Name: Determinación de Biofilm Iniciación, el virus de las células infectadas por bacterias y hongos (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-07-06T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 33 s
Description: Aprende a evaluar la adherencia de Staphylococcus aureus y Candida albicans a monocapas de células HeLa infectadas con HSV. Este método permite cuantificar interacciones entre virus, bacterias y hongos en el inicio de biofilms.

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Este proyecto fue apoyado por la Oficina de Investigación y Programas Patrocinados (ORSP) de la Universidad del Medio Oeste, y la Facultad de Medicina Dental de la Universidad del Medio Oeste-Illinois (CDMI).

1. HSV Cepas y Manipulación Nota: Recombinante la no propagación de HSV-1 (KOS) gL86 y HSV-2 (KOS) 333gJ - con el reportero de la actividad de beta-galactosidasa utilizado fueron proporcionados por V. Twiari 36,37. <ol><li> Utilice virus de un solo lote y se almacena a -80 ° C, a una proporción de 1: 1 de medio de Eagle modificado por Dulbecco (DMEM) con suero bovino fetal al 20% (FBS) y leche descremada hasta su uso. Antes del almacenamiento mucho viral, determinar la concentración de virus por o-nitrofenil-β-D-galactopiranósido (ONPG) y 5-bromo-4-cloro-3-indolil-β-D-galactopiranósido (X-Gal) ensayo. </li><li> Determinar la viabilidad del virus y la multiplicidad de infección (MOI) por tinción con X-Gal para cada ensayo experimental usando el ensayo de la entrada del virus reportero, tal como se describe anteriormente (figura 1) 14. </li><li> Diluir el virus (Opt-MEM) para MOI deseada. Fijar monocapas (paraformaldehído; 0,5 ml / pocillo) antes de la tinción. Coloque los controles de la viabilidad del virus en un microti separadater placa en paralelo con placas de ensayo polimicrobiana. </li></ol> Manejo células HeLa 2. 299 <ol><li> Crecer a 37 ° C, 5% de CO 2 en DMEM con 4,5 g / l de glucosa, 10% inactivado por calor suero fetal bovino (FBS), gentamicina (50 mg / ml) y L-glutamina. células de paso a 80% de confluencia con una solución de tripsina (ácido etilendiaminotetraacético, EDTA 0,53 M; 0,05% de tripsina; 5 ml / frasco). </li></ol> 3. C. Manipulación albicans Nota: C. albicans obtenidos a partir de una fuente de laboratorio clínico se almacena a -80 ° C en Remmel leche descremada 2x medio. <ol><li> Cultura congelado Stock en Sabouraud Dextrosa Medio (37 ° C). Después de 24 horas la subcultura C. albicans sobre medio Fungisel (37 ° C; 48 hr) para su uso. </li><li> Generar tubo germinal (GT) (formas recoger colonias representativas, 3 ml de FBS; 3 h; 37 ° C; Abs 600, 0,3). Después de la incubación, lavar GT (HBSS; 2x; 4.000 xg). Añadir GT lavado para HBSS calentado (37 y# 176; C; 0,32 Abs 600). formas GT debería ser el 99% de las células observadas según lo determinado por conteo de hemocitómetro. </li><li> Hacer suspensiones forma de levadura (FA) de acciones por recoger colonias representativas Fungisel (HBSS, 3 ml; 0,32 Abs 600). Contar el número de formas de YF / ml al microscopio utilizando un hemocitómetro. formas de fiebre amarilla deben ser del 99% de las células observadas según lo determinado por conteo de hemocitómetro. </li><li> Hacer trabajo stock fúngica (250 l de GT o YF social en 25 ml de HBSS; 37 ° C; 10 5 UFC / ml) </li></ol> 4. S. Manipulación aureus <ol><li> Tienda S. aureus ATCC 25923 (-80 ° C; Remmel descremada leche 2x). Cultura en agar sangre de carnero (5%; 37 ° C; 24 h). Recoger colonias y traslado al manitol sales de medio plazo de 2 días para la acción (37 ° C; 18 h). </li><li> Hacer S. aureus suspensión de acciones (3 ml de HBSS; 1,32 Abs 600; 10 8 UFC / ml) <ol><li> Hacer trabajar S. aureus acciones (100 lde las acciones en 25 ml de HBSS; 10 5 CFU / ml). </li></ol></li></ol> 5. Candida y S. aureus Suspensiones <ol><li> Hacer mixta C. albicans y S. suspensión aureus (250 YF l o GT de valores y 100 l de S. aureus de valores en 25 ml de HBSS). </li></ol> 6. Ensayo polimicrobiana Biofilm <ol><li> Y placas de semillas 96 con 200 l de 2 x 10 5 HeLa células / ml (85% de nivel de confluencia). Placas de roca (30 - 45 min; 37 ° C) antes de la incubación (37 ° C; 5% de CO2; 18 h). Lavar las monocapas (1x; Opt-MEM) a continuación de la semilla con el HSV (HSV-1 (KOS) gL86 o HSV-2 (KOS) 33 GJ - en 100 l Opt-MEM; MOI 50 y 10). Incubar las placas (3 hr; 37 ° C; 5% de CO 2). Utilice sólo una cepa viral por día. </li><li> Lavar monocapas infectadas (1x; salina tamponada con fosfato (PBS) con Mg 2 y Ca 2; 100 l). Reemplazar PBS con HBSS caliente dejando 25 &amp; #181; l en cada pocillo. <ol><li> Añadir YF, GT y / o S. aureus suspensiones de trabajo (100 l; diana a células ratio = 5: 1; n = 16). tal como se indica en la Tabla 1 (Incubar las placas estáticas; 30 min; 37 ° C; 5% de CO 2). </li></ol></li><li> Después de la incubación, aspirar una columna en un momento inmediatamente rellenado con 300 l de PBS con Mg + 2 y Ca + 2. Repita este paso dos veces y luego añadir tampón de lisis de ensayo de radio-inmunoprecipitación (RIPA, filtro esterilizado; 200 l de una dilución 1:50). </li><li> Rápidamente Se tritura el lisado de células HeLa a continuación, colocar 50 l en sales de manitol (MS) y medios de comunicación / o Fungisel (F) (Figura 2). Extender el lisado utilizando una varilla de vidrio doblado en un ángulo de 90 °. Se incuban las placas (18 horas a 37 ° C). contar manualmente el número de colonias por placa. Los controles consisten de S. aureus y / o C. albicans adherencia a las células HeLa no infectadas por VHS. </li></ol> 7. Estudios de Imagen &lt;/ P&gt; <ol><li> Lavar cada cubreobjetos circular de vidrio (12 mm; 50 ml de acetona en 100 ml vaso de precipitados). cubreobjetos secos y esterilizar (Kimwipes; placas de Petri de vidrio). Coloque cubreobjetos estériles secos en los pocillos de placas de 24 pocillos estériles con pinzas esterilizadas alcohol de llama. </li><li> Añadir células HeLa (1 ml; volumen 5x utilizado para placas de 96 pocillos) a los pocillos de placas de 24 pocillos que contienen los cubreobjetos de vidrio redondos estériles lavados. Añadir los virus, bacterias y hongos de acuerdo con la plantilla (Tabla 2) en 5x el volumen utilizado para las placas de 96 pocillos, a continuación, se incuba y el proceso tal como se describe en los pasos 6.2.1 a 6.4 anteriormente. </li><li> Después del lavado final, fijar las células para microscopía inundando la corredera con metanol y permitiendo que se evapore. Almacenar las placas a temperatura ambiente hasta que la tinción. </li><li> Para la microscopía de campo brillante (1,000x aumento original final) llenar los pocillos que contienen cubreobjetos fijados con metanol con agua desionizada. Inmediatamente aspirar agua. Cubra cada cubreobjetos con Gramos violeta cristal. Lave cubreobjetos libre de mancha no ligada (agua desionizada). Cubreobjetos secos in situ a continuación, se adhieren con medio a una diapositiva de marcado de montaje conjunto duro (Figura 3). </li><li> Para la microscopía (objetivo 100x; 1,000x definitiva inicial de aumento) fluorescente de lavado cubreobjetos libre de metanol esencialmente como se describe en el paso 7.4. Seque los cubreobjetos en los pocillos. <ol><li> Después del secado, retire la cubierta se desliza y colocarlos en portaobjetos etiquetados. A continuación, añadir una cantidad suficiente de 1:20 dilución de isotiocianato de fluoresceína (FITC) y conjugado con virus herpes simplex tipo 1 + 2 anticuerpo gD para cubrir el cubreobjetos (1-5 l). </li><li> Incubar los portaobjetos en una cámara húmeda a 37 ° C durante 30 minutos. Después de la incubación, lavar los cubreobjetos en 4 cambios de PBS. </li><li> Después del lavado final, devuelva el cubreobjetos al portaobjetos etiquetados. Manchar con 4 &#39;, 6-diamino-2-fenilindol (DAPI; cámara de humedad, 37 ° C durante 30 minutos). Después de incubación, lavar los cubreobjetos en 4 Changes de PBS, a continuación, adhiera a la diapositiva etiquetados con juego duro medio de montaje. </li><li> Dejar que el medio de montaje para curar durante 24 horas a temperatura ambiente en la oscuridad. Examinar los cubreobjetos bajo petróleo objetivo ya sea en un microscopio de campo claro o microscopio de fluorescencia con filtros de corte FITC y DAPI. Examinar imágenes de al menos 50 campos (100 células por mínima organismo) para la co-localización (Figura 4). </li></ol></li></ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Actualmente no hay información disponible sobre las interacciones complejas entre permanente a los miembros semi-permanentes del microbioma de acogida que se cruzan múltiples dominios taxonómicos, es decir, procariotas, eucariotas y virales. Por lo tanto, hemos desarrollado un novedoso sistema de modelo in vitro para estudiar la iniciación del biofilm por S. aureus y C. albicans en HSV-1 o HSV-2 infectadas 229 células HeLa (HeLa) 38. El sistema modelo de células He...

<html> El microbioma humano incluye diversos organismos de varios reinos taxonómicos que comparten regiones geográficas en el cuerpo. La adherencia a las superficies celulares es un primer paso esencial en la formación de biopelículas, que es parte del proceso de colonización microbioma. Incluido en el microbioma puede haber virus que causan infecciones crónicas y persistentes. La infección de células crónica por estos virus puede causar una alteración en la disponibilidad del receptor putativo. 1,2 Además, la entrada de la célula por patógenos intracelulares también podría afectar a la fluidez de membrana host / hidrofobicidad que a su vez puede alterar la unión de otros miembros microbioma, incluyendo bacterias y hongos . Con el fin de entender las interacciones que pueden ocurrir entre estos múltiples patógenos que co-localizar en las mismas regiones geográficas del huésped humano, debemos ser capaces de estudiar la interacción de los agentes patógenos que representan el espectro de los reinos taxonómicos presentes en la superficie de la mucosa. t &quot;&gt; El Herpesviridae son una familia de microbios presentes en el 100% de los seres humanos como miembros permanentes del microbioma 3,4. Además, pueden también ser derramada persistente tanto en presencia como en ausencia de síntomas. En concreto, el virus herpes simplex-1 y herpes simplex virus-2 (HSV-1 y HSV-2, respectivamente) son miembros permanentes del microbioma en el oronasopharynx y el tracto genital. en individuos inmunocompetentes, tanto HSV-1 y HSV-2 causa gingivoestomatitis, así como el herpes genital 5-8. en estos sitios, el VHS causa una infección latente, caracterizada por necrosis tumoral asintomática crónica persistente derramamiento viral 9. entrada del VHS en células da lugar a alteraciones en la expresión superficial de nectins, sulfato de heparán, balsas de lípidos y herpesvirus mediador de la entrada / receptor del factor de (HVEM / TNFr) 10-25. Estos receptores representan potencialmente compartidos para algunas bacterias y hongos, por ejemplo, S. aureus y C. albicans, que mientras que los patógenos oportunistas,También puede residir en calidad de miembros de la mucosa del microbioma oronasopharynx 26,27. Dentro de la oronasopharynx S. aureus y C. albicans ocupan dos sitios distintos de la colonización. En los anfitriones con los dientes naturales, la mucosa oral es compartida por HSV-1 y C. albicans, mientras que los orificios nasales nasal anterior están ocupados por S. aureus 28. Sin embargo, a pesar de los hallazgos in vitro que S. aureus se adhiere a las células epiteliales de la boca, 29,30 S. aureus es poca frecuencia aisladas de muestras orales cuando está presente el tejido normal 29,30. Poco se sabe en relación con nichos tracto genital co-colonización más allá de los hallazgos clínicos que S. aureus se asocia con la vaginitis aerobia, que se caracteriza por la inflamación genital, la descarga y la dispareunia, mientras que C. albicans produce lesiones de la mucosa similar a la observada en la cavidad oral 31-35. Por lo tanto, aunque estos miembros de la microbi oral y genitalome reinos taxonómicos transversales poco se conoce acerca de su interacción ya que afecta a su capacidad para iniciar la formación de biopelículas mediante la adhesión a la superficie de la célula huésped 5. Este protocolo se ha aplicado de manera efectiva para determinar las consecuencias funcionales de co-colonización / infección.

<table><tbody><tr><td>C.albicans</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>BBL Sabouraud Dextrosa</td><td>BD</td><td>211584</td><td></td></tr><tr><td>Agar Fungisel Dot</td><td>Scientific</td><td>7205A</td><td></td></tr><tr><td>S.aureus</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mannitol Salt Agar Troy</td><td>Biologicals</td><td>7143B</td><td></td></tr><tr><td>Agar sangre de oveja</td><td>Troy Biologicals</td><td>221239</td><td></td></tr><tr><td>Hela cells</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1x DMEM (Dubelcco's Modified Eagle Medium, con 4,5 g/L de glucosa y L-glutamina, sin piruvato de sodio</td><td>Corning</td><td>10-017-CM</td><td></td></tr><tr><td>Gentamicina 50 mg/ml</td><td>Sigma</td><td>1397</td><td>50 &micro; concentración final g/ml en la solución completa DMEM</td></tr><tr><td>Trypsina EDTA (0,05% Trypsin, 0,53 M EDTA)Solution 1x</td><td>Corning</td><td>25-052-CI</td><td></td></tr><tr><td>Suero Fetal Bovino</td> Atlanta <td>Biologicals</td><td>S11150</td><td>Concentración final del 10% en el medio DMEM</td></tr><<tr><td>fuerte>Otro completo y reactivos</fuerte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ONPG</td><td>Thermo Scientific</td><td>34055</td><td></td></tr><tr><td>Ultra-Pure X gal</td><td>Invitrogen</td><td>15520-018</td><td></td></tr><tr><td>1x HBSS (Solución salina equilibrada de Hanks)</td><td>Corning</td><td>20-021-CV</td><td></td></tr><tr><td>1x PBS</td><td>Dot Scientific</td><td>30042-500</td><td></td></tr><tr><td>RIPA Lysis</td><td>Life Technologies</td><td>89901</td><td></td></tr><tr><td>Staining</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Methanol</td><td>Fisher Scientific</td><td>A433P-4</td><td></td></tr><tr><td>HSV 1& 2, específico para gD</td><td>ViroStat</td><td>196</td><td></td></tr><tr><td>DAPI</td><td>SIGMA</td><td>D8417-5MG</td><td></td></tr><tr><td>Gram Crystal Violet</td><td>Troy Biologicals</td><td>212527</td><td></td></tr><tr><td><fuerte>Suministros</fuerte>placa de</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Petri 100 x 15</td><td>Dot Scientific 229693</td><td>&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Placa de Petri 150 x 15</td><td>Kord Valmark</td><td>2902</td><td></td></tr><tr><td>Placas de 96 pocillos</td><td>Evergreen Scientific</td><td>222-8030-01F</td><td></td></tr><tr><td>Placas de 24 pocillos</td><td>Evergreen Scientific</td><td>222-8044-01F</td><td></td></tr><tr><td>Tubos de cultivo 100 x 13</td><td>Thomas Scientific</td><td>9187L61</td><td></td></tr><tr><td>Círculos deslizantes de cubierta, 12 mm</td><td>Deckglaser</td><td>CB00120RA1</td><td></td></tr></tbody></table>

determinación de biofilm iniciación, el virus de las células infectadas por bacterias y hongos

Determination of Biofilm Initiation on Virus-infected Cells by Bacteria and Fungi

El estudio de las interacciones polimicrobianas a través de los reinos taxonómicos que incluyen hongos, bacterias y virus no se han examinado previamente con respecto a cómo los miembros virales de la microbioma afectan las interacciones microbio posteriores con estas células huésped infectadas por virus. La cohabitación de virus con bacterias y hongos es principalmente presente en las superficies de la mucosa de la cavidad oral y el tracto genital. células de la mucosa, particularmente aquellos con infecciones virales latentes crónicas o persistentes persistentes, podrían tener un impacto significativo en los miembros de la microbioma través de la alteración del virus en el número y tipo de receptores expresados. Modificación en la arquitectura de la membrana de la célula huésped se traduciría en la capacidad alterada de los miembros posteriores de la flora normal y patógenos oportunistas para iniciar el primer paso en la formación de biopelículas, es decir, la adhesión. Este estudio describe un método para la cuantificación y control visual del efecto de HSV en el inicio de biofilm formación (adherencia) de S. aureus y C. albicans.

El nivel de fiabilidad de los datos que se pueden obtener a partir sistema descrito en este informe se muestra en la Figura 2 af 38. Mediante el uso de este sistema de la modulación de la interacción de estafilococos y hongos con las células infectadas por virus y sus efectos en la adherencia de cada uno puede ser delineado. Estos tipos de estudios requieren el examen microscópico de la interacción tal como se muestra en las figuras 3 y <stron...

En este documento se describe un método para la determinación de la asociación y competencia entre reinos (bacteriana y fúngica) por la adherencia a las monocapas de células HeLa infectadas por virus. Este protocolo puede extenderse a múltiples combinaciones de procariotas, eucariotas y virus.

Determinación de Biofilm Iniciación, el virus de las células infectadas por bacterias y hongos

The study of polymicrobial interactions across the taxonomic kingdoms that include fungi, bacteria and virus have not been previously examined with ...

El objetivo general de este experimento es medir los efectos que tienen las células previamente infectadas con HSV sobre la posterior adhesión de patógenos oportunistas bacterianos y fúngicos, por ejemplo, Staphylococcus aureus y Candida albicans. Este método puede ayudar a responder preguntas clave respecto al papel que desempeña la infección viral crónica en la regulación de los distintos miembros del microbioma del huésped. La principal ventaja de esta técnica es que se pueden examinar y cuantificar las interacciones de múltiples organismos en la etapa inicial de formación de biopelículas, específicamente la adherencia.La implicación de esta técnica se extiende hacia el control de patógenos oportunistas colonizadores, ya que la condición previa de infección por HSV con eliminación asintomática está presente en la mayoría de la población humana. Aunque este método puede proporcionar información sobre el control del HSV sobre la adhesión microbiana subsiguiente, también puede aplicarse a otros sistemas, como la infección por CMV y la de adenovirus. Para comenzar, determine la viabilidad del virus HSV1 o HSV2 y la multiplicidad de infección, o MOI, mediante tinción con x-gal para cada ensayo experimental realizado utilizando un ensayo de entrada de virus marcador.Diluya el virus hasta la MOI deseada y coloque los controles de viabilidad del virus en una placa de microtitulación separada, paralelamente a las placas del ensayo polimicrobiano. Luego, use 100 microlitros de tampón de paraformaldehído-glutaraldehído para fijar las monocapas antes de la tinción. Para mantener las células HeLa, cúltívelas en DMEM con cuatro puntos cinco gramos por metro de glucosa, diez por ciento de SFB inactivado por calor, 50 microgramos por litro de gentamicina y l-glutamina.Utilice solución de tripsina para el paso de las células al 80 por ciento de confluencia. Para manipular C.albicans, cultive una cepa congelada en medio sub en medio dúctil a 37 grados celsius. Después de 24 horas, subcultive C.albicans en medio fungicell e incube durante 48 horas antes de su uso.Genere formas de tubo germinativo o GT de C.albicans seleccionando colonias representativas de fungicel y cultivándolas en tres mililitros de FPS a 37 grados Celsius durante tres horas. Después de la incubación, centrifugue la cultura a 4.000 × g durante diez minutos. Luego, use HBSS para lavar las células dos veces.Después de usar un hemocitómetro para contar las células, agregue el GT lavado al HBSS a 37 grados celsius hasta un OD 600 de cero punto treinta y dos. Para obtener suspensiones de la forma levaduriforme, o YF, seleccione colonias representativas de fungicel y úselas para inocular tres mililitros de HBSS. Incube los cultivos hasta alcanzar un OD 600 de cero punto treinta y dos; mediante un hemocitómetro, cuente el número de formas YF por mililitro, lo cual debería corresponder al 99 por ciento de las células observadas al microscopio.Prepare un stock fúngico de trabajo transfiriendo 250 microlitros de stock GT o YF a 25 mililitros de HBSS a 37 grados celsius. Esto produce de diez a la quinta UFC por mililitro. Para preparar SRES ATCC 25923, estríe un stock congelado en agar sangre de oveja al cinco por ciento e incube a 37 grados celsius durante 24 horas.En un plazo de dos días, seleccione colonias representativas, transfiéralas a medio de sales de manitol e incube a 37 grados celsius durante 18 horas. Para preparar un stock de SRES, suspenda colonias representativas en tres mililitros de HBSS a 37 grados celsius hasta alcanzar una DO 600 de cero coma uno tres dos o diez a la octava UFC por mililitro. Para preparar un stock de trabajo, transfiera 100 microlitros de la suspensión stock a 25 mililitros de HBSS.Esto da como resultado diez elevado a la quinta UFC por mililitro. El primer paso crítico al aplicar este método a otros organismos o cepas de microbios es la determinación del número correcto de bacterias y hongos que deben agregarse para obtener un número suficiente de colonias que puedan contarse. Para realizar un ensayo de biopelícula polimicrobiana, siembre placas de 96 pocillos con 200 microlitros de dos veces diez a la 15.ª células HeLa por mililitro.Agite las placas a 37 grados Celsius durante 30 a 45 minutos antes de incubarlas en un 5 por ciento de dióxido de carbono a 37 grados Celsius durante 18 horas. Use One X óptimo para lavar las monocapas y luego siembre con la cepa única de HSV. Pruebe solo una cepa a la vez.Incubar las placas a 37 grados Celsius en un 5 por ciento de dióxido de carbono durante tres horas. Usando 100 microlitros de PPS a 37 grados Celsius con magnesio y calcio, lavar las monocapas infectadas. Luego, usar HBSS a 37 grados Celsius para reemplazar el PBS.Deje 25 microlitros de HBSS en cada pocillo. A continuación, agregue la suspensión de trabajo de YF, GT y/o SRES e incube las placas a 37 grados Celsius en un 5 por ciento de dióxido de carbono durante 30 minutos. Tras la incubación, aspire una columna de la placa a la vez.Rellene inmediatamente los pocillos con 300 microlitros de PBS con magnesio y calcio. Después de repetir este paso de lavado dos veces, agregue 200 microlitros de tampón de lisis RIPA filtrado y esterilizado, diluido 1:50, a cada pocillo. Al trabajar con otras cepas de bacterias o hongos, asegúrese de que la concentración de RIPA utilizada sea suficiente para la lisis celular, pero aún permita la realización de pruebas de viabilidad microbiana.Triture rápidamente el lisado de células HeLa y pipetee 50 microlitros sobre medio de sales de manitol y/o fungicel. Luego, utilizando una varilla de vidrio doblada en un ángulo de 90 grados, extienda el lisado sobre la superficie de la placa. Después de incubar las placas durante 18 horas, cuente manualmente el número de colonias por placa.Los controles consisten en SRES o adherentes de C.albicans a células HeLa no infectadas con HSV. Para realizar estudios de imagen, lave con acetona cada cubreobjetos redondo tras cada uso antes de la esterilización. Luego, utilizando pinzas esterilizadas con alcohol y llama, coloque los cubreobjetos secos y estériles en los pocillos de placas estériles de 24 pocillos.Añada células HeLa a los pocillos de las placas que contienen las laminillas. Luego, infecte las células con el virus. Después de la infección, agregue bacterias y hongos según la plantilla e incube y procese las células como se demostró anteriormente para la placa de 96 pocillos.Después del último lavado, fije las células para microscopía inundando las laminillas con metanol y luego permita que se evapore. Para microscopía de campo brillante, llene los pocillos que contienen las laminillas fijadas con agua desionizada. Aspire inmediatamente el agua y agregue suficientes gramos de violeta de cristal para cubrir cada laminilla.Después de lavar las laminillas teñidas con violeta de cristal con agua desionizada, séquelas en C2 antes de adherirlas con medio de montaje de curado duro a una laminilla etiquetada. Para microscopía de fluorescencia, después de lavar las laminillas libres de metanol, séquelas en los pocillos antes de montarlas sobre laminillas etiquetadas con medio de montaje de curado duro. Añada una cantidad suficiente de una dilución de uno a 20 de anticuerpo HSV1 más 2GD conjugado con FITC para cubrir completamente la laminilla.Incubar las laminillas en una cámara húmeda a 37 grados celsius durante 30 minutos. Después de la incubación, usar PBS para lavar las cubreobjetos cuatro veces. Tras el lavado final, devolver las laminillas a la cámara húmeda.Añada dab B e incube durante 30 minutos a 37 grados Celsius. Tras la incubación, lave los portaobjetos cuatro veces con PBS. Deje que el medio de montaje se cure durante 24 horas a temperatura ambiente en la oscuridad.Luego, con un objetivo de inmersión en aceite, examine al menos 50 campos para la colocalización, ya sea en un microscopio de campo claro o en uno fluorescente. Aquí se muestran resultados representativos del efecto del HSV sobre la adherencia de Staphylococcus y/o Candida albicans. La presencia de HSV1 inhibió la adherencia estafilocócica a células HeLa.La presencia de formas de tubo germinativo de Candida, pero no de formas levaduriformes, restauró los niveles de adherencia de Staphylococcus. Se obtuvieron resultados similares en células HeLa infectadas con HSV2. Como se observa en esta figura, el nivel de adherencia de las formas de tubo germinativo de Candida es significativamente mayor en células infectadas con HSV2 que en células infectadas con HSV1.Se midió el efecto inverso para HSV1 frente a HSV2 sobre las formas levadurales de Candida. Los patrones de adherencia se determinaron mediante tinción con violeta de cristal de monocapas para visualizar la interacción entre bacterias y hongos. Luego, se utilizó microscopía de fluorescencia para determinar la presencia de HSV en relación con los otros microorganismos.En ausencia de HSV, los estafilococos y las formas de levadura y tubo germinativo de Candida se colocalizaron en células HeLa. Sin embargo, solo se observó Candida en células infectadas con HSV. Una vez dominada, esta técnica puede realizarse en ocho a nueve horas si se lleva a cabo adecuadamente.Tras seguir este procedimiento, se pueden realizar otros métodos como la tinción diferencial con anticuerpos fluorescentes para responder preguntas adicionales, como la expresión diferencial de receptores de superficie presentes tras la entrada del virus en la célula. Tras su desarrollo, esta técnica allanó el camino para que los investigadores en el campo del microbioma humano exploraran las interacciones posteriores a los microbios en sistemas de cultivo de tejidos y de órganos. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo desarrollar un modelo de interacción polimicrobiana que abarque los reinos taxonómicos.No olvide que trabajar con patógenos puede ser extremadamente peligroso, y se requieren precauciones como el uso de cepas virales no propagativas y técnicas de barrera.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Immunology and Infection

Inmunología e Infección

El ensayo describe un método rápido para medir la formación de biopelículas a principios de bacterias y hongos. Este método utiliza una placa de microtitulación como sustrato para la formación de biopelículas microbianas, y el biofilm se visualiza utilizando la cepa de cristal violeta. El ensayo ofrece ya sea un ensayo cualitativo o cuantitativo de la formación de biofilm temprano.

Plato de microtitulación de formación de biopelículas de ensayo

Fuente: Tay, S. B., et al. Disrupción antivirulenta de biopelículas patógenas mediante lactonasas modificadas que apagan el quórum.  J. Vis. Exp. (2016)El vídeo demuestra un método para cuantificar biomasa de biofilm en una bacteria patógena, comparando controles no tratados con muestras tratadas con una enzima que apaga el quorum. La enzima interrumpe la señalización bacteriana durante la incubación temprana, reduciendo la adhesión celular. Tras el lavado y una incubación adicional, los pozos...

Cuantificación de la supresión de biopelículas inducida por enzimas en bacterias patógenas

Fuente: Schlafer, S, y Frost Kristensen, M. Monitorización del pH extracelular en biofilms inter-reino mediante microscopía confocal. J. Vis. Exp. (2020)Este vídeo demuestra el cultivo de biopelículas cruzadas de Streptococcus mutans y Candida albicans bajo condiciones similares a las orales para modelar las interacciones bacteriana-fúngica, permitiendo el estudio de la sinergia microbiana, la adhesión mediada por glucano y la virulencia acidogénica en la patogénesis oral.

Establecimiento de biopelículas bacteriana-fúngica cruzadas para el estudio de la patogénesis oral

Fuente: Miquel Guennoc, C., et al. Nuevo método para el análisis cualitativo multiescala de biopelículas bacterianas en colonias fúngicas filamentosas utilizando microscopía confocal y electrónica. J. Vis. Exp. (2017)Este vídeo demuestra la preparación de un cultivo fúngico en membranas de celofán tratadas para apoyar la formación de colonias y el crecimiento radial. Luego muestra el cultivo y la preparación de células bacterianas del suelo para ensayos de interacción. Finalmente, ilustra cómo...

Establecimiento de una cocultura fúngico-bacteriana para la formación de biopelículas

Este video ilustra el inicio de la formación de biopelículas polimicrobianas en células infectadas por virus por bacterias y hongos. La infección por el virus del herpes simple impide la adhesión bacteriana a las células, impidiendo la colocalización bacteriano-fúngica. Por el contrario, las células no infectadas muestran una colocalización bacteriano-fúngica y el inicio de la formación de biopelículas.

Un ensayo para determinar el inicio de biopelículas polimicrobianas en células infectadas por virus

Este video describe un método para cultivar y analizar cualitativamente biopelículas bacterianas en hifas fúngicas utilizando microscopía. Las biopelículas bacterianas se forman con frecuencia en las superficies fúngicas e involucran numerosos procesos de interacción bacteriano-fúngico, como la cooperación metabólica, la competencia o la depredación.

Un método para la preparación de muestras para visualizar bacterias formadoras de biopelículas en hifas fúngicas

Este protocolo describe un nuevo método para hacer crecer y cualitativamente analizar biopelículas bacterianas en hifas de los hongos por microscopía confocal y electrónica.

Un nuevo método para el análisis cualitativo multi-escala de biopelículas bacterianas en filamentosa fúngica Colonias Utilizando microscopía confocal y electrónica

Este protocolo describe el uso de un dispositivo microfluídico automatizado personalizable para visualizar la formación de biopelículas de Candida albicans en condiciones fisiológicas de host.

Visualización de la formación de Biofilm de Candida albicans utilizando un dispositivo microfluídico automatizado

Este protocolo permite al lector a analizar la formación de biopelículas inducida por sales biliares en patógenos entéricos usando un enfoque multifacético para capturar la naturaleza dinámica de los biofilms bacterianos mediante la evaluación de adherencia, formación de la matriz de sustancias poliméricas extracelulares, y de dispersión.

Formación de biopelículas inducida por sales biliares en patógenos entéricos: técnicas para la identificación y cuantificación

Este protocolo describe la preparación del inóculo, la cuantificación de la biopelícula en placas de microtitulación utilizando colorante violeta cristalino, el recuento viable en biopelículas y la visualización de biopelículas de Acinetobacter.

Estrategias de cuantificación, evaluación de viabilidad y visualización de biopelículas de Acinetobacter

Aprende a evaluar la adherencia de Staphylococcus aureus y Candida albicans a monocapas de células HeLa infectadas con HSV. Este método permite cuantificar interacciones entre virus, bacterias y hongos en el inicio de biofilms.

Determinación de Biofilm Iniciación, el virus de las células infectadas por bacterias y hongos

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