Name: Murino descendente anterior (LAD) ligadura de la arteria coronaria: un modelo mejorado y simplificado para el infarto de miocardio (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-04-02T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 39 s
Description: Aprende una técnica mejorada de ligadura de la arteria coronaria descendente anterior en ratones para inducir infarto de miocardio con mínima invasión. Este método permite estudiar la recuperación cardíaca y los efectos genéticos en investigación cardiovascular.

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Este modelo fue desarrollado con el apoyo del Instituto Nacional de Ciencias Médicas Generales (NIGMS)/el Instituto Nacional de Salud (NIH) subvención 1P20GM103652 (Proyecto # 3) (a MRA) y la Asociación Americana del Corazón (AHA) Grant-in-Aid 14GRNT20460291 (a MRA); la subvención del gobierno brasileño CAPES (a KR y FR); y un premio LINK de la Universidad de Brown (a IM). También reconocemos el excelente apoyo técnico de nuestros veterinarios y el personal de las instalaciones para animales.

Este protocolo animal ha sido revisado y aprobado por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales (IACUC) en el Hospital de Rhode Island. 1. La anestesia y la intubación <ol><li> Pesar el ratón para calcular la dosis de medicación para el dolor post-operatorio. </li><li> Coloque el ratón en una cámara de inducción y entregar 4% de isoflurano para 9 - 10 min, seguimiento del animal a lo largo. A su vez en un esterilizador de cuentas caliente de modo que el aparato puede precalentar a aproximadamente 250 ° C. El precalentamiento se llevará a 15 - 20 min. </li><li> Una vez que el ratón alcanza un plano profundo de la anestesia, con una tasa de respiración de aproximadamente 32 respiraciones / min, coloque el supina ratón en un tablero de espuma de poliestireno y el uso de una banda elástica asegurada bajo los incisivos superiores para mantener la boca abierta. Confirmar sedación mediante la realización de una pizca dedo del pie. Coloque un iluminador de alta intensidad por encima de la del ratón de manera que la orofaringe puede ser visualizado. </li><li> El uso de fórceps curvos para abrir la mandíbula y otro parde fórceps para levantar la lengua fuera del camino. Asegúrese de intubar mientras posicionado en o ligeramente por debajo del nivel del ojo con el cuerpo del ratón. Se recomienda el uso de lupas quirúrgicas. </li><li> Visualizar la apertura y cierre de las cuerdas vocales. Cuando está abierto, inserte un calibre 20, 1-en forma intravenosa (IV) de catéter con un introductor de aguja roma-tip. Utilice la aguja para guiar el catéter a la abertura de la tráquea, pero evitar la inserción de la aguja en la tráquea. Verificación de la correcta colocación se puede hacer usando una pipeta de transferencia de plástico. </li><li> Transferir el ratón intubado a una superficie operativo equipado con un dispositivo de calentamiento. Conectar el ratón para un pequeño ventilador de roedores ajustado a un volumen de carrera de 150 l / carrera y una frecuencia de carrera de 130 carreras / min. </li><li> Entregar 2,5% de isoflurano. Verificar la intubación mediante la comprobación de aumento de pecho bilateral. Verificar la anestesia mediante la realización de una pizca dedo del pie. El ratón puede necesitar 5 - 10 min en el ventilador para convertirse en completamente anestesiado. </li></ol><ol><li> Tape abajo del tubo de intubación en el lugar de conexión entre el ventilador y el catéter IV. Pegue las extremidades. Colocar gotas lubricantes estériles en los ojos. </li><li> Recorte el lado ventral izquierdo del tórax con una maquinilla de afeitar eléctrica. Polvo de la piel afeitada con toallitas secas y aplicar una pequeña capa de crema de eliminación de pelo usando un bastoncillo de algodón estéril. La crema debe permanecer en contacto con los folículos pilosos de aproximadamente 30 - 45 s. </li><li> Mientras que los procesos de crema, colocar tres hisopos de algodón estériles en tres tubos de 1,5 ml llenos con Betadine en remojo. El uso de toallitas humedecidas con agua destilada, suavemente limpie la crema y de la piel. </li><li> Limpiar el campo quirúrgico tres veces, alternando Betadine y 70% almohadillas isopropanol preparación estériles, limpieza en un movimiento circular en movimiento desde el centro a la periferia. Coloque un paño estéril con un agujero del tamaño de la cuarta parte sobre el campo quirúrgico del ratón. </li><li> Limpiar el área que rodea el MOUe con 70% de etanol. Verificar la anestesia, una vez más con una pizca dedo del pie. </li></ol> 3. Ligadura LAD <ol><li> Coloque los instrumentos quirúrgicos en autoclave en esterilizador de cuentas caliente precalentado a 250 ° C durante aproximadamente 20 s. Coloque los instrumentos esterilizados en autoclave paño quirúrgico estéril. Don guantes quirúrgicos. </li><li> El uso de fórceps de punta fina para levantar suavemente la piel en un punto aproximadamente 5 mm a la izquierda del cartílago xifoides prominente. Use un escalpelo quirúrgico con una hoja No. 10 para crear una incisión vertical en la piel desde este punto hacia arriba, al nivel del manubrio. </li><li> El uso de fórceps curvos para separar suavemente las capas de piel y músculo. Abra la capa muscular, después de la incisión de la piel. Inserte dos 5-0 suturas de polipropileno a través de la capa muscular, una a cada lado de la incisión, y asegurar las suturas temporalmente con abrazaderas para sujetar la capa muscular abierta. </li><li> Identificar y hacer una incisión en el tercer espacio intercostal, a raíz de laángulo natural de la caja torácica. Retire la cinta de los extremos izquierdo del ratón y asegurar su pata trasera izquierda a la pata trasera derecha con cinta adhesiva. Cortar una pieza de cinta más larga y asegurar su pie delantero izquierdo a la superficie de mando en una posición ligeramente elevada. Limpiar los guantes con etanol al 70%. </li><li> Utilice un retractor para extender suavemente separar las costillas 3 ° y 4 °. Cortar una pequeña sección de una gasa estéril, aproximadamente 1 en x ½ en, y la inmersión en solución salina estéril al 0,9%. Exprima el exceso de solución salina y el uso de fórceps para insertar suavemente la gasa contra el pulmón izquierdo para evitar daño pulmonar accidental durante el procedimiento. </li><li> eliminar suavemente el pericardio delgada con fórceps. </li><li> Tear una pequeña cantidad de algodón de un bastoncillo de algodón estéril y rodar en una pequeña bola. Sumergir esta bola de algodón en solución salina estéril al 0,9% y limpiar suavemente sobre la superficie del corazón para apreciar las arterias. Empuje suavemente la aurícula izquierda hacia arriba y localizar las arterias coronarias bajoNeath. </li><li> Identificar la LAD y pasar una sutura 8-0 nylon bajo la LAD; completa dos tiros para asegurar la ligadura. Si la ligadura se realiza correctamente, el ventrículo izquierdo distal de la voluntad Blanch ligadura. </li><li> El uso de pinzas, retire la gasa insertado anteriormente, y después eliminar suavemente el retractor. Insertar un 6-in, tubo flexible de calibre 25 unida a una aguja de calibre 25 en la cavidad torácica a través de la abertura de toracotomía. Avanzar en aproximadamente 1 - 2 en de tubo en el espacio por encima del pulmón izquierdo. Devolver el ratón a una posición supina y limpiar los guantes con etanol al 70%. </li><li> Usar 5-0 suturas de polipropileno en un patrón interrumpido sencilla para cerrar la caja torácica, manteniendo el tubo en el pecho en su lugar. Retire las dos suturas que sostienen la capa muscular abierta. Usar 5-0 suturas de polipropileno en un patrón continuo sencilla para cerrar la capa de músculo, de nuevo manteniendo el tubo en el pecho en su lugar. </li><li> Adjuntar una jeringa de 1 ml a la aguja de calibre 25 en el tubo de pecho. Tire suavemente hacia arriba en el pasor mientras que la extracción simultáneamente gradualmente el tubo en el pecho de la cavidad torácica con fórceps. Extraer el tubo lentamente, ya que este paso elimina el exceso de aire y la sangre, que se convertiría atrapada de otro modo en la cavidad torácica y el resultado en un neumotórax. </li><li> Una vez que la jeringa está llena, separar la jeringa de la aguja y eliminar los residuos en un vaso de precipitados de residuos o fregadero. Continuar este proceso hasta que el tubo de drenaje torácico está completamente extraído. Asegúrese de que el pecho está cerrado herméticamente. </li><li> Disminuir el isoflurano al 1,5%. Cierre la piel con 4-0 suturas de polipropileno en un patrón interrumpido simple. Gire el vaporizador de isoflurano fuera. </li><li> Administrar 0,1 mg / ml de buprenorfina en 0,9% de solución salina a través de una inyección intraperitoneal (IP). Tópicamente aplicar 2 mg / ml de lidocaína con 2 mg / ml de bupivacaína en 0,9% de solución salina a la incisión. Administrar entre 200 - 500 l de 0,9% de solución salina a través de una inyección subcutánea, la ampliación de la cantidad de solución salina al peso del ratón. </li><li> Esperar 5 min después de administering los medicamentos para el dolor para eliminar el ratón desde el tubo de intubación. Esto ayuda en la transición fuera del ventilador. <ol><li> Si el ratón no tiene un aumento de pecho bilateral vez apagado el ventilador, realice la descompresión de la aguja. Para ello, introducir una aguja estéril de calibre 25 y una jeringa de 1 ml entre las nervaduras 3 y 4 de hasta que entra en la cavidad torácica, indicada por una disminución repentina en la resistencia. Tire hacia arriba suavemente el émbolo para eliminar el exceso de aire. </li></ol></li><li> Cuando el ratón demuestra una tasa de respiración bilateral adecuada y la profundidad y responde a una pizca dedo del pie, colocar el ratón en una jaula de recuperación limpio bajo una lámpara de calor. Proporcionar el ratón con alimentos húmedos y una botella de agua, el seguimiento en una campana de flujo laminar para 15 - 20 min. Monitor para un esfuerzo exagerado para respirar, sangrado excesivo, o de otras complicaciones potencialmente mortales. </li><li> Durante los siguientes tres días, administrar 0,1 mg / ml medicamentos para el dolor de buprenorfina a través de una IP enJection dos veces al día. Monitorear el ratón diaria. </li></ol>

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</ol>

Los autores declaran que no tienen intereses financieros contrapuestos.

Con un uso creciente del modelo de MI en los laboratorios, el procedimiento descrito busca aumentar la tasa de eficiencia y la supervivencia de los ratones y reducir al mínimo su dolor post-operatorio y el malestar. Este protocolo se esfuerza por minimizar la mortalidad al hacer numerosas mejoras en varios aspectos del procedimiento de LAD ligación. Hay algunas distinciones. Algunos estudios de intubación murinos que utilizan ketamina y xilacina junto con isoflurano para la inducción, debido a la ventaj...

Enfermedad coronaria, o ACS, es el evento cardiovascular más prevalente y será considerado la principal causa de morbilidad y mortalidad en todo el mundo en 2020 1. La causa de ACS es la presencia de una trombosis de miocardio debido a la ruptura de una placa aterosclerótica coronaria que bloquea o reduce el flujo de sangre al tejido del corazón 2. Por lo tanto, hay signos clínicos consistentes con la presencia de isquemia miocárdica aguda, tales como infarto de miocardio (MI) 3, 4. MI conduce a una pérdida de masa de los cardiomiocitos y una progresión de la remodelación ventricular patológica, que puede conducir a la disfunción ventricular e insuficiencia cardíaca 5, 6. Una de las maneras más eficaces para el estudio de la CI ha sido para imitar el infarto de miocardio humano en un modelo animal. Esto se consigue mediante la oclusión de la LAD enratones. Usando este modelo, se estudia cómo el corazón se puede proteger contra el daño resultante de la CI. Durante la última década, los investigadores han pasado de utilizar modelos animales más grandes que los animales más pequeños, incluyendo el cambio de ratas a los ratones. El modelo de ratón más pequeño está empezando a ser preferido por muchas razones, incluyendo su pequeño tamaño, gran tamaño de la camada, de bajo coste de mantener, y período de gestación corto, así como para la disponibilidad expansiva de transgénicos y knockout de genes modelos 7. Aunque los ratones son de tamaño pequeño, nuevos instrumentos quirúrgicos diseñados específicamente para ellos han ayudado en este desarrollo. Nuestro método utiliza estos nuevos instrumentos quirúrgicos. Mientras varios métodos implementan una traqueotomía invasiva, utilizamos un método menos invasivo de la intubación endotraqueal. El uso de la iluminación de arriba de la orofaringe, que intubar sin crear ninguna incisión, proporcionando una experiencia más segura y menos traumática para tque los animales. El ratón se coloca entonces en un ventilador y se mantuvo en isoflurano durante todo el procedimiento. Debido a la corta duración de la anestesia producida por la droga, que sólo lleva unos pocos minutos para que el animal se recupere de la anestesia, una vez que se interrumpe. Nuestro modelo quirúrgico también incluye una toracocentesis mínimamente invasiva. La cuidadosa eliminación de la sangre y el exceso de aire de la cavidad torácica usando toracentesis través de la incisión de toracotomía original ha abordado una complicación posoperatoria común de la ligadura de LAD: el neumotórax a tensión. Este método, que elimina la necesidad de las dos incisiones adicionales usados ​​en otros métodos, uno para la traqueotomía y otro para los menos complicaciones post-quirúrgicas toracentesis-ha cedido y ha reducido drásticamente la mortalidad.

<table><tbody><tr><td>Fuente de luz de alta intensidad</td><td>Aparato Harvard</td><td>72-0215</td><td></td></tr><tr><td>Plataforma operativa SurgiSuite</td> Kent <td>Scientific Corporation</td><td>SurgiSuite</td><td>Utiliza una almohadilla calefactora de infrarrojo lejano recargable que funciona con baterías. Cargue durante la noche antes de la cirugía.</td></tr><tr><td>Kit de iluminación LED SurgiSuite</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>SURGI-5003</td><td></td></tr><tr><td>Esterilizador de perlas</td><td>calientes Fine Science Tools</td><td>18000-45</td><td>El precalentamiento tarda de 15 a 20 min. Los instrumentos tardan 20 s en esterilizarse.</td></tr><tr><td>Sistema de anestesia para pequeños roedores</td><td>VetEquip Inc.</td><td>901810</td><td></td></tr><tr><td>Isofluorano</td><td>Piramal Enterprises</td><td>66794-017-10</td><td></td></tr><tr><td>Buprenorfina</td><td>Farmacia del Hospital de Rhode Island</td><td>NDC 12496-0757-1, 12496-0757-5</td><td></td></tr><tr><td>Lupas quirúrgicas</td><td>Roboz</td><td>RS-6687</td><td></td></tr><tr><td>Ventilador para roedores pequeños</td><td>Aparato Harvard</td><td>73-0043</td><td></td></tr><tr><td>Gotas lubricantes</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>19-898-350</td><td></td></tr><tr><td>Maquinilla de afeitar eléctrica</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>CL 9990-1201</td><td></td></tr><tr><td>Crema depilatoria</td><td>Nair</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cinta médica</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>18-999-380</td><td></td></tr><tr><td>Betadine</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>19-027136</td><td></td></tr><tr><td>Toallitas con 70% de isopropanol</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>22-363-750</td><td></td></tr><tr><td>Paños quirúrgicos</td><td>Braintree</td><td>SP-TS</td><td></td></tr><tr><td>Guantes quirúrgicos</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>18999102D</td><td></td></tr><tr><td>5-0 Suturas de polipropileno&nbsp;</td><td>Ethicon</td><td>8630G</td><td></td></tr><tr><td>8-0 Suturas de nylon</td><td>Herramientas de ciencia fina</td><td>12051-08</td><td></td></tr><tr><td>Tubo curado con platino</td><td>Aparato de Harvard</td><td>72-1042&nbsp;</td><td>0,3 mm de diámetro interior x 0,6 mm de diámetro exterior</td></tr><tr><td>0.9% Solución salina</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>19-310-207</td><td></td></tr><tr><td>4-0 Suturas de polipropileno</td><td>Ethicon</td><td>8631G</td><td></td></tr><tr><td>1 CC Jeringa con aguja de calibre 25&nbsp;</td><td>Tijeras Thermo Fisher Scientific</td><td>14-826-100</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Pinzas de Kent Scientific Corporation</td><td>INSS600225</td><td></td></tr><tr><td>de</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>INS700100</td><td></td></tr><tr><td>Hisopos de algodón</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>23-400-118</td><td></td></tr><tr><td>Catéter intravenoso, calibre 20</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>&nbsp; </td><td></td>NC9892181</tr><tr><td>Retractor</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>INS</td> Pinzas de 750369 <td></td></tr><tr><td></td><td>Fine Science Tools</td><td>11003-12</td><td></td></tr><tr><td>Pinzas de disección,</td><td>rectas Kent Scientific Corporation</td><td>INS 700101</td><td></td></tr><tr><td>Pinzas de disección, curvadas</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>INS Pinzas hemostáticas INS 700103</td><td></td></tr>, <tr><td>rectas</td><td>Kent Corporación Científica</td><td>INS 750451</td><td></td></tr><tr><td>Pinzas Hemostáticas, Curvadas</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>INS Pinzas</td> de tejido 750452 <td></td></tr><tr><td></td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>INS 700131</td><td></td></tr><tr><td>Portaagujas</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>INS 600109</td><td></td></tr><tr><td>Tijeras&nbsp;</td><td>Corporación Científica de Kent</td><td>INS 600225</td><td></td></tr></tbody></table>

murino descendente anterior (lad) ligadura de la arteria coronaria: un modelo mejorado y simplificado para el infarto de miocardio

Murine Left Anterior Descending (LAD) Coronary Artery Ligation: An Improved and Simplified Model for Myocardial Infarction

enfermedad isquémica del corazón (EIC), o síndrome coronario agudo (SCA), es una de las principales causas de muerte en los Estados Unidos. IHD se caracteriza por la reducción del suministro de sangre al corazón, lo que resulta en la pérdida de oxígeno a y de la necrosis subsiguiente del músculo del corazón. El modelo MI ha ganado popularidad para su uso como un modelo de isquemia-reperfusión a corto plazo y un modelo de ligadura permanente a largo plazo. A continuación, se describe un método fiable para la ligadura permanente de la LAD. Con el ratón tecnología de ingeniería genética cada vez más avanzada, y con un aumento de la disponibilidad de instrumentos quirúrgicos murinos de calidad, el ratón se ha convertido en un modelo popular para cirugías MI. Nuestro modelo quirúrgico incorpora el uso de un anestésico fácilmente reversible para la rápida recuperación del ratón; una intubación endotraqueal mínimamente invasiva sin la participación de una traqueotomía; y una toracentesis a través del sitio toracotomía original sin crear una incisión adicional en el pecho, como eshecho en algunos otros métodos, para eliminar eficazmente el exceso de sangre y el aire de la cavidad torácica. Este método es relativamente menos invasivo que otros métodos, lo que reduce drásticamente las complicaciones y mortalidad quirúrgicas y post-quirúrgicos y mejora la reproducibilidad.

Los ratones se sacrificaron los veintiocho días después de la cirugía, y los corazones se cosechan y se examinaron. Los ratones se anestesiaron con 50 - 75 mg / kg de ketamina y de 5 - 10 mg / kg de xilazina. Cuando el animal está bajo anestesia adecuada, se abre la cavidad torácica, y utilizando una aguja de calibre 23, cloruro de potasio frío (KCL, 30 mM) se inyecta en la región basal posterior del corazón. El corazón es detenido en la diástole. Para una validación adicional de la liga...

Proporcionamos un método fiable para la ligadura de la arteria descendente anterior izquierda (LAD) en un modelo de ratón. Este método es comparativamente menos invasivo que otros métodos, ya que implica intubación endotraqueal, un abordaje de toracotomía del lado izquierdo y toracocentesis. Este método se puede utilizar como modelo para el infarto de miocardio (IM) agudo y crónico.

Murino descendente anterior (LAD) ligadura de la arteria coronaria: un modelo mejorado y simplificado para el infarto de miocardio

Ischemic heart disease (IHD), or acute coronary syndrome (ACS), is one of the leading causes of death in the United States. IHD is characterized by ...

El objetivo general de este procedimiento es inducir un infarto de miocardio en un ratón mediante la ligadura de la arteria coronaria descendente anterior izquierda. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo cardiovascular, como si la sobreexpresión o la eliminación de ciertos genes puede afectar la recuperación del corazón tras un infarto de miocardio. La principal ventaja de esta técnica es que el procedimiento es menos invasivo que varios otros modelos que simulan el infarto de miocardio, y produce un tiempo de recuperación más rápido con menos complicaciones.Por lo general, las personas nuevas en este método tendrán dificultades porque la intubación endotraqueal y la identificación de la arteria descendente anterior izquierda (LAD) requieren práctica con un instructor capacitado. La demostración visual de este método es fundamental, ya que identificar y evaluar la LAD es difícil de aprender sin experiencia ni entrenamiento previo. Antes de sedar al animal, comience a calentar el esterilizador de cuentas hasta 250 grados Celsius, lo cual puede tardar hasta 20 minutos.Verifique que el ratón esté fuertemente sedado. La frecuencia respiratoria será de aproxim

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Este video muestra cómo utilizar un modelo rápido y fiable para estudiar los procesos patobiológicas y fisiopatológicos de la isquemia miocárdica.

LAD-Ligadura: un modelo murino de infarto de miocardio

El modelo de rata con infarto agudo de miocardio (IAM) es útil para estudiar las consecuencias de un infarto de miocardio en la función cardíaca fisiopatológicos y fisiológicos.

Infarto agudo de miocardio en ratas

El procedimiento quirúrgico utilizado para inducir el infarto de miocardio experimental en ratones comienza con toracotomía izquierda entre la tercera y las costillas cuarta con el fin de visualizar la superficie anterior del corazón y el pulmón izquierdo. La arteria coronaria izquierda se ligó, el pecho se cierra y el ratón se le permite recuperarse de manera espontánea.

Técnica modificada para la ligadura de la arteria coronaria en ratones

Se introduce un método quirúrgico para inducir experimental de isquemia / reperfusión (I / R) lesión para simular el infarto de miocardio (MI) en modelos de ratón que permite una mayor claridad en el posicionamiento de la ligadura en la arteria descendente anterior izquierda (LAD) para aumentar la reproducibilidad de experimentos en ratones MI.

Un modelo murino de isquemia-reperfusión miocárdica lesión a través de la ligadura de la arteria descendente anterior

La insuficiencia cardíaca es la principal causa de hospitalización y una de las principales causas de mortalidad. Se aplica un modelo de ligadura permanente de la arteria coronaria descendente anterior izquierda en ratones para investigar el remodelado ventricular y la disfunción cardíaca después del infarto de miocardio. Se presenta la técnica de mediciones hemodinámicas invasivas en ratones.

La ligadura permanente de la arteria coronaria descendente anterior en ratones: un modelo de remodelación post infarto de miocardio e insuficiencia cardiaca

Aquí se describe un procedimiento quirúrgico que muestra cómo lograr la ligadura permanente de la arteria coronaria descendente izquierda-anterior en ratones. Este modelo es de gran relevancia para investigar la fisiopatología del infarto de miocardio y los procesos biológicos concomitantes.

Modelo de infarto de miocardio murino usando ligadura permanente de la arteria coronaria descendente anterior izquierda

En este trabajo describimos un método sencillo y reproducible que puede inducir infarto de miocardio o lesión por isquemia-reperfusión miocárdica en ratones mediante ligadura de precisión de la arteria coronaria descendente anterior izquierda mediante micromanipulación.

Inducción de infarto de miocardio y lesión por isquemia-reperfusión miocárdica en ratones

En este documento, presentamos un protocolo centrado en el control de calidad de la ligadura de la arteria coronaria descendente anterior izquierda mediante la modificación técnica del procedimiento tradicional en ratas para la investigación de isquemia-reperfusión miocárdica aguda.

Ligadura de la arteria coronaria descendente anterior izquierda para la investigación de isquemia-reperfusión: mejora del modelo a través de modificaciones técnicas y control de calidad

Aquí se presenta un procedimiento quirúrgico para la ligadura permanente de la arteria coronaria izquierda en ratones. Este modelo se puede utilizar para investigar la fisiopatología y la respuesta inflamatoria asociada después del infarto de miocardio.

Ligadura de la arteria coronaria izquierda: un modelo murino quirúrgico de infarto de miocardio

Numerosas manipulaciones genéticas y / o inyecciones intramiocárdica de genes, proteínas, células, y / o los biomateriales se superponen a la dimensión del tiempo en los estudios de agudos de isquemia / reperfusión y la remodelación crónica en ratones. Este video ilustra los procedimientos de microcirugía de la isquemia / reperfusión, la ligadura permanente de la arteria coronaria, y los estudios de inyección intramiocárdica.

Ligadura de las arterias coronarias y la inyección intramiocárdica en un modelo murino de infarto

Aprende una técnica mejorada de ligadura de la arteria coronaria descendente anterior en ratones para inducir infarto de miocardio con mínima invasión. Este método permite estudiar la recuperación cardíaca y los efectos genéticos en investigación cardiovascular.

Murino descendente anterior (LAD) ligadura de la arteria coronaria: un modelo mejorado y simplificado para el infarto de miocardio (Video) | JoVE Journal

Murino descendente anterior (LAD) ligadura de la arteria coronaria: un modelo mejorado y simplificado para el infarto de miocardio

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