19 de agosto de 2017
Este artículo de video ofrece una demostración detallada de los procedimientos necesarios para eliminar con éxito el páncreas de un ratón por disección para análisis histológico y perfiles metabólicos.
El objetivo principal de este artículo en video es proporcionar instrucciones visuales detalladas sobre la disección de un páncreas de ratón. Las instrucciones resultarán útiles para investigadores que estudian modelos murinos de enfermedades pancreáticas humanas y que necesitan extraer el páncreas de ratón mediante disección para análisis histológico o perfilado metabólico. El artículo en video también ofrece instrucciones detalladas para realizar una recolección terminal de sangre mediante punción cardíaca.
Se muestra una mesa de operaciones con los suministros necesarios. Estos incluyen un frasco de vidrio con tapa, un tubo cónico de 15 mL, un par de tijeras quirúrgicas, una botella con pico de 70% de etanol, dos tablas de espuma, dos pinzas, dos jeringas de 1 mL con aguja de calibre 21, dos tubos cónicos de 50 mL, un tubo para centrífuga, un vial criogénico, cuatro campos quirúrgicos, diez alfileres, un dispensador de toallitas esterilizantes y un contenedor para objetos punzocortantes. Se muestra la mesa postoperatoria con los suministros necesarios.
Estos incluyen una balanza analítica, un Dewar de cuatro litros de nitrógeno líquido, un Dewar de boca ancha y poco profundo, un portamatraces flotante, un par de tijeras quirúrgicas, dos pinzas, cinco viales criogénicos y un dispensador de toallitas estériles. Para realizar la eutanasia, primero se coloca al ratón en un frasco de vidrio que contiene una gasa empapada con unas gotas de isoflurano, y luego se tapa con la tapa hasta que el ratón pierda el conocimiento, lo cual generalmente toma aproximadamente un minuto. A continuación, se retira al ratón del frasco de vidrio y se realiza una prueba de pellizco en la pata para asegurarse de que el animal no pueda experimentar molestias.
Si la prueba de pellizco en la pata falla, devuelva el ratón al frasco de vidrio y reemplace la tapa hasta que se pueda realizar con éxito la prueba de pellizco en la pata. Coloque al ratón sobre su espalda y sujete sus miembros a la tabla de espuma quirúrgica, y humedezca el lado ventral del ratón con etanol al 70 %. Pellizque el pelaje cerca de la abertura uretral con la pinza y tire ligeramente hacia arriba.
Realice una incisión a través de la cavidad abdominal, comenzando desde la abertura uretral, siguiendo la línea media y terminando en la barbilla. Cerca del punto inicial de la incisión principal, tome un lado del pelaje y realice otra incisión hacia abajo y en diagonal hacia la pata trasera. Repita este procedimiento de la misma manera en el lado opuesto.
Localice el corazón para realizar la punción cardíaca terminal. Para ello, sujete el esternón con la pinza y corte el diafragma. Corte rápidamente hacia arriba a través de la caja torácica y retire la porción cortada para exponer el corazón latiendo.
Una vez localizado el corazón, retire el pericardio y realice la punción cardíaca terminal con la jeringa. Para una recolección óptima de sangre, utilice el émbolo de la jeringa para imitar la acción de bombeo del corazón y evite aspirar demasiado rápido. Deposite la sangre en el tubo de centrífuga y deseche la jeringa en el recipiente para objetos punzantes.
Después de realizar la punción cardíaca, se lleva a cabo la eutanasia eliminando los tejidos conectivos que unen al corazón. Localice el estómago en el lado izquierdo del ratón. El páncreas tiene el aspecto de un tejido difuso de color más claro que está unido al estómago, al duodeno, a lo largo del intestino delgado y del intestino grueso, y también está conectado al bazo.
Comience a separar suavemente el páncreas del estómago y el duodeno utilizando la pinza. Continúe separando el páncreas del intestino delgado, avanzando desde las secciones del yeyuno e íleon, y finalmente hacia el ciego y el intestino grueso. En el ciego, reposicione la pinza y continúe la separación del páncreas a lo largo del colon restante hacia el recto.
En este momento, es conveniente cortar y eliminar la sección que va desde el estómago hasta la región del colon inmediatamente anterior al recto. Localice el páncreas y el bazo adjunto. Deslice el páncreas hacia el lado derecho del ratón.
Corte las conexiones restantes entre el páncreas y la cavidad torácica para separar completamente el páncreas junto con el bazo adyacente. Retire el páncreas y extiéndalo para su examen. Si se desea, otros órganos pueden ser removidos en este momento.
Después de la extracción, las muestras se trasladan al área posoperatoria. Cada órgano se pesará y luego se colocará en su criovial correspondiente. Registre cualquier irregularidad observada.
Una vez que los órganos estén en los viales criogénicos, colóquelos en la rejilla flotante para microtubos y luego en el Dewar con nitrógeno líquido. Después de la congelación rápida, el órgano debe almacenarse a menos 80 grados Celsius para conservación a largo plazo. Todas las herramientas de disección utilizadas deben desinfectarse utilizando toallitas esterilizantes.
El tubo Falcon forrado con la gasa quirúrgica empapada en isoflurano debe taparse. La gasa quirúrgica sobre la tabla de espuma debe reemplazarse por una gasa quirúrgica nueva. Las partes del ratón que no se hayan recolectado deben desecharse de acuerdo con la política de eliminación de animales del centro.
Los siguientes elementos deben manejarse de acuerdo con lo indicado. Una vez que estos elementos se almacenan adecuadamente, se pueden realizar múltiples experimentos que incluyen, entre otros, microscopía de fluorescencia, histología con hematoxilina y eosina, inmunohistoquímica, espectrometría de masas y espectroscopía de resonancia magnética nuclear. Dado que el páncreas es un órgano principal para la actividad metabólica y la producción de insulina, este procedimiento permite la preservación de las características fisiológicas.
Al aíslar el páncreas, se podrían realizar análisis futuros sobre la muestra. Este procedimiento permite la comparación y el estudio de las interacciones provenientes de otros tejidos dentro del mismo organismo y en el mismo período de tiempo.
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Este artículo en video proporciona instrucciones visuales detalladas para la disección del páncreas de un ratón, dirigidas a investigadores que estudian enfermedades pancreáticas. Incluye procedimientos para la recolección del páncreas destinada al análisis histológico y al perfilado metabólico, así como la recolección terminal de sangre mediante punción cardíaca.
La disección precisa del páncreas de ratón permite la obtención confiable de tejido para el perfilado metabólico y el análisis histológico posterior en la investigación del cáncer de páncreas. Esta estandarización del procedimiento apoya la validación de objetivos y el descubrimiento de biomarcadores al garantizar la integridad de las muestras y reducir la variabilidad en modelos preclínicos. El método mejora la confianza predictiva en los flujos de trabajo de descubrimiento temprano al proporcionar una base reproducible para estudios mecanicistas de la progresión de la enfermedad.
El método de disección se integra en el continuo del descubrimiento al proporcionar tejido pancreático de alta calidad para el perfilado metabólico y la clasificación histológica, apoyando directamente las etapas de identificación de compuestos activos y validación preclínica.