Name: Enriquecimiento de la célula automatizada de citomegalovirus células T específicas para aplicaciones clínicas utilizando el Sistema de citoquinas de captura (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-10-05T15:15:00.000+00:00
Duration: 10 min 24 s
Description: Aprenda a aislar células T específicas de citomegalovirus de grado clínico mediante un sistema automatizado de captura de citoquinas. Este método permite producir células funcionales sin necesidad de instalaciones GMP.

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Agradecemos a Miltenyi Biotec, Alemania por proporcionar reactivos y equipos CliniMACS Prodigy para estudios de evaluación. Agradecemos a George T. McNamara (Departamento de Pediatría, MD Anderson Cancer Center) por la revisión del manuscrito. Apoyo de subvenciones: Subvención Principal del Centro Oncológico (CA16672); RO1 (CA124782, CA120956, CA141303; CA141303); R33 (CA116127); P01 (CA148600); Fondo Burroughs Wellcome; Instituto de Prevención e Investigación del Cáncer de Texas; Fundación de Investigación Global LLC; Herencia de Noelan L. Bibler; Fundación Gillson Longenbaugh; Harry T. Mangurian, Jr., Fondo para la Inmunoterapia contra la Leucemia; Instituto de Terapia Personalizada contra el Cáncer; Sociedad de Leucemia y Linfoma; Fundación para la Investigación del Linfoma; el Fondo de la Red de Instituciones Hermanas del MDACC; Fundación Miller; el Sr. Herb Simons; el Sr. y la Sra. Joe H. Scales; el Sr. Thomas Scott; Fundación Nacional para la Investigación del Cáncer; Fundación para la Investigación del Cáncer Pediátrico; Fundación Infantil William Lawrence y Blanche Hughes.

1. Preparación de los materiales bajo condiciones estériles (ver Materiales y Equipos Tabla) <ol><li> Preparar 3 L de tampón de PBS / EDTA suplementado con albúmina de suero humano (HSA) a una concentración final de 0,5% (w / v). </li><li> Preparar 1 L bolsa de solución de cloruro sódico de grado clínico 0,9% (NaCl) y 2 L de medio de cultivo celular GMP grado. </li><li> Preparar 60 nmol de CMV específica cóctel de antígeno peptídico mediante la reconstitución de un vial de CMV pp65 con 8 ml de agua estéril. </li><li> Traslado pp65 de CMV cóctel de péptidos en una bolsa de congelación volumen de 50 ml usando un / a Spike interconector Luer y sujetar con pinzas de bloqueo para evitar la posterior distribución de cóctel en el conjunto de tubos. Célula abierta conjunto de tubos de enriquecimiento (TS 500) en condiciones estériles. </li><li> El uso de soldador tubo estéril, conecte bolsa de congelación cóctel péptido en la conexión del tubo de la válvula 2 de conjunto de tubos TS 500. No abra la pinza bolsa de cóctel de péptidos en este momento. </li><li> Eliminar 1 x 10 9 TNC del producto de partida celular y suspender en tampón PBS / EDTA que contiene 2,5% de HSA a un volumen total de 50 ml. Inyectar el producto celular en una bolsa de transferencia de 150 ml. </li></ol> 2. Preparación y Uso de Automated Cell Sistema de Enriquecimiento (Ver Materiales y Equipos Tabla) <ol><li> Encienda el sistema de enriquecimiento de células (Figura 1B) y seleccione el programa &quot;CCS_IFN-γ enriquecimiento&quot;. Observar una interfaz de usuario que muestra pantallas con instrucciones y las imágenes que guían al operador a través del procedimiento. </li><li> Introduzca el parámetro &quot;Operador&quot; y &quot;Tubing Set P / N No&quot;. A continuación, instale el dispositivo Tubing Set 500 con el enriquecimiento de células automatizado según las instrucciones que aparecen en la pantalla del monitor interactivo. </li><li> Siga las instrucciones paso a paso que aparecen en la pantalla para conectar el medio y tampones en el dispositivo. Número de catálogo de registros y número de lote de los reactivos antes connecting al instrumento. </li><li> Después de la revisión final del conjunto de tubos, abra la abrazadera de la bolsa de cóctel de péptidos. Abra la bolsa de medio e iniciar el cebado automático del conjunto de tubos. </li><li> Después de que se complete la etapa de imprimación, complementar HSA (2,5%) en tampón de NaCl en la bolsa de depósito (200 ml) con la ayuda de la soldadora tubo estéril. Transferir el producto celular de partida en la &quot;bolsa de Aplicación&quot; usando el soldador tubo estéril. </li><li> Conecte CCS (IFN) los reactivos en un tubo respectivo a través de adaptadores. Introduzca el tiempo preferido para recoger una fracción de material celular antes del proceso de enriquecimiento. Revisar y verificar la veracidad de todos los datos / parámetros introducidos. Iniciar el proceso. </li><li> Antes del inicio del proceso de enriquecimiento de células automatizado, quite el control de calidad Bolsa (QCB, fracción original (ori) contiene aproximadamente 1,3 ml de cada 100 ml de contenido cámara diluida con tampón / EDTA PBS). Sellar el Banco Central de Qatar, pesar, y se almacena a 4 ° C. </li><li> Inicie el enrichmeproceso nt. Al final del proceso, las células diana se eluyeron con un volumen aproximado de tampón de elución de la bolsa de depósito. </li><li> Selle la no Target Cell Bolsa (NTCB, fracción negativa = neg) y Bolsa de la célula diana (TCB, positivo fracción = pos) y pesar cada bolsa. Los pesos serán utilizados más tarde para el cálculo de los números de células. </li><li> Inmediatamente después del procedimiento de enriquecimiento de recoger dos alícuotas por fracción para citometría de flujo análisis, y almacenar el resto de las muestras a 4 ° C. Utilice una alícuota de la muestra para la determinación del recuento de células y la otra alícuota de la muestra para el análisis de rendimiento de enriquecimiento (Tabla 1). </li><li> Retire el tubo del equipo del instrumento de enriquecimiento celular. Transferir el archivo de registro en una unidad USB para su uso futuro. NOTA: Todos los reactivos deben ser preparadas en condiciones estériles. Es muy recomendable el uso de una campana de bioseguridad de tipo II. Utilice producto celular aféresis de estado estacionario (no movilizaron) aislado a partir de una sanaCMV-seropositivos donantes para enriquecer las células T específicas de antígeno CMV. Sólo FDA licencia HSA se debe utilizar. El tampón para la preparación de células debe mantenerse a 19 ° C a 25 ° C como temperaturas ambiente bajas o más altas darán como resultado la pureza reducida y un rendimiento reducido de las células diana. </li></ol> 3. Cell Count Determinación <ol><li> Tome las alícuotas de QCB, NTCB y TCB para los recuentos de células como se muestra en la Tabla 1. Añadir CD45-VoBlue a cada alícuota (título 1:11) y se incuba en la oscuridad durante 10 min a 4 ° C. </li><li> Añadir 1,5 ml de solución de lisis de glóbulos rojos recién preparado (1x) a la fracción original y la fracción negativa, 450 l recién preparada sangre roja solución de lisis de células a la fracción positiva, e incubar todas las fracciones durante 15 min a RT. </li><li> Justo antes del análisis, añadir yoduro de propidio a una concentración final de 1 mg / ml (1: 100 dilución de 100 g / ml). Utilice contador celular automático para determinar el recuento de células y vihabilidad. Utilice dispositivo contador de células software recomendado para citometría de flujo análisis. Determinar los recuentos absolutos de leucocitos para las fracciones originales, negativos y positivos. NOTA: El recuento de células de leucocitos viables por ml de las muestras tomadas para el análisis de recuento de células se determina utilizando el software recomendado analizador de células. </li><li> Establecer la región como se muestra en la figura 2 (región 5, los leucocitos viables). Utilice la siguiente estrategia de compuerta para determinar el recuento de células. A leucocitos viable en la fracción original se muestra en la Figura 2. </li><li> Las regiones indicadas (Figura 2, 1-6) son jerárquicamente como sigue: 1: Tiempo de puerta → 2: las células individuales → 3: CD45 + células → 4: leucocitos (residuos no incluidos) → 5: leucocitos viables → 6: linfocitos viables </li><li> Repita los mismos pasos para determinar el recuento de células de fracciones positivas y negativas. Calcular el recuento de células de toda la fracciónteniendo en cuenta el factor de diluyente de la muestra y el volumen total de la fracción (Tabla 2). </li></ol> 4. Examen del Rendimiento Separación <ol><li> Lávese las alícuotas de QCB, NTCB y las células de la fracción TCB con pre-enfriado tampón PBS / EDTA / 0,5% de suero AB. Centrifugar las células a 300 xg durante 5 min a 4 ° C y aspirar el sobrenadante. </li><li> Resuspender las células en 100 l mezcla de tinción de anticuerpos fluorocromo que contiene: CD3-FITC, CD4-APC, CD8-APC-Vio770, CD14-PerCP, CD20-PerCP, CD45-VioBlue y anti-IFN-PE (título 1:11) y incubar en la oscuridad durante 10 min a 4 ° C. </li><li> Añadir 1 ml de solución de lisis de glóbulos rojos recién preparado (1x) y se incuba durante 15 min a TA. Centrifugar a 300 xg durante 5 min a 4 ° C y aspirar el sobrenadante. Resuspender las células en un volumen adecuado de PBS / EDTA Buffer / 0,5% de suero AB. </li><li> Añadir yoduro de propidio a una concentración final de 1 mg / ml Apenas antes del análisis (1: 100 dilutien de 100 g / ml). Realizar análisis de citometría de flujo para evaluar la pureza de la muestra. </li><li> Utilice la siguiente estrategia gating para calcular las células T CD3 + en la estrategia de apertura de puerta de leucocitos viable para la determinación de las células T CD3 + se muestra en la fracción positiva después de proceso de enriquecimiento CCS. Las regiones indicadas (Figura 3A y 3B, 1-6) están vinculados jerárquicamente de la siguiente manera: 1: Tiempo de compuerta → 2: las células individuales → 3: CD45 + células → 4: Células (residuos no incluidos) → 5: leucocitos viables → 6: Las células viables CD3 + población </li><li> Determinar las frecuencias de CD4 +, CD8 +, CD4 + células T después de proceso de enriquecimiento CCS (Tabla 2) IFN-γ + y CD8 + IFN-γ +. </li><li> Utilizar la estrategia gating para determinar las frecuencias de CD4 +, CD8 +, CD4 + IFN-γ + y CD8 + células T IFN-γ + f se muestran a continuacióno un (capturado) fracción positiva original y enriquecido después del proceso de CCS. Las regiones indicadas son jerárquicamente vinculados y nombrados de la siguiente manera: 1: Tiempo de compuerta → 2: las células individuales → 3: CD45 + células → 4: Células (residuos no incluidos) → 5: Los leucocitos viables → 6: Las células viables CD3 + → 7: CD4 + células → 7a: CD4 + IFN-γ + células (caja) → 8: CD8 + células → 8a: células CD8 + IFN-gamma + (caja) </li></ol> NOTA: Los primeros 6 regiones indicadas de los enlaces de jerarquía son los mismos que en la Figura 3, (1-6) y el último 2 regiones se muestran en la Figura 4 (6-8a).

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<li>Leen, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multicenter+study+of+banked+third-party+virus-specific+T+cells+to+treat+severe+viral+infections+after+hematopoietic+stem+cell+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Multicenter study of banked third-party virus-specific T cells to treat severe viral infections after hematopoietic stem cell transplantation.</a> Blood. 121 (26), 5113-5123 (2013).</li>
</ol>

Tanto MD Anderson Cancer Center y el Dr. Cooper tienen un interés financiero en ZIOPHARM Oncología, Inc., y Intrexon Corporation. El 7 de mayo de 2015, el Dr. Cooper fue nombrado Consejero Delegado en ZIOPHARM Oncología. Dr. Cooper es ahora un científico visitante en el MD Anderson. Dr. Cooper fundó y es propietaria InCellerate, Inc. tiene patentes con Sangamo BioSciences con nucleasas artificiales. Él consulta con Targazyme, Inc. (células madre antes americanas, Inc.), GE Healthcare, Ferring Pharmaceuticals, Fate Therapeutics, Janssen Pharmaceuticals, y Bristol-Myers Squibb. Él está en el Consejo Científico Asesor de Cellectis. Él recibe honorarios de Miltenyi Biotec.

Terapia adoptiva de células T ha surgido como una opción viable para el tratamiento de neoplasias malignas de células B 4. Su potencial terapéutico depende de la infusión el número deseado de células T específicas de antígeno diana que carecen de la senescencia replicativa 2. Esto se puede lograr mediante la clasificación de una población pura de células T específicas de antígeno de las células T expandidas de acuerdo con buenas prácticas de fabricación actuales. Dos procedimientos de clasificación...

Trasplante de células madre hematopoyéticas (HSCT) 1 se puede combinar con la terapia adoptiva de células T para mejorar el efecto injerto contra tumor y para proporcionar inmunidad frente a infecciones oportunistas 2. Generación de células T derivadas del donante de antígenos específicos para perfusión ha requerido históricamente personal calificado y uso de instalaciones especializadas que son GMP. La entrega de tales células T ha dado como resultado en la resolución de infecciones oportunistas 3, así como el tratamiento de la neoplasia maligna subyacente 4. Recientemente, los investigadores han demostrado que la transferencia adoptiva de tan sólo unos pocos miles de células T específicas del virus (~ 1 x 10 4 a 2,5 x 10 5 células / kg destinatario de peso corporal) puede tratar con éxito las infecciones por CMV oportunistas después de TCMH alogénico 5-9. Un número limitado de instalaciones GMP con los requisitos de fabricación expertos asociados y el alto costo asociado con la producción de células tiene, sin embargo, restracceso de los pacientes igido de terapias prometedoras de células T 10. Un enfoque para el aislamiento de células T específicas de antígeno se basa en los CCS utilizando un reactivo bi-específico para reconocer CD45 y IFN-γ. Como se muestra, esta metodología se puede utilizar para generar células T específicos de CMV clínico grado que emplean un dispositivo de CCS enriquecimiento de células automatizado (Figura 1B). Las células T-CMV específicos se generan mediante la incubación de péptidos solapantes de antígeno pp65 de CMV con células leukapheresis totales nucleares (CNC) de donantes CMV-seropositivos. Estos péptidos, que se muestran en el contexto de antígeno leucocitario humano (HLA), activan las células T-pp65 de CMV específica dentro de la TNC para secretar IFN-γ. Estas células T pueden ser &quot;capturados&quot; y magnéticamente separados. El funcionamiento del dispositivo de enriquecimiento de células de primera generación (Figura 1A) requiere personal especializado en el cultivo de células bajo condiciones GMP, y la coordinación de personal para llevar a cabo las múltiples sPTE necesarias para generar un producto &quot;capturado&quot;. El procedimiento normalmente requiere de 10 a 12 horas de funcionamiento continuo, y por lo tanto el personal probablemente necesitan trabajar más de dos turnos en las instalaciones de GMP. Estas limitaciones están ahora obvian por la aplicación de un dispositivo de segunda generación (mostrado en la Figura 1B). Este dispositivo se compromete enriquecimiento magnética, similar al dispositivo de primera generación, pero automatiza otros aspectos de la CCS en un enfoque unbreached. Esto reduce significativamente la carga sobre el equipo de GMP ya que la mayoría de los pasos se puede lograr sin supervisión por parte del personal. Además, puesto que el dispositivo funciona como un sistema cerrado, las células T específicas de antígeno pueden ser capturadas y procesadas en la mesa de trabajo, excepto las etapas implicadas en el aislamiento leucoféresis y preparación de materiales antes de iniciar el instrumento. Los detalles de la instrumentación completa y la funcionalidad de este dispositivo de enriquecimiento celular de segunda generación han sido pubcido 11. A continuación, describimos los pasos para enriquecer las células T-pp65 de CMV específica de un producto de aféresis en estado estacionario utilizando el sistema CCS enriquecimiento de células automatizado. Una vez aislado, estas células T específicos de CMV se pueden infundir inmediatamente en un paciente.

<table><tbody><tr><td>CliniMACS PBS/EDTA Bolsa de tampón de 3 L</td><td>Miltenyi Biotec GmbH</td><td>700-29</td><td></td></tr><tr><td>CliniMACS Prodigy Juego de tubos TS 500</td><td>Miltenyi Biotec GmbH</td><td>130-097-182</td><td></td></tr><tr><td>Bolsa de residuos de 5 L</td><td>Miltenyi Biotec GmbH</td><td>110-004-067</td><td></td></tr><tr><td>Sistema de captura de citoquinas CliniMACS (IFN-gamma)</td><td>Miltenyi Biotec GmbH</td><td>279-01</td><td></td></tr><tr><td>Albúmina (humana) 25%&nbsp;</td><td>Grifols</td><td>58516-5216-2</td><td></td></tr><tr><td>Interconector Luer/Spike</td><td>Miltenyi Biotec GmbH</td><td>130-018-701</td><td></td></tr><tr><td>Solución de NaCl al 0,9 % (1 L)</td><td>Miltenyi Biotec GmbH</td><td></td><td></td></tr><tr><td>MACS GMP PepTivator HCMV pp65</td><td>Miltenyi Biotec GmbH</td><td>170-076-109</td><td></td></tr><tr><td>Agua para preparaciones inyectables</td><td>Hospira, inc, Lake Forest, IL</td><td>NDC-0409-4887-10</td><td></td></tr><tr><td>Unidad de filtro MILLEX GV 0,22 &mu; m&nbsp;</td><td>Millipore</td><td>SLGV033RB</td><td></td></tr><tr><td>TexMACS GMP Bolsa mediana de 2 L</td><td>Miltenyi Biotec GmbH</td><td>170-076-306</td><td></td></tr><tr><td>Bolsa de transferencia, 150 ml (para material de partida celular)</td><td>Miltenyi Biotec GmbH</td><td>130-018-301</td><td></td></tr><tr><td>CryoMACS Bolsa de congelación 50</td><td>Miltenyi Biotec GmbH</td><td>200-074-400</td><td></td></tr><tr><td>60 ml Jeringas, estériles</td><td>BD, Laagstraat, Temse, Bélgica</td><td>309653</td><td></td></tr><tr><td>Producto de aféresis seropositiva CMV</td><td>Key Biologics, LLC, Memphis</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Flow Cytometry Materials</strong</td><td>>Fabricante</strong</td><td>>Número de catálogo</td><td></td></tr><tr><td>AB Serum, GemCell</td><td>Gemini Bio-Products, West Sacramento, EE. UU</td>. <td>100-512</td><td></td></tr><tr><td>CD3-FITC</td><td>Miltenyi Biotec GmbH</td><td>130-080-401</td><td></td></tr><tr><td>CD4-APC</td><td>Miltenyi Biotec GmbH</td><td>130-098-033</td><td></td></tr><tr><td>CD8-APC-Vio770</td><td>Miltenyi Biotec GmbH</td><td>130-098-065</td><td></td></tr><tr><td>CD14-PerCP</td><td>Miltenyi Biotec GmbH</td><td>130-098-072</td><td></td></tr><tr><td>CD20-PerCP</td><td>Miltenyi Biotec GmbH</td><td>130-098-077</td><td></td></tr><tr><td>CD45-VioBlue</td><td>Miltenyi Biotec GmbH</td><td>130-098-136</td><td></td></tr><tr><td>aIFN-&gamma;-PE, humano</td><td>Miltenyi Biotec GmbH</td><td>130-097-940</td><td></td></tr><tr><td>CD3-PE</td><td>Miltenyi Biotec GmbH</td><td>130-091-374</td><td></td></tr><tr><td>Solución de yoduro de propidio (100 &micro; g/ml)</td><td>Miltenyi Biotec GmbH</td><td>130-093-233</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Equipment</td><td>Fabricante</td><td>Número de catálogo</td><td></td></tr><tr><td>CliniMACS Prodigy Device&nbsp;</td><td>Miltenyi Biotec GmbH</td><td>200-075-301</td><td></td></tr><tr><td>Software V1.0.0.RC</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>MACSQuant Analyzer 10</td><td>Miltenyi Biotec GmbH</td><td>130-096-343</td><td></td></tr><tr><td>Software 2.4</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Centrífuga 5415R&nbsp;</td><td>Eppendorf AG</td><td>22331</td><td></td></tr><tr><td>Celómetro K2</td><td>Nexelom Bioscience, Lawrence, MA</td><td>LB-001-0016</td><td></td></tr><tr><td>Soldador de tubos estériles SCDIIB</td><td>Terumo Medical Corp., Elkton, MA</td><td>7811</td><td></td></tr></tbody></table>

enriquecimiento de la célula automatizada de citomegalovirus células t específicas para aplicaciones clínicas utilizando el sistema de citoquinas de captura

Automated Cell Enrichment of Cytomegalovirus-specific T cells for Clinical Applications using the Cytokine-capture System

La transferencia adoptiva de células T de patógenos específicos se puede utilizar para prevenir y tratar las infecciones oportunistas como citomegalovirus (CMV), la infección se producen después de un trasplante hematopoyético alogénico de células madre. Las células T-virales específicos de donantes alogénicos, incluidos los donantes de terceros, se pueden propagar ex vivo en el cumplimiento de las buenas prácticas de fabricación actuales (cGMP), que emplean a rondas repetidas de estimulación antígeno impulsado para propagar selectivamente las células T deseados. La identificación y aislamiento de células T específicas de antígeno también pueden llevarse a cabo basándose en el sistema de captura de citoquinas de las células T que han sido activadas para secretar interferón gamma (IFN-γ). Sin embargo, la aplicación humano generalizado del sistema de captura de citoquinas (CCS) para ayudar a restaurar la inmunidad ha sido limitado como el proceso de producción es mucho tiempo y requiere un operador experto. El desarrollo de un dispositivo de enriquecimiento celular de segunda generación, como CliniMACs Prodigy ahorapermite a los investigadores a generar células T-virales específicos utilizando un sistema automatizado menos, mano de obra intensiva. Este dispositivo separa magnéticamente etiquetados células a partir de células no marcadas que utilizan la tecnología de células activadas por la clasificación magnética para generar productos clínica de grado, se ha diseñado como un sistema cerrado y se puede acceder y operar en la mesa de trabajo. Se demuestra el funcionamiento de este nuevo dispositivo de enriquecimiento de células automatizado para la fabricación de células T-pp65 de CMV específica obtenidas a partir de un producto de aféresis de estado estacionario obtenida de un donante seropositivo CMV. Estas células T aisladas pueden ser infundidas directamente en un paciente bajo supervisión reglamentaria institucional y federal. Todos los pasos de procesamiento de bio incluyendo la eliminación de las células rojas de la sangre, la estimulación de las células T, la separación de las células T específicas de antígeno, purificación y lavado están completamente automatizados. Los dispositivos tales como esta plantean la posibilidad de que las células T para aplicación humana pueden ser fabricados fuera de las buenas prácticas de fabricación dedicada (GMP) Las instalaciones y en su lugar se produzcan en instalaciones bancarias de sangre donde el personal puede supervisar protocolos automatizados para producir varios productos.

En este estudio, se utilizó una célula automatizado enriquecimiento Sistema CCS para la producción automatizada de las células T-pp65 de CMV específica. Las células T-CMV específicos fueron enriquecidos a partir de tres productos de células de aféresis. El producto de aféresis en estado estacionario se cosechó más de 2 horas de un donante CMV-seropositivos y generó 10 10 células nucleares totales (CNC). 10 9 TNC se activa entonces con péptidos derivados de pp65 de CMV (60 nmol) durante 4 hr y la cé...

El objetivo de este protocolo es fabricar células T de grado clínico específicas para patógenos utilizando un dispositivo de enriquecimiento celular de segunda generación, automatizado y de sobremesa que incorpora un sistema cerrado de captura de citocinas y no requiere personal dedicado ni el uso de una instalación GMP. Las células T específicas del citomegalovirus pp65 generadas pueden administrarse directamente a los pacientes.

Enriquecimiento de la célula automatizada de citomegalovirus células T específicas para aplicaciones clínicas utilizando el Sistema de citoquinas de captura

The adoptive transfer of pathogen-specific T cells can be used to prevent and treat opportunistic infections such as cytomegalovirus (CMV) infection ...

El objetivo de este procedimiento es aislar linfocitos T específicos del antígeno de grado clínico para la inmunoterapia adoptiva mediante un sistema de captura de citoquinas. Esto se logra primero incubando células mononucleares obtenidas de un donante positivo para CMV con un panel de péptidos solapados derivados de PP65 del CMV para activar los linfocitos T. A continuación, los linfocitos T activados, específicos del antígeno, positivos para CD45 y que expresan IFN gamma, se aíslan mediante captura de citoquinas.El número y la pureza de las células T específicas contra el CMV se evalúan luego mediante citometría de flujo. En última instancia, se puede obtener un alto porcentaje de células T específicas contra el CMV positivas para CD cuatro y CD ocho que expresan IFN gamma utilizando este sistema de captura de citocinas. Las principales ventajas de esta técnica frente a los métodos existentes son que es completamente automatizada y que no se requiere una instalación que opere cumpliendo con las buenas prácticas de fabricación para aislar las células T de grado clínico capturadas.Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la terapia celular adoptiva, como

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Research

Investigación

JoVE Journal

Immunology and Infection

Inmunología e Infección

Células tumorales circulantes son aislados de la sangre de pacientes con cáncer sin causar daño celular. El aislamiento de las células tumorales se logra usando una superficie bimolecular de E-selectina además de anticuerpos contra marcadores epiteliales. Un recubrimiento de nanotubos específicamente promueve la adhesión de las células cancerosas que resulta en purezas de captura altas.

Rápido aislamiento de células tumorales viables de circulación de muestras de sangre del paciente

Este video describe el enriquecimiento de células T del bazo de un ratón mediante selección negativa utilizando un separador magnético. La técnica consiste en dirigirse a las otras células de la muestra para su agotamiento mediante el uso de anticuerpos o ligandos dirigidos contra antígenos específicos de la superficie celular.

Enriquecimiento de células T: una técnica para aislar células T de una población de células mixtas mediante separación magnética

Las células tumorales circulantes (CTC) son pronóstico en varios tipos de cáncer metastásico. Este manuscrito describe el sistema de patrón oro CellSearch (CSS) plataforma enumeración CTC y destaca los errores de clasificación errónea comunes. Además, dos protocolos adaptados se describen, por definido por el usuario caracterización marcador de CTCs y CTC enumeración en modelos de ratones preclínicos de metástasis que utilizan esta tecnología.

Adaptación de semiautomatizado de células tumorales circulantes (CTC) Ensayos para aplicaciones clínicas y de investigación preclínica

Este protocolo es recuperar y preparar dianocitos rara de una mezcla con las células de distintos antecedentes caracterización genética molecular a nivel unicelular. Calidad de ADN es igual a las células no tratadas y permite aplicación unicelular (ambos proyección base y objetivo análisis).

Destino celular genoma pre-enriquecimiento y toda amplificación sola célula caracterización aguas abajo

Aquí, presentamos un flujo de trabajo integrado para identificar rasgos fenotíricos y moleculares que caracterizan las células tumorales circulantes (CTCs). Combinamos la inmunostalización en vivo y la micromanipulación robótica de los CTCs individuales y agrupados con técnicas basadas en una célula para el análisis y la evaluación de la capacidad de la metastasis-siembra.

Micromanipulación de células tumorales circulantes para análisis molecular descendente y evaluación potencial metastásica

Aquí, presentamos un protocolo para realizar el aislamiento y expansión de células mononucleares de sangre periférica-inducidas por citoquinas CD3+CD56+ células asesinas e ilustrar su efecto de citotoxicidad contra las células cancerosas hematológicas y sólidas mediante el uso de un sistema de citometría de flujo de diagnóstico in vitro.

Aislamiento y expansión de células T asesinas inducidas por citoquinas citotóxicas para el tratamiento del cáncer

El chip microfluídico clínico es una importante técnica de análisis biomédico que simplifica el preprocesamiento clínico de las muestras de sangre de los pacientes y tiñe inmunofluorescentemente las células tumorales circulantes (CTC) in situ en el chip, lo que permite la rápida detección e identificación de una sola CTC.

Plataforma de chip microfluídico clínico para el aislamiento de células tumorales circulantes versátiles

Las células tumorales circulantes (CTC) son fundamentales para el estudio de la progresión y la metástasis del cáncer. Este artículo presenta un protocolo integrado de alto rendimiento para el enriquecimiento de CTC y la secuenciación de CTC única, mejorando la eficiencia de captura y la pureza de CTC al tiempo que reduce la contaminación y los costos de secuenciación, avanzando así en la investigación oncológica de precisión y las aplicaciones clínicas.

Tecnología de clasificación de células tumorales circulantes de alto rendimiento basada en microfluidos y secuenciación de células individuales

Este protocolo describe un método escalable para la expansión de productos de Terapias Celulares Adoptivas (ACT), concretamente células T del Receptor de Antígenos Quiméricos (CAR)-T y células Killer inducidas por citocinas (CIK), utilizando dispositivos de expansión rápida permeable a gas (G-Rex), demostrando un crecimiento eficiente y robusto en un entorno clínicamente relevante.

Generación eficiente y rápida de células asesinas inducidas por CAR-T e citocinas en dispositivos escalables por GMP

Se presenta un protocolo para producir antígenos específicos de células T de ratón usando la transducción...

Transducción retroviral de receptores de células T en ratones las células T

Aprenda a aislar células T específicas de citomegalovirus de grado clínico mediante un sistema automatizado de captura de citoquinas. Este método permite producir células funcionales sin necesidad de instalaciones GMP.

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