Name: Identificación de los ácidos grasos en la Bacillus cereus (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-12-05T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 41 s
Description: Aprende a identificar ácidos grasos en bacterias sin purificación previa mediante cromatografía de gases y espectrometría de masas. Este método utiliza Bacillus cereus para determinar ramificaciones metilo y dobles enlaces, facilitando la taxonomía bacteriana y el estudio de adaptación microbiana en diversas especies.

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Los autores agradecen a Thomas Mison por su apoyo técnico, y para Rachel Kopec para la revisión del manuscrito.

1. Los cultivos bacterianos <ol><li> Preparar un césped de las bacterias (Bacillus cereus cepa ATCC 14579) mediante la difusión de 100 l de un cultivo nocturno de la cepa se incubó a 30 ° C en LB (medio Luria-Bertani), sobre la superficie de una placa de medio de agar LB. Se incuba la placa durante la noche a 30 ° C. </li></ol> 2. ECL: Longitud Equivalente Cadena <ol><li> Calcular ECL como sigue: <img alt="Ecuación" src="/files/ftp_upload/54960/54960eq1.jpg" /> con: i, el soluto de interés; n, el número de carbonos del éster metílico de ácido graso saturado de cadena lineal de elución antes de soluto I; n + 1, el número de carbonos del éster metílico de ácido graso saturado de cadena lineal, eluyendo después de soluto I; Rti, Rtn, Rt (n + 1) los tiempos de retención de los picos de FAME descritos anteriormente. NOTA: Obtener los tiempos de retención de los ésteres de ácidos grasos saturados de cadena recta de metilo mediante la inyección de una mezcla de estándares (BAME). </li></ol> 3. Preparación y análisis FAME <ol><li> Con el fin de obtener los ácidos grasos de lípidos, células bacterianas cosecha raspando colonias de la placa de agar y la transferencia de 40 mg (peso en fresco, el equivalente a 10 9 células viables) de las bacterias en un tubo de vidrio de 10 ml con tapones de rosca y juntas de PTFE. </li><li> Realizar transesterificación mediante el método de enlace de éster de 14,15 detalla a continuación. <ol><li> Añadir 5 ml de 0,2 M de KOH en metanol a las células bacterianas fresco y se incuba a 37 ° C durante 1 hr. Esta reacción consiste en metanólisis alcalina, rompiendo el enlace éster en el lípido y la producción de ésteres metílicos de ácidos grasos. </li><li> Añadir 1 ml de ácido acético 1 M para bajar el pH a 7,0. Comprobar el pH con tiras de prueba de pH. </li><li> Añadir 3 ml de hexano para extraer FAMEs. </li><li> Transferir el sobrenadante (fase orgánica) en tubos limpios y se concentra por evaporación a temperatura ambiente bajo un flujo continuo de nitrógeno para obtener aproximadamente 200 lde extracto. Transferir la muestra en un vial GC con parte. </li><li> Inyectar extractos en una espectrometría de masa de cromatografía de gas del sistema (GC-MS). </li></ol></li></ol> 4. Condiciones GC / MS <ol><li> Inyectar muestras FAME en un instrumento de GC-MS equipado con una columna capilar ZB-WAX (longitud, 30 m; diámetro, 0,25 mm; espesor de la película, 0,25 m). </li><li> Ajuste el puerto de inyección (en el modo sin división) la temperatura a 250 ° C. Utilice el helio como gas portador, con una velocidad lineal de 37 cm / seg. Mantenga la temperatura del horno a 50 ° C durante 1 min, aumentar a 190 ° C a una velocidad de 20 ° C / min, y aumentar aún más a una temperatura final de 230 ° C a una velocidad de 2 ° C / min. </li><li> Para la MS, registrar los espectros de masas de ionización por electrones (IE) a 70 eV, y establecer la adquisición de la corriente de iones total de entre 50 y 400 unidades de masa atómica (UMA) (2 scans / seg). </li><li> Cuando sea necesario, inyectar derivados DMOX y picolinilo bajo la misma condición except el horno programa de temperatura como sigue: DMOX: 50 ° C (1 min), 20 ° C / min hasta 210 ° C y 2 ° C / min hasta 240 ° C (5 min); Picolinilo: 6 ° C (1 min), 20 ° C / min hasta 220 ° C y 2 ° C / min hasta 250 ° C (20 min). </li></ol> 5. picolinilo Ester Preparación a partir de 16 FAME <ol><li> Evaporar el extracto de FAME de la sección 3 con un flujo de nitrógeno (al menos 10 mg de material seco) y se disuelve en 1 ml de diclorometano seco. </li><li> Preparar una solución 1,0 M de ter t-butóxido potásico en tetrahidrofurano. </li><li> Agregar el extracto de FAME y 0,2 ml de 3 piridinametanol a 0,1 ml de solución hechas en el paso 5.2. </li><li> Se calienta la solución a 40 ° C durante 30 min en un vial cerrado. </li><li> Después de enfriar a temperatura ambiente, añadir agua desionizada purificada (2 ml, véase Materiales Tabla) y hexano (4 ml). Mezclar con un vórtice, permiten fase para separar y recoger la fase orgánica. </li><li> Dry mediante la adición de sulfato de sodio anhidro hasta que la fase orgánica es perfectamente claro. Transferirlo a un tubo limpio. Entonces se evapora hasta 200 l. Transferir la muestra en un vial GC con parte. </li></ol> 6. DMOX Preparación a partir de 17 FAME <ol><li> Evaporar el extracto de FAME de la sección 3 con un flujo de nitrógeno (material seco de al menos 10 mg). </li><li> Para el extracto seco FAME, añadir 250 mg de 2-amino-2-metil-1-propanol. Enjuague el recipiente con nitrógeno, añadir un tapón, y lo coloca en un bloque de calentamiento durante la noche a 190 ° C. </li><li> Después de enfriar a temperatura ambiente, añadir 3 ml de diclorometano al tubo, y 5 ml agua purificada desionizada (Ver Tabla de Materiales). </li><li> Agitar durante la separación de fases y extraer la fase acuosa. </li><li> Se lava la fase orgánica con 5 ml de agua. Agitar durante la separación de fases y extraer la fase acuosa. </li><li> En seco mediante la adición de sulfato de sodio anhidro hasta que la fase orgánica es perfectamente clara ytransferirlo a un tubo limpio. Se evapora bajo una corriente de nitrógeno hasta alcanzar un volumen de 200 l. Transferir la muestra en un vial GC con parte. </li></ol>

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</ol>

Los autores declaran que no tienen intereses financieros contrapuestos.

Los perfiles cromatográficos FAs mostrados en la Tabla 1 corresponden a B. cereus ATCC 14579 crecido en una superficie de la placa de agar. Se obtuvieron perfiles similares cuando la bacteria se cultivó en medio líquido aireado a la misma temperatura 8. En el caso de bacterias cultivadas en medio líquido, la biomasa bacteriana se recoge por centrifugación del medio de crecimiento y se puede lavar de acuerdo con los protocolos descritos anteriormente dependiendo de las condiciones de ...

cromatografía Fatty ácido metil éster (FAME) de gases (GC) es un método esencial para la caracterización de los lípidos. Se separa rápidamente y cuantifica los diversos ácidos grasos (FAS) de una muestra después de una etapa de extracción corto. Los derivados de ésteres metílicos son muy volátiles, estable e inerte hacia la columna cromatográfica, evitando así los picos con cola. Su identificación es bastante sencillo cuando la muestra sea de conjuntos combustibles conocidos porque los perfiles cromatográficos se publican o se pueden comparar con los estándares tampoco. Además, no se requiere la inyección repetida de patrones de calibración para la cuantificación de varios conjuntos combustibles, dada su respuesta casi constante a la detección de ionización de llama (FID) 1. Además de la FID, la espectrometría de masas (MS) de detección proporciona un conjunto de información complementaria para confirmar FAME. Sin embargo, cuando se pagan FAME usando ionización electrónica (EI), los espectros resultantes no siempre permiten THe identificación de estructura fina FA. Por ejemplo, la posición de ramificación (es decir, un grupo metilo ramificado) es difícil de predecir debido a que los iones de diagnóstico son difíciles de detectar 1 y el cambio característico en la abundancia de iones objetivo es dependiente de la máquina, evitando el uso de bibliotecas de espectros de masa 2. Otro reto consiste en identificar la posición de doble enlace, porque IE provoca la migración del doble enlace. Por lo tanto, los isómeros FA con diferentes posiciones de doble enlace no pueden ser diferenciadas por sus espectros de masas. Afortunadamente, otros se han desarrollado herramientas para la identificación FA. Por ejemplo, la presencia y la posición de ramificación o de dobles enlaces en las AF pueden conjeturaron mediante el cálculo de la longitud de cadena equivalente (ECL) 3. Otros métodos de derivatización resultan en diferentes espectros de masa, dependiente de la localización de un doble enlace o un grupo metilo ramificado. 4,4-dimetil derivados de oxazolina (DMOX) 4 permiten a EASy la identificación de la posición de los dobles enlaces de ácidos grasos monoinsaturados. 3-pyridylcarbinyl éster (éster picolinilo) derivados permiten la identificación inequívoca de la ubicación de metilo ramificado AF 5. La combinación de la retención cromatográfica (ECL) y espectros de masas (DMOX y picolinilo) información permite la identificación de la mayoría de las AF sin la necesidad de utilizar métodos complejos de purificación, como se requiere para la resonancia magnética nuclear espectro (NMR), el método incontestable para la caracterización estructural 1 . Las bacterias del género Bacillus, que incluyen algunos agentes patógenos humanos y animales, son capaces de colonizar muy diversos nichos y por lo tanto están ampliamente distribuidos en el medio ambiente 6. Entre el género Bacillus, composición FA está influenciada por el nicho ecológico de las especies con las modulaciones en los patrones de FA para adaptarse a una amplia gama de cambios ambientales (por ejemplo, medio de crecimiento, temperatura,pH, etc.) 7-9. Debido a la homogeneidad relativa de la pauta FA través de las especies del género Bacillus durante el crecimiento en condiciones estandarizadas, determinación de la composición FA es uno de los criterios esenciales utilizados para definir las especies de Bacillus. Un atributo único del género Bacillus es la abundancia de las AF de cadena ramificada que contienen 12-17 átomos de carbono 10-12 con la relación entre la ISO y anteiso isómeros son un determinante clave de la adaptación a las condiciones ambientales. Especies de Bacillus también se adaptan a las fluctuaciones ambientales mediante la alteración de la proporción de ácidos grasos insaturados. En algunas especies, tales como Bacillus cereus, dos desaturasas de ácidos grasos crean enlaces dobles en diferentes posiciones de la cadena de alquilo 13 con diferentes roles en la adaptación 9. El ejemplo del género Bacillus ilustra la importancia de identificar con precisión la posición de doble enlace y FA ramificación. Recogervamente, la identificación de patrones de Bacillus FA tiene varias aplicaciones útiles. En este documento, se propone un nuevo enfoque de GC-MS para la identificación de patrones de Bacillus FA que supera las limitaciones inherentes de un análisis clásico GC-MS. Este enfoque innovador puede ser utilizado directamente en crudo material biológico, y consiste en una combinación de técnicas existentes: información sobre los tiempos de retención (ECL) y los espectros de masas de los diferentes derivados de Fas (FAME, DMOX y picolinilo-éster). Usamos la siguiente nomenclatura FA. i, a, y n indican iso, anteiso metilo ramificado, y el ácido graso de cadena lineal, respectivamente. FAs insaturados fueron nombrados por C: d donde C es el número de átomos de carbono en el ácido graso y d es el número de dobles enlaces. Δ x indica la posición del doble enlace, donde se encuentra el doble enlace en el enlace carbono-carbono de orden x, contando desde el extremo ácido carboxílico.

<table><tbody><tr><td>GC/MS</td><td>Shimadzu</td><td>QP2010</td><td></td></tr><tr><td>columna capilar ZB WAX</td><td>Phenomenex</td><td>7HG-G007-11</td><td>30 m x 0,25 mm x 0,25&nbsp; y micro; m</td></tr><tr><td>Metanol Lichrosolv</td><td>VWR</td><td>1.06018.2500</td><td></td></tr><tr><td>hidróxido de potasio</td><td>Aldrich</td><td>P1767</td><td></td></tr><tr><td>THF</td><td>Hipersolv Chromanorm</td><td>28559.320</td><td></td></tr><tr><td>Diclorometano</td><td>Hipersolv Chromanorm</td><td>23373.320</td><td></td></tr><tr><td>Hexano</td><td>Hipersolv Chromanorm</td><td>24575.320</td><td></td></tr><tr><td>3-piridinemetanol</td><td>Aldrich</td><td>P6-680-7</td><td></td></tr><tr><td>tertiobutóxido de potasio</td><td>Aldrich</td><td>156671</td><td></td></tr><tr><td>2-amino-2-metil-1-propanol</td><td></td><td>A-9879</td><td></td></tr><tr><td>MilliQ Academic</td><td>Millipore</td><td>ZMQS50001</td><td></td></tr><tr><td>Mezcla de éster metílico de ácido bacteriano (BAME)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>47080-U Supelco</td><td></td></tr></tbody></table>

identificación de los ácidos grasos en la<em&gt; bacillus cereus</em

Identification of Fatty Acids in Bacillus cereus

Las especies de Bacillus contienen ácidos grasos insaturados (FAS) de cadena y ramificados con diversas posiciones de la rama de metilo (iso o anteiso) y del doble enlace. Los cambios en la composición de la FA juegan un papel crucial en la adaptación de las bacterias a su entorno. Estas modificaciones implican un cambio en la relación de iso frente anteiso ramificada AF, y en la proporción de insaturados AF en relación con las AF saturado, con dobles enlaces creados en posiciones específicas. Identificación precisa del perfil de AG es necesario entender los mecanismos de adaptación de la especie Bacillus. Muchos de los conjuntos combustibles de Bacillus no están disponibles comercialmente. La estrategia propuesta en el presente documento identifica conjuntos combustibles mediante la combinación de la información sobre el tiempo de retención (mediante el cálculo de la longitud de cadena equivalente (ECL)) con los espectros de masas de los tres tipos de derivados FA: ésteres metílicos de ácidos grasos (FAMEs), 4,4-dimetil oxazolina derivados (DMOX), yéster 3-pyridylcarbinyl (picolinilo). Este método puede identificar los conjuntos combustibles sin la necesidad de purificar el desconocido AF. La comparación de los perfiles cromatográficos de FAME preparado a partir de Bacillus cereus con una mezcla comercial de estándares permite la identificación de cadena lineal saturado Fas, el cálculo de la ECL, y las hipótesis sobre la identidad de la otra AF. FAMEs de ramificado, saturado Fas, iso o anteiso, muestre un cambio negativo constante en la ECL, en comparación con AF saturados lineales con el mismo número de carbonos. FAMEs de FAs insaturados pueden ser detectados por la masa de sus iones moleculares, y dan como resultado un cambio positivo en la ECL en comparación con los conjuntos combustibles saturados correspondientes. La posición de ramificación de conjuntos combustibles y la posición doble enlace insaturado de conjuntos combustibles pueden ser identificados por los espectros de masas de ionización de electrones de derivados picolinilo y DMOX, respectivamente. Este enfoque identifica toda la rama saturado desconocidaed AF, insaturados de cadena lineal AF y AF ramificados insaturados del extracto de B. cereus.

La estrategia de identificación FA a partir de células bacterianas se presenta en la Figura 1. Cada paso proporciona información espectral complementaria o información acerca de la retención cromatográfica. Paso 1 consiste en la identificación preliminar FA utilizando una solución estándar. Paso 2 permite la interpretación de FAME EI espectros y su ECL, con el fin de identificar provisionalmente los productos. Paso 3 identifica la ubicación exacta de ramificación de cade...

Proponemos un protocolo para identificar los ácidos grasos sin necesidad de purificarlos. Combina información sobre los tiempos de retención con los espectros de masas de tres tipos de derivados de ácidos grasos: ésteres metílicos de ácidos grasos (FAME), derivados de 4,4-dimetil oxazolina (DMOX) y ésteres de 3-piridilcarbinil (picolinilo).

Identificación de los ácidos grasos en la<em&gt; Bacillus cereus</em

The Bacillus species contain branched chain and unsaturated fatty acids (FAs) with diverse positions of the methyl branch (iso or anteiso) and of the ...

El objetivo general de este protocolo es identificar ácidos grasos de bacterias y determinar la posición de las ramificaciones metílicas y de los dobles enlaces. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la bacteriología, como el papel de los ácidos grasos en la forma en que las bacterias se adaptan a su entorno. La principal ventaja de esta técnica es que no se requiere la proliferación de ácidos grasos.Las implicaciones de esta técnica se extienden hacia la identificación bacteriana debido a la importancia de la composición de ácidos grasos en la taxonomía bacteriana. Aunque este método fue desarrollado en la bacteria Bacillus cereus, también es muy relevante para estudiar otras especies que contienen ácidos grasos de cadena ramificada. En general, durante el desarrollo de este método, tuvimos dificultades.Dado que los métodos actuales de identificación de ácidos grasos no identifican la ramificación metílica en la posición del doble enlace, para comenzar este procedimiento, prepare un césped bacteriano distribuyendo 100 microlitros de un cultivo de la cepa incubado durante la noche, a 30 grados Celsius en LB, sobre la superficie de la placa con medio de agar LB. Incube la placa durante la noche a 30 grados Celsius.Para obtener ácidos grasos lipídicos, recolecte células bacterianas raspando colonias de la placa de agar y transfiera aproximadamente 40 miligramos a un tubo de vidrio de 10 mililitros con tapa roscada y sello de PTFE. Para realizar la transesterificación, agregue 5 mililitros de hidróxido de potasio 0,2 molar en metanol a las células bacterianas frescas.Vortex y incube a 37 grados Celsius durante una hora. A continuación, agregue un mililitro de ácido acético uno molar para reducir el pH a siete. Ahora, agregue tres mililitros de hexano y vortexee durante un minuto para extraer los ésteres metílicos de ácidos grasos o FAME.Transfiera la fase superior a tubos limpios y concentre por evaporación a temperatura ambiente bajo un flujo continuo de nitrógeno para obtener aproximadamente 200 microlitros de extracto de FAME. Luego, transfiera los extractos a viales de GC con insertos. Inyecte los extractos en un sistema de cromatografía de gases acoplado a espectrometría de masas, o GC-MS, equipado con una columna capilar.Establezca la temperatura del puerto de inyección en 250 grados Celsius. Mantenga la temperatura del horno a 50 grados Celsius durante un minuto. Eleve hasta 190 grados Celsius a una velocidad de 20 grados Celsius por minuto y aumente hasta una temperatura final de 230 grados Celsius a una velocidad de dos grados Celsius por minuto.Para la MS, registre los espectros de masas mediante ionización electrónica, o EI, a 70 electronvoltios, y configure la adquisición de la corriente iónica total entre 50 y 400 unidades de masa atómica, o AMU. Disuelva una muestra del extracto de FAME seco en un mililitro de diclorometano anhidro. Luego, agregue la solución del extracto y 0,2 mililitros de 3-piridinemetanol a 0,1 mililitros de potasio tert-butoxido uno molar en tetrahidrofuran.Caliente la solución a 40 grados Celsius durante 30 minutos en un vial cerrado. Después de enfriar la solución a temperatura ambiente, agregue dos mililitros de agua desionizada purificada y cuatro mililitros de hexano. Mezcle la solución durante un minuto con un mezclador de vórtice.Después de permitir que las fases se separen, recolecte la fase orgánica superior. A continuación, agregue sulfato de sodio anhidro hasta que la fase orgánica esté clara. Transfiera la fase orgánica a un tubo limpio y luego evapore la fase orgánica bajo un flujo de nitrógeno hasta alcanzar un volumen de aproximadamente 200 microlitros.Añada 250 miligramos de 2-amino-2-metil-1-propanol a la muestra del extracto de FAME seco. Llene el tubo con nitrógeno y ciérrelo con un tapón. Luego, caliente la solución a 190 grados Celsius durante la noche.Después de enfriar la solución a temperatura ambiente, agregue tres mililitros de diclorometano y cinco mililitros de agua desionizada purificada. Vortexee la mezcla y deje que las fases se separen. Luego, retire la fase acuosa.A continuación, lave la fase orgánica con cinco mililitros de agua. Añada sulfato de sodio anhidro hasta que la fase orgánica esté clara. Después de transferir la fase orgánica a un nuevo tubo de ensayo, evapórela bajo una corriente de nitrógeno hasta alcanzar un volumen de aproximadamente 200 microlitros.El espectro de masas del derivado picolinílico I16 confirma la ramificación metílica. La diferencia de 28 AMU entre los iones en 304 y 332 corresponde a fragmentos generados antes y después del carbono ramificado. Los iones diagnósticos, 113 y 126, característicos de los derivados DMOX, se muestran aquí.El ion molecular 307 es característico del isómero 16:1, y una diferencia de 12 AMU entre 196 y 208 indica un doble enlace en el carbono. La diferencia de 12 AMU ya no se observa cuando el doble enlace está antes del carbono 7. El ion intenso 153, característico de un doble enlace en el carbono 5, y el ion molecular 307 en el espectro de masas de la derivada DMOX identificaron este compuesto como n16 uno delta cinco.El ion 307 del derivado DMOX y el ion 345 del derivado picolinílico indican un isómero de ácido graso 16:1. Una diferencia de 28 AMU indica la posición de ramificación, y una diferencia de 12 AMU para el DMOX y de 26 AMU para el éster picolinílico identifica el doble enlace. A continuación se enumeran los ácidos grasos y los iones diagnósticos correspondientes identificados en Bacillus cereus.Los iones diagnóstico identifican la posición de ramificación metílica y de los dobles enlaces en la cadena de carbono para los derivados DMOX y ésteres picolinílicos. Una vez dominada, esta técnica puede realizarse en dos días, si se lleva a cabo correctamente. Tras seguir este procedimiento, se puede cuantificar el ácido graso mediante GC-MS y la liberación de los derivados FAME.Después de su desarrollo, esta técnica allanó el camino para que los investigadores en el campo de la bacteriología exploraran la diversidad bacteriana y los mecanismos de adaptación bacteriana. Después de ver este video, usted debería tener una buena comprensión de cómo estudiar los ácidos grasos en bacterias, incluyendo los ácidos grasos metilramificados e insaturados. No olvide que trabajar con reactivos puede ser extremadamente peligroso, y siempre se deben tomar precauciones como trabajar con una campana extractora de laboratorio y usar guantes durante la realización de este procedimiento.

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Investigación

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Bioquímica

Recientemente hemos informado de un nuevo enfoque para la generación de sondas fluorogénicos DNAzyme que se pueden aplicar para crear un simple, "mezclar y leer" ensayo de inmunofluorescencia para la detección de bacterias. Estas sondas de ADN especiales catalizar la escisión de un cromóforo modificado con ADN-ARN sustrato quimérico en la presencia de la mezcla bruta extracelular (CEM), producida por una bacteria específica, con lo que la traducción de detección de bacterias en la generación de...

La detección de bacterias mediante ADNzimas fluorogénicos

Fuente: Ginies, C., et al. Identificación de ácidos grasos en Bacillus cereus. J. Vis. Exp. (2016)Este video muestra el proceso de preparación de ésteres metílicos de ácidos grasos (FAME) a partir de muestras bacterianas mediante el tratamiento de la biomasa con una solución alcalina, seguida de separación de fases y evaporación de solventes para el análisis posterior.

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Aislamiento y caracterización del dominio lípido A del lipopolisacárido (LPS) de las bacterias gram-negativas proporciona información sobre los mecanismos de la superficie celular a base de resistencia a los antibióticos, la supervivencia bacteriana y la forma física, y cómo químicamente diversa lípido A las especies moleculares modulan diferencialmente acogida la respuesta inmune innata.

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Un método para la determinación del contenido de ácido graso y la composición en microalgas basado en disrupción mecánica celular, extracción de lípidos a base de disolvente, de transesterificación, y la cuantificación e identificación de los ácidos grasos utilizando cromatografía de gases se describe. Un estándar interno tripentadecanoin se utiliza para compensar las posibles pérdidas durante la extracción y la transesterificación incompleta.

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&lt;em&gt; Caenorhabditis elegan &lt;/ em&gt; es un modelo útil para explorar las funciones de los ácidos grasos poliinsaturados en el desarrollo y la fisiología. Este protocolo describe un método eficiente de complementar la &lt;em&gt; C. elegans &lt;/ em&gt; la dieta con ácidos grasos poliinsaturados.

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El enfoque del marcador trófica ácidos grasos, es decir, la asimilación de ácidos grasos como toda molécula y transferencia en tejido consumidor leves o no modificación, se ve obstaculizada por las brechas de conocimiento en el metabolismo de ácidos grasos de invertebrados de suelo pequeño. Isotopologue perfilado se presenta como una valiosa herramienta para desentrañar las interacciones tróficas.

Perfiles de ácidos grasos 13C Isotopologue proporciona una idea de la transferencia trófica de carbono y metabolismo de los lípidos de los consumidores invertebrados

Este método proporciona un marco para el estudio de la incorporación de ácidos grasos exógenos de fuentes huésped complejas en membranas bacterianas, particularmente Staphylococcus aureus. Para lograrlo, se describen los protocolos para el enriquecimiento de partículas de lipoproteínas a partir de la yema de huevo de pollo y el posterior perfilado de ácidos grasos de fosfolípidos bacterianos utilizando espectrometría de masas.

Aislamiento de partículas de lipoproteínas de yema de huevo de pollo para el estudio de la incorporación de ácidos grasos patógenos bacterianos en fosfolípidos de membrana

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Aquí, presentamos un método cuantitativo de bajo costo que utiliza óxido de deuterio y cromatografía de gases (GCMS) para el análisis de la lipogénesis total de novo de ácidos grasos en tejido adiposo marrón in vivo.

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