Name: La estimulación de la señalización de Notch en el ratón osteoclastos precursores (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-02-28T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 1 s
Description: Aprenda a estimular la señalización de Notch en precursores de osteoclastos de ratón mediante ligandos inmovilizados. Este método revela el papel de Notch en la diferenciación celular y puede adaptarse a otros tipos celulares.

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Este trabajo fue apoyado por el Centro de Trastornos Musculoesqueléticos de la Universidad de Pensilvania (5 P30 AR050950-09), una subvención de la Fundación AO (S-16-12A), el Centro de Investigación Musculoesquelética Traslacional del Centro Médico VA de Filadelfia y un fondo de desarrollo de investigación del departamento de cirugía ortopédica intramuros. JWA cuenta con el apoyo de la beca de Oportunidades Postdoctorales en Investigación y Enseñanza de la Universidad de Pensilvania (PENN-PORT) financiada por el Premio de Investigación Institucional y Desarrollo Profesional del Instituto Nacional de Ciencias Médicas Generales (IRACDA; 5 K12 GM081259-08).

Toda la investigación con animales vertebrados que se llevó a cabo de acuerdo con los protocolos aprobados por la Universidad de Pennsylvania Institucional Cuidado de Animales y el empleo Comisión (IACUC). 1. Medios de cultivo Preparación <ol><li> Preparar α-MEM disolviendo medio polvo mínimo esencial (MEM) y 1,9 g de bicarbonato de sodio en 900 ml de H2O y complementar con 2 mM L-glutamina, 100 unidades / ml de penicilina, 100 mg / ml de estreptomicina y 100 ml calor suero bovino fetal inactivado. Esterilizar el uso de un filtro de 0,22 micras polietersulfona (PES). </li><li> Preparar macrófagos medio completándolo α-MEM con 35 ng / ml recombinante de ratón macrófagos factor estimulante de colonias (M-CSF) </li><li> Para preparar el medio de los osteoclastos, completándolo macrófagos medio con 100 RANKL ng / ml </li></ol> El aislamiento de la célula 2. médula ósea <ol><li> Llene una jeringa de 10 ml con una aguja de calibre 25⅝ por ratón con 10 ml de α-MEM. </li&gt; <li> La eutanasia a los ratones a través de la exposición 10 min a CO 2 a un caudal de 1,3 L / min. Asegurar la muerte de los animales, siguiendo la exposición de CO 2 con dislocación cervical antes de proceder a la disección. </li><li> Utilizando una técnica limpia, diseccionar y separar las tibias y fémures. Desinfectar la piel del ratón con 70% de etanol antes de hacer una incisión a lo largo de la superficie anterior de cada miembro posterior para exponer la tibia y el fémur. <ol><li> Cortar a través de la articulación de la rodilla para liberar el extremo distal del fémur, y cortar a través del fémur como cerca de la pelvis como sea posible. Retire el fémur y limpiar tanto los tejidos blandos como sea posible. Para eliminar la tibia, cortar a través del tobillo y eliminar la mayor cantidad de tejido blando como sea posible. </li></ol></li><li> Sostener el hueso con fórceps y ósea ras en un tubo cónico de 15 ml con 2,5 ml a temperatura ambiente α-MEM que combina rubores ósea de un solo ratón en un solo tubo. NOTA: A ras ósea exitosa va a cambiar la coloración de tque los huesos del rojo al beige. </li><li> Permitir que los desechos que se depositan en el fondo del tubo y transferir el sobrenadante a un limpios de 15 ml tubo cónico teniendo cuidado de evitar la transferencia de los residuos. NOTA: Algunas células también pueden conformarse con los restos ósea. Si se requiere un mayor número de células, sofocos ósea pueden ser filtradas a través de un filtro de células de 70 m en un tubo limpio 15 ml. </li><li> tubo (s) centrifugar a 300 xg durante 5 min a temperatura ambiente para sedimentar las células. </li><li> Vacuum aspirar el sobrenadante y resuspender el sedimento celular en 0,5 ml de amonio-cloruro y potasio (ACK) de tampón de lisis y se incuba a 37 ° C durante 3 min para lisar las células rojas de la sangre. </li><li> Añadir 10 ml de PBS directamente a ACK de células solución, y se centrifuga a 300 xg durante 5 min. NOTA: El sedimento de células previamente roja debería ser ahora de color beige. </li><li> De vacío se aspira el sobrenadante y el sedimento se vuelve a suspender en 10 ml de α-MEM, y la placa en una placa de cultivo de tejidos tratados con 100 mm. Se incuban las células durante la noche a 37 ° C en una atmósfera humidificadaincubadora de cultivo de tejidos. NOTA: el recuento de células no es necesario para este paso. Durante este tiempo, las células adherentes de la médula ósea se adherirán a la superficie de cultivo; poblaciones de células de médula ósea no adherentes permanecerán en suspensión. MCSF no está presente en el medio de cultivo durante esta incubación inicial. </li></ol> 3. Enriquecimiento de osteoclastos precursores <ol><li> Después de la incubación durante la noche de las oleadas de la médula, la transferencia de sobrenadante de cultivo que contiene las células no adherentes a A 50 ml de tubo cónico. NOTA: Las placas de cultivo con células adherentes, que incluyen las células mesenquimales de médula ósea progenitoras, puede ser desechada o alimentado con α-MEM fresco, si se desea, para otros experimentos. NOTA: Los osteoclastos se pueden diferenciar directamente de estas células de médula ósea no adherentes en placas de ellas en placas de cultivo de tejidos tratados a una densidad de 4 x 10 5 células / cm2 en medio de los osteoclastos y medio refrescante cada otro día durante 5 días. </li&gt; <li> Añadir α-MEM a la solución de células no adherente a un volumen final de 18 ml y añadir M-CSF a una concentración final de 35 ng / ml. </li><li> Añadir 3 ml de suspensión de células cada uno para 6 placas de cultivo de suspensión de 60 mm. </li><li> Incubar las placas durante la noche a 37 ° C en una incubadora de cultivo de tejidos humidificado. Durante este tiempo, M-CSF estimula la diferenciación de los macrófagos, que pueden adherirse incluso a las superficies tratadas con cultivo no tejido. </li><li> Después de incubar durante la noche, re-alimentación de los precursores de osteoclastos con 3 ml de medio fresco macrófagos. Esto eliminará las células no adherentes que no se han diferenciado en macrófagos. </li><li> Seguir los precursores de osteoclastos de cultivo a 37 ° C y 5% de CO2 durante 2 días o hasta que los cultivos alcanzan aproximadamente el 70% de confluencia. </li></ol> La diferenciación de los osteoclastos 4. <ol><li> Lavar los precursores de osteoclastos con 5 ml de PBS y el tratamiento de las células con 1 ml de origen marino-proteolítica / enzima colagenolıtica a temperatura ambiente hasta que el cells pueden desprenderse con unos golpecitos suaves de la placa. NOTA: los osteoclastos precursores sólo pueden ser levantadas si se cultivan en placas de suspensión; precursores se unen también firmemente a las superficies tratadas con cultivo de tejido a elevar. Tripsina puede activar los precursores de osteoclastos y debe ser evitado. </li><li> Añadir 4 ml de α-MEM a cada plato células y transferir a un tubo cónico de 50 ml. Recuento de células utilizando un hemocitómetro y diluir las células a una densidad de 5 x 10 4 células / ml y añadir M-CSF a una concentración final de 35 ng / ml y RANKL a una concentración final de 100 ng / ml. </li><li> Se siembran las células a una densidad de 2,6 x 10 4 células / cm 2 en placas de cultivo de tejidos tratados y se incuba a 37 ° C en una incubadora de cultivo de tejidos humidificado durante 2 días. La diferenciación se lleva a cabo típicamente en placas de 24 pocillos, en los que 5 x 10 4 células se sembraron en cada pocillo. </li><li> 2 días después del inicio de las células diferenciación, re-alimentación mediante la sustitución de medio con 1 ml osteoc frescoeste último medio. NOTA: diferenciación de los osteoclastos por lo general será completa dentro de 3 días. osteoclastos resultantes pueden ser TRAP-manchado para facilitar la cuantificación y el análisis morfológico. </li></ol> 5. La estimulación continua de señalización Notch con la superficie recubierta con Jagged1 <ol><li> Suspender anticuerpo de cabra anti-humano IgG Fc en PBS a una concentración de 10 mg / ml (1: 1000 dilución de 10 mg / ml de stock). Añadir la solución de anticuerpo a la superficie de cultivo a una densidad de 1,3 g / cm 2 y se incuba a temperatura ambiente durante 1 hr. En el caso de placas de 24 pocillos, añadir 250 l (2,5 g) por pocillo. </li><li> pozos de aspirado al vacío y volver a llenar con 1 ml de PBS. Repita este paso 2 veces. </li><li> Suspender proteína recombinante de fusión Jagged1-Fc en PBS a una concentración de 10 mg / ml. Añadir solución Jagged1-FC a la superficie de cultivo anticuerpo recubierto a una densidad de 1,3 g / cm 2 y se incuba a temperatura ambiente durante 2 hr. superficies de cultivo recubiertas con anticuerpo ONLy se pueden usar como controles. </li><li> pozos de aspirado al vacío y volver a llenar con 1 ml de PBS. Repita este paso 2 veces. Mantenga PBS en los pocillos hasta justo antes de la siembra de células para evitar que se sequen. </li><li> Seed 2,6 x 10 4 osteoclastos precursores / cm 2 en las superficies recubiertas. la señalización de Notch se verá estimulada de forma continua durante al menos 3 días. </li></ol> 6. Estimulación temporal de señalización Notch con perlas revestidas de Jagged1 <ol><li> Combinar lo siguiente en un tubo de tamaño apropiado: 0,5 g / cm 2 Jagged1-Fc, 21 l / cm perlas de proteína G agarosa 2, y PBS a un volumen final de 1,5 ml. Para preparar un número adecuado de granos JAGGED1 para 1 pocillo de una placa de 24 pocillos, se combinan 1 g Jagged1-Fc, 40 proteína G l perlas de agarosa, y PBS hasta 1,5 ml. </li><li> Incubar tubo con rotación a 4 ° C durante 2 hr. </li><li> Tubo de centrífuga a 300 xg durante 1 min a perlas de pellets. Volver a suspender las perlas en 1,5 ml de PBS. Repita este lavado2 veces más. </li><li> Volver a suspender cuentas JAGGED1 en 130 l / cm2 medio de cultivo y se aplican a las células cultivadas. </li><li> Se incuban las células con perlas a 37 ° C y 5% de CO 2 para el período deseado. Eliminar las perlas con varios lavados de PBS o medio de cultivo. </li><li> Verificar la activación de señalización Notch a través de la medición de la transcripción de genes diana de Notch 10. </li></ol>

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Los autores declaran que no tienen intereses financieros contrapuestos.

Los pasos críticos en el protocolo Cultura y en la diferenciación in vitro de los precursores de osteoclastos proporciona una plataforma útil para la investigación de los mecanismos moleculares de la osteoclastogénesis y la identificación de dianas terapéuticas para la regeneración ósea y la conservación de la masa ósea. Cuando el cultivo de precursores de osteoclastos de ratón, el elemento más crítico es el mantenimiento de los precursores en un estado ingenuo. A medida que l...

La vía de señalización Notch de mamífero es homóloga a la misma vía en Drosophila melanogaster y consta de cuatro receptores transmembrana muesca (Notch1-4) y cinco ligandos unidos a la membrana del Jagged (JAG1 y JAG2) y Delta-como (DLL1, 3, y 4) las familias 1. La señalización de Notch se inicia cuando el receptor Notch en una célula receptora está obligado por ligando en una célula de transmisión 2. Durante este trans-activación, el ligando Notch unida a la membrana produce una fuerza de estiramiento sobre el receptor Notch unida a la membrana 3, 4. La fuerza de estiramiento de ligando de unión induce cambios conformacionales en el receptor Notch que facilitan la escisión extracelular del receptor de TNF por la enzima de conversión (TACE), seguido de un evento de escisión intracelular mediada por una gamma-secretasa complejo (γ-secretasa) que contiene la presenilina. comunicados de γ-secretasa la int Notchdominio racellular (NICD), que se transloca al núcleo donde se forma un complejo de activación de la transcripción con CBF-1-Su (H) -Lag-1 (CSL), mastermind-como (MAML), y los factores específicos del tipo de células para dirigir la expresión de los genes objetivo 5. Los elementos mecánicos del resultado de la activación de la señalización de Notch en la necesidad de métodos únicos de activación de la vía de Notch in vitro. ligandos Notch solubles pueden unirse a Notch receptores, pero no producir fuerzas de estiramiento necesarias para la liberación NICD mientras que al mismo tiempo competitivamente inhibir la unión de ligandos de Notch asociados a células. Por lo tanto, la adición de ligandos de Notch solubles al medio de cultivo puede atenuar normal de señalización 6, 7 Notch. Afortunadamente, los ligandos de Notch pueden inducir la liberación de NICD si se fijan a un sustrato rígido apropiado 5, 8, 9,10. La siembra de células sobre sustratos de cultivo ligando recubiertos o la aplicación de perlas de ligando recubierto a las células puede tanto activar la señalización de Notch, y la elección entre ellos depende principalmente de la temporización deseada de estimulación Notch. Para la activación de señalización Notch inmediata y temporal, como sería deseado durante el punto medio de un ensayo funcional o la diferenciación, el ligando de Notch se puede unir a perlas de agarosa, aplicados a las células cultivadas, y se lavó a cabo en cualquier momento. Para obtener más señalización Notch sostenido desde el comienzo de un periodo de cultivo, placas de cultivo de tejido se pueden recubrir con el ligando antes de la siembra de células. Para los fines de este protocolo, los métodos se llevan a cabo utilizando precursores de osteoclastos de ratón, pero los métodos y variaciones de los métodos descritos aquí son aplicables a una amplia variedad de tipos de células 6, 11, 12, 13, </sup&gt; 14. Los osteoclastos son células terminalmente diferenciadas linage hematopoyéticas que son responsables de la resorción del tejido óseo, y que están implicadas en varios trastornos de pérdida ósea 15. Por lo tanto, en el estudio in vitro de la diferenciación de los osteoclastos a partir de sus precursores de monocitos / macrófagos linaje y los mecanismos moleculares que controlan su función es esencial para la mejor comprensión de los osteoclastos y desarrollo de nuevas terapias de regeneración de hueso. A pesar de que ahora se acepta generalmente que la señalización Notch desempeña un papel positivo en la diferenciación y función de los osteoclastos, las variaciones en la estimulación tanto de señalización Notch y la cultura de los osteoclastos precursores y la diferenciación condujeron a resultados contradictorios inicialmente 16, 17, 18, 19. Un examen más detallado de las diferencias en los métodos y el uso de los recursos genéticosmodelos han aclarado en gran medida el papel de la señalización Notch en la osteoclastogénesis, pero la aplicación de métodos de estimulación y cultura Notch estandarizados podrían prevenir este tipo de controversias en futuros estudios de señalización Notch en otros tipos de células 20, 21, 22, 23. Existen múltiples métodos para el cultivo y la diferenciación de precursores de osteoclastos de ratón, y, como con diferentes métodos para estimular la señalización de Notch, el mejor método dependerá de la pregunta experimental. En este documento, se presentará nuestro método preferido de cultivo fracciones adherentes y no adherentes de células de la médula ELIMINADOS de los huesos largos del ratón. Este método tiene la ventaja de requerir esencialmente ningún equipo especializado y la producción de células que son aplicables a una variedad de métodos de diferenciación.

<table><tbody><tr><td>Ratón recombinante M-CSF</td><td>Biolegend</td><td>576402</td><td>Disponible en varios proveedores, actividad de prueba antes de los experimentos</td></tr><tr><td>Ratón recombinante RANKL</td><td>Shenandoah Biotechnology</td><td>200-04</td><td>Disponible en varios proveedores, actividad de prueba antes de los experimentos</td></tr><tr><td>Humano recombinante Jagged1-Fc</td><td>R& D Systems</td><td>1277-JG-050</td><td>Disponible en múltiples proveedores, actividad de prueba antes de los experimentos</td></tr><tr><td>Proteínas G perlas de agarosa</td><td>InvivoGen</td><td>gel-agg-2</td><td></td></tr><tr><td>Cabra anti-humana IgG Fc</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>109-001-008</td><td></td></tr><tr><td>Medio esencial mínimo en polvo</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M0894</td><td></td></tr><tr><td>Reactivo de disociación celular Accutase</td><td>ThermoFisher</td><td>A1110501</td><td>Se utiliza para levantar los precursores de osteoclastos</td></tr><tr><td>Fosfatasa ácida, kit de leucocitos (TRAP)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>387A-1KT</td><td>Se utiliza para teñir osteoclastos diferenciados</td></tr></tbody></table>

la estimulación de la señalización de notch en el ratón osteoclastos precursores

Stimulation of Notch Signaling in Mouse Osteoclast Precursors

muesca de 'jove_content es un componente clave de múltiples procesos fisiológicos y patológicos. Sin embargo, la naturaleza de la señalización de Notch hace que la investigación in vitro de sus funciones variables y a veces contradictorias sea un desafío. Como componente de la comunicación directa célula-célula con receptores y ligandos unidos a la membrana plasmática, la señalización de Notch no puede activarse in vitro mediante la simple adición de ligandos a los medios de cultivo, como es posible con muchas otras vías de señalización. En cambio, los ligandos Notch deben presentarse a las células en un estado inmovilizado. 
Las variaciones en los métodos de activación de la señalización Notch pueden conducir a diferentes resultados en células cultivadas. En los precursores de osteoclastos, en particular, las diferencias en los métodos de estimulación de Notch y el cultivo y diferenciación de precursores de osteoclastos han llevado a un desacuerdo sobre si la señalización de Notch es un regulador positivo o negativo de la diferenciación de osteoclastos. Si bien las comparaciones más cercanas de la diferenciación de osteoclastos en diferentes condiciones de estimulación de Notch in vitro y modelos genéticos han resuelto en gran medida la controversia sobre la señalización de Notch y los osteoclastos, los métodos estandarizados de estimulación continua y temporal de la señalización de Notch en células cultivadas podrían prevenir tales discrepancias en el futuro.
Este protocolo describe dos métodos para estimular la señalización de Notch específicamente en precursores de osteoclastos de ratón cultivados, aunque estos métodos deberían ser aplicables a cualquier tipo de célula adherente con ajustes menores. El primer método produce una estimulación continua de la señalización de Notch e implica la inmovilización del ligando de Notch en una superficie de cultivo de tejidos antes de la siembra de las células. El segundo, que utiliza el ligando Notch unido a perlas de agarosa, permite la estimulación temporal de la señalización de Notch en células que ya están adheridas a una superficie de cultivo. Este protocolo también incluye métodos para detectar la activación de Notch en precursores de osteoclastos, así como marcadores transcripcionales representativos de la activación de la señalización de Notch.

El objetivo de este método es que la cultura y estimular la señalización Notch en los precursores de osteoclastos. Cuando está debidamente cultivadas, precursores de osteoclastos exhiben una morfología en forma de huso principalmente alargada con citoplasma lisa (Figura 1A). Se debe tener cuidado para evitar la activación inmunológica de los precursores de osteoclastos. Tras la activación, los precursores extienden y se aplanan con espumosa citoplasma (Figura 1B)...

Notch de 'jove_content es una forma de comunicación celular que se basa en el contacto directo entre células. Para inducir correctamente la señalización de Notch in vitro, los ligandos de Notch deben presentarse a las células en un estado inmovilizado. Este protocolo describe los métodos para la estimulación in vitro de la señalización de Notch en precursores de osteoclastos de ratón.

La estimulación de la señalización de Notch en el ratón osteoclastos precursores

Notch signaling is a key component of multiple physiological and pathological processes. The nature of Notch signaling, however, makes in vitro ...

El objetivo general de este procedimiento es observar los efectos de la estimulación de la señalización Notch en diferentes momentos durante el proceso de diferenciación de osteoclastos. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la biología celular, tales como: ¿Cómo cambia el papel de la señalización Notch durante un proceso celular? La principal ventaja de esta técnica es su versatilidad, que permite adaptarla a otras células o ligandos de Notch. Aunque este método puede proporcionar información sobre la diferenciación de osteoclastos, también puede aplicarse a otros procesos, como la supervivencia celular, la proliferación o la diferenciación de otros tipos celulares. Comience el procedimiento inmovilizando un ratón en posición supina y desinfectando la piel con etanol al 70 por ciento. A continuación, realice una incisión a lo largo de la superficie anterior de una de las extremidades traseras para exponer la tibia y el fémur.A continuación, realice una incisión a través de la articulación de la rodilla para liberar el extremo distal del fémur. Retire el fémur cortando por el extremo del hueso cerca de la pelvis y elimine cualquier tejido blando adyace

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Research

Investigación

JoVE Journal

Developmental Biology

Biología del Desarrollo

La diferenciación de las células precursoras en osteoclastos está regulada por citocinas y factores de crecimiento. En este trabajo se describe una nueva técnica de transferencia génica para la diferenciación de osteoclastos in vivo y protocolos de cultivo celular para diferenciar células precursoras en osteoclastos in vitro como método para estudiar los efectos de las citocinas en la osteoclastogénesis.

A Novel In vivo Técnica de transferencia de genes y In vitro ensayos basados ​​en células para el estudio de la pérdida ósea en los trastornos musculoesqueléticos

Los osteoclastos son las células de resorción ósea principal en el cuerpo. La capacidad para aislar los osteoclastos en grandes cantidades ha resultado en avances significativos en el entendimiento de la biología de los osteoclastos. En este protocolo, se describe un método para el aislamiento, cultivo y la cuantificación de la actividad de los osteoclastos in vitro.

Osteoclastos Derivación de médula ósea de ratón

Este manuscrito describe un protocolo para aislar y la cultura osteoclastos en vitro de médula ósea de ratón y para estudiar el papel de lo mamíferos/mecanicista Diana de la rapamicina 1 complejo en la formación de osteoclastos.

Una base de RANKL osteoclasto cultura ensayo de médula ósea de ratón para investigar el papel de mTORC1 en la formación de osteoclastos

Este protocolo describe un método canónico para entender los genes críticos que controlan la actividad osteoclasta in vivo. Este método utiliza un modelo de ratón transgénico y algunas técnicas canónicas para analizar el fenotipo esquelético.

Análisis de fenotipo esquelético de un modelo de ratón de eliminación condicional de Stat3

El protocolo presenta un método para aislar lisados de proteínas de células enteras de procesos faciales de embriones de ratón disecados o células mesenquimas palatales embrionarias de ratón cultivadas y realizar posterior western blotting para evaluar los niveles de proteína fosforilada.

Aislamiento de lisados de proteínas de células enteras de procesos faciales de ratón y células mesenquimas palatinas cultivadas para el análisis de fosfoproteínas

Aquí, presentamos un procedimiento de ensayo simple y efectivo para ensayos de fosas de reabsorción utilizando placas de cultivo celular recubiertas de fosfato de calcio.

Un protocolo simple de ensayo de fosa para visualizar y cuantificar la reabsorción osteoclástica in vitro

Este estudio proporciona un protocolo para el uso de ratones knockout Stat3 específicos del linaje osteoblástico inducible para estudiar la remodelación ósea bajo fuerza ortodóncica y describe métodos para analizar la remodelación ósea alveolar durante el movimiento dental de ortodoncia, arrojando así luz sobre la biología mecánica esquelética.

Uso de ratones knockout Stat3 específicos del linaje osteoblástico inducible para estudiar la remodelación del hueso alveolar durante el movimiento de los dientes de ortodoncia

Este protocolo presenta la diferenciación de osteoclastos humanos de células madre pluripotentes inducidas (iPSC) y describe métodos para la caracterización de osteoclastos y precursores de osteoclastos.

Diferenciación y caracterización de osteoclastos a partir de células madre pluripotentes inducidas humanas

El modelo de lesión de la médula ósea murina es una herramienta útil para estudiar la osteogénesis postnatal a través de la osificación intramembranosa. Este protocolo quirúrgico simplificado describe el procedimiento de ablación de la médula ósea para la evaluación posterior de la formación de hueso nuevo y las respuestas celulares después de una lesión.

Metodología mejorada para el estudio de la osteogénesis postnatal mediante osificación intramembranosa en un modelo de lesión de médula ósea murina

Este artículo describe la metodología in vivo e in vitro para caracterizar los progenitores de sedimentación tímica mediante el análisis de la cinética de generación, fenotipo y número de su progenie de células T.

Caracterización de tímico Instalarse Progenitores en el embrión de ratón Uso<em&gt; En Vivo</em&gt; Y<em&gt; In Vitro</em&gt; Ensayos

Aprenda a estimular la señalización de Notch en precursores de osteoclastos de ratón mediante ligandos inmovilizados. Este método revela el papel de Notch en la diferenciación celular y puede adaptarse a otros tipos celulares.

La estimulación de la señalización de Notch en el ratón osteoclastos precursores

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