Name: Totalmente automatizada de dispositivos de microfluidos para centrífuga Ultrasensible detección de proteínas a partir de sangre entera (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-04-16T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 58 s
Description: Aprende a detectar proteínas con sensibilidad femtomolar en sangre completa mediante un dispositivo microfluídico automatizado con nanofibras de dióxido de titanio integradas en plataforma lab-on-a-disc.

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Este trabajo fue apoyado por la Fundación Nacional de Investigación de Corea (NRF) subvenciones (2013R1A2A2A05004314, 2012R1A1A2043747), una subvención de la tecnología de la salud R coreana + D Proyecto, Ministerio de Salud y Bienestar Social (A121994) y el SII-R020-D1 financiado por el Gobierno de Corea.

NOTA: Se extrajo sangre de individuos sanos y se recogió en un tubo de recogida de sangre. escrito el consentimiento informado se obtuvo de todos los voluntarios. 1. La fabricación de TiO2 NF Mat <ol><li> Preparación de solución de precursor 22 <ol><li> Disolver 1,5 g de tetraisopropóxido de titanio (TTIP) en una mezcla de etanol (99,9%, 3 ml) y ácido acético glacial (3 ml) y se mezcla la solución a temperatura ambiente (25 ° C) durante 30 min en un agitador magnético. </li><li> Disolver 11% en peso de polivinilpirrolidona (PVP) en 3,64 g de etanol (99,9%) y se agita la solución a 65 ° C durante 1 hora usando un agitador magnético de la placa caliente. </li><li> Combinar y agitar las dos soluciones a 65 ° C durante 4 horas en un agitador magnético de la placa caliente. </li></ol></li><li> electrospinning <ol><li> Cargar la solución preparada en una jeringa conectada a una aguja de acero inoxidable de 200 micras Diame interiorter. Verter la solución directamente en la jeringa después de retirar el émbolo. </li><li> Introducir la solución constantemente a una velocidad de flujo de 0,3 ml / h durante 10 min sobre una oblea de Si (2 cm x 2 cm) se coloca sobre un sustrato conectado a tierra a un voltaje DC elevado (15 kV). Durante el electrospinning, ajustar la distancia entre la aguja y el sustrato de tierra a 10 cm. </li></ol></li><li> La calcinación de la estera de NF <ol><li> Coloca la base de NF en un horno y aumentar la temperatura hasta 500 ° C con una tasa de rampa de 3 ° C / min en condiciones de alto vacío (5 x 10 -5 torr). </li><li> Mantener la temperatura a 500 ° C durante 3 hr. Enfriar la temperatura de las muestras a la RT (25 ° C) en el horno. </li></ol></li></ol> 2. Integración de TiO2 NF Mat en una centrífuga de discos de microfluidos <ol><li> La fabricación de un disco <ol><li> Utilice el software de diseño 3D (por ejemplo, SolidWorks o similar) para representar cámaras, canales, o válvulas de cada capa de disco. Convertir los archivos de diseño a código informático de control numérico (CNC) utilizando el código de generación de software (por ejemplo, Edgecam o similar). Utilizar los softwares de acuerdo con el manual de instrucciones 23,24 Nota:. Las dimensiones de los canales típicos utilizados en este dispositivo son de 1,0 mm x 0,3 mm (anchura x profundidad). </li><li> Abra el software de funcionamiento de la máquina fresadora CNC (por ejemplo., DeskCNC o similar) y cargar el código CNC para el software operativo y haga clic en el siguiente orden: &quot;AUTO&quot; -&gt; &quot;G CÓDIGO ABIERTO&quot; -&gt; Seleccione el código CNC generado. </li><li> Fije la placa de PC en la máquina fresadora CNC: utilizar placas de 1 mm de PC para la capa superior y placas de PC 5 mm para la capa de disco. Hacer funcionar la máquina fresadora CNC para cortar cada capa del disco haciendo clic en el botón &quot;START&quot;. </li></ol></li><li> Transferencia de TiO 2 NF estera en el disco<ol><li> Colocar un sustrato de silicio y una pequeña placa de Petri que contiene 40 l de (tridecafluoro-1,1,2,2-tetrahydrooctyl) -1-triclorosilano en una cámara de vacío bajo vacío durante 30 min. El fluorosilano se vaporiza y se reviste sobre el sustrato. </li><li> Mezclar polidimetilsiloxano (PDMS) pre-polímero con un agente de curado en una relación de 10: 1 y desgasificar en una cámara de vacío. Spin-capa de PDMS sobre un sustrato de silicio a 650 rpm durante 60 segundos. </li><li> Curar los PDMS revestidas sobre el sustrato de silicio en un horno a 65 ° C durante 10 min para lograr un estado adherente. NOTA: Tiempo de curado se puede variar dependiendo de las condiciones ambientales, y la fuerza de adhesión puede ser probada mediante un ensayo de pegajosidad utilizando un reómetro. </li><li> La transferencia de la estera de TiO2 NF preparado por electrospinning y calcinación en la silicona PDMS-revestidas utilizando una pinza. A continuación, aplicar manualmente una presión conforme en el TiO2 NF estera transferido con un objeto plano (por ejemplo., Portaobjetos de vidrio) y extraer el objeto. Poneresta muestra en el horno a 65 ° C durante 4 horas o a 80 ° C durante 1 hora para curar la capa de PDMS completamente. </li><li> Escudo cámaras de reacción de unión en el disco con 20 l el / curado mezcla de agente de PDMS (10: 1), que actúa como una capa adhesiva para fijar TiO 2 NF estera en el disco. </li><li> Dispensar 50 l de etanol (99,9%) sobre el TiO 2 NF estera en la capa de PDMS, cortar la estera de NF con una perforación de orificios de 6 mm de diámetro, y transferir el corte TiO 2 NF estera a las cámaras de reacción de unión recubiertas con 20 l de los PDMS en el paso anterior. NOTA: En este paso, el etanol será útil para separar el corte TiO2 NF estera del sustrato de Si. </li><li> Incubar el TiO2 NF esterilla integrada en el disco en el horno a 65 ° C durante 4 horas o a 80 ° C durante 1 hora para curar el PDMS por completo. </li></ol></li><li> Modificación de la superficie del TiO2 NF estera en el disco <ol><li> Prepare 1% v / v de (3-glicidoxipropil) silano methyldiethoxy (GPDES) en etanol (99,9%). </li><li> Se trata el disco integrada TiO2 NF estera con plasma de oxígeno a 140 W, el flujo de oxígeno de 50 sccm de 180 seg. Dispensar 100 l de solución de GPDES en cada estera de nanofibras y se incuba a RT (25 ° C) durante 2 hr. </li><li> Lavar el sustrato brevemente por la dispensación de etanol (99,9%) usando una botella de lavado, a continuación, eliminar el etanol completamente invirtiendo el disco y secante contra una toallita limpia. De curado a 80 ° C durante 1 hr. Lavar dos veces con etanol (99,9%) de la misma manera como se indicó anteriormente, para eliminar las moléculas adsorbidas físicamente GPDES y no unidos. </li><li> Secar con una corriente de nitrógeno, seca al vacío. NOTA: El disco puede ser almacenado en un recipiente sellado a temperatura ambiente (25 ° C) hasta su uso. </li></ol></li><li> Inmovilización de anticuerpos sobre la superficie <ol><li> Hacer una solución de 200 g / ml de anticuerpos de captura (anti ratón monoclonalhsCRP humano o de ratón monoclonal anti-cTnI) diluyendo los anticuerpos con un tampón de fosfato salino tamponado (PBS) (pH 7,4). Dispensar 5 l de la solución sobre cada estera de NF en un disco utilizando una micropipeta. Ver la lista de materiales para obtener más información acerca de los anticuerpos. </li><li> Mantener los discos en una cámara humidificada y se incuba a 37 ° C durante 4 h. Lavar los anticuerpos recubiertos NF estera con tampón PBS-BSA al 0,1%. Llenar la cámara con 100 l de tampón de lavado utilizando una micropipeta, eliminar el tampón por aspiración o decantación. Por último, invertir el disco y borrar contra un trapo limpio, y luego montar el disco. </li></ol></li><li> conjunto de discos <ol><li> Dibujar el diseño del disco en la cinta adhesiva de doble lado con un programa de CAD (por ejemplo, AutoCAD o similar). Cargar el diseño CAD para el plotter de corte. </li><li> Cortar la cinta adhesiva de doble cara utilizando el plotter de corte. Pelar una capa de protección de la cinta adhesiva de doble y adjuntar it en la parte superior de la capa de disco. Despegar la otra capa de protección y unir la capa superior de la capa de disco. </li><li> Cargar el disco montado de forma preliminar en la máquina de prensado y alinear con precisión las capas superior / adhesivo / disco utilizando las marcas de alineación en cada capa para conectar cada una de las válvulas, canales y cámaras. Aplique presión conforme el uso de la máquina de prensado. </li></ol></li></ol> 3. Inmunoensayo <ol><li> Llenar las cámaras con tampón BSA-PBS al 1% utilizando una micropipeta y se incuba el disco a 37 ° C durante 1 hr. Eliminar el tampón por aspiración utilizando una micropipeta. Realice este paso para bloquear los sitios sin reaccionar y para reducir la adsorción no específica de la proteína en un disco. </li><li> Lavar dos veces con 0,1% BSA-PBS por llenado y aspiración de las cámaras utilizando una micropipeta. NOTA: En esta etapa el disco se puede almacenar a 4 ° C hasta su uso. </li><li> Carga de 10 l de sangre entera antígeno-enriquecida o suero libre de PCR para la detección de la PCR en el disco utilizando un micropipettmi. Para hacer los gráficos de calibración, utilizar concentraciones de CRP de 1 pg / ml a 100 ng / ml; y cTnI de 10 pg / ml a 100 ng / ml. Nota: debido a los mayores niveles de CRP en la sangre total, que es generalmente en el rango de M, se utilizó suero libre de CRP para demostrar el bajo límite de detección del dispositivo. </li><li> Girar el disco a 3600 rpm (391 xg) durante 60 segundos para separar las células de sangre rojas. </li><li> Abrir la válvula # 1 por la irradiación con láser, y la transferencia de 4 l de plasma sobrenadante a la cámara que contiene 8 l de la detección de anticuerpos conjugados con HRP haciendo girar el disco a 2400 rpm durante 3 seg. NOTA:. Los procesos generales de actuación de la válvula y la visualización de la operación de disco se describen en detalle en un informe anterior 21 </li><li> Aplicar un modo de mezcla (15 Hz s -1, 15 °) durante 5 segundos para la unión de los anticuerpos de proteínas y detección. </li><li> Abrir la válvula # 2, y transferir la mezcla preparada en la etapa 6 a la cámara de reacción de unión (2400 rpm, 3 seg). A continuación, aplicar un modo de mezcla (60 Hz s -1, 2 °) durante 20 minutos para lograr una inmunoreacción entre la mezcla y los anticuerpos de unión en los TiO 2 NFS. Después de la reacción, la válvula abierta # 3 y transferir la mezcla residual a la cámara de residuos (2.400 rpm, 10 sec). </li><li> Transferir el tampón de lavado (600 l) a la cámara de reacción de unión mediante la apertura de la válvula # 4 y hace girar el disco (2400 rpm, 4 segundos). A continuación, aplicar un modo de mezcla (30 Hz s-1, 30 °) durante 120 segundos para lavar las federaciones nacionales de TiO2 en la cámara. </li><li> Se lavan las federaciones nacionales de TiO2 dos veces más siguiendo misma condición del paso 3.8, y eliminar el tampón de lavado residual por completo haciendo girar el disco a 2.400 rpm durante 20 segundos. A continuación, cierre la válvula # 5. </li><li> Para la reacción quimioluminiscente, aplicar un modo de mezcla (30 Hz s -1, 2 °) durante 1 min después de la transferencia de la solución de sustrato quimioluminiscente a la cámara de reacción de unión mediante la apertura de la válvula # 6 e hilaturael disco a 2400 rpm durante 10 seg posteriormente. </li><li> Transferir la solución de sustrato reaccionado a las cámaras de detección mediante la apertura de la válvula # 7 y girando el disco a 2400 rpm durante 10 s. </li><li> Medir las señales de quimioluminiscencia de la solución de sustrato reaccionado usando un tubo fotomultiplicador (PMT) módulo equipado sistema de detección. NOTA: El sistema de detección es una máquina hecha a la medida usando las siguientes partes: motor paso a paso, los componentes óptico-mecanicos, platinas de traslación, y PMT disponible en el mercado. Las partes y óptico-motor paso a paso se ensamblan para mantener el dispositivo, y el motor puede girar el disco. La detección se realiza por PMT fija en las partes óptico-mecanicos, y se encuentra por encima de las cámaras de detección del dispositivo. Mediante la manipulación del motor paso a paso, las cámaras de detección están alineados justo debajo de la zona de detección de PMT. </li></ol>

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</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

El ensayo en TiO 2 NF disco integrado es una técnica rápida, de bajo costo y conveniente para la detección ultrasensible de proteínas de baja abundancia presentes en muy bajo volumen de sangre. Esta técnica tiene la ventaja de usar pequeños volúmenes de muestra (10 l) y es susceptible para el análisis de múltiples muestras simultáneamente. Esto proporciona un gran potencial como un dispositivo de multiplexación inmunoensayo. El dispositivo tiene la ventaja de que no requiere etapas de pretratamiento de la mue...

Varias plataformas para el diagnóstico de la enfermedad se han desarrollado sobre la base de materiales a nanoescala 1,2 tales como nanocables, 3 nanopartículas, nanotubos de 4, 5 y nanofibras (NFS) 6-8. Estos nanomateriales ofrecen excelentes perspectivas en el diseño de nuevas tecnologías para bioensayos altamente sensibles debido a sus propiedades físico-químicas únicas. Por ejemplo, las nanofibras de óxido de zinc mesoporoso se han utilizado para la detección sensible femto-molar de biomarcadores de cáncer de mama. 9 Recientemente, los nanomateriales a base de dióxido de titanio (TiO 2) han sido exploradas para aplicaciones bioanalíticos 10 teniendo en cuenta su estabilidad química, 11 desnaturalización de la proteína insignificante , 12 y biocompatibilidad. 13 Además, los grupos hidroxilo en la superficie de TiO 2 facilitar la modificación química y la unión covalente de biomoléculas. 14,15 modelado TiO 2 thin películas 16 o TiO 2 nanotubos 17 se han utilizado para mejorar la sensibilidad de detección de una proteína diana por aumento de la superficie; sin embargo, el proceso de fabricación es bastante complejo y requiere un equipo caro. Por otra parte, las federaciones nacionales electrospun están recibiendo atención debido a su gran área de superficie, así como proceso sencillo y fabricación de bajo costo; 18,19 sin embargo, la característica frágiles o suelto de la electrospun TiO2 NF tapete hace que sea difícil de manejar y integrar con los dispositivos de microfluidos. 6,20 por lo tanto, las esteras de TiO2 NF rara vez se utilizan en aplicaciones de bioanálisis, particularmente aquellos que requieren condiciones de lavado agresivos. En este estudio, para superar estas limitaciones, hemos desarrollado una nueva tecnología para la transferencia de la electrospun NF esteras sobre la superficie de cualquier sustrato diana mediante la utilización de una capa de adhesivo de polidimetilsiloxano delgada (PDMS). Furthermore, hemos demostrado con éxito la integración de electrospun TiO 2 NF esteras en un dispositivo de microfluidos centrífuga de policarbonato (PC). El uso de este dispositivo, una detección de alta sensibilidad, totalmente automatizado e integrado de la proteína C-reactiva (CRP), así como la troponina I cardíaca (cTnI) se logró en 30 min a partir de solamente 10 l de sangre entera. 21 Debido a la combinación ventajas de las propiedades de los NF y la plataforma centrífuga, el ensayo exhibieron una amplia gama dinámica de seis órdenes de magnitud de 1 pg / ml (~ 8 fM) a 100 ng / ml (~ 0,8 pM) con un límite inferior de detección de 0,8 pg / ml (~ 6 fM) para la PCR y un rango dinámico de 10 pg / ml (~ 0,4 pM) a 100 ng / ml (~ 4 nM) con un límite de detección de 37 pg / ml (~ 1,5 pM) de cTnI. Estos límites de detección son ~ 300 y ~ 20 veces menor en comparación con sus correspondientes resultados de ELISA convencionales. Esta técnica se podría aplicar para la detección de cualquier proteína objetivo, con los anticuerpos apropiados. En general, este dispositivo de coULD contribuyen en gran medida en el diagnóstico in vitro y ensayos bioquímicos ya que puede detectar cantidades raras de proteínas diana con gran sensibilidad incluso de cantidades muy pequeñas de muestras biológicas, por ejemplo, 10 l de sangre entera. A pesar de que sólo demostró la detección de proteínas de suero usando ELISA en este estudio, la tecnología de transferencia e integración de electrospun NFS con dispositivos de microfluidos podría aplicarse más ampliamente en otras reacciones bioquímicas que requieren una gran área superficial para la alta sensibilidad de detección.

<table><tbody><tr><td>Oblea de Si</td><td>LG SILTRON</td><td>Oblea pulida, grado de prueba</td><td>Diámetro (mm) = 150, orientación = < 100>, dopante = boro, RES (Ohm-cm) = 1 - 30, espesor (&mu; m) = 650 - 700</td></tr><tr><td>Policarbonato (PC)&nbsp;</td><td>Daedong Plástico</td><td>PCS#6900</td><td>Espesor (mm) = 1 y 5&nbsp;</td></tr><tr><td>Tetraisopropóxido de titanio, 98%,</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>205273</td><td></td></tr><tr><td>Polivinilpirrolidona, Mw = 1.300.000</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>437190</td><td></td></tr><tr><td>Ácido acético</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>320099</td><td></td></tr><tr><td>Etanol anhidro</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>459836</td><td></td></tr><tr><td>Tridecafluoro-1,1,2,2-tetrahidrooctilo)-1-triclorosilano</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>448931</td><td></td></tr><tr><td>PDMS y agente de curado</td><td>Dow Corning</td><td>SYLGARD 184</td><td></td></tr><tr><td>GPDES</td><td>Gelest Inc</td><td>SIG5832.0&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Etanol</td><td>J T Baker</td><td></td><td></td></tr><tr><td>FE-SEM</td><td>FEI</td><td>Nova NanoSEM</td><td></td></tr><tr><td>Espectroscopía de fotoelectrones de rayos X</td><td>ThermoFisher</td><td>K-alpha</td><td></td></tr><tr><td>Máquina de modelado 3D</td><td>M& I Laboratorio CNC, Corea</td><td></td><td>Fresadora CNC</td></tr><tr><td>Máquina dispensadora de cera</td><td>Hanra Precision Eng. Co. Ltd., Corea</td><td></td><td>Cinta</td></tr><tr><td>adhesiva de doble cara</td> personalizada <td>FLEXcon, EE. UU.</td><td>DFM 200 transparente 150 POLY H-9 V-95</td><td></td></tr><tr><td>Plotter de corte</td><td>Graphtec Corporation, Japón</td><td>Graphtec CE3000-60 MK2</td><td></td></tr><tr><td>Barnizadora</td> giratoria <td>MIDAS</td><td>SPIN-3000D</td><td></td></tr><tr><td>Horno (calcinación)</td><td>R. D. WEBB COMPANY</td><td>WEBB 99</td><td></td></tr><tr><td>Reómetro (prueba de pegajosidad)</td><td>Thermo Scientific</td><td>Haake MARS&nbsp; III - Paquete</td><td></td>ORM</tr><tr><td>Sistema de plasma de oxígeno</td><td>FEMTO</td><td>CUTE</td><td></td></tr><tr><td>Ratón monoclonal antihumano hsCRP</td><td>Hytest Ltd., Finlandia</td><td>4C28</td><td>(clon # C5)</td></tr><tr><td>Ratón monoclonal anti-cTnI</td><td>Hytest Ltd., Finlandia</td><td>4T21</td><td>(clon # 19C7)</td></tr><tr><td>HRP conjugado cabra policlonal anti-hsCRP</td><td>Abcam plc., MA</td><td>ab19175</td><td></td></tr><tr><td>HRP ratón monoclonal conjugado anti-cTnI</td><td>Abcam plc., MA</td><td>ab24460</td><td>(clon # 16A11)</td></tr><tr><td>hsCRP</td><td>Abcam plc., MA</td><td>ab111647</td><td></td></tr><tr><td>cTnI</td><td>Fitzgerald, MA</td><td>30-AT43</td><td></td></tr><tr><td>Albúmina bovina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A7906</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Amresco Inc</td><td>E404</td><td></td></tr><tr><td>Tubos de extracción de sangre</td><td>BD vacutainer</td><td>367844</td><td>K2 EDTA 7,2 mg más tubos de recogida </td></tr><tr><td>SuperSignal ELISA femto</td><td>Invitrogen</td><td>37074</td><td></td></tr><tr><td>Lector de placas multietiqueta modular</td><td>Perkin Elmer</td><td>Envision 2104</td><td></td></tr><tr><td>Máquina operativa de disco</td><td>Hanra Precision Eng. Co. Ltd., Corea</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tubo fotomultiplicador personalizado (PMT)</td><td>Hamamatsu Photonics</td><td>H1189-210</td><td></td></tr><tr><td>AutoCAD</td><td>AutoDesk</td><td>versión 2012</td><td>Software</td></tr><tr><td>de diseño SolidWorks Software CAD 3D&nbsp;</td><td>SOLIDWORKS Corp.</td><td>Versión 2013</td><td>Software de diseño 3D,Edgecam</td></tr> <tr><td></td><td>Vero software</td><td>versión 2009.01.06928</td><td>Software de generación de código</td></tr><tr><td>DeskCNC</td><td>Carken Co.</td><td>versión 2.0.2.18</td><td>Software de la fresadora CNC</td></tr></tbody></table>

totalmente automatizada de dispositivos de microfluidos para centrífuga ultrasensible detección de proteínas a partir de sangre entera

Fully Automated Centrifugal Microfluidic Device for Ultrasensitive Protein Detection from Whole Blood

El ensayo de inmunoabsorción ligado a enzimas (ELISA) es un método prometedor para detectar pequeñas cantidades de proteínas en muestras biológicas. Los dispositivos que proporcionan una plataforma para reducir el volumen de muestra y el tiempo de ensayo, así como la automatización completa, son necesarios para su uso potencial en el diagnóstico en el punto de atención. Recientemente, hemos demostrado la detección ultrasensible de proteínas séricas, proteína C reactiva (PCR) y troponina I cardíaca (cTnI), utilizando un laboratorio en un disco compuesto por esteras nanofibrosas (NF) deTiO2. Mostró un amplio rango dinámico con sensibilidad de detección femtomolar (fM), a partir de un pequeño volumen de sangre total en 30 min. El dispositivo consta de varios componentes para la separación, medición, mezcla y lavado de sangre que están automatizados para mejorar la sensibilidad a partir de volúmenes de muestra bajos. Aquí, en el vídeo de demostración, mostramos los protocolos experimentales y los conocimientos para la fabricación de NFs, así como del disco, su integración y el funcionamiento en el siguiente orden: procesos de preparación de la estera de TiO2 NF; impresión por transferencia de la estera TiO2 NF en el disco; modificación de la superficie para las reacciones inmunitarias, el montaje y el funcionamiento del disco; Detección en disco y resultados representativos para inmunoensayo. El uso de este dispositivo permite el análisis multiplexado con un consumo mínimo de muestras y reactivos. Dadas las ventajas, el dispositivo debería encontrar uso en una amplia variedad de aplicaciones y resultar beneficioso para facilitar el análisis de proteínas de baja abundancia.

El uso de este protocolo, un dispositivo de microfluidos centrífuga totalmente automatizado para la detección de proteínas de la sangre total se preparó con una alta sensibilidad. Las esteras de TiO2 NF fueron preparados por los procesos de electrospinning y calcinación. Con el fin de fabricar el FNs de diámetro deseado, la morfología y espesor, electrospinning condiciones tales como velocidad de flujo, tensión, y el tiempo de hilado fueron optimizados. Cuando las condiciones ...

Este protocolo demuestra cómo lograr la sensibilidad de detección femtomolar de proteínas en 10 μL de sangre total en 30 min. Esto se puede lograr mediante el uso de esteras nanofibrosas electrohiladas integradas en un laboratorio en un disco, que ofrece una gran área de superficie, así como una mezcla y un lavado efectivos para mejorar la relación señal-ruido.

Totalmente automatizada de dispositivos de microfluidos para centrífuga Ultrasensible detección de proteínas a partir de sangre entera

Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) is a promising method to detect small amount of proteins in biological samples. The devices providing a platform ...

El objetivo general de este procedimiento es mejorar la sensibilidad de detección de ELISA utilizando nanofibras naturales hiladas. Este video demuestra cómo lograr la sensibilidad de detección femtomolar de proteínas en 10 microlitros de muestras de sangre completa en 30 minutos. En una plataforma de laboratorio en un disco, la fuerza centrífuga se utiliza para transferir el líquido a través de las cámaras, y todo el proceso está completamente automatizado.La sensibilidad de detección podría mejorarse en gran medida mediante la integración de nanofibras. Sin embargo, el problema es que la nanofibra es muy frágil y difícil de manipular. En este vídeo, presentamos un proceso sencillo para unir frágiles esteras de nanofibras de dióxido de titanio en un disco de plástico.Para fabricar esteras de nanofibras de dióxido de titanio sobre sustrato de silicona mediante electrohilado, el sustrato de silicona primero se silaniza, se recubre con PDMS y se precura. A continuación, se transfiere una estera de nanofibras a este PDMS precurado y este producto se perfora para producir una pieza circular para su fijación. Cubra la cámara de reacción con una gota de PDMS como adhesivo y fije la pieza

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Bioingeniería

Microfluídica digital es una técnica caracterizada por la manipulación de las gotas discretas (~ NL - mL) en una matriz de electrodos en la aplicación de campos eléctricos. Es muy adecuado para llevar a cabo rápida y secuencial, en miniatura ensayos bioquímicos automatizados. Aquí, se presenta una plataforma capaz de automatizar varios pasos de procesamiento de proteómica.

Microfluídica digitales para el procesamiento automatizado de Proteómica

Un dispositivo de microfluidos automatizado fue desarrollado para la circulación de enriquecimiento de células nucleadas de sangre periférica mediante lisis de los eritrocitos que garantiza el aislamiento de la muestra de alta calidad sin pérdida de células.

Automatizada de sangre de microfluidos Protocolo de lisis para el Enriquecimiento de la circulación las células nucleadas

Este video muestra un protocolo de inmunoensayo de electroforesis capilar para detectar un biomarcador de proteínas asociado con la esclerosis lateral amiotrófica (ELA) a partir de plaquetas de la sangre humana. La confirmación de la presencia de la proteína biomarcador de ELA se logra mediante la separación basada en el tamaño de las proteínas plaquetarias seguida de una detección quimioluminiscente.

Un inmunoensayo de electroforesis capilar para la detección de biomarcadores de proteínas

Este video muestra un sistema microfluídico para un inmunoensayo basado en nanopartículas magnéticas. El sistema de detección utiliza un dispositivo microfluídico que incorpora una trampa magnética dentro de sus canales. Se introducen en los canales inmunocomplejos preformados, compuestos por nanopartículas magnéticas recubiertas de antígenos unidas a anticuerpos primarios y secundarios conjugados con peroxidasa. Los inmunocomplejos se capturan en la trampa magnética porosa al aplicar un campo...

Un inmunoensayo basado en nanopartículas magnéticas que utiliza un dispositivo microfluídico

En este artículo se presenta un chip de microfluidos para el análisis de células individuales. Permite la cuantificación de las proteínas intracelulares, enzimas, cofactores, y segundos mensajeros por medio de ensayos fluorescentes o inmunoensayos.

Un chip de microfluidos para el análisis químico versátil de células individuales

Este protocolo detalla un ensayo diseñado para medir la quimiotaxis de neutrófilos humanos a partir de una gotita de sangre entera con robusta reproducibilidad. Este enfoque evita la necesidad de la separación de neutrófilos y requiere sólo unos pocos minutos de ensayo de tiempo de preparación. El chip de microfluidos permite la medición repetida de la quimiotaxis de neutrófilos en el tiempo en los bebés o pequeños mamíferos, donde el volumen de la muestra es limitado.

Plataforma de microfluidos para la medición de quimiotaxis de neutrófilos a partir de sangre entera sin procesar

Este protocolo describe una arquitectura de sistema para realizar separaciones automatizadas de partículas de pequeño volumen (0,15-1,5 ml) utilizando un dispositivo microfluídico, y analiza métodos para optimizar el rendimiento y el funcionamiento del dispositivo acustofluídico.

Una plataforma de microfluidos para el procesamiento de precisión de pequeño volumen de la muestra y su uso para Tamaño partículas biológicas separadas con un Microdevice acústica

Aquí, demostramos un método de producción simple para microgotas de agua en aceite (W/O) monodispersas de tamaño controlable utilizando un dispositivo microfluídico centrífugo de base capilar. Este método requiere solo un pequeño volumen de muestra y permite una producción de alto rendimiento. Esperamos que este método sea útil para análisis bioquímicos y celulares rápidos.

Dispositivo de microfluidos centrífuga basada en capilar para la Formación Tamaño-controlable de monodisperso microgotas

Este artículo proporciona el método detallado de realizar un ensayo rápido de quimiotaxis de neutrófilos integrando el aislamiento de neutrófilos a bordo de la sangre entera y la prueba de quimiotaxis en un único chip microfluídico.

Un método todo-en-chip para el análisis rápido de la quimiotaxis de neutrófilos directamente de una gota de sangre

El microfluídico digital basado en electrohumección es una técnica que utiliza un cambio impulsado por voltaje en el ángulo de contacto aparente de una gota de volumen de microlitros para facilitar su manipulación. La combinación de esto con perlas magnéticas funcionalizadas permite la integración de múltiples operaciones de unidades de laboratorio para la preparación de muestras y la identificación de patógenos utilizando el ensayo inmunoabsorbente ligado a enzimas (ELISA).

Plataforma de microfluídico digital basada en electrohumección para el ensayo automatizado de inmunoabsorbentes ligados a enzimas

La microfluídica es una poderosa herramienta para el desarrollo de pruebas diagnósticas. Sin embargo, a menudo se requieren equipos y materiales costosos, así como técnicas laboriosas de fabricación y manipulación. Aquí, detallamos el protocolo de fabricación de un dispositivo microfluídico acrílico para inmunoensayos magnéticos basados en micro y nanopartículas en un entorno de bajo costo y fácil de usar.

Microfresado de control numérico computarizado de un dispositivo acrílico microfluídico con una restricción escalonada para inmunoensayos magnéticos basados en nanopartículas

Aprende a detectar proteínas con sensibilidad femtomolar en sangre completa mediante un dispositivo microfluídico automatizado con nanofibras de dióxido de titanio integradas en plataforma lab-on-a-disc.

Totalmente automatizada de dispositivos de microfluidos para centrífuga Ultrasensible detección de proteínas a partir de sangre entera (Video) | JoVE Journal

Totalmente automatizada de dispositivos de microfluidos para centrífuga Ultrasensible detección de proteínas a partir de sangre entera

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