Name: Visualización de condrocitos Intercalación y direccional proliferación a través de análisis celular clonal Zebrabow en el cartílago de la embrionaria Meckel (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-10-21T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 40 s
Description: Aprende a visualizar la intercalación de condrocitos en el cartílago craneofacial de Danio rerio mediante análisis clonal con Zebrabow. Este protocolo permite observar dinámicas celulares durante la formación del órgano.

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Los autores agradecen a Alex Schier para compartir amablemente la línea transgénica Zebrabow-M, Geoffrey Burns, para el vector pDEST y Renee Ethier-Daigle para un excelente cuidado de las instalaciones y líneas de peces. FINANCIACIÓN: Estamos muy agradecidos por el generoso apoyo financiero de NIDCR RO3DE024490 y Hospitales Shriners para niños (ECL) y becas de formación post-doctoral de los Hospitales Shriners para Niños (LR y YK).

Cuidado y Uso Comité Hospital General de Massachusetts Institucional Animal (IACUC) aprobó todos los procedimientos previstos en el número de protocolo # 2010N000106. Esto está de acuerdo con la Asociación para la Evaluación y Acreditación de directrices Laboratorio Animal Care International (AAALAC). 1. Los reactivos y materiales de preparación <ol><li> Preparar 1 l de 50X medio E3 embrión (Ver Tabla 1) y preparar 1 L de medio embrión 1X E3 (Ver Tabla 2). </li><li> Preparar medio de embrión E3 con N-feniltiourea (PTU) mediante la adición de 30 mg de PTU a 1 L de 1X E3. Stir O / N para asegurar que el PTU se haya disuelto completamente. Guarde a temperatura ambiente. </li><li> Para preparar la solución de pronasa, diluir 150 ml de pronasa (0,5 mg / ml) con 15 ml de 1X E3. Esta cantidad es suficiente para un plato de Petri 1. Utilizar inmediatamente. </li><li> Prepare la solución de metilcelulosa. <ol><li> Preparar la solución E3-tricaína mezclando 75 ml de 0,2% con 25 ml tricaínade 1X E3. Hervir 3 g de metilcelulosa en 75 ml de la solución E3-tricaína. </li><li> Completar el volumen final a 100 ml con solución E3-tricaína. La solución de metilcelulosa al final es viscosa y opaca con un tinte amarillento. Almacenamiento: RT protegido de la luz. </li></ol></li><li> El tamoxifeno acción y solución de inducción <ol><li> Preparar 5 mM solución madre tamoxifeno por disolución de 4-hidroxitamoxifeno en etanol 100%. Tienda de stock a -80 ° C. </li><li> Preparar la dilución fresca de tamoxifeno a la concentración deseo en 1X E3 para obtener la solución de inducción. ¡CUIDADO! Por favor, consulte la hoja antes de su uso. </li></ol></li><li> Preparar 1 L de 0,2% tricaína según la Tabla 3. </li><li> Obtener diapositivas confocal. Pega cuatro cubreobjetos (18 x 18) juntos para formar un bloque a continuación, colocar los bloques en un 2 x 24 60 cubreobjetos 2 cm entre sí para permitir el montaje del embrión en el centro. </li></ol> 2. Preparación de embriones <ol><li> Las líneas transgénicas. <br/&gt; NOTA: Zebrabow-M fue un generoso regalo de laboratorio de Alex Schier. </li><li> SOX10: ERT2-Cre NOTA: Generar el vector dirigido pDestTol2- SOX10: ERT2-Cre usando métodos de clonación molecular estándar y obtiene comercialmente recombinación tecnología de clonación. <ol><li> Combinar 5 &#39;clon de entrada (pENTR5&#39;- sox10p) que contiene el promotor de 7.2Kb SOX10, un clon media Gateway (PME-ERT2-Cre), y un 3&#39; clon de entrada (pENTR3&#39;-poliA) en una reacción LR con destino lente vector pDestTol2- α-cristalina: YFP. </li><li> Purificar constructo pDestTol2- SOX10: ERT2-Cre. Co-inyectar la construcción purificada (100 ng / l) con Tol2 ARNm transposasa (50 ng / l) en embriones WT (F0) en la fase de una célula. </li><li> Pantalla fundadores F0 adultos para la transmisión de la línea germinal basan en una fuerte fluorescencia amarilla en embriones F1. </li></ol></li><li> SOX10: ERT2-Cre; Zebrabow-M <ol><li> Outcross la Zebrabow-Mlínea (2.1.1) con el SOX10: línea transgénica ERT2-Cre. </li><li> Seleccionar embriones que presentan una fuerte expresión RFP ubicua y el marcador lente YFP y crecer hasta los adultos. </li></ol></li></ol> 3. Embryo Collection <ol><li> Configurar varios pares de SOX10: ERT2-Cre; Zebrabow-M pez cebra transgénico 17:00-18:00 del día 1. </li><li> Al día siguiente, tire de los divisores de la mañana y recoger los huevos alrededor del mediodía. </li><li> Transferirlos a cápsulas Petri y añadir 15 ml de la solución de pronasa a dechorionate los embriones. </li><li> Incubar los embriones de 1 a 5 minutos hasta aproximadamente el 60% de los embriones han sido dechorionated. Detener la reacción por decantación la solución de pronasa y lavar los embriones 3-4 veces con medio fresco E3. </li><li> Incubar los embriones dechorionated en E3 a TA O / N y dejar que ellos desarrollan para alcanzar la etapa 10 somitas. Incubar 50-60 embriones por el embrague para evitar diferente crecimiento del desarrollo. </li></ol&gt; 4. Tratamiento <ol><li> Compruebe la etapa de desarrollo de los embriones en un microscopio de campo claro para asegurar que están en la etapa de 10 somitas. </li><li> El uso de un microscopio de fluorescencia con una proteína fluorescente (RFP) filtro rojo, aislar a los embriones de color rojo brillante. </li><li> Proceder a la inducción de la recombinación Cre-mediante la adición de 10 mM de solución hydroxytamoxifen a la placa de Petri e incubar los embriones aislados en 28,5 ° C durante 3 hr. </li><li> Decantar la solución tamoxifeno y lavar los embriones varias veces con el E3. ¡CUIDADO! deseche la solución tamoxifeno en un recipiente especial desechos biológicos. </li><li> Incubar los embriones a 28,5 ° CO / N. </li><li> Cuando los embriones son aproximadamente los 28-29 etapa somitas (alrededor de 24 horas después de la fecundación), incubar los embriones a 28,5 ° C en el E3-PTU solución de aquí en adelante. NOTA: PTU es aquí utilizado para inhibir la formación de melanóforos en los embriones en desarrollo. Este tratamiento es necesarioevitar la distorsión de la señal de fluorescencia por melanóforos auto-fluorescente. </li><li> Incubar los embriones a 28,5 ° C </li></ol> Selección 5. Embriones <ol><li> Para visualizar las estructuras craneofaciales plenamente desarrollados, seleccione los embriones a los 4 días después de la fecundación de la intensidad de la señal roja y Cre positividad marcador expresión (amarilla en la retina). </li><li> Anestesiar al embriones con solución E3 / 0,015% tricaína. La anestesia se confirma cuando no hay movimientos activos o actividad de la aleta se observa cuando pinchar suavemente el embrión. </li></ol> 6. Montaje del Embrión en Metilcelulosa <ol><li> Transferir el embrión seleccionado para la imagen en una placa de Petri que contiene una gota de metilcelulosa y embalsamar suavemente el embrión con metilcelulosa. </li><li> En una diapositiva confocal limpia, coloque una gota de metilcelulosa fresco y montar el embrión dentro de la gota usando una punta microloader. Posición embrión teniendo dorsal precaución de no tocarel embrión directamente. </li><li> Cubrir el embrión montado con un cubreobjetos de 25 x 25 y ajuste la posición del embrión si es necesario mediante la manipulación del cubreobjetos. </li><li> El embrión está ahora listo para la imagen. </li></ol> 7. Análisis por microscopía de fluorescencia <ol><li> Utilice el objetivo 20x seca lente (apertura numérica 0,75; tamaño del agujero de alfiler 2,0 micras) para enfocar el embrión. </li><li> Pulse el botón L100 en el microscopio y seleccionar los canales en el software. </li><li> Seleccione el botón de configuración confocal y haga clic en &#39;auto&#39; y seleccione los siguientes canales antes de cerrar la ventana: Ch1: PPC, Ch2: GFP, Ch3: RFP o mCherry </li><li> Encienda CH2 y CH3 antes de hacer clic en el botón &quot;eliminar interlock &#39;. Haga clic en &quot;juego&quot; para comenzar la exploración. </li><li> Concéntrese en estructura de interés, que es mejor hacerlo iniciando con marco ½ / seg y de alto voltaje (HV) 150 y luego ajustar la configuración en consecuencia hasta que la calidad de imagen deseada es achieved. En el PP sería más brillante que otros colores, por lo tanto, ajustar el HV. Cambie la posición de Z a encontrar tanto YFP y células positivas RFP. </li><li> Una vez configurado con los ajustes, la captura de la imagen de su embrión. Guarde su imagen en el formato confocal formato de software de imagen y TIFF para el procesamiento de imágenes en cada canal de división. </li><li> A continuación, para obtener imágenes de la PPC, apague CH2 y CH3 y encienda Ch1. Re-ajustar la configuración como en el paso 5 sin cambiar el área de enfoque. NOTA: PPC puede ser muy difícil de detectar debido a la señal de fondo en el canal azul que pueden ser eludidas mediante el ajuste del tamaño del agujero de alfiler. Un tamaño del agujero de alfiler grande permite una mejor detección de la fluorescencia mediante la reducción de ruido de señal / fondo. Sin embargo, un agujero de alfiler grandes reducirán efecto confocal, comprometer la calidad de imagen. Por lo tanto, se requiere un ajuste cuidadoso de los ajustes para lograr la calidad de imagen deseada y la intensidad. </li><li> Captura de la imagen y guardarla en el formato tanto (software confocal y TIFF) para procesamiento de imágenes. Las imágenes pueden ser procesados ​​utilizando el software común de procesamiento de imágenes para fusionar capas y mejorar los ajustes de color como se describe por Pan y sus colegas 8. </li></ol>

<ol><li>Dougherty, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distinct+requirements+for+wnt9a+and+irf6+in+extension+and+integration+mechanisms+during+zebrafish+palate+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Distinct requirements for wnt9a and irf6 in extension and integration mechanisms during zebrafish palate morphogenesis.</a> Development. 140, 76-81 (2013).</li>
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<li>Ricks, J. E., Ryder, V. M., Bridgewater, L. C., Schaalje, B., Seegmiller, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Altered+mandibular+development+precedes+the+time+of+palate+closure+in+mice+homozygous+for+disproportionate+micromelia%3A+an+oral+clefting+model+supporting+the+Pierre-Robin+sequence%5BTitle%5D)+AND+%22Teratology%22%5BJournal%5D)">Altered mandibular development precedes the time of palate closure in mice homozygous for disproportionate micromelia: an oral clefting model supporting the Pierre-Robin sequence.</a> Teratology. 65, 116-120 (2002).</li>
<li>Javidan, Y., Schilling, T. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+cartilage+and+bone%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+cell+biology%22%5BJournal%5D)">Development of cartilage and bone.</a> Methods in cell biology. 76, 415-436 (2004).</li>
<li>McCarthy, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pdgfra+protects+against+ethanol-induced+craniofacial+defects+in+a+zebrafish+model+of+FASD%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Pdgfra protects against ethanol-induced craniofacial defects in a zebrafish model of FASD.</a> Development. 140, 3254-3265 (2013).</li>
</ol>

Los autores declaran que no tienen intereses financieros contrapuestos.

Líneas transgénicas azules y fotoconvertible Alcian como se ha descrito anteriormente complementa entre sí para definir el intrincado proceso de cartílago y desarrollo de los huesos. Sin embargo, la migración celular en vivo y la organización durante la organogénesis mucho tiempo se ha planteado la hipótesis e indirectamente demostrado pero nunca visualizó. Línea transgénica Zebrabow-M junto con un cartílago Cre específica permite la observación en vivo simultánea de todos estos eventos distintos implicados en la formac...

Desarrollo craneofacial requiere, interacciones celulares y tisulares moleculares complejas para impulsar la proliferación celular, la migración y la diferenciación 1,2, 3. Este proceso estrechamente regulado y complejo está sujeto a perturbaciones genéticas y ambientales, de tal manera que las deformidades craneofaciales se encuentran entre las malformaciones congénitas más comunes 1-9. Si bien las intervenciones quirúrgicas siguen siendo la base del tratamiento de anomalías craneofaciales, la comprensión de la base del desarrollo es esencial para innovar terapias futuras. Por lo tanto, el estudio de la morfogénesis y los mecanismos en la convergencia y la extensión y la integración de células proporciona nuevos conocimientos sobre la formación del esqueleto craneofacial 1. Craneal migrar y la cresta neural pueblan el primer arco faríngeo, procesos mandibulares luego formar pares que se extienden para formar el cartílago de Meckel, que prefigura la mandíbula. Morfogénesis of cartílago de Meckel requiere organización condrocitos mediante la proliferación de dirección, la polarización celular y 1,10 diferenciación. Sin embargo, la complejidad de la organización de los condrocitos en el crecimiento y la extensión del cartílago de Meckel sigue siendo poco clara. Comprender el comportamiento celular dinámica es fundamental para comprender las malformaciones congénitas que afectan al tamaño de la mandíbula, como fenotipos mandíbula hipoplasia 11. Embriones de pez cebra ofrecen muchas ventajas del desarrollo y genéticos para el estudio detallado de los cartílagos morfogénesis de Meckel. Su maleabilidad genética, la transparencia, la ex vivo y el rápido desarrollo son poderosas ventajas de préstamos bien para la observación del movimiento celular y la organización de imágenes en vivo 6. El uso de herramientas de trazado de linaje, como SOX10: línea transgénica Kaede, nosotros y otros han delineado los orígenes de la cresta neural del esqueleto craneofacial embrionaria 1,5. Using del SOX10: ERT2-Cre con el ubi: línea transgénica Zebrabow-M, ahora es posible explorar los detalles de los movimientos celulares durante el desarrollo craneofacial. El Zebrabow-M, es una línea transgénica diseñado con el promotor de ubiquitina de conducir la expresión de diferentes fluoróforos, cada uno flanqueado por sitios lox 8. El fluoróforo predeterminado Zebrabow-M es rojo, expresando RFP. Después de la inducción de la expresión de Cre, la Zebrabow-M construir recombina y células expresan una combinación de diferentes fluoróforos (RFP, CFP y YFP) la creación de expresión multi-espectral en el embrión. Todas las células hijas que dividen a partir de las células marcadas después del evento de recombinación son entonces clonalmente etiquetados, de modo que las poblaciones de células que se derivan de diferentes progenitores yuxtapuestas están etiquetados clonalmente. Por este etiquetado celular clonación, la proliferación de células y la migración con la resolución clonal pueden ser seguidos (Figura 1 y 2).

<table><tbody><tr><td>Pronase</td><td>Roche Ciencias de la Vida 10165921001</td><td></td><td>Prepare 500 &mu; l alícuotas de stock a 50 mg/ml</td></tr><tr><td>Metilcelulosa</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M0262</td><td></td></tr><tr><td>PTU (N-Feniltiourea)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P7619</td><td></td></tr><tr><td>Tricaína</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E10521</td><td></td></tr><tr><td>4-HydoxyTamoxifeno</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T176</td><td></td></tr><tr><td>24 x 60 cubreobjetos</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-548-5P</td><td></td></tr><tr><td>18 x 18 cubreobjetos</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-540A</td><td></td></tr><tr><td>25 x 25 cubreobjetos</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-540C</td><td></td></tr><tr><td>pENTR5'-TOPO TA Cloning Kit Life</td><td>technologies&nbsp;</td><td>K591-20</td><td></td></tr><tr><td>Kit de clonación pENTR/D-TOPO&NBSP;</td><td>Life Technologies</td><td>K2400-20</td><td></td></tr><tr><td>pENTR3'-pA</td><td>Tol2Kit</td><td>302</td><td></td></tr><tr><td>pDEST</td><td></td><td></td><td>Regalo de Geoffrey Burns labs</td></tr><tr><td>Microscopio de campo claro&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microscopio fluorescente&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microscopio</td><td></td><td></td><td></td>confocal</tr><tr><td>Software</td><td></td><td></td><td></td> de procesamiento de imágenes</tr></tbody></table>

visualización de condrocitos intercalación y direccional proliferación a través de análisis celular clonal zebrabow en el cartílago de la embrionaria meckel

Visualization of Chondrocyte Intercalation and Directional Proliferation via Zebrabow Clonal Cell Analysis in the Embryonic Meckel&#8217;s Cartilage

Desarrollo de las estructuras craneofaciales vertebrados requiere una coordinación precisa de la migración celular, la proliferación, adhesión y diferenciación. Patrones del cartílago de Meckel, un primer arco faríngeo derivado, implica la migración de las células de la cresta neural craneal (CNC) y la división progresiva, la proliferación y la organización de los condrocitos diferenciados. Varios estudios han descrito la migración CNC durante la morfogénesis inferior de la mandíbula, pero los detalles de cómo los condrocitos alcanzar organización en el crecimiento y la extensión del cartílago de Meckel sigue sin estar claro. El SOX10 restringido y químicamente inducido Cre recombinasa recombinación mediada genera permutaciones de proteínas fluorescentes distintas (RFP, YFP y PPC), creando de este modo un etiquetado multi-espectral de células progenitoras y su progenie, lo que refleja poblaciones clonales distintas. Usando confocal fotografía time-lapse, es posible observar los condrocitos behavio durante el desarrollo del cartílago de Meckel el pez cebra. Etiquetado celular multiespectral permite a los científicos para demostrar la extensión de los condrocitos de Meckel. Durante la fase de extensión del cartílago de Meckel, que prefigura la mandíbula, los condrocitos se intercalan para efectuar la extensión, ya que se apilan en una fila en capas de una sola célula organizada. El fracaso de este proceso de intercalación organizado para mediar en la extensión de células proporciona la explicación mecanicista celular para mandíbula hipoplásica que observamos en las malformaciones de la mandíbula.

Visualización cartílago tradicional por enteros manchas azules montaje Alcian ha sido muy valioso para observar el desarrollo de cartílago de Meckel y de uso común para la visualización definitiva celular organización 12 (Figura 1). A fin de analizar los condrocitos en desarrollo las horas extraordinarias, el linaje de rastreo utilizando SOX10: Kaede líneas transgénicas nos ha permitido estudiar la migración celular, la convergencia y la extensión en embriones vivos 2,12 <...

Organización celular de los huesos craneofaciales mucho tiempo se ha planteado la hipótesis pero nunca visualizada directamente. Etiquetado de células multi-espectral y en vivo vivo imágenes permite visualizar el comportamiento celular dinámico en el maxilar inferior del pez cebra. Aquí, detallamos el protocolo que manipulamos Zebrabow peces transgénicos y observamos directamente intercalación celular y los cambios morfológicos de los condrocitos en el cartílago de Meckel.

Visualización de condrocitos Intercalación y direccional proliferación a través de análisis celular clonal Zebrabow en el cartílago de la embrionaria Meckel

Development of the vertebrate craniofacial structures requires precise coordination of cell migration, proliferation, adhesion and differentiation. ...

El objetivo general del siguiente experimento es visualizar la intercolación y extensión de los condrocitos mediante el análisis clonal de células de zebrafish con sistema Bow. Esto se logra generando una línea M de zebrafish SOX10 ERT2-CreERT para obtener una recombinación específica del tejido en el cartílago facial craneal y embriones para el análisis clonal. A continuación, los embriones se tratan con tamoxifeno en el estadio de 10 somitas durante tres horas para inducir el proceso de recombinación.Luego, los embriones se seleccionan según la expresión de la actividad CRE y una fuerte expresión de fluorescencia roja o RFP, y los embriones se montan para la obtención de imágenes del cartílago craneofacial. Los resultados muestran un análisis celular multiespectral de los condrocitos craneofaciales basado en imágenes confocales. La principal ventaja de esta técnica frente a métodos existentes como la tinción S en azul o líneas transgénicas como so y GFP o SOX y kde, es que zebra bow nos permite observar y seguir específicamente poblaciones celulares clonales implicadas en la formación de un órgano.Para preparar la recolección de embriones el día uno, configure varias parejas de m

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Research

Investigación

JoVE Journal

Developmental Biology

Biología del Desarrollo

Se describe una técnica experimental para el tratamiento de defectos condrales en la articulación de la rodilla del conejo. La implantación de condrocitos autólogos sembrados en una matriz es un método bien aceptado para la remodelación y reparación de lesiones del cartílago articular que proporcionan resultados satisfactorios a largo plazo. Matrix asistida por el trasplante de condrocitos autólogos (MACT) ofrece un método de implantación estandarizada y clínicamente establecida.

Matrix asistida por trasplante de condrocitos autólogos para la remodelación y reparación de defectos condrales en un modelo de conejo

La reparación del cartílago representa un desafío médico no resuelto y los enfoques basados en células para diseñar el cartílago articular humano son una solución prometedora. Aquí, describimos los hidrogeles biomiméticos tridimensionales (3D) como una herramienta ideal para la expansión y maduración de los condrocitos articulares humanos.

3D hidrogel andamios para articular condrocitos cultura y cartílago Generación

Presentamos un protocolo para diseccionar y cultivar huesos metatarsianos murinos embrionarios de día 15 (E15). Este modelo ex vivo altamente fisiológico de osificación endocondral proporciona condiciones más cercanas a la situación in vivo que las células en cultivo monocapa o 3D y es una herramienta vital para investigar el crecimiento y desarrollo óseo.

Cultura de murinos embrionarias Metatarsianos: Un modelo fisiológico de osificación endocondral

Hemos desarrollado dos conjuntos de rastreo de combinaciones en Rosa26 tdtomato (ubicuamente expresado en todas las células) / Cre (expresa específicamente en condrocitos) ratones: uno con 2.3Col1a1-GFP (específico para los osteoblastos) y uno con inmunofluorescencia (específico de células óseas). Los datos demuestran la transformación directa de los condrocitos en las células óseas.

Co-localización de los marcadores de linaje de la célula y la señal de tomate

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Un ensayo de transferencia de puntos de 5 mC cuantificando el nivel de metilación de ADN de la distredenciación de condrocitos<em&gt; In Vitro</em

Se presenta un método para evaluar la extensión espacial de las lesiones o la muerte de la célula en la superficie articular de articulaciones murinas intactas después de la aplicación de cargas mecánicas controladas o impactos. Este método puede utilizarse para investigar cómo osteoartritis, factores genéticos o los regímenes de carga diferentes afectan la vulnerabilidad de los condrocitos en situ .

Visualización en tiempo real y análisis de la lesión de condrocitos debido a cargas mecánicas en explantes de cartílago murino intacta

Este método describe el uso del modelo de ratón R26R-Confetti (Confeti) para estudiar tejidos mineralizados, cubriendo todos los pasos desde la estrategia de cría hasta las adquisiciones de imágenes. Se incluye un protocolo general que se puede aplicar a todos los tejidos blandos y un protocolo modificado que se puede aplicar a los tejidos mineralizados.

Rastreo Genético Clonal usando el ratón de confeti para estudiar tejidos mineralizados

Presentamos un método para investigar la organización espacial de los condrocitos en el anillo fibroso del disco intervertebral utilizando un método de seccionamiento óptico.

Seccionamiento óptico y visualización del disco intervertebral desde el desarrollo embrionario hasta la degeneración

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Aislamiento de condrocitos y condroprogenitores mediante adhesión de fibronectina y ensayo migratorio

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Análisis de pez cebra larvas esquelético Integridad del músculo con el colorante azul de Evans

Aprende a visualizar la intercalación de condrocitos en el cartílago craneofacial de Danio rerio mediante análisis clonal con Zebrabow. Este protocolo permite observar dinámicas celulares durante la formación del órgano.

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