Name: Antibody Labeling con tintes fluorescentes utilizando proteína magnética A y Proteína G cuentas (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-09-15T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 48 s
Description: Aprende a marcar anticuerpos con tintes fluorescentes directamente desde medio celular utilizando cuentas magnéticas de proteína A o G. Este método optimiza la química de marcado sin necesidad de purificación previa.

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1. anticuerpo de captura sobre perlas de proteína de alta capacidad magnética A o proteína G Magnética <ol><li> Uniformemente vuelva a suspender las perlas magnéticas de agitación suave. Mantener la suspensión uniforme cuando alícuotas de perlas. </li><li> Añadir 50 l de suspensión de perlas a un tubo de microcentrífuga de 1,5 ml. Colocar en el soporte magnético durante 10 s. Con cuidado eliminar el tampón de almacenamiento. </li><li> Añadir 250 l de tampón de unión del anticuerpo. </li><li> Mezclar y colocar en el soporte magnético durante 10 s. Con cuidado, retire el tampón de unión. </li><li> Añadir 1,0 ml de la muestra que contiene 50 a 100 mg de anticuerpo a las perlas. Las muestras se pueden purificar anticuerpos o anticuerpos en los medios de comunicación celular. </li><li> Mezclar la muestra durante 60 min a RT usando un mezclador de vórtice o mezclador de extremo sobre extremo. </li><li> Colocar el tubo en el soporte magnético durante 10 segundos y retirar el sobrenadante. </li><li> Añadir 250 l de tampón de unión / lavado de anticuerpo y mezclar. Colocar en el soporte magnético durante 10 segundos y retirar tampón de unión / lavado. Repita este sTEP para un total de dos lavados. </li><li> Proceda a la Sección 2 de anticuerpos marcadores utilizando la química de amina o la Sección 3 para anticuerpos marcadores utilizando la química de tiol. </li></ol> 2. El anticuerpo etiquetado Uso de Química Amina <ol><li> Anticuerpo conjugado <ol><li> Añadir 100 ml de tampón de conjugación de amina a las perlas. </li><li> Disolver los colorantes fluorescentes de amina reactiva (AlexaFluor 532-SE) en 10 mg / ml mediante la adición de 100 l de sulfóxido de dimetilo (DMSO) a 1,0 mg de tinte. Mezclar mediante agitación. Hacer esta solución justo antes de su uso. </li><li> Añadir 2,5 l de colorante reactivo con aminas de 100 mg de anticuerpo. Nota: Por lo general se recomienda un exceso molar de 5-20 colorante reactivo. Sin embargo, la cantidad de colorante reactivo añadido a necesita ser optimizado empíricamente dependiendo de tinte deseado a la proporción de anticuerpo y las propiedades de anticuerpos intrínsecos la reacción. </li><li> Mezclar la muestra durante 60 min a RT usando un mezclador de vórtice o mezclador de extremo sobre extremo. Asegúrese de que las cuentas se mantienen en suspensionorte. </li><li> Colocar el tubo en el soporte magnético durante 10 segundos y retirar el sobrenadante. </li><li> Añadir 250 l de tampón de unión / lavado de anticuerpo y mezclar. Colocar en el soporte magnético durante 10 s. Retire y deseche tampón de unión / lavado. Repita este paso para un total de dos lavados. </li></ol></li><li> recuperación de anticuerpos <ol><li> Añadir 50 l de tampón de elución a las perlas. </li><li> Mezclar durante 5 minutos a temperatura ambiente usando un mezclador de vórtice o mezclador de extremo sobre extremo. Asegúrese de que las cuentas se mantienen en suspensión. </li><li> Colocar el tubo en el soporte magnético durante 10 s. Retirar la muestra y la transferencia se eluyó a un nuevo tubo de microcentrífuga que contiene 5 l de tampón de neutralización. </li><li> Repetir el proceso una vez más y aunar las muestras eluidas. </li><li> Cuantificar la concentración de anticuerpos y teñir-a-anticuerpo relación como se describe en la Sección 4. </li></ol></li></ol> 3. El anticuerpo etiquetado Usando tiol Química <ol><li> Reducción de anticuerpos <ol><li> Añadir 250 lde tampón de conjugación de tiol y mezcla. Se coloca el tubo en el soporte magnético durante 10 s. Retirar y desechar el tampón. Repita este paso dos veces. </li><li> Añadir 100 ml de tampón de conjugación de tiol. </li><li> Añadir ditiotreitol (DTT) a una concentración final de 2,5 mM. </li><li> Mezclar la muestra durante 60 min a RT usando un mezclador de vórtice o mezclador de extremo sobre extremo. Asegúrese de que las cuentas se mantienen en suspensión. </li><li> Se coloca el tubo en el soporte magnético durante 10 segundos y desechar el tampón. </li><li> Añadir 250 l de tampón de conjugación de tiol y mezclar. Se coloca el tubo en el soporte magnético durante 10 s. Retirar y desechar el tampón. Repita este paso para un total de dos lavados. </li><li> Añadir 100 ml de tampón de conjugación de tiol. </li></ol></li><li> Anticuerpo conjugado <ol><li> Se disuelve el colorante reactivo con tiol en 10 mg / ml mediante la adición de 100 l de DMSO a 1,0 mg de tinte. Mezclar mediante agitación. Hacer esta solución justo antes de su uso. </li><li> Añadir 2,5 l de colorante reactivo con tiol de 100 mg de anticuerpos anticuerpo. Nota: Por lo general se recomienda un exceso molar de 5-20 colorante reactivo. Sin embargo, la cantidad de colorante reactivo añadido a necesita ser optimizado empíricamente dependiendo de tinte deseado a la proporción de anticuerpo y las propiedades de anticuerpos intrínsecos la reacción. </li><li> Mezclar la muestra durante 60 min a RT usando un mezclador de vórtice o mezclador de extremo sobre extremo. Asegúrese de que las cuentas se mantienen en suspensión. </li><li> Se coloca el tubo en el soporte magnético durante 10 segundos y retirar el sobrenadante. </li><li> Añadir 250 l de tampón de conjugación de tiol y mezclar. Colocar en el soporte magnético durante 10 segundos y retirar el tampón. Repita este paso para un total de dos lavados. </li></ol></li><li> Eluir Anticuerpo <ol><li> Añadir 50 l de tampón de elución a las perlas. </li><li> Mezclar durante 5 minutos a temperatura ambiente usando un mezclador de vórtice o mezclador de extremo sobre extremo. Asegúrese de que las cuentas se mantienen en suspensión. </li><li> Colocar el tubo en el soporte magnético durante 10 s. Retirar la muestra y la transferencia se eluyó a un nuevo tubo de microcentrífuga que contiene 5 l de neutralization tampón. </li><li> Repetir el proceso una vez más y aunar las muestras eluidas. </li><li> Cuantificar la concentración de anticuerpos y teñir-a-anticuerpo relación como se describe en la Sección 4. </li></ol></li></ol> Relación 4. Calcular la Teñir-a-Anticuerpo <ol><li> Medir la absorbancia del conjugado anticuerpo-colorante a 280 nm (A280) y en la λmax para el tinte (Amax). </li><li> Calcular la concentración de anticuerpo: Anticuerpo Concentración (mg / ml) = A280 - (A max × CF) / 1,4 donde CF = factor de corrección del colorante (proporcionado por el fabricante). </li><li> Se calcula la relación de colorantes-anticuerpo a: Teñir-a-Antibody Ratio (DAR) = (A max × 150.000) / Ab Concentración (mg / ml) x ε colorante donde, tinte ε = el coeficiente de extinción del colorante en su absorbancia máxima y el peso molecular del anticuerpo = 150000 Da. </li></ol>

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<li>Acchione, M., Kwon, H., Jochheim, C. M., Atkins, W. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+linker+and+conjugation+chemistry+on+antigen+binding%2C+Fc+receptor+binding+and+thermal+stability+of+model+antibody-drug+conjugates%5BTitle%5D)+AND+%22MAbs%22%5BJournal%5D)">Impact of linker and conjugation chemistry on antigen binding, Fc receptor binding and thermal stability of model antibody-drug conjugates.</a> MAbs. 4 (3), 362-372 (2012).</li>
</ol>

Los autores son empleados de Promega Corporation.

El objetivo de este estudio fue desarrollar un método para marcar anticuerpos, presentes en el medio celular a bajas concentraciones, con una variedad de moléculas pequeñas. Tal método permitirá a un gran número de anticuerpos, durante las primeras etapas de descubrimiento de anticuerpos, para ser etiquetados con moléculas pequeñas y se tamiza usando un ensayo biológicamente relevante. Uno de tales ensayos es el ensayo de internalización de anticuerpos mediada por el receptor, donde la internalización puede variar entre...

Anticuerpos marcados con moléculas pequeñas son, quizás, los reactivos usados ​​más comúnmente en biología 1,2. Los anticuerpos marcados con colorantes fluorescentes y biotina se utilizan ampliamente en formación de imágenes, inmunoensayos, citometría de flujo, transferencias de Western, inmunoprecipitación y entre otras aplicaciones 3-6. Los anticuerpos radiomarcados 3,7 encuentran un amplio uso en formación de imágenes y terapia, anticuerpos marcados con fármacos citotóxicos (ADCs) están ofreciendo nuevas opciones para el tratamiento de cánceres, y dos ADC ya han sido aprobados para su uso terapéutico 8. A pesar de su amplio uso, los métodos para marcar anticuerpos se han mantenido sorprendentemente sin cambios y por lo general involucran a múltiples reacciones y desalado pasos 9-12. métodos de solución funcionan muy bien en los casos en que sólo unos pocos anticuerpos deben ser etiquetados y están disponibles en forma altamente purificada en una concentración elevada y en volúmenes suficientes. Sin embargo, para nuevas aplicaciones como ADCs, hay unatenga que marcar anticuerpos en la fase temprana de hibridoma para que puedan ser evaluados para propiedades biológicamente relevantes, por ejemplo, la internalización de anticuerpos mediada por receptores 13-16. En la etapa de hibridoma, los volúmenes de muestra son limitados, los anticuerpos se expresan en concentraciones bajas y un número de muestras son grandes, por lo tanto, métodos de etiquetado a base de soluciones no son adecuados. Para simplificar y mejorar el rendimiento de los métodos tradicionales de etiquetado de anticuerpos, algunos enfoques alternativos se han propuesto 17,18. Un enfoque consiste en utilizar las proteínas no magnético A perlas de afinidad envasados ​​en pequeñas columnas para capturar anticuerpos seguido de la reacción de marcaje y la elución de la proteína marcada y purificada. Este método se puede utilizar para marcar anticuerpos directamente desde el soporte de células, sin embargo, el uso de columnas puede ser laborioso. Un método basado perla magnética Recientemente se ha informado 19 que elimina el uso de columnas y mejora el rendimiento pero debidoa la capacidad de las perlas de la unión del anticuerpo limitado, solamente nanogramo a cantidades de microgramos bajos de los anticuerpos podría ser etiquetado. Recientemente hemos desarrollado y utilizado de alta capacidad magnética Proteína A y Proteína G cuentas (&gt; 20 mg de IgG humana / ml de perlas sedentarios) para etiquetar los anticuerpos presentes en los medios de comunicación celular con moléculas pequeñas 20. La alta capacidad de las perlas permite decenas a cientos de microgramos de anticuerpo a ser etiquetados convenientemente y la respuesta magnética rápida de las perlas simplifica el manejo y procesamiento de un gran número de muestras en paralelo. El uso de colorantes fluorescentes como sustitutos de moléculas pequeñas, se muestra que el método es compatible con amina y tiol química etiquetado y ofrece altas recuperaciones de anticuerpos marcados y muy puros. Este protocolo y el video que lo acompaña describen etiquetado en cordón de anticuerpos de ratón presentes en los medios de células utilizando cuentas de Proteína G magnética A y proteína. El protocolo esdividida en cuatro secciones: Sección 1 describe la captura de anticuerpos en la perla a partir de muestras biológicas. Después de la captura, el etiquetado de los anticuerpos con colorante fluorescente usando química de amina o tiol usando química se describe en las secciones 2 y la sección 3, respectivamente. Finalmente, la sección 4 se describe el método para el cálculo de la concentración de anticuerpos y el colorante a la proporción de anticuerpos.

<table><tbody><tr><td>Magne Protein A Beads</td><td>Promega Corporation</td> <td>&nbsp; G8781</td><td></td></tr><tr><td>Magne Protein G Perlas</td><td>Promega Corporation &nbsp;</td><td>&nbsp; G7471</td><td></td></tr><tr><td>AlexaFluor 532-SE (Éster de succinimidilo)</td><td>Life Technologies</td><td>A20001</td><td></td></tr><tr><td>AlexaFluor 532-ME (Malemida)</td><td>Life Technologies</td><td>A10255</td><td></td></tr><tr><td>AlexaFluor 647-ME (Maleimida)</td><td>Life Technologies</td><td>A20347</td><td></td></tr><tr><td>Fluoresceína-ME (Maleimida)</td><td>Life Technologies</td><td>F-150</td><td></td></tr><tr><td>Soporte magnético</td><td>Promega</td><td>Z5332</td><td></td></tr></tbody></table>

antibody labeling con tintes fluorescentes utilizando proteína magnética a y proteína g cuentas

Antibody Labeling with Fluorescent Dyes Using Magnetic Protein A and Protein G Beads

Anticuerpos marcados con pequeñas moléculas como colorantes fluorescentes, fármacos citotóxicos, y trazadores radiactivos son herramientas esenciales en la investigación biomédica, inmunodiagnóstico y más recientemente como agentes terapéuticos. Los métodos tradicionales para marcar anticuerpos con moléculas pequeñas requieren anticuerpos purificados a una concentración relativamente alta, implican múltiples etapas de diálisis y han limitado el rendimiento. Sin embargo, varias aplicaciones, incluyendo el campo de Drogas de anticuerpos conjugados (ADC), se beneficiarán de nuevos métodos que permitan el etiquetado de anticuerpos directamente desde el soporte de células. Tales métodos pueden permitir que los anticuerpos que se proyectarán en ensayos biológicamente relevantes, por ejemplo, el ensayo de internalización de anticuerpos mediada por el receptor en el caso de ADCs. A continuación, describimos un (método on-perla) método que permite el etiquetado de pequeñas cantidades de anticuerpos directamente desde el soporte celular. Este enfoque utiliza la alta capacidad de la proteína magnética A y la proteína G perlas de afinidad para capturar anticuerposde los medios de células seguido de marcaje con moléculas pequeñas usando ya sea química de amina o tiol y la posterior elución de los anticuerpos marcados. Tomando tintes fluorescentes como sustitutos de moléculas pequeñas, se demuestra el etiquetado en el cordón de tres diferentes anticuerpos de ratón directamente desde el soporte de células utilizando tanto la química amina y tiol etiquetado. La alta afinidad de unión de anticuerpos a la proteína A y la proteína G asegura recuperaciones altas así como una alta pureza de los anticuerpos marcados. Además, el uso de perlas magnéticas permite múltiples muestras para ser manejados manualmente, con lo que mejora significativamente el rendimiento de etiquetado.

Un esquema para el marcaje de anticuerpos con moléculas pequeñas usando G bolas de alta capacidad de la proteína magnética A y proteína se muestra en la Figura 1. Los anticuerpos capturados en la proteína magnético G cuentas se pueden marcar con moléculas pequeñas, por ejemplo, colorantes fluorescentes, utilizando la química de amina que las etiquetas aminas primarias de los ácidos amino de la lisina o usando química de tiol que las etiquetas en los tioles reducidos en l...

El método en el talón para el marcaje de anticuerpos con moléculas pequeñas permite el etiquetado de una pequeña cantidad de anticuerpos directamente desde el soporte celular. Este método es compatible con la amina y la química de tiol, y puede manejar múltiples muestras en paralelo, de forma manual o utilizando plataformas automatizadas.

Antibody Labeling con tintes fluorescentes utilizando proteína magnética A y Proteína G cuentas

Antibodies labeled with small molecules like fluorescent dyes, cytotoxic drugs, and radioactive tracers are essential tools in biomedical research, ...

El objetivo general de este método es etiquetar anticuerpos con colorantes fluorescentes a partir de muestras purificadas o directamente a partir de medio celular utilizando perlas magnéticas de proteína A o G. Este método puede utilizarse para optimizar la química de etiquetado incluso de pequeñas cantidades de anticuerpos presentes en el medio celular, lo que conduce a una mejor aplicación posterior de los anticuerpos.Las principales ventajas de esta técnica son que los anticuerpos no requieren purificación, se puede utilizar química de aminas o tioles, y el método puede ser automatizado o manual. Comience por resuspender uniformemente las perlas con agitación suave. Luego, agregue 50 microlitros de perlas a un tubo microcentrífugo de 1,5 mililitros.A continuación, coloque el tubo en un soporte magnético. Después de 10 segundos, reemplace cuidadosamente el tampón de almacenamiento con 250 microlitros de tampón de unión de anticuerpos y mezcle bien las perlas. Después de otros 10 segundos, reemplace cuidadosamente el tampón de unión con un mililitro del anticuerpo de interés.Y mezcle la muestra durante 60 minutos a temperatura ambiente. Al final de la incubación, coloque nuevament

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El aislamiento de lábil Multi-complejos de proteínas por In vivo Control Celular entrecruzamiento y Inmuno-cromatografía de afinidad magnética

Este video muestra un método para detectar las cepas de cianobacterias en una muestra ambiental utilizando un chip de microarray de anticuerpos. Las muestras portadoras de varias bacterias interactúan con los anticuerpos impresos, y la inmunotinción con anticuerpos anticianobacterianos marcados con fluoróforos revela la presencia de cepas específicas de cianobacterias a través de la fluorescencia en distintos puntos.

Una técnica para detectar cepas de cianobacterias utilizando un chip de micromatriz de anticuerpos

Este video demuestra la detección cuantitativa de bacterias multiplexadas empleando microesferas de poliestireno magnético carboxilado teñidas en conjuntos distintos. El procedimiento abarca la formación de complejos de perlas y bacterias, la separación magnética y el análisis basado en flujo, lo que permite la cuantificación precisa y simultánea de múltiples bacterias en el mismo pozo de reacción.

Detección cuantitativa multiplexada de bacterias mediante microesferas magnéticas marcadas con colorantes

Se describe un método para etiquetar proteína en la superficie de neuronas vivas usando un anticuerpo policlonal específico para epítopos extracelulares. La proteína unida por el anticuerpo en la superficie celular y, posteriormente, internalizado a través de la endocitosis se puede distinguir de la proteína restante en, o de trata a, la superficie durante la incubación.

Etiquetado diferencial de la superficie celular e internalizado Proteínas después Antibody alimentación de vivo cultivadas neuronas

Las imágenes espectroscópicas electrónicas pueden obtener imágenes y distinguir el ácido nucleico de la proteína con una resolución nanométrica. Se puede combinar con el sistema miniSOG, que es capaz de etiquetar específicamente proteínas marcadas en muestras de microscopía electrónica de transmisión. Ilustramos el uso de estas tecnologías utilizando como ejemplo los focos de reparación de roturas de doble cadena.

Visualización de miniSOG Tagged proteínas de reparación de ADN en combinación con Electron espectroscópico Imaging (ESI)

Aquí, presentamos un protocolo para introducir sondas químicas específicas en un fragmento de anticuerpo mediante la incorporación genética de un aminoácido que contiene azida, y posteriormente acoplar la azida con una sonda química mediante cicloadición de azida-alquino promovida por cepa (SPAAC).

Eficiente y específica del sitio del anticuerpo etiquetado por cicloadición de azida-alquino Strain-promovido

La traducción de la purificación de afinidad ribosoma (TRAP) permite un aislamiento rápido y eficiente del ARNm de traducción específico del tipo de célula. Aquí, demostramos un método que combina la inyección hidrodinámica de cola-vena en un modelo de ratón de repoblación hepática y TRAP para examinar el perfil de expresión de los hepatocitos repoblados.

Perfilado de expresión génica específico del tipo de celda en el hígado del ratón

Aquí introducimos un procedimiento para medir oligomeros proteicos y agregación en lysato celular y células vivas utilizando espectroscopia de correlación de fluorescencia.

Detección de agregación de proteínas mediante espectroscopia de correlación de fluorescencia

Este protocolo describe el marcaje de anticuerpo único (SAL) para resolver la organización espacial a nanoescala de las proteínas de membrana plasmática. Al aprovechar las interacciones acumulativas anticuerpo-epítopo a nivel de molécula única, el SAL de membrana (mSAL) mapea las distribuciones locales de epítopos mientras captura simultáneamente el comportamiento de unión de anticuerpos en el entorno celular nativo.

Microscopía de localización de moléculas individuales de proteínas de membrana utilizando marcaje de anticuerpo único

Hemos desarrollado un vector lentiviral que posee, además de la LTR-Tat respuesta, el elemento de respuesta Rev (RRE) que pueden regular la expresión del gen de una forma del VIH-1 Tat y Rev-dependiente. El vector permite la detección específica de la replicación del VIH en las células vivas a través de la expresión de GFP.

Marcado específico del VIH-1 células positivas utilizando un vector lentiviral Ap-dependientes que expresan la proteína verde fluorescente

Aprende a marcar anticuerpos con tintes fluorescentes directamente desde medio celular utilizando cuentas magnéticas de proteína A o G. Este método optimiza la química de marcado sin necesidad de purificación previa.

Antibody Labeling con tintes fluorescentes utilizando proteína magnética A y Proteína G cuentas

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