Name: Tridimensional Ensayo de Cultivo para explorar invasividad de las células del cáncer y la formación de tumores satélite (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-18T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 23 s
Description: Aprende a crear un sistema de cultivo tridimensional con células de cáncer embebidas en colágeno y fibrina. Este método permite monitorear la invasividad y formación de tumores satélite en investigación oncológica.

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Trabajo parcialmente financiado por Prostate Cancer Canada (subvención # D2014-4 a SG y CJD) y los Institutos Canadienses de Investigación en Salud (subvención # MOP-111069 a SG). Nos gustaría agradecer al Dr. Richard Poulin por su asistencia editorial y a la Sra. Chanel Dupont por su asistencia técnica.

NOTA: No se cuenta la ética ya que las células cancerosas humanas y animales fueron comprados o amablemente proporcionados a nosotros. 1. Realización de colágeno enchufes (Pseudo-Tumor primario) <ol><li> Preparar una dispersión de colágeno. Colágeno de tipo I de tendones de cola de rata (RTT) puede ser o bien extraídas y esterilizadas como se informó anteriormente 17, o comprar. Dispersar el colágeno liofilizado RTT (3,25 a 3,50 mg / ml en 0,02 N de ácido acético) usando un mezclador (ajuste de alta velocidad; cinco carreras 2 min) para una mezcla uniforme. </li><li> Cosecha (tripsina-EDTA, por lo general) y utilizar la exclusión de azul de tripano para el recuento de células viables utilizando un hemocitómetro. Ajuste a la densidad celular deseada (5 x 10 4 células por enchufe). </li><li> Preparar todas las soluciones (NaOH, suero fetal bovino, DMEM 5x, NaHCO 3) por separado (Tabla 1) bajo condiciones estériles y mantener refrigerados en hielo. Nota: El orden de adición de las diversas soluciones es importante para prevenir los choques osmóticos o ácidas en las células. </li><li> Realizar dispersión celular (1,25 x 10 6 células) en la solución de colágeno final (5 ml) lo más rápidamente posible. Mezclar bien (pipeteando arriba y abajo), evitando burbujas de aire, y luego distribuir rápidamente 200 l de la solución lista para el uso en cada pocillo de una placa de 96 pocillos. golpear suavemente la placa de múltiples pocillos en la superficie del área de trabajo de la campana de cultivo de células para eliminar las burbujas de aire y difundir la solución uniformemente en el interior de los pozos. </li><li> Después de llenar todos los pocillos (este paso toma alrededor de 15-20 minutos por placa de 96 pocillos), almacenarlo en la incubadora. </li><li> Incubar la placa a 37 ° C de 2 horas hasta toda la noche. La gelificación del colágeno (es decir, la fibrilogénesis) se produce dentro de 30 min. Añadir medio de cultivo (100 l / pocillo) al cultivo para realizar una incubación durante la noche. </li></ol> 2. La primera capa de fibrina Gel <ol><li> Preparación de soluciones de fibrinógeno. NOTA: El mismo lote de gel de fibrina idealmente se debe utilizar para resul más reproduciblets, la formación de gel como la fibrina puede variar entre los diferentes lotes de fibrinógeno comercial liofilizado. <ol><li> Siempre use una solución de fibrinógeno recién preparada. Llevar el fibrinógeno liofilizado a temperatura ambiente antes de abrir el vial para evitar la formación de cristales de hidrato. </li><li> Progresivamente disolver el fibrinógeno en pre-calentado (37 ° C) solución salina equilibrada de Hank (HBSS) con Ca2 + / Mg2 + a una concentración de trabajo de 3 mg / ml (considerar la preparación de un exceso de 15% del volumen final mínima requerida : por ejemplo, 17,25 mg en 5,75 ml de una solución de 5 ml). <ol><li> Añadir gota a gota pre-calentado HBSS en un primer momento para solubilizar fragmentos de fibrinógeno. Descomponer fragmentos más grandes con una espátula en el vaso de precipitados. Agitar el vaso de precipitados de vez en cuando para facilitar la mezcla. No utilice una placa de agitación durante el procedimiento. Disolver el polvo restante pipeteando la suspensión de arriba abajo. </li></ol></li><li> Mantenga la solución de fibrinógeno tibia mientras sterilizing la solución pasándola a través de un filtro de 0,22 micras. Nota: Si el HBSS no es lo suficientemente caliente o el fibrinógeno no se disuelve completamente, la solución puede obstruir el filtro. En su caso, reemplace el filtro de una o dos veces, lo que puede disminuir la concentración de fibrinógeno, y por lo tanto la rigidez del coágulo de fibrina. </li><li> Suspender las células de interés (por ejemplo, células endoteliales) en solución de fibrinógeno-lista para usar mientras se ajusta su volumen final, como un procedimiento alternativo. </li></ol></li><li> Preparación de las soluciones de trombina. <ol><li> Preparar una solución madre en ddH 2 O (50 NIH unidades / ml), a continuación, esterilizarla utilizando un filtro de 0,22 micras. </li><li> Utilice una relación / trombina de fibrinógeno ≥1: 0,0075 (v / v) con el fin de generar el gel de fibrina. </li></ol></li><li> Generando el gel de fibrina. <ol><li> Mantenga el fibrinógeno y trombina estéril soluciones madre en el hielo durante todos los pasos a seguir. Los geles de fibrina se les permite formar en placas de 24 pocillos. </li><li> º prontitud superposicióne superficie de cada pocillo con la solución de fibrinógeno (200 l / pocillo), evitando la formación de burbujas de aire. Procedimiento 6 pocillos a la vez. </li><li> Una vez que la solución de fibrinógeno cubre completamente la superficie de los pocillos, la inclinación de la placa en un ángulo de 45 ° y añadir 1,5 l de solución de trombina a la primera bien dejando caer la trombina en el centro del pozo, y luego agitar suavemente la placa en posición horizontal para 1-2 seg. <ol><li> Dejar la placa en una posición estable bajo la campana de flujo laminar (5-10 min) hasta que el proceso de gelificación / coagulación ha completado (NB: el proceso de polimerización no debe ser perturbado, por ejemplo, mediante el transporte de la placa a la incubadora). </li></ol></li><li> Una vez que los primeros seis pozos han polimerizado, repetir la misma secuencia (es decir, los 3 pasos anteriores) para los próximos seis pozos hasta que todos los pozos han sido procesados. </li></ol></li></ol> 3. Segunda capa de fibrina gel de colágeno e intercalado Plug <ol><li> OpciónA: (El uso del tapón de colágeno Inmediatamente). <ol><li> Asegúrese de que la primera capa de gel de fibrina se polimeriza en todos los pozos inclinando suavemente la placa. Coloque la placa de 96 pocillos que contiene el lado tapones de gel de colágeno a lado con la placa de 24 pocillos (que contiene los geles de fibrina) para facilitar la transferencia de los tapones de colágeno. </li><li> Añadir una gota de HBSS en cada pocillo de la placa que contiene los tapones de colágeno. </li><li> Retire cada tapón de colágeno del pozo con una aguja delgada montada en una jeringa (utilizado como asa) o utilizando un micro-cuchara (ver video). Transferir cada tapón de colágeno sobre la primera capa de gel de fibrina usando uno o dos micro-cucharas, mientras se asegura de que el tapón de colágeno está bien centrado en el pozo y que la esterilidad se mantiene bien. </li><li> Superposición de gel de fibrina previamente formada con la segunda capa de solución de fibrinógeno (300 l / pocillo) e introducir la trombina como se describe en 2.3, manteniendo un mínimo 1:. Relación de 0,0075 y una secuencia de seis pocillos a la vez &lt;/ Li&gt; </ol></li><li> Opción B (recubrimiento del tapón de colágeno con una capa delgada de la reducción de factor de crecimiento-membrana basal (GFRBM)). <ol><li> Enfriar todos las soluciones preparadas e instrumentos de antemano y mantenerlos a 4ºC o en hielo (por ejemplo, pipetas, puntas, tubos de ensayo) durante la manipulación ya alícuotas congeladas de GFRBM son muy sensibles a la velocidad de calentamiento excesivo durante la descongelación (siga las instrucciones del fabricante) . </li><li> Después de la eliminación de los pocillos de la placa, en remojo cada tapón de colágeno durante 2 minutos en un tubo de centrífuga de 1,5 ml en hielo que contiene 100 l de una solución GRFBM puro. </li><li> Transferir cada tapón revestido sobre la primera capa de fibrina garantizando al mismo tiempo que es bien centrada, como se describió anteriormente. Incubar las placas que contiene enchufables a 37 ° C durante 5 min para permitir que el GRFBM para formar un gel. Añadir la segunda capa de fibrina como en el paso 3.1.4. </li></ol></li></ol> 4. Cell Culture Medium Condiciones <ol><li> Llenar cada pocillo con medio de cultivo (400 l). Los medios de cultivo y los suplementos se seleccionarán sobre la base de la línea celular y las condiciones experimentales. </li><li> Añadir aprotinina, un agente antifibrinolítico, al medio de cultivo a una concentración final de 100 unidades de inhibidor de calicreína (KIU) / ml. NOTA: Guarde las placas en una incubadora de cultivo de células en las condiciones utilizadas para la línea celular probado. </li><li> Reponer los cultivos con medio fresco cada dos días o de acuerdo con el calendario experimental, y añade aprotinina. Antes de la adición de medio fresco, ligeramente la inclinación de la placa (en un ángulo de 30 a 35 °) y inclinar la pipeta contra el lado del pozo, mientras que la aspiración cuidadosamente el medio acondicionado en observación constante. </li></ol>

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Los autores no tienen divulgación.

Como un importante nota técnica, es esencial que ningún hueco está presente en la interfaz entre la central y los geles periféricos. De lo contrario, podría reducir la capacidad de las células para migrar / invadir el gel de fibrina. Un espacio entre el colágeno y los geles de fibrina puede formar durante la primera 24 horas de cultivo si la trombina no se ha diluido apropiadamente. También es posible que la línea celular probado podría llevar el gel de colágeno se contraiga durante el cultivo, causando así un espacio r...

La investigación de las características fundamentales y biomédicas de la invasión de células de cáncer / migración y el posterior establecimiento de metástasis es objeto de una intensa investigación de 1,2. La metástasis es la última etapa del cáncer y su tratamiento clínico sigue siendo difícil de alcanzar. Una mejor comprensión de la metástasis en los niveles celular y molecular permitirá el desarrollo de terapias más eficientes 3. Varias propiedades de las células metastásicas se pueden explorar in vitro 4 incluyendo su stemness y potencial de adquirir un estado de transición (por ejemplo, la transición epitelioide-mesenquimal) para migrar e invadir dentro y desde el tumor primario 5. Sin embargo, la evaluación in vitro de procesos / metástasis invasión ha sido un reto, ya que prácticamente elimina la contribución de la circulación de la sangre / linfático. Los cultivos organotípicos que incorporan fragmentos de tumor en geles de colágeno tienen Previouastuta ha utilizado para controlar la agresividad del cáncer. Aunque se preserva la complejidad de los tumores (por ejemplo, la presencia de células no cancerosas), fragmentos de tumor están expuestos a la difusión medio limitado, a la variación del muestreo, y a un crecimiento excesivo de las células del estroma 6. Un método alternativo consiste en el crecimiento de células de cáncer dentro de los componentes de la matriz extracelular (ECM), que imita el entorno celular en tres dimensiones (3D). La proliferación de líneas celulares de cáncer de mama en un gel de colágeno y / o una matriz derivada de la membrana basal es uno de los ejemplos mejor caracterizados de cultivo celular en 3D. Mediante el uso de entornos de cultivo de células 3D específicas, el conjunto desorganizado observado para las células de cáncer de mama cultivadas en condiciones estándar se puede invertir para la formación espontánea de acinos mamaria y estructuras tubulares 7-10. Además, la formación de esferoides de tumor multicelulares derivados de células de cáncer de adenocarcinoma congregó utilizando diferentes técnicas (por ejemplo, colgando gotas, esferoides flotante, agar empotramiento) constituye ahora el ensayo de cultivo celular 3D utilizado más comúnmente 11-13. Sin embargo, este ensayo está limitado por el conjunto restringido de líneas celulares de cáncer que pueden formar esferoides y por el corto período de tiempo disponible para estudiar las células en estas condiciones. En esta técnica visualizado, que en el presente documento introduce un ensayo de cultivo celular 3D sofisticado donde las células de cáncer de interés están incrustadas en un gel de colágeno para permitir la formación in vitro de un tumor pseudo-primaria que puede ser, alternativamente, recubierta con una matriz de membrana derivada de sótano. Una vez formado, el tumor primario se pseudo-entonces intercalado en una matriz acelular (gel de fibrina en el presente caso), que permite a las células cancerosas para cruzar la interfaz entre los dos compartimentos de la matriz (véase la Figura 1). Curiosamente, las estructuras similares a tumores secundarios procedentes de la pseudo-tumor primario junto con células cancerosas agresivas aparecen en elgel de fibrina. Tal sistema de cultivo 3D ofrece la flexibilidad requerida para investigar, por ejemplo, medicamentos contra el cáncer, la expresión génica y la célula-célula y / o las interacciones célula-ECM 14-16. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/54322/54322fig1.jpg" /> Figura 1:.. Descripción general del método de resumen esquemático del método para generar el sistema de cultivo celular 3D como modelo para estudios de cáncer <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54322/54322fig1large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>

<table><tbody><tr><td>Colágeno liofilizado</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C7661</td><td>a partir de tendón de cola de rata (dispersión soluble) o casero (ver Rajan et al., ref.#14)</td></tr><tr><td>Fibrinógeno (liofilizado)</td><td>Sigma-Aldrich&nbsp;</td><td>F8630</td><td>Tipo I-S, 65 - 85% de proteína con &ge; 75% de proteína es coagulable</td></tr><tr><td>Trombina</td><td>EMD Chemicals Inc.</td><td>605157</td><td>&nbsp; Gibbstown, Nueva Jersey; Unidades NIH/mg de peso seco&nbsp;</td></tr><tr><td>Factor de crecimiento reducido Matrigel&nbsp;</td><td>Corning</td><td>356234</td><td>anteriormente de BD Biosciences</td></tr><tr><td>Aprotinin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A6279&nbsp;</td><td>&nbsp; solución a 5 - 10 T UI/ml (Unidad de inhibidor de tripsina)&nbsp;</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; Microcucharas</td><td>Fisher Scientific 2140115</td><td></td><td>Fisherbrand Handi-Hold Microespátula placa de</td></tr><tr><td>96 pocillos, base redonda</td><td>Sarstedt</td><td>3925500</td><td></td></tr><tr><td>Placa de 24 pocillos</td><td>Sarstedt</td><td>3922</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco's Eagle's Medium modificado</td><td>Sigma Chemical, Co.</td><td>D5546</td><td>DMEM</td></tr><tr><td>Suero Fetal Bovino</td><td>VWR</td><td>CAA15-701</td><td>FBS, origen canadiense.</td></tr><tr><td>Tripsina-EDTA</td><td>Sigma Químico, Co.</td><td>T4049</td><td></td></tr><tr><td>Hank' s Solución salina equilibrada &nbsp;</td><td>Sigma Chemical, Co.</td><td>H8264</td><td>HBSS</td></tr></tbody></table>

tridimensional ensayo de cultivo para explorar invasividad de las células del cáncer y la formación de tumores satélite

Three-Dimensional Culture Assay to Explore Cancer Cell Invasiveness and Satellite Tumor Formation

cultivo de células de mamíferos en monocapas se utiliza ampliamente para estudiar diversos procesos fisiológicos y moleculares. Sin embargo, este enfoque para estudiar las células en crecimiento a menudo genera artefactos no deseados. Por lo tanto, el cultivo de células en un entorno de tres dimensiones (3D), a menudo el uso de componentes de la matriz extracelular, surgió como una alternativa interesante debido a su estrecha similitud con el nativo en el tejido vivo o un órgano. Hemos desarrollado un sistema de cultivo celular 3D utilizando dos compartimentos, a saber, (i) un compartimiento central que contiene las células cancerosas embebidas en una actuación gel de colágeno como un tumor macrospherical pseudo-primaria y (ii) un compartimento libre de células periférica hecha de un gel de fibrina, es decir, un componente de la matriz extracelular diferente de la utilizada en el centro, en el que las células cancerosas pueden migrar (frente de invasión) y / o formar tumores microesféricas representan tumores secundarios o satélite. La formación de tumores de satélite en el compartimiento periférico esnotablemente correlacionada con la agresividad conocido u origen metastásico de las células tumorales nativas, lo que hace que este sistema de cultivo 3D único. Este enfoque de cultivo celular podría considerarse para evaluar la invasividad del cáncer celular y la motilidad, las interacciones célula-matriz extracelular y como un método para evaluar las propiedades de fármacos anti-cáncer.

Como se mencionó anteriormente, una característica interesante de este ensayo de cultivo de células 3D es que las células cancerosas no sólo pueden migrar desde el tapón de colágeno al gel de fibrina adyacentes, sino también establecer tumores secundarios (estructuras por ejemplo, vía satélite tumorales-like). Esto puede observarse directamente con un microscopio de contraste de fase invertida a bajas y altas magnificaciones a través del espesor de gel, especialmente con una dis...

Las células cancerosas se incrustan en un gel de colágeno y luego se intercalan en un gel de fibrina acelular para generar un sistema de cultivo 3D en el que se puede monitorear la invasividad y la formación de tumores satélite.

Tridimensional Ensayo de Cultivo para explorar invasividad de las células del cáncer y la formación de tumores satélite

Mammalian cell culture in monolayers is widely used to study various physiological and molecular processes. However, this approach to study growing cells ...

El objetivo general de este procedimiento es atrapar células cancerosas embebidas en colágeno dentro de un gel de fibrina para generar un sistema de cultivo 3D destinado a la monitorización de la invasividad y formación de tumores satélites. Nuestro sistema de imagen 3D puede ofrecer nuevas vías para investigar diversas células y muchos variantes clave durante la apoptosis o migración de células cancerosas o para evaluar la eficacia frente a la pérdida de células cancerosas. Una característica atractiva de este modelo de cultivo celular 3D es la capacidad de modificar la concentración de la matriz extracelular o utilizar otra matriz extracelular para el ensamblaje del sistema 3D.La procedura será demostrada por Marie-France Cote, asistente de investigación en mi laboratorio, y Audrey Turcotte, una estudiante de posgrado bajo mi supervisión. Comience mezclando colágeno tipo uno de tendón de cola de rata liofilizado durante cinco mezclas de dos minutos a velocidad alta para dispersar uniformemente el colágeno.Mientras se incorpora el colágeno, recolecte las células tumorales de interés con la solución enzimática de desprendimiento adecuada. A continuación, realice la exclusión con azul de tripano en la numeración. Diluya las células disociadas hasta una concentración de 50.000 células por tapón en DMEM.Cuando el colágeno esté listo, agregue rápidamente 1,250,000 células a la solución de colágeno mediante pipeteo para dispersar homogéneamente las células. Inmediatamente, distribuya 200 microlitros de la suspensión celular individual en cada pocillo de una placa de 96 pocillos. Toque suavemente la placa sobre la superficie del área de trabajo después de cada adición para eliminar cualquier burbuja de aire y distribuir uniformemente la solución dentro de los pocillos.Una vez que se hayan agregado todas las células, coloque la placa en un incubador a 37 grados Celsius durante al menos dos horas, añadiendo 100 microlitros de medio de cultivo a cada pocillo después de las primeras dos horas si las células se van a cultivar durante la noche. Para preparar la primera capa de gel de fibrina, deje que el fibrinógeno liofilizado alcance la temperatura ambiente antes de abrir el vial, con el fin de evitar la formación de cristales de hidrato. A continuación, transfiera el fibrinógeno a un vaso de precipitados de vidrio y agregue HBSS a 37 grados Celsius gota a gota sobre el polvo para solubilizar los fragmentos de fibrinógeno.A continuación, utilice una espátula para deshacer los trozos más grandes de proteína, agitando el vaso de vez en cuando según sea necesario para facilitar la mezcla. Pipetee la suspensión varias veces para disolver la proteína restante y filtre esterilice la solución a través de un filtro de 22 micrones. Luego, cubra inmediatamente la superficie de cada pocillo de una placa de 24 pocillos con 200 microlitros de fibrinógeno, teniendo cuidado de evitar burbujas de aire.Una vez que todos los pocillos hayan sido recubiertos completamente, incline la placa a un ángulo de 45, luego agregue 1.5 microlitros de solución de trombina en el centro de un pocillo y agite suavemente la placa horizontalmente durante uno o dos segundos. Después de tratar cinco pocillos más con trombina de la misma manera, coloque la placa en una posición horizontal estable bajo una cabina de flujo laminar durante cinco a 10 minutos, hasta que las soluciones formen gel. Para la colocación inmediata del tapón de colágeno, incline cuidadosamente la placa para confirmar que los geles de fibrina se hayan polimerizado completamente.Luego, coloque la placa de 96 pocillos con tapones de gel de colágeno junto a la placa de 24 pocillos con geles de fibrina y agregue una gota de HBSS en cada pocillo con tapón de colágeno. A continuación, utilice una microespátula para transferir un solo tapón de colágeno al centro de cada una de las primeras capas de gel de fibrina en la placa de 24 pocillos. Cuando se hayan transferido todos los tapones, agregue 300 microlitros de solución de fibrinógeno a cada pocillo, seguido por la adición de 2,25 microlitros de trombina tal como se acaba de demostrar.Para recubrir los tapones de colágeno con una capa delgada de membrana basal con factores de crecimiento reducidos antes de su colocación, transfiera cada tapón a un tubo de centrífuga de 1,5 mililitros sobre hielo que contenga 100 microlitros de membrana basal pura con factores de crecimiento reducidos. Después de dos minutos de remojo, transfiera un tapón de colágeno recubierto al centro de cada capa de fibrina e incube los tapones a 37 grados Celsius durante cinco minutos para solidificar la membrana basal con factores de crecimiento reducidos. Luego agregue la segunda capa de fibrina tal como se acaba de demostrar.Cuando los geles estén completamente polimerizados, agregue 400 microlitros del medio de cultivo y suplementos adecuados a cada pocillo. A continuación, añada un agente antifibrinolítico a los pocillos. Incube los cultivos tridimensionales en las condiciones adecuadas para la línea celular tumoral que se esté evaluando.En los días adecuados para alimentar las células, incline la placa entre 30 y 35 grados y apoye una pipeta contra la pared de cada pocillo para aspirar el medio sin perturbar los geles. Luego, agregue 400 microlitros de medio fresco de cultivo celular y agente antifibrinolítico a cada cultivo de gel. Este ensayo de cultivo celular en 3D permite la visualización directa de la migración de células cancerosas desde el tapón de colágeno hacia el gel de fibrina adyacente para la formación de tumores secundarios, lo que posibilita comparar el comportamiento de células metastásicas conocidas con el de células no metastásicas o débilmente metastásicas.Por ejemplo, en este experimento, numerosos tumores satélites se dispersaron aleatoriamente a través del gel de fibrina que contenía la línea celular metastásica B16 F10, mientras que no se observaron tumores satélites para la línea celular B16 F0 débilmente metastásica. En contraste, estas células de carcinoma de glándula mamaria murina, que son poco metastásicas pero muy invasivas localmente, forman un frente de migración que se extiende radialmente hacia el gel de fibrina. Después de 14 días de cultivo, las células de carcinoma de glándula mamaria se separan del frente migratorio para formar estructuras en forma de estrella que se asemejan estrechamente a las estructuras de glándula mamaria.Los agentes quimioterapéuticos pueden probarse en las células cancerosas embebidas, como en este experimento representativo en el que se observó una cantidad creciente de fragmentación del ADN simultáneamente con el aumento de los casos de apoptosis de las células cancerosas inducida por el agente quimioterapéutico. Una vez dominada, esta técnica puede completarse en aproximadamente seis horas o distribuirse a lo largo de dos días, dependiendo del período inicial de incubación del tapón de colágeno.Mientras realizo este procedimiento, es importante prevenir la formación de brechas en la interfaz entre los geles central y periférico, ya que pueden reducir la capacidad de las células cancerosas para invadir el gel de fibrina. Tras seguir este procedimiento, se puede realizar un análisis metalográfico o proteómico en las colonias satélite, los tapones de colágeno o las células cancerosas para identificar la expresión diferencial de genes y proteínas de interés. Tras su desarrollo, esta técnica allanó el camino para que los investigadores en el campo de la biología del cáncer exploraran la migración, la apoptosis, la expresión génica supresora de metástasis y la angiogénesis en una variedad de líneas celulares cancerosas.Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo incrustar células cancerosas en un gel de colágeno y colocarlas entre un gel de fibrina para monitorear la invasividad y la formación de tumores satélites.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Un ensayo para medir cuantitativamente el factor transformador del crecimiento (TGF)-β-inducida por invasión en geles de colágeno en 3 dimensiones se describe. Este ensayo se aprovecha de la serie MCF10A de líneas celulares, que representan diferentes etapas de desarrollo de cáncer de mama. Este método puede ser aprobada para su uso con otras líneas celulares y podrían ser utilizados para investigar otras posibles activadores o inhibidores de la invasión.

Ensayo esferoide para medir TGF-β inducida por invasión

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Ensayo de membrana basal de cultivo en 3D: cultivo de células cancerosas en matriz de proteínas de membrana basal en 3D para estudiar la invasión celular

Este video muestra un método para establecer un cocultivo tridimensional de esferoide tumoral y células T. Se prepara un molde de agarosa con micropocillos que contienen esferoides tumorales, seguido de la adición de células T. Después de la incubación, esta configuración permite estudiar la interacción de las células T con los esferoides tumorales en un entorno tridimensional controlado.

Un modelo de cocultivo tridimensional de células T infiltrantes en esferoides tumorales

Este artículo presenta un método para etiquetar fluorescencia colágeno que se puede utilizar tanto para fijar aún más y formación de imágenes en vivo de cultivos de células 3D. También ofrecemos un protocolo optimizado para visualizar las proteínas del citoesqueleto endógenas de las células cultivadas en entornos 3D.

La revelación de la organización del citoesqueleto de las células de cáncer invasivo en 3D

Cultivo tridimensional de células epiteliales mamarias sobre una membrana basal reconstituida es un método útil para recapitular la arquitectura in vivo de la benigna de la mama, y para diferenciar el fenotipo maligno de la fenotipo benigna de la mama. Es importante destacar que este sistema se puede aplicar para estudiar los carcinomas invasivos en otros tejidos.

Tres Culturas dimensionales: una herramienta para estudiar normal Acinar Arquitectura vs transformación maligna de las células de la mama

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La cuantificación de la invasividad de las células del cáncer de mama El uso de un modelo (3D) Tres Dimensiones

Aquí presentamos un protocolo para el cocultivo en tres dimensiones, que es útil para investigar las interacciones multicelulares y la modulación dependiente de la matriz extracelular del comportamiento de las células cancerosas. En este modelo experimental, las células cancerosas se cultivan en geles de colágeno incrustados con fibroblastos asociados al cáncer humano.

Tridimensional Modelo Co-cultura para la interacción tumor estromal

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Tumor Ensayo tridimensional (3D) esferoide Invasion

Este método evalúa la invasión de células cancerosas desde esferoides a una matriz 3D circundante.  Los esferoides se generan mediante el método de cultivo de gota colgante y luego se incrustan en una matriz compuesta por materiales de membrana basal y colágeno tipo I.  Posteriormente, se monitorea la invasión de los esferoides.

Un Cancer Cell esferoide Ensayo para evaluar la invasión en un entorno 3D

Los procesos de invasión del cáncer de vejiga representan oportunidades para el desarrollo terapéutica y biomarcadores. Aquí presentamos un modelo de invasión de cáncer de vejiga que incorpora 3D cultura de esferoides tumorales, proyección de imagen de Time-lapse y microscopía confocal. Esta técnica es útil para definir las características del proceso invasivo y para la detección de agentes terapéuticos.

Sistema del cultivo celular 3-d para invasión de estudiar y evaluar la terapéutica en el cáncer de vejiga

El enfoque presentado evalúa simultáneamente la invasión de células cancerosas en ensayos esferoides 3D y citotoxicidad de células T. Los esferoides se generan en un molde multimicropopo sin andamios. El cocultivo y la incrustación en la matriz de colágeno tipo I se realizan dentro del mismo dispositivo que permite monitorear la invasión de células cancerosas y la citotoxicidad mediada de las células T.

Monitoreo de la invasión de células cancerosas y la citotoxicidad de células T en el cultivo 3D

Aprende a crear un sistema de cultivo tridimensional con células de cáncer embebidas en colágeno y fibrina. Este método permite monitorear la invasividad y formación de tumores satélite en investigación oncológica.

Tridimensional Ensayo de Cultivo para explorar invasividad de las células del cáncer y la formación de tumores satélite

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