horas después de la exposición. Tras este procedimiento, se pueden realizar otros métodos, como la secuenciación de nueva generación, con el fin de identificar transcritos novedosos no caracterizados.
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Este manuscrito describe un protocolo para analizar programas transcripcionales en núcleos cerebrales específicos de roedores tras paradigmas conductuales. El enfoque se ilustra mediante el perfilado de genes inducidos en el núcleo accumbens (NAc) de ratones tras una exposición aguda a cocaína.
Este protocolo permite a los equipos de I+D de biofármacos evaluar cuantitativamente la dinámica transcripcional en regiones cerebrales definidas tras perturbaciones conductuales o farmacológicas, apoyando la validación de dianas en el descubrimiento de fármacos neuropsiquiátricos. Al proporcionar lecturas reproductibles y cuantitativas de la expresión génica a partir de muestras tisulares limitadas, aumenta la confianza predictiva en estudios mecanicistas de etapas iniciales e informa las decisiones de avance o interrupción para terapias dirigidas al sistema nervioso central. Este enfoque es particularmente útil para reducir los riesgos asociados a hipótesis relacionadas con la adicción, las vías de recompensa y los fenotipos conductuales antes de invertir en la optimización de compuestos líderes.
El método se integra en la fase inicial del descubrimiento, apoyando la validación de dianas guiada por hipótesis y el desarrollo de ensayos antes de los esfuerzos de identificación de compuestos activos en programas de descubrimiento de fármacos para el sistema nervioso central.