Name: El ensayo de formación de colonias en agar blando (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-10-27T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 1 s
Description: Aprende el ensayo de formación de colonias en agar blando para cuantificar el crecimiento independiente de anclaje en células transformadas. Este método permite evaluar el potencial tumorigénico y los efectos de proteínas supresoras de tumores.

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Este estudio fue apoyado por un Premio al Mérito del Departamento de Asuntos de Veteranos de EE.UU. y una subvención de los NIH R01CA1385282522717 a RW.

1. Preparación de Materiales y Reactivos <ol><li> Etiquetar cada pocillo de un cultivo de tejido tratado placa de 6 pocillos adecuada para cada línea celular o condición objeto de la investigación. </li><li> Preparar medio de cultivo celular 2x disolviendo 1 g de medio en polvo y 0,2 g de bicarbonato de sodio en agua desionizada hasta un volumen final de 50 ml. </li><li> Pasar este medio a través de un filtro de 0,2 micras para esterilizar. </li><li> Añadir componentes adicionales necesarios para el cultivo normal de la línea celular de interés. Por ejemplo, crecer CMT línea 167 de células en medio RPMI 1640 suplementado con 10% de FBS y 1% de penicilina / estreptomicina solución. Medio caliente a 37 ° C en baño de agua caliente antes de su uso. </li><li> Preparar medio de cultivo celular 1x por separado como si se tratara de la cultura normal de las células de la línea celular de interés. </li><li> Preparar 1% de agar noble mediante la adición de 1 g de agar noble a 100 ml de agua desionizada. NOTA: agar Noble no se disolverá por completo con agitación por sí sola. </li><li> Preparar0,6% de agar noble mediante la adición de 0,6 g de agar noble a 100 ml de agua desionizada. Ambas soluciones de agar se pueden hacer en botellas de 100 ml de vidrio con tapas de cierre, para su almacenamiento a largo plazo. </li><li> Autoclave las mezclas de agar nobles para esterilizar. Estas mezclas se pueden hacer de antemano y se almacenan a 4 ° C, pero deben ser calentados de nuevo en el momento del experimento hasta el agar se haya disuelto completamente. </li><li> Preparar una solución de cloruro de tetrazolio nitroazul haciendo una solución madre de 1 mg / ml en 1X PBS (8 g NaCl, 0,2 g KCl, 1,44 g de Na 2 HPO 4, y 0,24 g KH 2 PO 4 en H 2 O hasta un volumen final de 1000 ml ). Esto se utiliza al final del experimento para teñir las colonias. </li></ol> 2. Revestimiento del de la capa inferior de Agar <ol><li> Afloje el tapón de la botella de 1% de agar noble y microondas durante unos 1-2 minutos. Mientras que el calentamiento en un microondas, un seguimiento de la solución cuidadosamente para evitar desborde. Continuar calentando, mientras se mezcla de forma intermitente,agar hasta que se haya disuelto completamente y la solución es clara. NOTA: Utilice guantes resistentes al calor para manejar frasco después del calentamiento. Si no lo hace puede provocar quemaduras o lesiones graves. </li><li> Coloque solución de agar fundido y medio de cultivo 2x pre-calentado en un cubo de hielo llena de agua caliente de la llave (42 ° C). También colocar un tubo cónico de 50 ml en un soporte de tubo en el cubo de hielo con agua caliente. Traslado cubo para campana de cultivo de células para las etapas subsiguientes. </li><li> Para la capa inferior de agar, necesitará 1,5 ml de una mezcla de agar y medio por pocillo de una placa de 6 pocillos. </li><li> Para asegurar una cantidad adecuada de la mezcla, preparar un total de 12 ml para cada placa de 6 pocillos. </li><li> Iniciar mediante la adición de 6 ml de medio de cultivo al tubo cónico de 50 ml y luego 6 ml de la solución de agar noble 1%. </li><li> Invierta el tubo cónico varias veces para mezclar. Trabajando a un ritmo acelerado impedirá el endurecimiento prematuro del agar blando. </li><li> Elaborar aproximadamente 5,5 ml de la mezcla en un 5 ml pi serológicapette. </li><li> Permitir que las burbujas de aire a la altura de la parte superior de la columna de pipeta antes de depositar 1,5 ml de esta mezcla en cada pocillo. Tenga cuidado para evitar la deposición de las burbujas de aire en los pocillos de la placa. </li><li> Cubrir las placas de agar y permitir que la mezcla se solidifique a temperatura ambiente, en campana de cultivo celular, durante 30 min. </li></ol> 3. Chapado de la capa superior de células que contienen Agar <ol><li> Una vez que la capa inferior de agar se ha solidificado, comenzar la preparación de la capa superior. </li><li> Primero, las células de la cosecha mediante tripsinización y se les diluyen 1: 5 en medio de cultivo (por ejemplo, para 1 ml de tripsina, añadir 4 ml de medio) en un tubo cónico de 15 ml. </li><li> Contar las células y calcular el número de células por pocillo necesarios para preparar una suspensión celular final en este momento. Este número variará dependiendo del tipo de célula. Utilice 5.000 células / así como un punto de partida y ajustar según sea necesario. Para este número de células, que le prepare una suspensión celular de 6.667 células / ml (es decir, cada well recibirá 0,75 ml de esta suspensión y 0,75 ml de agar para un volumen total de 1,5 ml; la concentración de células también se diluyó 1: 2 para un recuento final de células total de 5000). </li><li> El volumen de la suspensión celular necesaria por pocillo de una placa de 6 pocillos será de nuevo 1,5 ml. Preparar suspensión celular adicional por un total de 12 ml por placa de 6 pocillos. </li><li> Derretir solución de agar 0,6% en un horno de microondas como anteriormente y colocar en el cubo de hielo que contiene agua caliente junto con un tubo cónico de 50 ml en un soporte de tubo y la suspensión celular final de la Etapa 3.3. </li><li> Transferir el cubo de hielo derretido con 0,6% de agar para campana de cultivo de células para las etapas subsiguientes. </li><li> Mezclar 0,6% de agar y la suspensión celular en una relación 1: 1, la preparación de un volumen total de 12 ml por placa de 6 pocillos. Se requerirá 1,5 ml por pocillo, pero adicional deben hacerse como anteriormente. </li><li> Pipetear 6 ml de la suspensión celular en el tubo cónico de 50 ml. </li><li> A continuación, añadir 6 ml de agar al 0,6% al tubo. NOTA: La temperatura de esta mezcla debe sermantenido en torno a los 42 ° C para evitar el endurecimiento prematuro y para maximizar la supervivencia celular. </li><li> Trabajando rápidamente, pipeta esta mezcla 2-3x para distribuir las células, a continuación, dibuje un 5,5 ml de la mezcla en un 5 ml pipeta serológica. </li><li> Permita que las burbujas de aire suban a la parte superior de la columna de la pipeta antes de depositar 1,5 ml de esta mezcla en cada pocillo. Tenga cuidado para evitar la deposición de las burbujas de aire en los pocillos de la placa. </li><li> Deje que la mezcla de células / agar para solidificar a temperatura ambiente, en campana de cultivo celular, durante 30 min antes de colocar en un 37 ° C humidificado incubadora de cultivo celular. </li><li> El tiempo requerido para la formación de colonias adecuada varía para cada línea celular, típicamente alrededor de 21 días. </li><li> Una capa de medio de crecimiento debe mantenerse sobre la capa superior de agar para evitar la desecación. 100 l de medio añadido dos veces por semana es suficiente para este propósito. </li></ol> 4. tinción de las placas y contando Colonias <ol><li> Las células de la mancha mediante la adición de 200 _6; l de solución de cloruro de tetrazolio nitroazul por pocillo e incubando las placas durante la noche a 37 ° C. </li><li> Una vez que las colonias se tiñen, tome fotografías de pozos utilizando un generador de imágenes y cuente las colonias utilizando el software de análisis de imágenes. </li></ol>

<ol><li>Puck, T. T., Marcus, P. I., Cieciura, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clonal+growth+of+mammalian+cells+in+vitro%3B+growth+characteristics+of+colonies+from+single+HeLa+cells+with+and+without+a+feeder+layer%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">Clonal growth of mammalian cells in vitro; growth characteristics of colonies from single HeLa cells with and without a feeder layer.</a> J Exp Med. 103, 273-283 (1956).</li>
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<li>Tennis, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sprouty-4+inhibits+transformed+cell+growth%2C+migration+and+invasion%2C+and+epithelial-mesenchymal+transition%2C+and+is+regulated+by+Wnt7A+through+PPARgamma+in+non-small+cell+lung+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Sprouty-4 inhibits transformed cell growth, migration and invasion, and epithelial-mesenchymal transition, and is regulated by Wnt7A through PPARgamma in non-small cell lung cancer.</a> Mol Cancer Res. 8, 833-843 (2010).</li>
<li>Steele, J. G., Rowlatt, C., Sandall, J. K., Franks, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+surface+properties+of+high-+and+low-metastatic+cell+lines+selected+from+a+spontaneous+mouse+lung+carcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Cancer%22%5BJournal%5D)">Cell surface properties of high- and low-metastatic cell lines selected from a spontaneous mouse lung carcinoma.</a> Int J Cancer. 32, 769-779 (1983).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

En confirmación vitro de la función supresora de tumor de las proteínas de señalización es difícil. Uno de los ensayos más rigurosos disponibles para investigar esta propiedad es el ensayo de formación de colonias en agar blando. Aquí, hemos ilustrado el ensayo de formación de colonias en agar suave utilizando una línea celular de carcinoma de pulmón murino de forma estable y que sobreexpresan Wnt7a Fzd9 comparación con su padres línea celular CMT167. Hay varios puntos impo...

El ensayo de formación de colonias en agar blando es una técnica ampliamente utilizada para evaluar la transformación celular in vitro. Históricamente, se utilizó otro ensayo, el ensayo clonogénico, descrito por Puck et al. En 1956 para evaluar la capacidad de las células para formar colonias 1. En esta técnica, las células se dispersaron en una placa de cultivo y se cultivaron en la presencia de células alimentadoras &#39;&#39; o medio acondicionado para proporcionar factores de crecimiento necesarios. La limitación de esta técnica es que sólo se proporciona información con respecto a la formación de colonias. Las células normales se impide el crecimiento independiente de anclaje, debido a un tipo particular de muerte apoptótica, denominado anoikis 2. Sin embargo, las células transformadas tienen la capacidad de crecer y dividirse sin unirse a un sustrato. Para sacar provecho de este concepto, los investigadores desarrollaron el ensayo de formación de colonias en agar blando. El ensayo de formación de colonias en agar blando desde entonces ha sido modificada, en años más recientes, para abordar specific necesidades. Una variación consiste en la incorporación de colorante fluorométrico para permitir de alto rendimiento recuento de colonias. Otra variación implica el uso de solución especializada agar para permitir la recuperación de células viables después de la formación de colonias cuando se necesitan muestras de proteínas o de ADN. En el ensayo de formación de colonias en agar blando tradicional, las células se cultivan en una capa de agar blando mezclado con medio de cultivo celular que descansa sobre otra capa de agar blando, también mezclado con medio de cultivo celular, pero que contiene una mayor concentración de agar. Esto evita que las células se adhieran a la placa de cultivo, sin embargo, permite que las células transformadas para formar colonias visibles. El fundamento de esta técnica es que las células normales dependen de contacto célula a la matriz extracelular para ser capaz de crecer y dividirse. Por el contrario, las células transformadas tienen la capacidad de crecer y dividirse independientemente de su entorno. Por lo tanto, las células capaces de formar colonias de una manera independiente de anclaje fueron considered a transformar y cancerígeno. El objetivo general de este método es medir esta capacidad en las células de una manera semi-cuantitativa y rigurosa. La vía de señalización Wnt es esencial en la embriogénesis y, a menudo reguladas des en la tumorigénesis 3-6. Hay múltiples vías asociadas con la señalización de Wnt. La vía canónica implica la señalización y la regulación de la transcripción de genes Wnt aguas abajo a través de sus efectos sobre el coactivador transcripcional de beta-catenina. Wnts también la señal a través de varias vías no canónicos, por ejemplo, la vía de la polaridad celular planar, que regula los elementos involucrados en la estructura del citoesqueleto 7, y de la vía Wnt-calcio, que regula la liberación de calcio desde el retículo endoplásmico 8. Ligandos Wnt ejercen su actividad a través de unirse a receptores Frizzled. Aunque varios Wnt han demostrado ser upregulated en el cáncer de pulmón, Wnt7a ha demostrado ser regulada en el no-Smalcáncer de pulmón l de células a través de la metilación del promotor 9. Wnt7a une Fzd9 y actúa como un supresor de tumor a través de una vía no canónica. Restauración de Wnt-7a y Fzd-9 inhibe el crecimiento de células no pequeñas de cáncer de pulmón de células 10. Los efectos de la Wnt7a / Fzd9 están mediadas a través de la activación de ERK-5, que a su vez, activa los receptores γ proliferador de peroxisoma activados (PPAR) 11,12. Aquí, mostramos que la sobreexpresión de Wnt7a y Fzd9 se traduce en la supresión del crecimiento independiente de anclaje de una línea celular de carcinoma de pulmón murino. CMT167 células murinas se derivaron de un carcinoma de pulmón en ratones C57BL / LCRF 13 y fueron transfectadas establemente con Wnt7a y Fzd9. La sobreexpresión de Wnt7a y Fzd9 fueron confirmados por PCR cuantitativa (Q-PCR) y la funcionalidad de Wnt7a y Fzd9 sobreexpresión fue confirmada a través de la activación de aguas abajo de PPAR.

<table><tbody><tr><td>Línea celular de cáncer de interés</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>10032302</td><td>células CMT-167</td></tr><tr><td>en polvo RPMI 1640 Medio</td><td>Gibco</td><td>31800-089</td><td>Se utiliza para preparar 2 veces el medio de cultivo celular.</td></tr><tr><td>Líquido RPMI 1650 Medio</td><td>Cellgro</td><td>10-040-CV</td><td>Referido como 1x medio de cultivo celular.</td></tr><tr><td>Suero Fetal Bovino</td><td>HyClone</td><td>SH30910.03</td><td>Se utiliza para complementar el medio de cultivo celular.</td></tr><tr><td>Penicilina/Estreptomicina</td><td>CellGro</td><td>30-002-Cl</td><td>Utilizada en medio de cultivo celular.</td></tr><tr><td>Difco Noble Agar</td><td>BD Biosciences</td><td>214230</td><td>Se utiliza para preparar agar al 1,0% y al 0,6%.</td></tr><tr><td>Bicarbonato de sodio</td><td>Fisher</td><td>BP-328-1</td><td>Utilizado en 2x medio de cultivo celular.</td></tr><tr><td>Tripsina</td><td>Cellgro</td><td>25-050-Cl</td><td></td></tr><tr><td>Filtros estériles con tapa de botella</td><td>Fisher</td><td>09-761-126</td><td>Se utiliza para filtrar estéril 2x medio.</td></tr><tr><td>Reactivo de lipofectamina</td><td>Invitrogen</td><td>18324-020</td><td>Utilizado en el ensayo de luciferasa PPAR-RE.</td></tr><tr><td>Placas de 6 pocillos tratados con cultivo de tejidos 37</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>&#176; C/5% CO2 Incubadora</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Chemi-Doc Imager</td><td>Bio-Rad</td><td></td><td>Se utiliza para tomar fotografías de colonias.</td></tr><tr><td>Cantidad Un software</td><td>Bio-Rad</td><td></td><td>Se utiliza para contar las colonias de células.</td></tr><tr><td>15 ml Tubos Cónicos 50</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ml Tubos Cónicos 250</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ml Matraces</td><td></td><td></td><td></td>Erlenmeyer</tr><tr><td>Microondas</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>5 ml Pipetas serológicas</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pipeta Aid</td> Micropipeta Hemacitómetro <td></td><td></td><td></td></tr> con <tr><td></td> tapa <td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> </td> Puntas de pipeta deslizantes <td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microscopio</td><td></td><td></td><td></td>de luz invertida</tr><tr><td>Centrífuga</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Guantes</td><td></td><td></td><td></td>resistentes al calor</tr><tr><td>Cubitera</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Saran Wrap</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

el ensayo de formación de colonias en agar blando

The Soft Agar Colony Formation Assay

El crecimiento independiente del anclaje es la capacidad de las células transformadas para crecer independientemente de una superficie sólida, y es un sello distintivo de la carcinogénesis. El ensayo de formación de colonias de agar blando es un método bien establecido para caracterizar esta capacidad in vitro y se considera una de las pruebas más estrictas para la transformación maligna en las células. Este ensayo también permite la evaluación semicuantitativa de esta capacidad en respuesta a diversas condiciones de tratamiento. Aquí, demostraremos el ensayo de formación de colonias de agar blando utilizando una línea celular de carcinoma de pulmón murino, CMT167, para demostrar los efectos supresores tumorales de dos miembros de la vía de señalización Wnt, Wnt7A y Frizzled-9 (Fzd-9). La sobreexpresión concurrente de Wnt7a y Fzd-9 causó una inhibición de la formación de colonias en las células CMT167. Esto demuestra que la expresión del ligando Wnt7a y su receptor Frizzled-9 es suficiente para suprimir el crecimiento tumoral en un modelo de carcinoma de pulmón murino.

La expresión de Wnt7a y Fzd9 en CMT167 células es eficaz en la supresión de tumores, como se ilustra por nuestro ensayo de formación de colonias en agar blando. Preliminarmente, se utilizó Q-PCR para demostrar que Wnt7a y Fzd9 ARNm se expresan en niveles bajos en CMT167 células. CMT167 células mostraron bajos niveles de endógeno Wnt7a y Fzd9 cuando se compara con MLE-12 células, un murino línea de células epiteliales de pulmón transformada con SV40 (Figura 1). A continuación, las células transfectadas C...

El ensayo de formación de colonias de agar blando es un método utilizado para confirmar el crecimiento independiente del anclaje celular in vitro. El objetivo de este protocolo es ilustrar un método estricto para la detección del potencial tumorigénico de las células transformadas y los efectos supresores de tumores de las proteínas en las células transformadas.

El ensayo de formación de colonias en agar blando

Anchorage-independent growth is the ability of transformed cells to grow independently of a solid surface, and is a hallmark of carcinogenesis. The soft ...

El objetivo general de este procedimiento es cuantificar el crecimiento independiente del anclaje celular. Esto se logra colocando primero una capa de agar en la placa de cultivo celular y permitiendo que se endurezca. El segundo paso es colocar una mezcla de células en agar sobre la capa de agar anterior.A continuación, se permite que las células formen colonias durante un período de unas pocas semanas. El paso final es teñir las colonias para su visualización y cuantificación. En última instancia, el ensayo de formación de colonias de agar blando se utiliza para mostrar el crecimiento independiente de Anchorage como indicación de la transformación celular.La principal ventaja de esta técnica sobre otros métodos, como el ensayo génico de Clon, es que el ensayo de formación de colonias de agar blando requiere que las células formen colonias de forma independiente de Anchorage. Comience el procedimiento marcando cada pocillo de un cultivo de tejido tratado. Placa de seis pocillos apropiadamente para cada línea celular o condición que se está investigando.A continuación, prepare dos medios de cultivo Xcel disolviendo un gramo de medio en polvo y 0,2 gramos de bicarbonato de sodio en el agua desionizada hasta un volumen final de 50 mililitros. Pase este medio a través de un filtro de 0,2 micras. Agregue componentes adicionales necesarios para el cultivo normal de la línea celular de interés.Por ejemplo, cultive la línea celular CMT 1 67 en medio RPMI 1640 suplementado con una solución de estreptomicina al 10% de FBS y penicilina al 1%. Caliente el medio a 37 grados centígrados en un baño de agua caliente antes de usar. Ahora prepare un medio de cultivo Xcel.A continuación, prepare agar noble al 1% añadiendo un gramo de agar noble a 100 mililitros de agua desionizada. Después de eso, prepare agar noble al 0,6% agregando 0,6 gramos de agar noble a 100 mililitros de agua desionizada. A continuación, autoclave las mezclas de agar noble.Posteriormente, haga una solución madre de cloruro de tetra oleum nitro azul nitro de un miligramo por mililitro en un XPBS con el fin de teñir las colonias. En este procedimiento, cocine en el microondas la botella de agar noble al 1% durante aproximadamente uno o dos minutos mientras se calienta en un microondas. Vigile la solución de cerca para evitar que hierva.Luego continúe calentando y mezclando intermitentemente hasta que el agar se disuelva por completo y la solución esté clara. Después de eso, coloque la solución de agar derretida y el medio de cultivo Prewarm two x en una cubitera llena de 42 grados centígrados. Agua del grifo.Además, coloque un tubo cónico de 50 mililitros en un soporte de tubo en la cubitera con agua caliente. A continuación, transfiera el cubo a la campana de cultivo celular. A continuación, añada seis mililitros de medio de cultivo y seis mililitros de la solución de agar noble al 1% al tubo cónico de 50 mililitros.Pipetea hacia arriba y hacia abajo varias veces para mezclar. Trabajar a un ritmo rápido evitará el endurecimiento prematuro del agar blando. A continuación, extraiga aproximadamente 5,5 mililitros de mezcla con una pipeta serológica de cinco mililitros.Deje que las burbujas de aire suban hasta la parte superior de la columna de pipeta. A continuación, deposite 1,5 mililitros de la mezcla en cada pocillo y evite la deposición de burbujas de aire. Cubra la placa y deje que la mezcla de agar se solidifique en la campana de cultivo celular a temperatura ambiente durante 30 minutos.Primero, recoja las células con tripsina y dilúyalas de una a cinco en cultivo, medio en un tubo cónico de 15 mililitros. Cuente las celdas y calcule el número de celdas necesarias por pocillo para preparar una suspensión celular final en este momento. A continuación, derrita la solución de agar al 0,6% en un microondas.Colóquelo en una cubitera que contenga agua caliente junto con un tubo cónico de 50 mililitros en un soporte de tubo y la suspensión de celda final. A continuación, transfiera la cubitera con agar 0,6% derretido a la campana de cultivo celular para los pasos siguientes. Para preparar un volumen total de 12 mililitros de suspensión celular para una placa de seis pocillos, primero pipetee seis mililitros de suspensión celular en el tubo cónico de 50 mililitros.A continuación, añada seis mililitros de agar al 0,6% al tubo. Mantenga la mezcla a 42 grados centígrados para evitar el endurecimiento prematuro y maximizar la supervivencia celular. Después, pipetea la mezcla rápidamente, dos o tres veces para distribuir las células.Extraiga 5,5 mililitros de mezcla con una pipeta serológica de cinco mililitros y permita que las burbujas de aire suban a la parte superior de la columna de pipeta. A continuación, deposita 1,5 mililitros de la mezcla en cada uno. Bueno, deje que la mezcla de agar celular se solidifique a temperatura ambiente en la campana de cultivo celular durante 30 minutos antes de colocarla en una incubadora de cultivo celular humidificada a 37 grados centígrados.Agregue 100 microlitros de medio de crecimiento sobre la capa superior de agar dos veces por semana para prevenir la desecación y permita alrededor de 21 días para la formación adecuada de colonias. Para teñir las células, agregue 200 microlitros de solución de cloruro de tetra oleum nitro blue a cada pocillo e incube la placa durante la noche a 37 grados centígrados. Una vez que las colonias estén teñidas, tome fotografías de los pozos con el generador de imágenes y cuente las colonias con un software de análisis de imágenes.Aquí se muestra el ensayo de formación de colonias de agar suave del vector que expresa las células CMT 1 67 LNCX LPC X y CMT 1 67 LL fue siete a nueve frizzled sobre las células que expresan. El vector que expresa las células CMT 1 67 L y CXL PC X y CMT 1 67 LL se encrespó siete veces. Nueve células sobreexpresadas se sembraron en un ensayo de formación de colonias de agar blando CMT 1 67 LL fueron siete células encrespadas, nueve células mostraron una marcada disminución en la formación de colonias después de su desarrollo.Esta técnica allanó el camino para que los investigadores en el campo de la investigación del cáncer exploraran la transformación celular in vitro. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo evaluar las células para el crecimiento independiente de Anchorage.

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Investigación

JoVE Journal

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Biología

La aplicabilidad del ensayo para evaluar la viabilidad clonigénicas reproductiva se ha establecido desde hace más de 50 años. Aquí se demuestra el procedimiento general para llevar a cabo el ensayo clonogénico con células adherentes.

Ensayo clonigénicas: las células adherentes

Cuando se trabaja con medios y reactivos utilizados para los microorganismos de cultivo, una técnica aséptica debe ser practicada para asegurar la contaminación se minimiza. Una variedad de métodos de enchapado se utilizan habitualmente para aislar, propagar, o bacterias enumerar y fagos, todos los cuales incorporan procedimientos que mantienen la esterilidad de materiales experimentales.

Técnicas de laboratorio asépticas: Métodos de Revestimiento

Este video describe un ensayo de formación de colonias de agar blando para probar los efectos de un inhibidor de la enzima PADI y BB-Cl-amidina en la tumorigénesis del cáncer de mama in vitro. Este ensayo también permite la evaluación cuantitativa del potencial de transformación celular en el contexto de las perturbaciones genéticas.

Ensayo de formación de colonias de agar blando: un método para probar los efectos de nuevos compuestos en la proliferación de células cancerosas

Este video describe el ensayo de formación de colonias, que ayuda a determinar la capacidad de las células de cáncer de pulmón para proliferar indefinidamente y formar colonias individuales. Podemos analizar el efecto de un agente anticancerígeno sobre las células formadoras de colonias mediante el análisis de los cambios en el número y/o tamaño de las colonias resultantes.

Ensayo de formación de colonias: evaluación de la eficacia de los agentes anticancerígenos en las células de cáncer de pulmón formadoras de colonias

Fuente: Cayron, J. y Lesterlin, C. Análisis multiescala del crecimiento bacteriano bajo tratamientos de estrés. J. Vis. Exp. (2019)Este video demuestra el procedimiento para evaluar la filamentación de E. coli y la replicación del ADN bajo tratamiento con antibióticos inhibidores de la división celular utilizando placas para medir la viabilidad y citometría de flujo para analizar el tamaño de la célula y el contenido de ADN.

Evaluación de la filamentación inducida por antibióticos en E. coli mediante ensayo de placa y citometría de flujo

Fuente: Temkin, M. I. et al. Ensayos de cocultura de alto rendimiento para la investigación de interacciones microbianas. J. Vis. Exp. (2019)Este vídeo muestra un ensayo in vitro para estudiar las interacciones microbianas entre Corynebacterium propinquum y Staphylococcus en un cocultivo.

Un ensayo in vitro para estudiar las interacciones microbianas en cocultura

Las proteínas interactúan entre sí y estas interacciones determinan en gran medida sus funciones. Los socios de interacción de proteínas se pueden identificar a alto rendimiento in vivo utilizando un ensayo de aptitud de levadura basado en el ensayo de complementación de fragmentos de proteínas de dihidrofolato reductasa (DHFR-PCA).

Genoma toda la Proteína-proteína interacción Screening por Complementación de ensayo de proteínas-fragmento (PCA) en las células vivas

Aquí, documentamos el uso del ensayo de formación de colonias de agar blando para probar los efectos de un inhibidor de la enzima peptidilarginina deiminasa (PADI), BB-Cl-amidina, sobre la tumorigénesis del cáncer de mama in vitro.

Utilización del ensayo Soft Agar formación de colonias para identificar inhibidores de tumorigenicidad en células de cáncer de mama

Los fenotipos de crecimiento de levadura se miden con precisión a través de imágenes de lapso de tiempo altamente paralelas de células inmovilizadas que crecen en microcolonías. Simultáneamente, se puede monitorear la tolerancia al estrés, la expresión proteica y la localización de proteínas, generando conjuntos de datos integrados para estudiar cómo las diferencias ambientales y genéticas, así como la heterogeneidad de la expresión génica entre las células isogénicas, modulan el crecimiento.

Imágenes en vivo de alto rendimiento de microcolonias para medir la heterogeneidad en crecimiento y expresión génica

Este método cuantifica la abundancia microbiana utilizando un formato de placa de 96 pocillos para unidades formadoras de colonias de placas (UFC) y se aplica al microbioma de Drosophila en muestras de homogeneización de mosca entera. Las CFU se cuentan con un software automatizado de análisis de imágenes que se proporciona aquí.

Conteo rápido de unidades formadoras de colonias en formato de placa de 96 pocillos aplicado al microbioma de Drosophila

Se describe un protocolo para la preparación de un ecosistema modelo simple que recrea el contragradiente metano-oxígeno encontrado en el hábitat natural de las bacterias aerobias oxidantes de metano, permitiendo el estudio de su fisiología en un contexto espacialmente resuelto. También se describen las modificaciones de los ensayos bioquímicos comunes para su uso con el ecosistema modelo basado en agarosa.

Ecosistema modelo basado en agarosa para el cultivo de metanótrofos en un contragradiente de metano-oxígeno

Aprende el ensayo de formación de colonias en agar blando para cuantificar el crecimiento independiente de anclaje en células transformadas. Este método permite evaluar el potencial tumorigénico y los efectos de proteínas supresoras de tumores.

El ensayo de formación de colonias en agar blando

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