Name: Cinética de la síntesis de ADN de hebra Quedando In Vitro Por el bacteriófago T7 proteínas de replicación (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-02-25T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 14 s
Description: Aprende a examinar la cinética de síntesis de ADN de hebra rezagada usando proteínas de replicación del bacteriófago T7. Este método permite identificar pasos clave durante la síntesis de fragmentos de Okazaki.

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Agradecemos a los miembros del laboratorio C.C.R. por sus comentarios y a S. Moskowitz por la preparación de la figura. Este trabajo fue apoyado por los Institutos Nacionales de Salud Grants F32GM101761 (A.J.H.) y GM54397 (C.C.R.).

NOTA: Siga todas las normativas institucionales con respecto al uso seguro y la eliminación de los materiales radiactivos, incluyendo pero no limitado a, el uso de equipo de protección personal, como guantes, gafas de seguridad, ropa de laboratorio, y escudos de acrílico adecuados. NOTA: El tampón estándar consta de 40 mM HEPES-KOH, pH 7,5, 50 mM de glutamato de potasio, DTT 5 mM, EDTA 0,1 mM (este tampón se pre-hizo a una concentración 5x) y 0,3 mM de cada dNTP. Proteínas de replicación de T7 se purifican como se describe 8, 9, 10. ADN de una sola hebra que contiene un único sitio de reconocimiento de T7 primasa (5&#39;-GGGTC-3 &#39;, 5&#39;-GTGTC-3&#39;, 5&#39;-TGGTC-3 &#39;) se pueden adquirir en una variedad de empresas de síntesis de ADN (la longitud de el ssDNA puede depender de la enzima de elección, para primasa T7, un pentámero es la longitud mínima molde para sintetizar un cebador de longitud completa 11, ya que la críptica C es esencial, sin embargo, si el cebador se va a extender por la polimerasa, nucleótidos adicionales deben estar presentes en el extremo 3 &#39;de la plantilla. Las reacciones se iniciaron mediante la adición de una concentración final de 10 mM MgCl 2 y se incubaron a 25 ° C. El muestreo manual funciona bien para los puntos de tiempo de 5 segundos o más. Si se requieren puntos de tiempo más cortos que eso, se recomienda utilizar un instrumento de flujo rápido de enfriamiento rápido para obtener datos precisos. 1.-rotación múltiple Primer Síntesis de reacción por muestreo manual <ol><li> Antes de iniciar el experimento, alícuota de 2 l de tampón de colorante formamida (93% (v / v) de formamida, EDTA 50 mM, 0,01% xileno cianol y 0,01% de azul de bromofenol) en 8 tubos de polipropileno de 1,5 mL. En general, el número de tubos es igual al número de puntos de tiempo analizados. </li><li> Preparar una mezcla que consiste en 20 l de tampón 1x, 0,1 mM de ATP y CTP, 0,25 mCi / ml [α- 32 P] CTP, 0,1 M SSDplantilla NA, y 0,1 M gp4 (expresado como concentración hexámero - 0,6 M de monómero). </li><li> Incubar la mezcla a temperatura ambiente durante 5 min. </li><li> Retire 2 l de la mezcla usando una pipeta y se mezcla con 2 l de tampón de colorante formamida en un tubo de 1,5 ml preparada en la etapa 1.1 para el control ninguna reacción (tiempo cero). </li><li> Añadir 2 l de 0,1 M MgCl 2 a la mezcla de reacción (a una concentración final de 10 mM). </li><li> Extraiga con las muestras 2 l de las mezclas de reacción utilizando una pipeta en intervalos de 10 s y se mezcla con el tinte de formamida predispensed en tubos de 1,5 ml preparada en el paso 1.1. </li><li> muestras de calor a 95 ° C durante 5 minutos en un bloque de calor. </li><li> Cargar alícuotas de las muestras en un gel desnaturalizante. Los pequeños productos de cebadores tetraribonucleotide sintetizados por la primasa T7 se resuelven bien en un 0,4 mm de espesor 25% de acrilamida: bisacrilamida (19: 1), 3 M de urea, 1x TBE (100 mM Tris-borato, EDTA 1 mM). </li><li> Coloque gel de todo el chromatograPHY papel y la cubierta con una envoltura de plástico. gel seco utilizando un secador de gel. </li><li> Preparar una serie de diluciones del resto de la mezcla de reacción y detectar el mismo volumen cargado en el gel en papel de cromatografía, es decir, detectar 4 l de la dilución si se cargaron 4 l de muestra. NOTA: Esto servirá como la curva estándar para determinar la concentración de los productos formados durante la reacción. Por ejemplo, cinco veces diluciones usando tampón TE (10 mM Tris-HCl, pH 8,0, EDTA 1 mM) funcionan bien, abarca una gama de 1:25 a 1: 15.625 (5 2 -5 6), pero las diluciones deben ser ajustado en función del nivel de actividad. </li><li> Exponer gel seco y estándar utilizando una pantalla PhosphorImager. Cuantificar la radiactividad en la serie de dilución y construir una curva estándar como se describe 8, 12 NOTA: La inclusión de T7 DNA polimerasa a la mezcla de reacción permite que uno EXAmina el uso de cebadores tetraribonucleotide por esta enzima. De manera óptima, la concentración de la polimerasa debe ser saturando para simplificar la interpretación de los datos. Una concentración de la polimerasa de 0,4 M o superiores da buenos resultados. Además, el efecto de otras proteínas, tales como proteínas de unión al ADN de una sola hebra, ya sea en la síntesis de cebador o retraso-strand iniciación se puede examinar de esta manera. </li></ol> 2. Múltiple-rotación Primer Síntesis de reacción usando un instrumento rápido enfriamiento rápido <ol><li> Preparación de mezclas de reacción <ol><li> Preparar 400 l de solución A, que contiene tampón 1x, 0,2 mM hexámero GP4, 0,2 M plantilla ssDNA, dNTPs 0,6 mM, 0,2 mM ATP y CTP (incluyendo 0,5 mCi / ml [α- 32 P] CTP. </li><li> Preparar 400 l de solución B, que contiene tampón 1x y MgCl 20 mM 2. </li></ol></li><li> El funcionamiento del instrumento de flujo rápido enfriamiento rápido <ol><li> Encienda el rapIdentificación del instrumento de flujo enfriamiento rápido; después de que aparezca el menú principal, tipo 7 en el teclado del instrumento para mover el controlador de la jeringa a la posición inicial. </li><li> posición de la jeringa tampón abierta a &quot;CARGA&quot;. </li></ol></li><li> Jeringas de carga de amortiguamiento <ol><li> Adjuntar un tampón que contiene 10 ml de la jeringa al puerto de jeringa unidad. Cambiar la posición de la perilla de la jeringa para &quot;CARGA&quot;. </li><li> El uso de jeringas de 10 ml, llenar tampón instrumento depósito A y B con Tris 10 mM, pH 7,5, EDTA 1 mM y llenar la jeringa C con una solución de enfriamiento rápido (EDTA 250 mM, y 0,2% SDS). Eliminar las burbujas de aire empujando los émbolos de entrada y salida. </li><li> Cambie la posición de la perilla para &quot;disparar&quot;. Tipo 2 para ajustar la posición de la barra de conductor jeringa. Pulse &quot;DISMINUIR&quot; botón para bajar la jeringa hasta tampón sale del bucle de salida: (7-baja de forma continua; 8 a gran paso hacia abajo; 9-pequeño paso hacia abajo). Tipo &quot;ESC&quot; para volver al menú principal. </li></ol></li><li> tubos de lavado <ol><li> attlínea de salida ada a vacío. Cambiar mandos de la muestra a &quot;flush&quot;. Cerrar tampón jeringa mediante el establecimiento de los mandos a la posición horizontal. A su vez en el vacío y moja los bucles 2 ras en H2O durante 10 s, luego sumerja en MeOH durante 10 s. bucles secos por succión de aire para ~ 15 s, o hasta que se seque. </li></ol></li><li> carga de muestras <ol><li> posición de la perilla del cambio de la muestra de &quot;CARGA&quot;. Coloque la solución A en 1 ml de la jeringa. Enchufe jeringa en uno de los puertos de carga de la muestra. Repita el procedimiento para la solución B, y el lugar en el puerto de carga de la muestra opuesta. </li></ol></li><li> Colección de puntos temporales <ol><li> En el menú principal, tipo 1 para la corrida de flujo de enfriamiento. Introduzca el tiempo (s) de reacción y de prensa, &quot;ENTER&quot;. El número de bucle de reacción a utilizar será mostrado. Cambiar al circuito de reacción requerida. Repita el procedimiento de lavado en el paso 2.2.4. </li><li> Vueltas a los botones de muestra &quot;cargar&quot;. Cargar reacción se mezcla en los bucles de muestra hasta justo fuera del compartimiento central de mezcla. Gire todas las perillas de &quot;FIRE &quot;. Confirmar que todos los mandos estén en la posición correcta. </li><li> Colocar tubo de 1,5 ml en el extremo del lazo de la salida. Pulse el botón &quot;GO&quot; para realizar la reacción. Repita el procedimiento de lavado en el paso 2.2.4. Actualizar jeringas tampón A y B hasta que lleguen al conductor. </li><li> Repita los pasos 2.2.6.2-2.2.6.3 para cada punto de tiempo deseado. Excepción: No cargue solución que contiene el reactivo de partida (es decir, MgCl 2 en este caso) cuando apagar el control de tiempo de punto cero. </li><li> Cuando haya terminado la recogida de muestras, introduzca &quot;ESC&quot; para volver al menú principal. Pulse la tecla &quot;7&quot; para volver conductor jeringa búfer a su posición inicial. </li></ol></li><li> Instrumento de limpieza <ol><li> Retire las jeringas mezcla de reacción. Girar el botón de carga de la muestra a la posición &quot;LOAD&quot;. Bajo vacío, lavar cada bucle de muestra con 10 ml de NaOH N 0,2, seguido de 10 ml 0,3 NH 3 PO 4 y 10 ml de MeOH. </li><li> Gire las perillas de jeringa a la posición &quot;LOAD&quot;. Presione hacia abajo en los 3 SYRémbolos inge para recuperar reacción y enfriamiento rápido tampones. Lavar jeringas con 5 ml de H2O al menos dos veces. </li><li> Llenar jeringas de nuevo con 5 ml de H2O y girar las perillas a la posición de &quot;disparo&quot;. Cambiar las posiciones de perilla y encienda el vacío para eliminar el H 2 O. rasante como en el paso 2.2.4. Apaga instrumento. NOTA: Los productos se analizaron como se describe en los pasos 1.7-1.12. Además, ADN polimerasa de T7 y otras proteínas de replicación se pueden añadir en la mezcla de reacción para analizar su efecto sobre la síntesis del cebador o la extensión. </li></ol></li></ol> 3.-rotación con cebador único Síntesis de Reacción NOTA: Single-rotación de los ensayos de imprimación síntesis / extensión se llevan a cabo de manera similar a las reacciones de múltiples volumen de negocios, con algunas diferencias importantes: estos ensayos siguen la conversión de ATP radiomarcado en cebadores o de extensión productos, sin embargo la concentración de sustratos y proteínas son consideraBly superior. Además, con el fin de alcanzar una resolución de milisegundos para permitir el análisis de la reacción de síntesis del cebador, se debe utilizar una máquina de flujo rápido enfriamiento rápido. <ol><li> Preparación de mezclas de reacción. <ol><li> Preparar 400 l de la solución A, que contiene tampón 1x, 3 M hexámero GP4, 6 M ssDNA plantilla, dNTPs 0,6 mM, CTP, 1 y 2 nM de [γ- 32P] ATP. Preparar 400 l de solución B, que contiene tampón 1x y MgCl 20 mM 2. </li></ol></li><li> Operación de flujo rápido enfriamiento rápido <ol><li> Llevar a cabo reacciones como se describe en el paso 2.2. Si se desea, añadir ADN polimerasa de T7 o proteína de unión de T7 sola-ADN de cadena a una concentración de 15 mM y 20 mM, respectivamente. En este caso, los productos de extensión se acumulan en un régimen de tiempo que permite la toma de muestras manual de la reacción. </li></ol></li></ol> Análisis 4. Datos <ol><li> Fit curvas de progreso de producto a lo menos- no linealcuadrados modelos que utilizan el software disponible en el mercado capaces de mínimos cuadrados ajustes y / o integración numérica. Los detalles de la operación variará con el software empleado, pero a continuación son formas generalizadas de ecuaciones utilizadas para el montaje de los datos. </li><li> Determinar la tasa de formación de producto de múltiples reacciones de síntesis de imprimación rotación mediante el ajuste de las curvas de progresar a una ecuación lineal. Si hay curvatura significativa, utilice el método de la tasa inicial de 13, 14 ajustando los datos a una función de un solo exponencial: y = A (e - k t), donde y es la concentración de producto, A es la amplitud de reacción, k se la constante de velocidad observada, t es el tiempo, en segundos. La pendiente de la recta tangente en el tiempo = 0 es la velocidad inicial. NOTA: Ajuste pre-estacionario reacciones de síntesis de imprimación estado a una ecuación lineal o de la ecuación de estado pre-estacionario estallar y = a (e - k buprimer t) + tasa ss t, donde A es la amplitud de reacción, k ráfaga es la constante de velocidad observada para la ráfaga estado pre-estacionario, ss tasa es la ss tasa = k gato de estado estacionario [Enzima]), t es el tiempo , en segundos. Encajan solo volumen de negocios reacciones de síntesis de imprimación curvas a una sola función exponencial y = A progresan (e - k t). En el caso de GP4, ajustar los datos por integración numérica 15, a un modelo con tres etapas de condensación NTP, donde cada intermedio se encuentra en equilibrio con la enzima, el uso de software disponible en el mercado. </li></ol>

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</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

El factor más importante en la realización de estos experimentos es la disponibilidad de enzima purificada de gran actividad. Durante nuestro trabajo con GP4, por ejemplo, se encontró que el almacenamiento de la enzima purificada en tampón (20 mM de fosfato de potasio, pH 7,4, EDTA 0,1 mM, DTT 1 mM) que contiene 50% de glicerol a -20 ° C conduce a una reducción en la actividad específica del preparado durante unos meses. Por lo tanto, ahora flash congelación pequeñas alícuotas de gp4 purificada en 25 mM Tris-HCl, pH 7,5...

La replicación del ADN es una característica conservada de toda la vida celular. Mientras que la identidad y el número de componentes de replicación varían ampliamente, los mecanismos generales se comparten a través de la evolución 1. A continuación, describimos, experimentos cinéticos discontinuos a base de gel, utilizando sustratos radiactivos, dirigidas a la comprensión de la cinética de la síntesis de ADN de hebra retrasada in vitro por los componentes de la replisome T7. La maquinaria de replicación del bacteriófago T7 es muy simple, que consiste en sólo cuatro proteínas (la ADN polimerasa, GP5, y su factor de procesividad, E. coli tiorredoxina, los gp4 bifuncionales primase-helicasa, y la proteína de unión de ADN de una sola hebra, GP2. 5) 2. Esta característica lo convierte en un sistema modelo atractivo para estudiar los mecanismos bioquímicos conservados implicados en la replicación del ADN. Se hace especial hincapié en la formación de cebadores de ribonucleótidos por T7 ADN primasa, una critical paso en la iniciación de la síntesis de ADN. Además, también se puede examinar el uso de estos cebadores por ADN polimerasa de T7 o de otras proteínas de replicación mediante su inclusión en la mezcla de reacción. La T7 primasa-helicasa, GP4, cataliza la formación de cebadores para la síntesis de ADN en secuencias específicas de ADN denominadas sitios de reconocimiento primase, o PRS, (5&#39;-GTC-3 &#39;). La citosina en el PRS es críptica, es esencial para el reconocimiento del sitio, pero no se copia en el producto 3. El primer paso en la síntesis de cebador mediante gp4 implica la formación del dinucleótido pppAC, que luego se extiende a un trímero, y eventualmente a cebadores tetranucleotide funcionales pppACCC, pppACCA, o pppACAC dependiendo de la secuencia en la plantilla 4. Estos cebadores pueden usarse entonces por ADN polimerasa de T7 para iniciar la síntesis de ADN, que es también un proceso gp4 asistida 5, 6. En este sentido, la primasadominio estabiliza los tetraribonucleotides extremadamente cortos con la plantilla, lo que impide su disociación, se dedica ADN polimerasa de una manera conducente a asegurar el cebador / plantilla en el sitio activo de la polimerasa 7. Estos pasos (síntesis de ARN del cebador, de traspaso cebador para la polimerasa, y de extensión) se repiten en múltiples ciclos para replicar el filamento de revestimiento y deben coordinarse con la replicación de la hebra que lleva. Los ensayos descritos aquí son altamente sensibles y pueden realizarse en un marco de tiempo moderado. Sin embargo, son relativamente de bajo rendimiento y gran cuidado debe ejercerse en el uso y desecho de materiales radiactivos. Dependiendo de la velocidad a la que transcurre la reacción, se puede emplear un instrumento de rápido enfriamiento para alcanzar muestras a escalas de tiempo susceptibles de un análisis significativo de los cursos de tiempo de reacción, ya sea en la constante o el estado pre-estacionario. Recientemente, hemos utilizado ensayos descritos aquí para proporcionar evidence de la importancia de la liberación de imprimación desde el dominio de primasa de GP4 en la iniciación de los fragmentos de Okazaki. Además, se encontró evidencia de un papel regulador de la proteína T7, gp2.5 de unión al ADN de una sola cadena, en la promoción de la formación y la utilización eficiente de imprimación 8.

<table><tbody><tr><td>Cristales preestablecidos Tris pH 7.5</td><td>SIGMA</td><td>T4128</td><td></td></tr><tr><td>Tris base</td><td>SIGMA</td><td>93362</td><td></td></tr><tr><td>Ácido L-glutámico sal potásica monohidrato</td><td>SIGMA</td><td>G1501&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Cloruro de magnesio hexahidratado</td><td>Mallinckrodt Chemicals</td><td>5958-04</td><td></td></tr><tr><td>1,4-ditiothreitol</td><td>J.T. Baker</td><td>F780-02</td><td></td></tr><tr><td>Dodecil Sulfato de sodio</td><td>MP Biomedicals</td><td>811030</td><td></td></tr>(<tr><td>Ethylenedinitrilo) Ácido tetraacético, sal disódica, dihidratado</td><td>Mallinckrodt Chemicals</td><td>4931-04</td><td></td></tr><tr><td>[&alpha;-32P] CTP</td><td>PerkinElmer</td><td>BLU508H</td><td>radiactivo, tomar medidas</td></tr> <tr><td>de protección[&gamma;-32P] ATP</td><td>PerkinElmer</td><td>BLU502A</td><td>radiactivo, tomar medidas de protección</td></tr><tr><td>100 mM dATP, dCTP, dGTP, dTTP&nbsp;</td><td>Affymetrix</td><td>77100</td><td>cuatro dNTPs parte del conjunto de</td></tr><tr><td>100 mM ATP y CTP</td><td>Epicentre</td><td>RN02825</td><td>parte del conjunto NTP</td></tr><tr><td>construcciones de ssDNA</td><td>Tecnologías de ADN integradas</td><td>N/A</td><td>secuencias personalizadas&nbsp;</td></tr><tr><td>metanol&nbsp;</td><td>Macron Fine Chemicals</td><td>3017-08</td><td></td></tr><tr><td>formamida</td><td>Thermo Scientific</td><td>17899</td><td></td></tr><tr><td>azul de bromofenol</td><td>SIGMA</td><td>B8026&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Cylene Xyanol&nbsp;</td><td>SIGMA</td><td>X4126&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>acrilamida</td><td>SIGMA</td><td>A9099</td><td>Tóxico</td></tr><tr><td>N,N&prime; -Methylenebisacrylamida</td><td>SIGMA</td><td>M7279&nbsp;</td><td>nocivo</td></tr><tr><td>Urea</td><td>Boston Bioproducts</td><td>P-940</td><td></td></tr><tr><td>Ácido bórico</td><td>Mallinckrodt Chemicals</td><td>2549</td><td></td></tr><tr><td>Instrumento de flujo de enfriamiento rápido&nbsp;</td><td>Kintek Corp.</td><td>RQF-3&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Explorador de Kintek</td><td>Kintek Corp.</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Kaleidagraph&nbsp;</td><td>Software Synergy</td><td>N/A</td><td></td></tr></tbody></table>

cinética de la síntesis de adn de hebra quedando<em&gt; in vitro</em&gt; por el bacteriófago t7 proteínas de replicación

Kinetics of Lagging-strand DNA Synthesis In Vitro by the Bacteriophage T7 Replication Proteins

Aquí proporcionamos protocolos para el examen cinético de la síntesis de ADN de hebra rezagada in vitro por las proteínas de replicación del bacteriófago T7. El replisoma T7 es uno de los sistemas de replicación más simples que se conocen, compuesto por solo cuatro proteínas, lo que es una característica atractiva para los experimentos bioquímicos. Se hace especial hincapié en la síntesis de cebadores de ribonucleótidos por la primasa-helicasa T7, que son utilizados por la ADN polimerasa para iniciar la síntesis de ADN. Debido a que los mecanismos de replicación del ADN se conservan a lo largo de la evolución, estos protocolos deberían ser aplicables, o útiles como trampolín conceptual, para los investigadores que utilizan otros sistemas modelo. Los protocolos descritos aquí son altamente sensibles y un investigador experimentado puede realizar estos experimentos y obtener datos para su análisis en aproximadamente un día. El único equipo especializado requerido es un instrumento de flujo de enfriamiento rápido, pero este equipo es relativamente común y está disponible en varias fuentes comerciales. Sin embargo, los principales inconvenientes de estos ensayos incluyen el uso de radiactividad y el rendimiento relativamente bajo.

Los resultados mostrados en la Figura 1A se obtuvieron como se describe en el paso 1 del protocolo, es decir, mediante el muestreo de forma manual una reacción de síntesis del cebador catalizada por la GP4 en condiciones de múltiples volumen de negocios. Aquí, una gama de productos después de la electroforesis en gel se puede observar mediante el uso de CTP marcada con 32 P en la α-posición en reacciones de síntesis de cebadores <stro...

Describimos ensayos discontinuos sensibles basados en gel para examinar la cinética de la iniciación de la hebra rezagada utilizando las proteínas de replicación del bacteriófago T7.

Cinética de la síntesis de ADN de hebra Quedando<em&gt; In Vitro</em&gt; Por el bacteriófago T7 proteínas de replicación

Here we provide protocols for the kinetic examination of lagging-strand DNA synthesis in vitro by the replication proteins of bacteriophage T7. The T7 ...

El objetivo general de este procedimiento es examinar la cinética de la síntesis del cebador y de la cadena rezagada de ADN. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la replicación del ADN, como la forma en que los cebadores se forman mediante la primasa del ADN, se transfieren a la polimerasa del ADN y son utilizados por ella. La principal ventaja de esta técnica es que permite la identificación de los pasos clave durante la síntesis de los fragmentos de Okazaki.Dado que en este experimento se utilizan materiales radiactivos, se deben seguir todas las regulaciones institucionales respecto al uso seguro y la eliminación de materiales radiactivos. Comience por alícuotas de dos microlitros de tampón de colorante formamida en ocho tubos de polipropileno de 1,5 mililitros, igual al número de puntos temporales que se analizarán. A continuación, prepare una mezcla de 20 microlitros que consista en tampón, ATP, CTP, CTP marcado en el grupo alfa-fosfato con P32, molde de ADN de cadena sencilla y la proteína gen cuatro, o GP cuatro primasa helicasa.Incube la mezcla a temperatura ambiente durante cinco minutos. Después de cinco minutos, use un pipetador para retirar dos microlitros de la mezcla y mézclelos con dos microlitros de tampón de colorante con formamida en uno de los tubos de 1,5 mililitros preparados anteriormente. Este es el control sin reacción.Añada dos microlitros de cloruro de magnesio 0,1 molar a la mezcla de reacción e inmediatamente inicie un cronómetro. En intervalos de 10 segundos, retire manualmente muestras de dos microlitros de la mezcla de reacción y mézclelas con el colorante en formamida en los tubos de 1,5 mililitros. Después de haber recolectado todos los puntos de tiempo, caliente las muestras en un bloque térmico a 95 grados Celsius durante cinco minutos.Cargue alícuotas de las muestras en un gel desnaturalizante para electroforesis. Comience este procedimiento preparando las mezclas de reacción. Prepare 400 microlitros de la solución A que contenga tampón, hexámero GP cuatro, molde de ADN de cadena sencilla, dNTPs, ATP, CTP y CTP marcado en el grupo alfa-fosfato con P32.Prepare 400 microlitros de la solución B, que contiene un tampón X y 20 milimolares de cloruro de magnesio. A continuación, configure el instrumento de flujo con mezcla rápida y parada rápida. Encienda el instrumento y, después de que aparezca el menú principal, pulse siete en el teclado del instrumento para mover el accionador de la jeringa a la posición inicial.Abra la posición de la jeringa del tampón para cargarla. Llene la jeringa C con la solución de parada, luego, utilizando una jeringa de 10 mililitros, llene los depósitos de tampón del instrumento A y B con tampón. Elimine las burbujas de aire empujando los émbolos hacia adentro y hacia afuera.Cambie las posiciones de los mandos para disparar. Gire el mando dos para ajustar la posición de la barra del impulsor de la jeringa. Presione el botón de ajuste hacia abajo para bajar la jeringa hasta que el tampón salga por el bucle de salida.Pulse escape para volver al menú principal. Para lavar el tubo, conecte la línea de salida a un vacío. Cambie los mandos de la muestra para enjuagar.Coloque los mandos en posición horizontal para cerrar la jeringa de tampón. Encienda el vacío, sumerja los dos bucles de lavado en agua durante 10 segundos y luego en metanol durante 10 segundos. Seque los bucles aspirando aire durante aproximadamente 15 segundos, o hasta que estén secos.Para cargar las muestras, cambie la posición del mando de muestra a "carga". Coloque la solución A en una jeringa de un mililitro, conecte la jeringa a uno de los puertos de carga de muestra; de manera similar, coloque la solución B en el puerto de carga de muestra opuesto. Comience la recopilación de puntos temporales escribiendo uno en el menú principal para una corrida de flujo de paro.Introduzca el tiempo de reacción y presione enter. Se mostrará el número de ciclo de reacción que se debe utilizar. Cambie al ciclo de reacción requerido.Después de lavar el tubo como se demostró anteriormente, gire los mandos de muestra para cargar. Introduzca las mezclas de reacción en los bucles de muestra hasta justo antes del compartimento central de mezclado. Gire todos los mandos para disparar y confirme que todos los mandos están en la posición correcta.Coloque un tubo de 1,5 mililitros en el extremo del bucle de salida. Presione inicio para ejecutar la reacción. Después de repetir el procedimiento de lavado del tubo, recargue las jeringas de tampón A y B hasta que toquen el impulsor de las jeringas de tampón.Repita los pasos para realizar la reacción en cada punto de tiempo deseado, con una excepción: no cargue la solución B al detener el control del punto de tiempo cero. Cuando finalice la recolección de muestras, presione escape para regresar al menú principal. Presione siete para devolver el motor de la jeringa de tampón a su posición inicial.Comience la limpieza del instrumento retirando las jeringas de la mezcla de reacción y gire la perilla de carga de muestra a la posición de carga. Bajo vacío, lave cada bucle de muestra con 10 mililitros de hidróxido de sodio, ácido fosfórico y metanol, respectivamente. Presione hacia abajo los émbolos de las tres jeringas para recuperar los tampones de reacción y de extinción.Lave las jeringas con cinco mililitros de agua al menos dos veces. Vuelva a llenar las jeringas con cinco mililitros de agua, gire las perillas a la posición de fuego, encienda el vacío y baje el émbolo mediante el comando del teclado para eliminar el agua. Lave el tubo tal como se demostró anteriormente.Por último, apague el instrumento de flujo de mezcla rápida con detención rápida. Las muestras se analizan posteriormente según se describe en el protocolo escrito. Estos resultados se obtuvieron mediante el muestreo manual de una reacción de síntesis de cebador catalizada por GP cuatro en condiciones de múltiples ciclos de reacción.El precursor marcado CTP muestra la movilidad más alta y migra hacia la parte inferior del gel, seguido por especies que migran más lentamente, correspondientes al colorante y a los tetrarribonucleótidos sintetizados por GP cuatro. Dependiendo de la duración de la incubación y del contexto de la secuencia de la plantilla, pueden observarse productos marcados adicionales correspondientes a oligómeros más largos. Cuando se utiliza un instrumento de parada rápida para examinar la reacción catalizada por GP cuatro en escalas de tiempo que van desde segundos hasta algunos milisegundos, es evidente que la acumulación del cebador no es lineal, sino que presenta un perfil bifásico indicado por la línea continua.Esto sugiere que la formación del producto es rápida y que la liberación es el paso limitante en el estado estacionario. La línea punteada representa una curva de progreso hipotética que resultaría si la formación del cebador por GP cuatro no avanzara con una ráfaga de pre-estado estacionario. Un experimento de síntesis de cebador en un solo ciclo proporciona información sobre la formación y descomposición de especies intermedias durante la conversión del sustrato en producto.Una imagen de gel muestra el curso temporal de la formación de tetrámeros. El gráfico muestra la formación de intermediarios frente al tiempo. Una vez dominada, esta técnica puede realizarse en 90 minutos, si se lleva a cabo correctamente.No olvide que trabajar con reactivos radiactivos puede ser extremadamente peligroso y siempre se deben tomar precauciones, como un blindaje adecuado, al realizar este procedimiento.

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Investigación

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Genetics

Genética

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