Un modelo de rata de la fibrilación ventricular y Reanimación por Convencional cerrado pecho Técnica

El objetivo general de este procedimiento es obtener información sobre la fisiopatología del paro cardíaco y explorar nuevas estrategias de reanimación. Esto se logra primero instrumentando quirúrgicamente al animal para medir diversos parámetros fisiológicos que se recogen en un sistema de adquisición de datos para su posterior análisis fuera de línea, el paro cardíaco se produce por fibrilación ventricular inducida eléctricamente o fv. Para este paso, se inserta un alambre G precurvado en la vena yugular externa derecha y se avanza hasta el ventrículo derecho, lo que permite el suministro de una corriente eléctrica para la inducción de la fv.

Después de ocho minutos de FV no tratada, se inicia la compresión torácica mediante el uso de un dispositivo de pistón, aumentando gradualmente la profundidad de compresión mientras se mueve al animal a una posición de pistón que produce la presión diastólica aórtica más alta. Después de ocho minutos de compresión torácica, se intenta la desfibrilación mediante descargas eléctricas al animal. Los animales que son reanimados con éxito son monitoreados para evaluar los efectos de las intervenciones de reanimación en la función post-reanimación, hemodinámica y metabólica, y en la supervivencia.

Aunque este método puede proporcionar información sobre nuevas estrategias de reanimación, también puede ser útil para explorar los mecanismos subyacentes por los cuales las terapias funcionan a nivel celular a través del análisis de tejidos y la evaluación de los marcadores circulantes. El modelo rojo de paro cardíaco y reanimación que van a ver hoy fue desarrollado en 1988 por Irene Bonta y mi mentor, el profesor Max Harry Wilde. El modelo se ha utilizado ampliamente en todo el mundo, y creemos que la representación visual del modelo va a ser útil para los científicos.

Los estudiantes interesados en el campo de la reanimación cardiopulmonar, Este modelo de rata de reanimación torácica cerrada con paro cardíaco puede ser útil para avanzar en nuestra comprensión de la fisiopatología del paro cardíaco y el desarrollo de nuevos enfoques de reanimación Para facilitar el avance del catéter PE 25 en la aorta torácica descendente, comience haciendo una incisión de dos centímetros en el área inguinal derecha de una rata adulta anestesiada en un ángulo de 90 grados con respecto a su surco. A continuación, use un par de hemostáticos para romar, diseccionar el tejido conectivo circundante, exponiendo los vasos femorales y use pinzas de microdisección curvas para exponer la vaina vascular alrededor de los vasos. Luego, viaje con pinzas de microdisección por debajo de la arteria femoral, la vena y el nervio, y apóyelos en un ángulo de 90 grados con respecto a los vasos cuando ambos vasos y el nervio estén apoyados.

Use otro par de pinzas de microdisección curvas para separar la arteria del nervio y la vena a una longitud de aproximadamente un centímetro. Una vez separados, inserte una ligadura distal y otra proximal debajo de los vasos. Use un nudo de cirujano para apretar firmemente la ligadura distal, seguido de dos nudos simples.

Apriete la ligadura proximal con un nudo de cirujano suelto. A continuación, haga una pequeña incisión en el vaso cerca de la ligadura distal en un ángulo de 60 grados con respecto al vaso con un par de tijeras de microdisección que corten aproximadamente una cuarta parte del área de la sección transversal. A continuación, inserte una aguja de calibre 22 con la punta desafilada y doblada en un ángulo de 70 grados en la abertura del vaso mientras tira suavemente de la ligadura distal con los hemostáticos para estabilizar el vaso.

Ahora levante suavemente la aguja introductora para exponer el lumen y guíe el catéter PE 25 por debajo del introductor, retirando la aguja. Una vez que se haya insertado la punta del catéter, avance el catéter hasta la marca de ocho centímetros para colocar su punta en la aorta torácica descendente y, a continuación, apriete la ligadura proximal agregando dos nudos individuales adicionales que aseguran el catéter al vaso. Esta toma del cuello muestra una vena yugular externa derecha previamente canulada para exponer la tráquea.

A continuación, use hemostáticos para expandir la incisión hacia la línea media y luego use los hemostáticos para romar aún más, diseccionar las secciones esternal de hioides, tiroides esternal y mastoides de los músculos cefálicos CTO. Use un esparcidor de pañuelos para mantener la exposición de la tráquea. A continuación, saque la lengua para estirar las vías respiratorias con un avance de agarre firme.

Una cánula traqueal de cinco F montada sobre un estilete con una punta apuntando hacia arriba, que busca entrar en la vía aérea superior, las cuerdas vocales y la tráquea. El éxito de la intubación traqueal puede confirmarse mediante el reconocimiento de la forma de onda capnográfica característica. Antes de iniciar el protocolo de paro cardíaco y reanimación, mida el gasto cardíaco y diversas presiones para verificar la estabilidad hemodinámica.

Una vez registrados los valores basales, se retira la llave de paso de tres vías del catéter de poliuretano de tres F insertado en la vena yugular externa derecha del animal y se avanza la punta más blanda del alambre G, aproximadamente siete centímetros. Buscando entrar en el ventrículo derecho mientras se monitoriza el ECG y la presión aórtica. A continuación, encienda el generador de CA de 60 hercios y aumente gradualmente la corriente mientras controla la presión aórtica.

Mantenga la corriente durante tres minutos y la intensidad después de dos minutos. Apague la corriente después de tres minutos, luego retire el cable guía. Vuelva a tapar el catéter yugular con un grifo de tope de tres vías y retire la aguja molida.

Después de permitir que la FV continúe espontáneamente durante el tiempo deseado, encienda el ventilador y aumente gradualmente la profundidad de compresión de cero a 10 milímetros. Durante el primer minuto de compresión torácica, mueva al animal ligeramente hacia los lados y haga sroc. Buscando encontrar una posición que produzca la presión diastólica aórtica más alta para una profundidad de compresión dada.

A continuación, continúe aumentando la profundidad de compresión durante el segundo minuto hasta alcanzar una presión diastólica aórtica objetivo. Mantenga las compresiones torácicas durante el tiempo deseado antes de intentar la desfibrilación. Inmediatamente antes de completar las compresiones torácicas, aplique gel conductor a una paleta de desfibrilación personalizada para ratas de un desfibrilador de forma de onda bifásica disponible en el mercado y cargue el desfibrilador.

A continuación, interrumpa la compresión torácica y, después de verificar que el corazón permanece en FV mediante la lectura del ECG, administre una descarga eléctrica de cinco julios a través de la pared torácica. Obsérvese el retorno de un ECG organizado eléctricamente con pulsos aórticos y una presión aórtica media mayor o igual a 25 milímetros. Mercurio. Si la presión aórtica media es inferior a 25 milímetros, el mercurio reanuda las compresiones torácicas durante otros 30 a 60 segundos, independientemente del ritmo eléctrico.

Determinar el resultado de la reanimación al finalizar los ciclos de compresión de la desfibrilación según el diagrama de flujo. Luego aumente la tasa de ventilación de 25 a 60 por minuto después del retorno de la circulación espontánea, disminuyendo la fracción de oxígeno inspirado de 1.0 a 0.5 Después de 15 minutos de circulación espontánea, finalmente controle al animal hasta que esté completamente recuperado. Utilizando este protocolo, se demostró que los inhibidores de la isoforma uno del intercambiador de hidrógeno sódico IDE y un V 4 4 5 4 B permitieron el desarrollo de una presión diastólica aórtica predefinida con menor profundidad de compresión torácica, produciendo una mayor relación entre la presión de perfusión coronaria y la profundidad después de la reanimación.

Ambos compuestos mejoraron la disfunción miocárdica, pero la supervivencia fue mayor con Carri ride, como se ilustra en la figura, lo que sugiere que IDE es un inhibidor de la isoforma de un intercambiador de hidrógeno y sodio más eficaz que un VE para la reanimación de un paro cardíaco. En este modelo de rata, una vez dominado, la instrumentación quirúrgica se puede completar en 90 minutos. Después de este procedimiento, se puede recolectar sangre para medir los marcadores de órganos y lesiones orgánicas en el corazón para análisis moleculares.

Después de ver este video, tendrá una buena comprensión de cómo inducir cuándo se desencadena la fibrilación en rojo, cómo realizar de manera efectiva la reanimación torácica cercana, cómo restablecer la actividad cardíaca e identificar las variables a monitorear para asegurar el éxito del experimento.