Name: Proteína Aislamiento del desarrollo embrionario del corazón del ratón Válvula Región (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-09-23T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 55 s
Description: Aprenda a aislar y extraer proteínas de válvulas cardíacas embrionarias en ratones. Este protocolo detallado facilita el análisis por western blot para estudiar la expresión proteica en tejidos con muestras limitadas.

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Nos gustaría agradecer a Andrea Portbury y Davin Townley-Tilson por la lectura crítica del manuscrito y a los NIH (subvención # R01HL061656) por su apoyo financiero.

NOTA: Todos los experimentos fueron aprobados por el Comité de Cuidado y Uso de Animales Institucional de la Universidad de Carolina del Norte en Chapel Hill. 1. Impuestos Especiales de la válvula aórtica <ol><li> Usando una técnica de eutanasia aprobadas para la etapa embrionaria de interés, la eutanasia a un ratón embarazada con cachorros en el día embrionario deseado (E) del desarrollo. </li><li> Utilice 70% de etanol para esterilizar el abdomen de la hembra embarazada. Levante la piel y los músculos de la parte inferior del abdomen hacia arriba y lejos de los órganos internos, y disecar la cavidad abdominal inferior Open femenino para permitir el acceso a la trompa uterina. </li><li> Para recuperar el cuerno uterino, mantenga el cuello del útero con una pinza y caudal cuidadosamente cortado al fórceps. Levante el cuerno uterino, cortar cualquier tejido conectivo que mantiene la bocina en su lugar, y completar la eliminación mediante la reducción de la unión de la trompa uterina con el oviducto. </li><li> Coloque el cuerno uterino diseccionado en una placa de Petri que contiene cold 0,1 M de tampón Tris (pH 7,6) y enjuague según sea necesario. A continuación, cortar el cuerno uterino en sentido longitudinal para exponer los sacos embrionarios abierta. </li><li> Para exponer el embrión, cortar y abrir un saco embrionario en la unión de la placenta y el embrión y cortar los vasos umbilicales para liberar el embrión. Coloque el embrión diseccionado en un segundo plato de Petri con frío tampón Tris 0,1 M. Devuelva la primera placa de Petri con los restantes embriones no seccionada a hielo hasta que esté listo para el próximo embrión. </li><li> Para mejorar el acceso de la pared torácica en el embrión, decapitar al embrión. Si genotipado es necesario, retire y guarde un pedazo de tejido extra en un tubo Eppendorf se colocó en hielo. </li><li> Coloque el embrión en su parte posterior, y cortar la pared torácica verticalmente a lo largo del lado de la caja torácica, cerca de una extremidad anterior, y horizontalmente por encima del diafragma para visualizar el corazón. Luego, abrir la pared torácica para exponer el corazón. </li><li> Con unas pinzas para mantener en alto a lo largo de los grandes vasos, levantar el corazón con unas pinzas y cortar los vasos debajo. Eln, corte por encima de la pinza para liberar el corazón. Si los vasos pulmonares permanecen sin cortar, los pulmones se pueden eliminar con el corazón y deben ser removidos antes de continuar. </li><li> Corte y retire la arteria pulmonar por encima del nivel de la válvula; en las etapas embrionarias descritos en este documento, la arteria pulmonar es ligeramente opaca, que ayuda en su discriminación de la región de la válvula. Corte justo debajo de la válvula pulmonar, evitando el miocardio ventricular trabeculado y recoger como se describe en el paso 1.10 si esta región es también de interés. Aquí y en la siguiente etapa, usar la acción capilar para extraer el exceso de tampón Tris lejos de la región de interés antes de la recogida en tampón de lisis. </li><li> Retire cuidadosamente la aorta distal a la válvula aórtica, justo por encima del nivel de la válvula; como la arteria pulmonar, la aorta se mantiene ligeramente opaca en estas etapas embrionarias, ayudar en su eliminación. Corte justo debajo de la válvula aórtica, evitando de nuevo el miocardio ventricular trabeculado, y transferir elválvula usando fórceps a un tubo Eppendorf con tampón de lisis 2 l (descrito en la Tabla de Materiales) que contiene inhibidores de la proteasa y fosfatasa en hielo. </li><li> Repetir los pasos 1.6 a 1.10 hasta que las válvulas han sido extirpados de todos los embriones, la recogida de cada válvula en un tubo Eppendorf separado. Si todos los embriones tienen el mismo genotipo, todas las válvulas pueden ser recogidos en un solo tubo Eppendorf. </li><li> Si el genotipado se va a realizar para determinar qué válvulas para agrupar juntos, colocar inmediatamente las muestras en tampón de lisis a -80 ° C hasta su uso posterior. Las muestras pueden luego ser agrupados después de genotipado (etapa 2.1.1). </li></ol> Extracción 2. Proteína <ol><li> Descongele tejidos recogidos en el hielo y se centrifuga a 13.100 xg durante 1 min para recoger los tejidos en tampón de lisis en la parte inferior del tubo. <ol><li> Si se genotipo embriones, utilizar una pipeta para recoger suavemente y tampón piscina lisis que contiene las regiones de la válvula a partir de embriones con genotipos similares. Para asegurar una fuerte by, la puesta en común 3-4 regiones de la válvula a partir de embriones E13.5 se recomienda por muestra. </li><li> Si todos los embriones eran de la misma genotipo y todas las regiones de la válvula se recogieron juntos en el paso 1.10, lisar toda la muestra, como se describe en el Paso 2.2. </li></ol></li><li> Compruebe el volumen de la muestra agrupada resultante y añadir tampón de lisis hasta un volumen total de 40 l; entonces, desarticular y homogeneizar muestras usando 5 mm bolas de acero inoxidable en tubos Eppendorf. Operar el Lyser durante 2-4 min a 50 Hz, según las instrucciones del fabricante. Centrifugar los tubos brevemente, (~ 13.100 xg durante 1 min), y transferencia de muestras a tubos nuevos, dejando atrás los restos insolubles. </li><li> Preparar y muestras separadas para SDS-PAGE y transferencia de Western blot posterior, siguiendo un protocolo como Eslami et al 9. Secante para una proteína de control de carga es esencial para la cuantificación de proteínas. </li></ol>

<ol><li>Wirrig, E. E., Hinton, R. B., Yutzey, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+expression+of+cartilage+and+bone-related+proteins+in+pediatric+and+adult+diseased+aortic+valves%5BTitle%5D)+AND+%22J+Mol+Cell+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Differential expression of cartilage and bone-related proteins in pediatric and adult diseased aortic valves.</a> J Mol Cell Cardiol. 50, 561-569 (2011).</li>
<li>Chakraborty, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Twist1+promotes+heart+valve+cell+proliferation+and+extracellular+matrix+gene+expression+during+development+in+vivo+and+is+expressed+in+human+diseased+aortic+valves%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Twist1 promotes heart valve cell proliferation and extracellular matrix gene expression during development in vivo and is expressed in human diseased aortic valves.</a> Dev Biol. 347, 167-179 (2010).</li>
<li>Lee, M. P., Yutzey, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Twist1+directly+regulates+genes+that+promote+cell+proliferation+and+migration+in+developing+heart+valves%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Twist1 directly regulates genes that promote cell proliferation and migration in developing heart valves.</a> PLoS One. 6 (e29758), (2011).</li>
<li>Peacock, J. D., Huk, D. J., Ediriweera, H. N., Lincoln, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sox9+transcriptionally+represses+Spp1+to+prevent+matrix+mineralization+in+maturing+heart+valves+and+chondrocytes%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Sox9 transcriptionally represses Spp1 to prevent matrix mineralization in maturing heart valves and chondrocytes.</a> PLoS One. 6 (e26769), (2011).</li>
<li>Chakraborty, S., Cheek, J., Sakthivel, B., Aronow, B. J., Yutzey, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Shared+gene+expression+profiles+in+developing+heart+valves+and+osteoblast+progenitor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Genomics%22%5BJournal%5D)">Shared gene expression profiles in developing heart valves and osteoblast progenitor cells.</a> Physiol Genomics. 35, 75-85 (2008).</li>
<li>Vogel, C., Marcotte, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Insights+into+the+regulation+of+protein+abundance+from+proteomic+and+transcriptomic+analyses%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Genet%22%5BJournal%5D)">Insights into the regulation of protein abundance from proteomic and transcriptomic analyses.</a> Nat Rev Genet. 13, 227-232 (2012).</li>
<li>Meng, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+functional+Toll-like+receptors+2+and+4+in+human+aortic+valve+interstitial+cells%3A+potential+roles+in+aortic+valve+inflammation+and+stenosis%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">Expression of functional Toll-like receptors 2 and 4 in human aortic valve interstitial cells: potential roles in aortic valve inflammation and stenosis.</a> Am J Physiol Cell Physiol. 294, 29-35 (2008).</li>
<li>Dyer, L. A., Wu, Y., Moser, M., Patterson, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((BMPER-induced+BMP+signaling+promotes+coronary+artery+remodeling%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">BMPER-induced BMP signaling promotes coronary artery remodeling.</a> Developmental Biology. 386, 385-394 (2014).</li>
<li>Eslami, A., Lujan, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Western+blotting%3A+sample+preparation+to+detection%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Western blotting: sample preparation to detection.</a> J Vis Exp. (44), (2010).</li>
<li>Garside, V. C., Chang, A. C., Karsan, A., Hoodless, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Co-ordinating+Notch%2C+BMP%2C+and+TGF-beta+signaling+during+heart+valve+development%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Mol+Life+Sci%22%5BJournal%5D)">Co-ordinating Notch, BMP, and TGF-beta signaling during heart valve development.</a> Cell Mol Life Sci. 70, 2899-2917 (2013).</li>
<li>Jiang, X., Rowitch, D. H., Soriano, P., McMahon, A. P., Sucov, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fate+of+the+mammalian+cardiac+neural%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Fate of the mammalian cardiac neural.</a> Development. 127, 1607-1616 (2000).</li>
<li>Scherptong, R. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphogenesis+of+outflow+tract+rotation+during+cardiac+development%3A+the+pulmonary+push+concept%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Dyn%22%5BJournal%5D)">Morphogenesis of outflow tract rotation during cardiac development: the pulmonary push concept.</a> Dev Dyn. 241, 1413-1422 (2012).</li>
<li>Mohler, E. R., Adam 3rd, L. P., McClelland, P., Graham, L., Hathaway, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+of+osteopontin+in+calcified+human+aortic+valves%5BTitle%5D)+AND+%22Arterioscler+Thromb+Vasc+Biol%22%5BJournal%5D)">Detection of osteopontin in calcified human aortic valves.</a> Arterioscler Thromb Vasc Biol. 17, 547-552 (1997).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

La capacidad de cuantificar los niveles de proteína a principios de embriones de ratón y Chick regiones válvula cardíaca proporciona una herramienta adicional para la comprensión de los eventos de señalización celular críticas para el desarrollo de la válvula. Nuestro protocolo descrito en este documento no difiere en gran medida de los procedimientos de aislamiento de proteínas convencionales. Sin embargo, mediante la modificación de algunas medidas clave, que hemos obtenido con éxito proteínas fosforiladas desde muy p...

Ser capaz de identificar y cuantificar los niveles de expresión de proteínas es una técnica estándar para animal- y los experimentos basados ​​en células. Sin embargo, a pesar de un interés de larga data en el desarrollo de la válvula cardíaca embrionaria temprana, la evaluación de la expresión de proteínas en este tejido específico durante el desarrollo se limita actualmente a la inmunohistoquímica en tanto el pollo y 1,2 ratón. Parte de la dificultad de cuantificar la expresión de proteínas en las válvulas de desarrollo de la mayoría de organismos modelo (por ejemplo, de pollo y de ratón) es el pequeño tamaño de las válvulas, lo que limita la cantidad de proteína que se puede obtener. Por lo tanto, para los análisis cuantitativos, los investigadores normalmente se basan en la extracción de ARN y amplificación por PCR cuantitativa posterior o el análisis de microarrays 2-5. Sin embargo, los niveles de expresión de ARN y proteínas no son del todo correlativa 6, por lo que se centra en la expresión del ARN no pueden dar una explicación rigurosa de los numerosos cambios que se producen en cualquier señalización dadavía en varias ocasiones durante la evolución. Sobre la base de este límite en la metodología actualmente disponible, el objetivo de este procedimiento fue desarrollar un protocolo para la obtención fiable de cantidades suficientes de proteína a partir de las regiones de la válvula cardiaca de embriones de ratón en desarrollo para el análisis cuantitativo de los cambios que se producen en diversas vías de señalización que son importantes en la maduración de este tejido. Válvulas embrionarias son ya comúnmente disecados de los ratones para el aislamiento de ARN y análisis de expresión génica posterior 2-5. Sin embargo, estos estudios se han limitado a la utilización de la expresión génica como una lectura de salida de activación de la vía de señalización, que no permite la detección de detectar proteínas modificaciones post-traduccionales que pueden afectar a la señalización aguas abajo. Utilizando las técnicas de aislamiento de ARN como punto de partida, comenzamos con la disección de las regiones de interés. Debido a que nuestro interés se detecta proteínas fosforiladas que eran indicativos de pat señalizaciónhway actividad durante un período específico de desarrollo de la válvula aórtica (E13.5-14.5), que realiza todas las disecciones en tampón Tris-fosfato libre y se recogió las válvulas en un tampón de lisis a base de Tris con inhibidores de fosfatasa y proteasa. En nuestro caso específico, sólo se recogieron las regiones de la válvula aórtica, pero la región de la válvula pulmonar podrían obtenerse fácilmente al mismo tiempo. Las regiones de la válvula fueron entonces homogeneizada y combinado con un tampón de muestra que se utiliza actualmente para estudiar la expresión de proteínas en las válvulas cardiacas adultas 7. Mediante el uso de pequeños volúmenes de muestra (por ejemplo, 2 l) y puesta en común de las regiones de la válvula a partir de embriones con el mismo genotipo, hemos sido capaces de detectar las proteínas fosforiladas y no fosforilada en el día embrionario 13.5 8. Debido a que las regiones de válvula pueden ser congelados y almacenados en tampón de lisis, los embriones pueden ser genotipados si es necesario antes de la puesta en común. Esta técnica amplía el conjunto de herramientas que están disponibles para evaluar signalin celularg vías durante el desarrollo y ofrece un cumplido cuantitativa de inmunohistoquímica, específicamente para las válvulas cardíacas en desarrollo. Esta técnica debe ser de beneficio no sólo para los cardiólogos de desarrollo, sino también a todos los biólogos del desarrollo que trabajan con embriones en fase inicial están interesados ​​en regiones que contienen tejido limitado.

<table><tbody><tr>Ratón <td></td><td></td><td>embarazada cronometrada</td><td>Para ser diseccionada en la etapa embrionaria de interés</td></tr><tr><td>Microscopio estereoscópico</td><td>Nikon</td><td>SMZ645</td><td></td></tr><tr><td>0.1 M Tris, pH 7.6</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microtijeras</td><td>Fine Science Tools</td><td>15003-08</td><td></td></tr><tr><td>Pinzas finas, #5</td><td>Fine Science Tools</td><td>11251-30</td><td></td></tr><tr><td>Aguja de disección tenedores</td><td>Ted Pella Inc.</td><td>13560</td><td></td></tr><tr><td>Agujas de disección</td><td>Ted Pella Inc.</td><td>13561-10</td><td></td></tr><tr><td>Micropipeta, 20 &mu; l, con puntas</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tampón</td><td></td><td></td> de lisis <td>50 mM Tris-HCl, pH 7,5, 150 mM NaCl, 5 mM EDTA, 1% Triton</td></tr><tr><td>PhosSTOP</td><td>Roche</td><td>4906845001</td><td>Añadir 1 comprimido a 10 ml tampón de lisis</td></tr><tr><td>TissueLyser LT</td><td>Qiagen</td><td>85600</td><td></td></tr><tr><td>Perlas de acero inoxidable</td><td>Microcentrífuga</td><td></td> Qiagen 69989 <td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

proteína aislamiento del desarrollo embrionario del corazón del ratón válvula región

Protein Isolation from the Developing Embryonic Mouse Heart Valve Region

Western blot es una técnica comúnmente empleada para detectar y cuantificar los niveles de proteínas. Sin embargo, en el caso de muestras de tejido pequeñas, este método de análisis puede no ser lo suficientemente sensible como para detectar una proteína de interés. Para superar estas dificultades, examinamos los protocolos para obtener proteínas de válvulas cardíacas humanas adultas y modificamos estos protocolos para los homólogos embrionarios tempranos en desarrollo. En resumen, las regiones de la válvula aórtica embrionaria de ratón, incluida la válvula aórtica y la pared aórtica circundante, se recogen en el volumen mínimo posible de un tampón de lisis basado en Tris con inhibidores de la proteasa. Si es necesario en función de la estrategia de cría, los embriones se genotipifican antes de agrupar cuatro regiones de la válvula aórtica embrionaria para su homogeneización. Después de la homogeneización, se utiliza un tampón de muestra basado en SDS para desnaturalizar la muestra para ejecutarla en un gel SDS-PAGE y el posterior análisis de Western blot. Aunque la concentración de proteínas sigue siendo demasiado baja para cuantificarla mediante ensayos espectrofotométricos de cuantificación de proteínas y queda muestra para análisis posteriores, esta técnica puede utilizarse para detectar y semicuantificar con éxito proteínas fosforiladas mediante Western blot a partir de muestras agrupadas de cuatro regiones embrionarias de la válvula aórtica de ratón de día 13,5, cada una de las cuales produce aproximadamente 1 μg de proteína. Esta técnica será beneficiosa para estudiar la activación de la vía de señalización celular y los niveles de expresión de proteínas durante el desarrollo temprano de la válvula embrionaria del ratón.

Utilizando esta técnica de preparación, hemos sido capaces de detectar fosforilados Smad 1,5,8 (pSmad) en las regiones de la válvula aórtica individuales de E13.5 embriones. Como se muestra en la Figura 1A, la proteína aislada de incluso una sola región de la válvula es suficiente para detectar una banda pSmad débil. Intensidad de la señal aumenta proporcionalmente con el número de regiones de la válvula que se agruparon. Es importante destacar que la relación pSmad / β-actina se mantiene cas...

El análisis de la expresión de proteínas en válvulas de ratones embrionarios jóvenes se ha visto obstaculizado por el limitado tejido disponible. Este manuscrito proporciona un protocolo para la preparación de proteínas a partir de regiones de válvulas de ratón embrionarias en desarrollo para el análisis de Western blot.

Proteína Aislamiento del desarrollo embrionario del corazón del ratón Válvula Región

Western blot analysis is a commonly employed technique for detecting and quantifying protein levels. However, for small tissue samples, this analysis ...

El objetivo general de este procedimiento es aislar y extraer proteínas de las válvulas cardíacas embrionarias. Esto se logra aislando primero un embrión de una rata embarazada. En el segundo paso, se disecciona el corazón del embrión y luego se recogen las válvulas cardíacas en el paso final.El tejido se lisa y la muestra de proteína resultante se prepara para su posterior análisis. En última instancia, el análisis de BLO occidental se puede utilizar para evaluar los niveles de expresión de proteínas. La demostración visual de este método es fundamental, ya que los pasos de disección son difíciles de aprender debido a la forma pequeña y compacta del corazón en desarrollo.En el día embrionario deseado de desarrollo, use etanol al 70% para esterilizar el abdomen de la hembra embarazada. A continuación, levante la piel y el músculo de la parte inferior del abdomen y aléjelo de los órganos internos, y diseccione la cavidad abdominal inferior para permitir el acceso al cuerno uterino. A continuación, sujete el cuello uterino con pinzas y corte con cuidado el mimo hasta las puntas.A continuación, levante el cuerno uterino cortando cualquier tejido conectivo que mantenga el cuerno en su lugar, y complete la extracción cortando la unión del cuerno uterino con el uct. Coloque el cuerno uterino disecado en una placa de Petri que contenga tampón tris frío de 0,1 molares y enjuague según sea necesario. Luego corte el cuerno uterino.Abrir a lo largo para exponer los sacos embrionarios. Para exponer un embrión, se debe abrir un saco embrionario en la unión de la placenta y el embrión, y cortar los vasos umbilicales para liberar al embrión. Coloque el embrión disecado en una segunda placa de Petri con tampón tris frío de 0,1 molares y devuelva la primera placa de Petri con los embriones restantes no disecados a hielo hasta la próxima disección embrionaria.Después de la decapitación, coloque el embrión boca arriba y corte la pared torácica verticalmente a lo largo del costado de la caja torácica cerca de una cojera y horizontalmente por encima del diafragma. Para visualizar el corazón, abre la pared torácica. A continuación, sostenga las pinzas en lo alto a lo largo de los grandes vasos, levante el corazón y corte los vasos que se encuentran debajo.A continuación, corte por encima de las pinzas para liberar el corazón. Si los vasos pulmonares permanecen sin cortar, extirpar los pulmones con el corazón antes de continuar en las etapas embrionarias descritas en este documento, la arteria pulmonar es ligeramente opaca. Después de identificar la arteria, córtela y retírela por encima del nivel de la válvula.Ahora, corte justo debajo de la válvula pulmonar, evitando el miocardio ventricular ECD, y retire el exceso de tampón tris de la región de interés. Antes de colocar la válvula en un tubo de Einor que contiene dos microlitros de tampón de lisis como la arteria pulmonar, la aorta parecerá ser ligeramente opaca. Después de su identificación, corte justo debajo de la válvula aórtica.De nuevo, evitando el miocardio ventricular trabeculado. Retire cualquier exceso de solución tri y luego transfiera la válvula al tubo de einor que contiene lisis, tampón y tejido de la arteria pulmonar. Una vez que se haya recolectado todo el tejido, coloque inmediatamente las muestras a menos 80 grados Celsius hasta que se acerque.Úselo para la extracción de proteínas, descongele los tejidos recolectados en hielo y luego granule las muestras durante un minuto a 13, 100 G a cuatro grados Celsius. Compruebe el volumen de la muestra resultante y utilice un tampón de lisis para aumentar el volumen total hasta 40 microlitros. A continuación, añada cinco milímetros de perlas de acero inoxidable para interrumpir y homogeneizar las muestras en un lir durante dos a cuatro minutos a 50 hercios, según las instrucciones del fabricante.Después de la homogeneización, centrifugar los tubos brevemente y transferir las muestras a nuevos tubos, dejando atrás los residuos insolubles para su posterior análisis experimental. Utilizando esta técnica de preparación, se puede detectar smad 1 5 8 fosforilado en regiones de válvulas aórticas individuales de embriones E 13.5. Por ejemplo, la proteína aislada de una sola región de la válvula es suficiente para detectar una banda p smad débil con la intensidad de la señal aumentando proporcionalmente al número de regiones de la válvula que se agrupan.Es importante destacar que la proporción de p smad beta actina permanece claramente constante en los diferentes tamaños de muestra debido a los bajos niveles de proteína disponibles, el mismo blot no se puede eliminar y volver a probar para el smad total. Sin embargo, un blot separado que muestra smad one total y beta actin exhibe el mismo patrón de expresión. Estas regiones valvulares están casi totalmente desprovistas de miocardio ventricular contaminante utilizando esta técnica de preparación en combinación con muestras del ventrículo derecho, el marcador de miocardio ventricular, un NP no es detectable en las regiones de la válvula aórtica, mientras que este marcador se detecta fácilmente en el ventrículo.Además, el marcador miocárdico ventricular de cadena ligera de miosina dos V también es fácilmente detectable en la muestra ventricular, pero apenas es detectable en las regiones de la válvula aórtica, lo que subraya la precisión de la disección posterior a esta disección. Se pueden realizar otros MES, como QPCR o RN AIC, para responder a preguntas adicionales, como qué genes posteriores se ven afectados durante los diferentes pasos del desarrollo.

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Biología

En este artículo se proporciona un método para aislar y cultivar la codorniz o pollo...

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En este protocolo, w e identificado una nueva población de células melanocitos como (también conocido como melanocitos cardíacos) en los corazones de los ratones y los seres humanos que contribuyen a la arritmia auricular provoca en ratones.

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Modelo In Vitro de Angiogénesis Coronaria

Desarrollamos un método simple para aislar las células individuales de alta calidad del corazón del ratón por la técnica anterógrada de la perfusión. Este método está libre de Langendorff y es útil para aislar miocitos ventriculares y auriculares o células intersticiales, como fibroblastos cardíacos o progenitores.

Un Método De Perfusión Anterógrada Para El Aislamiento De Cardiomiocitos De Ratones

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Aislamiento De Células De La Válvula Intersticial De Ratón Para Estudiar La Calcificación De La Válvula Aórtica In Vitro

El presente protocolo describe el aislamiento agudo de células viables del músculo liso cardíaco y vascular de peces cebra adultos, juveniles, larvales y embrionarios (Danio rerio), adecuados para estudios electrofisiológicos.

Aislamiento de células musculares lisas cardíacas y vasculares de peces cebra adultos, juveniles, larvales y embrionarios para estudios electrofisiológicos

Aquí, presentamos un protocolo que describe la preparación de los núcleos celulares. Después de la microdisección y la disociación enzimática del tejido cardíaco en células individuales, las células progenitoras se congelaron, seguidas del aislamiento de células viables puras, que se utilizaron para la secuenciación de ARN de un solo núcleo y el ensayo de núcleo único para la cromatina accesible a transposasa con análisis de secuenciación de alto rendimiento.

Aislamiento de núcleos de células progenitoras cardíacas de ratón para epigenoma y perfil de expresión génica a resolución de una sola célula

Aprenda a aislar y extraer proteínas de válvulas cardíacas embrionarias en ratones. Este protocolo detallado facilita el análisis por western blot para estudiar la expresión proteica en tejidos con muestras limitadas.

Proteína Aislamiento del desarrollo embrionario del corazón del ratón Válvula Región

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