Name: Inserción de mallas transvaginales en el modelo ovino (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-07-27T12:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 32 s
Description: Aprende la técnica de inserción de mallas transvaginales en el modelo ovino mediante una única incisión vaginal. Este método permite estudiar tratamientos quirúrgicos para el prolapso de órganos pélvicos.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Agradecemos a Ivan Laermans, a Rosita Kinart, a Ann Lissens (Centro de Tecnologías Quirúrgicas, KU Leuven, Leuven, Bélgica). Jo Verbinnen y Kristof Reyniers (Instituto Vesalius de Anatomía, Facultad de Medicina, KU Leuven, Leuven, Bélgica) proporcionaron apoyo técnico durante el experimento. Damos las gracias a Leen Mortier por la ayuda con los datos y la gestión de manuscritos. Agradecemos a FEG Textiltechniken la fabricación de prototipos de mallas, su esterilización y su donación incondicional para la investigación.

La aprobación ética de este experimento se obtuvo del Comité de Ética en Experimentación Animal de la KU Leuven (P065 / 2013). Los animales fueron tratados de acuerdo con las directrices nacionales vigentes sobre bienestar animal. 1. El material y el animal experimental <ol><li> Preparación de la cirugía <ol><li> En el quirófano, cubra una mesa con un paño estéril y prepare un trócar curvo estéril ( Figura 1 , panel A), instrumentos quirúrgicos estériles, suturas y gasa estéril. Realice todo el procedimiento quirúrgico en condiciones estériles si el experimento incluye un seguimiento. Coloque todos los instrumentos sobre la mesa para estar listos para su uso durante la cirugía. </li><li> Retire un implante rectangular estéril y / o un implante con los brazos de anclaje del paquete estéril y colóquelos sobre la mesa cubierta con un paño estéril ( Figura 1B , C y D ). </li></ol></li></ol> Figura 1: Trocares e implantes. ( A ) Dibujo esquemático del trocar. ( B ) Implante de fluoruro de polivinilideno en forma de H (PVDF), con un detalle de la parte central (panel C ). Su forma se inspiró en las mallas de cuatro brazos actualmente disponibles para la reparación del prolapso transvaginal. El cuerpo rectangular (30 x 40 mm 2 ) se extiende lateralmente por cuatro brazos extendidos (150 x 10 mm 2 ). Las dimensiones de los brazos están diseñados para ser lo suficientemente largo para perforar las estructuras de suspensión pertinentes, sobre la base de estudios anatómicos anteriores [ 17] . ( D ) El implante rectangular (30 x 40 mm 2 ). Ambos implantes estaban hechos de fluoruro de polivinilideno; Las características y propiedades del textil se encuentran en la Tabla 1 . <ol start="2"><li> Experimental animal (EwE, 45-60 kg) <ol><li> Administrar la premedicación de 1 ml de sulfato de atropina 15 mg / ml y 1 ml / 50 kg de xilazina HCl intramuscularmente (im) 30 min antes del procedimiento quirúrgico. </li><li> Después de 30 min, asegúrese de que la premedicación ha hecho las ovejas letárgicas y con sueño. </li><li> Insertar un catéter intravenoso en la vena yugular y administrar 0,075 ml / kg de ketamina 100 mg / ml de HCl. Confirme la anestesia profunda observando la falta de reacción a los estímulos dolorosos. </li><li> Mueva el animal sobre la mesa quirúrgica y asegure sus vías respiratorias por intubación. Mantener la anestesia con 2,5% de isoflurano en 5 l / min de oxígeno. </li><li> Mantenga la línea intravenosa insertada en la vena yugular y suministre 500 mL de solución salina a un caudal de 150 mL / h. </li><li> Administrar antibióticos profilácticos im (clavulanato de amoxicilina, 7 mg / kg) y analgésicos posoperatorios (buprenorfin y clorocresol, 1 mL) o el equivalente según los protocolos locales. </li><li> Coloque el animal enEn el extremo de la mesa quirúrgica y asegurar sus extremidades, con las caderas en hiper-flexión, utilizando cuerdas ( Figura 2 , panel A). </li><li> Vacíe manualmente la vejiga y el recto empujándolos transvaginalmente. </li><li> Afeitar el perineo, la parte medial del muslo, y los pliegues de la cola y desinfectar con yoduro de polividona 7,5% ( Figura 2 , panel B y C). </li></ol></li></ol><img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/55706/55706fig2.jpg" /> Figura 2: Cirugía de animales. ( A ) Oveja colocada en posición supina, con las caderas hiper-flexionadas asegurando los miembros inferiores. ( B ) Los puntos de entrada externos para la inserción del trocar se encuentran en el lado ventral (flecha vacía) y dorsalmente en los pliegues laterales de la cola (flecha completa). ( C ) Posición de los puntos de inserción ventral; La línea discontinua en el medio representaEl plano midsagittal del animal. ( D ) Tabique rectovaginal disecado. ( E ) Inserción del trocar ventral a través de los músculos del lado medial del muslo, el agujero del obturador y el espacio paravaginal. La trayectoria del trocar perforante se controla con el dedo. ( F y G ) Una vez que el trocar está en su lugar, la eslinga de alambre (flecha abierta) se avanza y se carga con el brazo de la malla vaginal. ( H ) Posición final de los brazos ventral (flechas completas) y dorsal (flecha vacía). ( I ) La parte central se coloca libre de tensión entre la pared vaginal y la adventicia rectal. <ol start="10" style="margin-left: 40px;"><li> Preparar al personal para una cirugía en condiciones estériles. Póngase una gorra quirúrgica y máscara de la boca, se lava las manos para la cirugía y se pone un vestido quirúrgico y guantes estériles. </li><li> Cubrir el animal con un paño estéril y hacer una abertura por encima de los genitaleshiato. </li></ol> 2. Procedimiento quirúrgico <ol><li> Preparación del tabique rectovaginal <ol><li> Sujete la pared vaginal dorsal 3 cm craneal al anillo himenial usando una pinza Allis. </li><li> Tome una jeringa cargada con 10 ml de solución salina y equipado con una aguja de 22 G. Inserte a través del epitelio vaginal (aproximadamente 3 - 4 mm de profundidad) y en la línea media del septo rectovaginal, 1,5 cm craneal al anillo himenial. </li><li> Realizar &quot;aqua-disección&quot; mediante la inyección de solución salina en el tabique rectovaginal [ 11] . </li><li> Haga una incisión media de 3 cm de longitud sobre el epitelio vaginal, comenzando caudal al fórceps Allis (paso 2.1.1) y terminando en el anillo himenial usando un escalpelo. Introduzca el espacio recto-vaginal a través de esta incisión. </li><li> Coloque el retractor auto-retenedor (vea la Tabla de Materiales ) sobre el perineo y coloque cuatro ganchos afilados en la incisión vaginal para mantenerlo abierto. </Li <li> Con el dedo, disecar sin rodeos la fascia recto-vaginal de la pared vaginal lateralmente hacia las paredes laterales pélvicas y cranealmente hasta el aspecto caudal del callejón sin salida. Crear un espacio adecuado para la parte central de 30 x 40 mm 2 de la malla ( Figura 2 , panel D). </li><li> Realizar la hemostasia con fórceps hemostáticos o una ligadura hemostática entrecruzada siempre que sea necesario. NOTA: Los sangradores pequeños se pueden sujetar con la pinza hemostática. Esto aplasta el recipiente e inicia la cascada natural de la coagulación. Para un sangrado más fuerte, agarre el vaso sangrante con fórceps y coloque una ligadura entrecruzada, asegurándola con un nudo cuadrado. En este punto, se puede insertar el implante rectangular (paso 2.2) o continuar con la disección para insertar el implante con brazos de anclaje (paso 2.3). </li></ol></li><li> Inserción de malla plana <ol><li> Inserte el retractor vaginal en la incisión vaginal para permitir una mejorLa parte craneal de la zona diseccionada. </li><li> Suture la esquina craneal izquierda y derecha del implante con una simple sutura de polipropileno 3/0 interrumpida en los lados izquierdo y derecho del aspecto más craneal del espacio recto-vaginal disecado. Cortar el material de sutura residual. Mantenga la sutura lejos del lumen vaginal ( es decir, no penetre la pared vaginal). NOTA: El implante siempre se sutura al tejido conectivo que comprende el septo recto-vaginal. La pared vaginal no se penetra si el material de sutura no puede ser visto en la vagina. </li><li> Añadir una sutura interrumpida simple adicional a mitad de camino a lo largo del aspecto craneal del implante. </li><li> Suturar los bordes laterales del implante a medio camino sobre el tejido conectivo circundante con un simple polipropileno 3/0 interrumpido. Mantenga el implante lo más plano posible y sin tensiones. </li><li> Suture las esquinas caudales izquierda y derecha con simples suturas de polipropileno 3/0 interrumpidas a la izquierda y derechaLados del aspecto más caudal del espacio rectovaginal. </li><li> Añadir una sutura interrumpida simple adicional a mitad de camino a lo largo del aspecto caudal del implante. </li><li> Cierre las incisiones vaginales con una sutura de poliglactina 3/0. </li></ol></li><li> Inserción y anclaje del implante con brazos (técnica guiada por trocar). <ol><li> Continuar la disección del espacio recto-vaginal creado en el paso 2.1 cráneo-ventral para alcanzar la parte medial del agujero obturador, que puede ser fácilmente palpada. </li><li> Diseccionar el espacio caudo-lateralmente para alcanzar el aspecto caudal del ligamento sacrotuberoso y el músculo coccígeo localizado caudalmente. </li><li> Con un no. 24, haga cuatro incisiones de 1 cm de ancho en el lado vulvar, cortando la piel y la fascia muscular superficial ( Figura 2 , panel B y C). </li><li> Hacer dos incisiones &quot;ventrales&quot; en la cara medial del muslo, aproximadamente 4 cm craneal desde el borde caudalF el arco ciático ( es decir , el borde inferior de la sínfisis) ya 3 cm lateral de la línea media ( Figura 2 , panel C). </li><li> Hacer dos incisiones &quot;dorsales&quot; a nivel de la inserción de los pliegues de la cola, 2 cm medial al tubérculo isquiadicum, que puede ser fácilmente palpado ( Figura 2 , panel B). </li><li> Coloque un trocarte curvo a través de una de las incisiones ventrales ( Figura 2 , panel E). </li><li> Pase el trocar por el músculo aductor magno, el obturador externo y la parte medial del agujero obturador. </li><li> Controle la progresión del trocar con un dedo insertado a través de la incisión vaginal. Guíe su punta hacia el arco tendinoso del músculo elevador ani ( Figura 2 , panel E). </li><li> Exponer el hilo guía en la incisión de la pared vaginal y cargarlo con el correspondiente brazo de malla craneal ipsilateral ( Figura 2 , panel F). </li><li> Tire del trocar cargado con el mEsh brazo a través de las estructuras anteriores. Mantenga el brazo libre de tensión. </li><li> Repita el proceso con el segundo brazo craneal a través de la incisión ventral en el otro lado del animal. </li><li> A través de una de las incisiones dorsales, pasar el trocar a través del músculo coccígeo, justo distal al ligamento sacrotuberoso ( Figura 2 , panel G). </li><li> Exponga el hilo guía a través de la incisión vaginal, agarre el brazo dorsal de la malla y extráigalo. Mantenga el brazo libre de tensión y repita en el otro lado. </li><li> Ajuste la posición de la malla aplastándola y aplicando tensión a los brazos, pero mantenga la malla libre de tensión ( Figura 2, panel I, Figura 3 ). </li><li> Fijar el cuerpo de la malla con una simple sutura de polipropileno 3/0 interrumpida en el centro de su borde caudal, asegurándola al tejido conectivo circundante. </li><li> Cortar los brazos a nivel de la piel y cerrar todas las incisiones cutáneas con un simple poligonal 3/0 interrumpidoSuturas de ecaprona ( Figura 2 , panel H). </li><li> Cierre la incisión vaginal con una sutura de poliglecaprona 3/0 en marcha. </li></ol></li></ol><img alt="figura 3" src="/files/ftp_upload/55706/55706fig3.jpg" /> Figura 3: Ilustración esquemática de la pelvis ovina, con los brazos craneales pasando a través del foramen obturador y los brazos caudales pasando a través de los pliegues de la cola. El ligamento sacrotuberous ancho está en azul. El panel más pequeño ilustra la posición de los brazos sobre un animal en posición reclinada, justo antes de acortar la cantidad excesiva de material. El panel principal muestra lo mismo, pero con la piel y los músculos eliminados.

<ol><li>Glazener, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Childbirth+and+prolapse%3A+Long-term+associations+with+the+symptoms+and+objective+measurement+of+pelvic+organ+prolapse%5BTitle%5D)+AND+%22BJOG+An+Int.+J.+Obstet.+Gynaecol%22%5BJournal%5D)">Childbirth and prolapse: Long-term associations with the symptoms and objective measurement of pelvic organ prolapse.</a> BJOG An Int. J. Obstet. Gynaecol. 120 (2), 161-168 (2013).</li>
<li>Jia, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficacy+and+safety+of+using+mesh+or+grafts+in+surgery+for+anterior+and%2For+posterior+vaginal+wall+prolapse%3A+systematic+review+and+meta-analysis%5BTitle%5D)+AND+%22BJOG%22%5BJournal%5D)">Efficacy and safety of using mesh or grafts in surgery for anterior and/or posterior vaginal wall prolapse: systematic review and meta-analysis.</a> BJOG. 115 (11), 1350-1361 (2008).</li>
<li>Maher, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transvaginal+mesh+or+grafts+compared+with+native+tissue+repair+for+vaginal+prolapse%5BTitle%5D)+AND+%22Review%22%5BJournal%5D)">Transvaginal mesh or grafts compared with native tissue repair for vaginal prolapse.</a> Review. 2 (2), 10-13 (2016).</li>
<li>Nieminen, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Outcomes+after+anterior+vaginal+wall+repair+with+mesh%3A+a+randomized%2C+controlled+trial+with+a+3+year+follow-up%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Obstet.+Gynecol%22%5BJournal%5D)">Outcomes after anterior vaginal wall repair with mesh: a randomized, controlled trial with a 3 year follow-up.</a> Am. J. Obstet. Gynecol. 203 (3), e1-e8 (2010).</li>
<li>Abramowitch, S. D., Feola, A., Jallah, Z., Moalli, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+mechanics%2C+animal+models%2C+and+pelvic+organ+prolapse%3A+a+review%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Obstet.+Gynecol.+Reprod.+Biol%22%5BJournal%5D)">Tissue mechanics, animal models, and pelvic organ prolapse: a review.</a> Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 144, S146-S158 (2009).</li>
<li>Couri, B., Lenis, A., Borazjani, A., Paraiso, M. F. R., Damaser, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+female+pelvic+organ+prolapse%3A+lessons+learned%5BTitle%5D)+AND+%22Expert+Rev.+Obs.+Gynecol%22%5BJournal%5D)">Animal models of female pelvic organ prolapse: lessons learned.</a> Expert Rev. Obs. Gynecol. 7 (3), 249-260 (2012).</li>
<li>Deprest, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+biology+behind+fascial+defects+and+the+use+of+implants+in+pelvic+organ+prolapse+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+Urogynecol.+J.+Pelvic+Floor+Dysfunct%22%5BJournal%5D)">The biology behind fascial defects and the use of implants in pelvic organ prolapse repair.</a> Int. Urogynecol. J. Pelvic Floor Dysfunct. 17, S16-S25 (2006).</li>
<li>Ozog, Y., Mazza, E., De Ridder, D., Deprest, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biomechanical+effects+of+polyglecaprone+fibers+in+a+polypropylene+mesh+after+abdominal+and+rectovaginal+implantation+in+a+rabbit%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+Urogynecol.+J%22%5BJournal%5D)">Biomechanical effects of polyglecaprone fibers in a polypropylene mesh after abdominal and rectovaginal implantation in a rabbit.</a> Int. Urogynecol. J. 23 (10), 1397-1402 (2012).</li>
<li>Manodoro, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Graft-related+complications+and+biaxial+tensiometry+following+experimental+vaginal+implantation+of+flat+mesh+of+variable+dimensions%5BTitle%5D)+AND+%22BJOG%22%5BJournal%5D)">Graft-related complications and biaxial tensiometry following experimental vaginal implantation of flat mesh of variable dimensions.</a> BJOG. 120 (2), 244-250 (2013).</li>
<li>Endo, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cross-linked+xenogenic+collagen+implantation+in+the+sheep+model+for+vaginal+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22Gynecol.+Surg%22%5BJournal%5D)">Cross-linked xenogenic collagen implantation in the sheep model for vaginal surgery.</a> Gynecol. Surg. , 113-122 (2015).</li>
<li>Feola, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Host+reaction+to+vaginally+inserted+collagen+containing+polypropylene+implants+in+sheep%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Obstet.+Gynecol%22%5BJournal%5D)">Host reaction to vaginally inserted collagen containing polypropylene implants in sheep.</a> Am. J. Obstet. Gynecol. 212 (4), e1-e474 (2015).</li>
<li>Barnhart, K. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Baseline+dimensions+of+the+human+vagina%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Reprod%22%5BJournal%5D)">Baseline dimensions of the human vagina.</a> Hum. Reprod. 21 (6), 1618-1622 (2006).</li>
<li>Tayrac, R., Alves, A., Thérin, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collagen-coated+vs+noncoated+low-weight+polypropylene+meshes+in+a+sheep+model+for+vaginal+surgery.+A+pilot+study%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+Urogynecol.+J.+Pelvic+Floor+Dysfunct%22%5BJournal%5D)">Collagen-coated vs noncoated low-weight polypropylene meshes in a sheep model for vaginal surgery. A pilot study.</a> Int. Urogynecol. J. Pelvic Floor Dysfunct. 18 (5), 513-520 (2007).</li>
<li>Sobiraj, A., Busse, G., I, H. B. O. S. E. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ivastigation+into+the+blood+plasma+profiles+progesterone+in+sheep+sufferingform+vaignal+inversion+and+prolapse%5BTitle%5D)+AND+%22Br.+Vet.+J%22%5BJournal%5D)">Ivastigation into the blood plasma profiles progesterone in sheep sufferingform vaignal inversion and prolapse.</a> Br. Vet. J. 142 (142), 218-223 (1986).</li>
<li>Reisenauer, C., Kirschniak, A., Drews, U., Wallwiener, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anatomical+conditions+for+pelvic+floor+reconstruction+with+polypropylene+implant+and+its+application+for+the+treatment+of+vaginal+prolapse%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Obstet.+Gynecol.+Reprod.+Biol%22%5BJournal%5D)">Anatomical conditions for pelvic floor reconstruction with polypropylene implant and its application for the treatment of vaginal prolapse.</a> Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 131, 214-225 (2007).</li>
<li>Carey, M., Slack, M., Higgs, P., Wynn-Williams, M., Cornish, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vaginal+surgery+for+pelvic+organ+prolapse+using+mesh+and+a+vaginal+support+device%5BTitle%5D)+AND+%22BJOG+An+Int.+J.+Obstet.+Gynaecol%22%5BJournal%5D)">Vaginal surgery for pelvic organ prolapse using mesh and a vaginal support device.</a> BJOG An Int. J. Obstet. Gynaecol. 115 (3), 391-397 (2008).</li>
<li>Urbankova, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+anatomy+of+the+ovine+and+female+pelvis%5BTitle%5D)+AND+%22Gynecol.+Obstet.+Invest%22%5BJournal%5D)">Comparative anatomy of the ovine and female pelvis.</a> Gynecol. Obstet. Invest. , in press (2016).</li>
<li>Maurer, M. M., Röhrnbauer, B., Feola, a, Deprest, J., Mazza, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+biocompatibility+of+prosthetic+meshes%3A+A+comprehensive+protocol+for+mechanical+characterization%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mech.+Behav.+Biomed.+Mater%22%5BJournal%5D)">Mechanical biocompatibility of prosthetic meshes: A comprehensive protocol for mechanical characterization.</a> J. Mech. Behav. Biomed. Mater. 40, 42-58 (2014).</li>
<li>Leval, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+Surgical+Technique+for+the+Treatment+of+Female+Stress+Urinary+Incontinence%5BTitle%5D)+AND+%22Transobturator+Vaginal+Tape+Inside-Out.+Eur.+Urol%22%5BJournal%5D)">Novel Surgical Technique for the Treatment of Female Stress Urinary Incontinence.</a> Transobturator Vaginal Tape Inside-Out. Eur. Urol. 44 (6), 724-730 (2003).</li>
<li>Reisenauer, C., Kirschniak, A., Drews, U., Wallwiener, D. Transobturator vaginal tape inside-out. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 127 (1), 123-129 (2006).</li>
<li>Bafghi, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bowel+perforation+as+late+complication+of+tension-free+vaginal+tape%5BTitle%5D)+AND+%22J+Gynecol+Obs.+Biol+Reprod%22%5BJournal%5D)">Bowel perforation as late complication of tension-free vaginal tape.</a> J Gynecol Obs. Biol Reprod. 34 (6), 606-607 (2005).</li>
<li>Hinoul, P., Vanormelingen, L., Roovers, J. P., de Jonge, E., Smajda, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anatomical+variability+in+the+trajectory+of+the+inside-out+transobturator+vaginal+tape+technique+%28TVT-O%29%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+Urogynecol.+J.+Pelvic+Floor+Dysfunct%22%5BJournal%5D)">Anatomical variability in the trajectory of the inside-out transobturator vaginal tape technique (TVT-O).</a> Int. Urogynecol. J. Pelvic Floor Dysfunct. 18 (10), 1201-1206 (2007).</li>
<li>Schaller, O., et al. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSchaller%2C+O+%22Illustrated+Veterinary+Anatomical+Nomenclature%22">Illustrated Veterinary Anatomical Nomenclature</a>. , Verlag Enke. Stuttgart, Germany. (2007).</li>
<li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Serious+Complications+Associated+with+Transvaginal+Placement+of+Surgical+Mesh+for+Pelvic+Organ+Prolapse%5BTitle%5D)+AND+%22FDA+Safety+Communication%22%5BJournal%5D)">Serious Complications Associated with Transvaginal Placement of Surgical Mesh for Pelvic Organ Prolapse.</a> FDA Safety Communication. , Available from: 
 <a target="_blank" href="http://www.fda.gov/MedicalDevices/Safety/AlertsandNotices/PublicHealthNotifications/ucm061976.htm">http://www.fda.gov/MedicalDevices/Safety/AlertsandNotices/PublicHealthNotifications/ucm061976.htm</a> (2016).</li>
<li>Reinier, M., Groep, G. Final Opinion on the use of meshes in urogynecological surgery. SCENIHR- European Commission. , (2016).</li>
</ol>

Este programa de investigación sobre el modelo ovino fue apoyado por una subvención incondicional de Medri y Blasingame, Burch, Garrard y Ashley (Atlanta GA, EE.UU.). Los acuerdos se llevan a cabo a través de la oficina de transferencia de Leuven Research and Development. Los patrocinadores no interfirieron con la planificación, ejecución o notificación de este experimento, ni tampoco son los dueños de los resultados. NS y LH son receptores de una subvención de la CE en el marco del 7PM (proyecto Bip-Upy; NMP3-LA-2012-310389). AF fue apoyado por una subvención de la CE en el programa de asociación industria-académico (251356).

En este trabajo se describe un procedimiento experimental en ovinos, destinado a imitar la disección vaginal y la inserción de malla transvaginal de un implante con o sin anclaje de brazos. Los pasos e instrumentos posteriores fueron inspirados por procedimientos quirúrgicos realizados para el POP y la incontinencia urinaria de esfuerzo 15 , 16 , 19 , 20 . Después de las disecciones anatómicas...

El prolapso de órganos pélvicos se diagnostica clínicamente en la mitad de las mujeres que han tenido al menos un parto vaginal, pero subjetivamente, se molesta a la mitad de las mujeres en general 1 . El pilar de la terapia es la reconstrucción quirúrgica utilizando tejido nativo o materiales de implante, pero cada uno de estos métodos tiene sus limitaciones, incluyendo recurrencia o complicaciones locales 2 , 3 , 4 . El implante ideal aún no ha sido identificado; Por lo tanto, existe una demanda constante por la innovación de productos y por el desarrollo de una tubería adecuada para la experimentación preclínica antes de la introducción de nuevos productos y técnicas al mercado. Uno de los pasos en esta pista es la evaluación experimental en modelos animales adecuados 5 , 6 . Idealmente, deberían imitar los ambientes anatómicos, biomecánicos y biológicos. Cuando se trata de thY la evaluación experimental de nuevos implantes, se prueban típicamente primero en modelos más pequeños, ya sea para la biocompatibilidad o para la reconstrucción de defectos de la pared abdominal. Ese tipo de experimentos ha sido criticado, porque los implantes no se insertan en el área de interés ( es decir, la vagina) 7 . Los modelos de cirugía vaginal son más escasos, ciertamente cuando el objetivo del experimento es documentar las características biomecánicas de los explantes. Por esta razón, hubo un movimiento de conejos a ovejas 8 . Las ovejas adultas son modelos de animales grandes con una vagina de tamaño razonable y accesible. Pueden utilizarse para la evaluación intermedia de nuevos implantes, y es posible reproducir exposiciones vaginales con ciertos materiales 9 , 10 , 11 , 12 , 13 . No sólo las dimensiones y la anatomíaDe la vagina ovina y del suelo pélvico son comparables a los de los seres humanos, pero también la aparición espontánea de prolapso, que ocurre en el 15% de las ovejas. Los factores de riesgo de prolapso se superponen ( es decir, multiparidad, antecedentes previos de POP, aumento de la presión intraabdominal inducida por un mayor peso corporal o al pastoreo en colinas, y efectos comparables de (fito) estrógenos) 6 , 14 . En Europa, las ovejas son la única alternativa razonable, ya que la investigación sobre primates no humanos ha sido casi completamente prohibida. Aquí, el modelo se dio un paso más allá imitando la inserción transvaginal de implantes utilizando trocares y guías para la libre de tensión de colocación de mallas en el septo recto-vaginal. Esto fue seguido por la fijación del implante utilizando el anclaje con los brazos a través de los ligamentos de los músculos, lo que puede ser considerado equivalente a la práctica clínica [ 15 , 16] . Hasta ahora, esta técnicaNo ha sido estudiado, aunque muchos creen que pueden ocurrir complicaciones específicas debido al uso de estas tiras más largas y / oa la perforación de estructuras anatómicas. En un estudio anatómico detallado anterior, se comparó el suelo pélvico ovino con la pelvis femenina 17 . Cuando se trata de anclar el implante, las ovejas no tienen el ligamento sacrospinoso, pero tienen un ligamento sacrotuberoso muy bien desarrollado y amplio. El nervio pudendal corre ventral sobre él, lo que hace inseguro utilizar este hito como un punto de suspensión. Por el contrario, el músculo coccígeo y su fascia, así como la membrana obturadora, son accesibles a través del espacio rectovaginal. Aquí se propone el acceso y la posición de las estructuras anatómicas para la fijación de los brazos de anclaje. Se discuten los instrumentos que pueden usarse para posicionar la malla. Por último, la relación de los brazos o trocares con las estructuras anatómicas adyacentes, como los vasos y los nervios,Así como posibles complicaciones intraoperatorias, también se describen.

<table><tbody><tr><td>Animales:&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ovejas hembras paridas (45 - 65 kg)</td><td>Zo&ouml; Instituto técnico de la KU Leuven</td><td>NA</td> animales <td>experimentales</td></tr><tr><td>Ropa estéril:&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>paño estéril 45 x 75 cm</td><td>Lohmann & Rauscher, Regensdorf, Alemania</td><td>33002</td><td>otro material</td></tr><tr><td>estéril O cortina 150 x 180 cm</td><td>Lohmann & Rauscher, Regensdorf, Alemania</td><td>33009</td><td>otro material</td></tr><tr><td>estéril brilla 2x</td><td>Lohmann & Rauscher, Regensdorf, Alemania</td><td>16652</td><td>bata</td></tr><tr><td>quirúrgica estéril</td> de otro material 2x <td>Lohmann & Rauscher, Regensdorf, Alemania</td><td>19342</td><td>otro material</td></tr><tr><td>gorro de cabeza quirúrgica 2x</td><td>Lohmann & Rauscher, Regensdorf, Alemania</td><td>17427</td> mascarilla quirúrgica de <td>otro material</td></tr><tr><td>2x</td><td>Lohmann & Rauscher, Regensdorf, Alemania</td><td>11983</td><td>Otro material</td></tr> Otro <tr><td>material</td><td></td><td></td><td></td>quirúrgico</tr><tr><td>implante</td><td>FEG Textiltechnik GmbH, Aquisgrán, Alemania</td><td>NA</td><td>implante diseñado a propósito</td></tr><tr><td>Sutura de polipropileno 3/0</td><td>Prolene, Ethicon, Diegem, Bélgica</td><td>8762H</td><td>material de sutura</td></tr><tr><td>3/0 de poligecaprona</td><td>Vicryl, Ethicon</td><td>Sutura J311H</td><td> material</td></tr><tr><td>bastoncillos de gasa 10 x 10 cm 10x, 12 capas</td><td>Lohmann & Rauscher, Regensdorf, Alemania</td><td>11574</td><td>jeringa de otros materiales</td></tr><tr><td>10 mL</td><td>Becton Dickinsosn S.A., Madrid, España</td><td>300613</td> aguja <td>de disección acuática</td></tr><tr><td>calibre 16</td><td>Terumo, Lovaina, Bélgica</td><td>NN-2238R</td><td>aqua-disection</td></tr><tr><td>Equipo</td><td></td><td></td><td></td> quirúrgico</tr>:<tr><td>cuchilla no.22</td><td>Instrumentos de bellas ciencias, Heidelberg, Alemania</td><td>10022-00</td><td>quirúrgico instrumentos</td></tr><tr><td>Allis pinza de tejido 1x</td><td>Instrumentos de bellas ciencias, Heidelberg, Alemania</td><td>11091-15</td><td>instrumentos quirúrgicos</td></tr><tr><td>Pinzas de patrón estándar 1 x 2 theeth 1x</td><td>Instrumentos de bellas ciencias, Heidelberg, Alemania</td><td>11023-14</td><td>instrumentos quirúrgicos</td></tr><tr><td>Pinzas de patrón estándar rectas dentadas 1x</td><td>Instrumentos de bellas ciencias, Heidelberg, Alemania</td><td>11000-14</td><td>instrumentos quirúrgicos</td></tr><tr><td>Mango de bisturí 1x</td><td>Instrumentos de bellas ciencias, Heidelberg, Alemania</td><td>10004-13</td><td>instrumentos quirúrgicos</td></tr><tr><td>Pinzas Halstead-Mosquito 2x</td><td>Instrumentos de bellas ciencias, Heidelberg, Alemania</td><td>13008-12</td><td>instrumentos quirúrgicos</td></tr><tr><td>Tijeras de patrón estándar 1x</td><td>Instrumentos de bellas ciencias, Heidelberg, Alemania</td><td>14001-14</td><td>instrumentos quirúrgicos</td></tr><tr><td>Tijeras Metzenbaum 1x</td><td>Instrumentos de bellas ciencias, Heidelberg, Alemania</td><td>14016-18</td><td>instrumentos quirúrgicos</td></tr><tr><td>Crile Wood portaagujas 1x</td><td>Instrumentos de bellas ciencias, Heidelberg, Alemania</td><td>12003-15</td><td>instrumentos quirúrgicos</td></tr><tr><td>Pinzas Kell 1x</td><td>Instrumentos de bellas ciencias, Heidelberg, Alemania</td><td>13018-14</td><td>instrumental quirúrgico</td></tr><tr><td>Long Starr Retractor autorretenedor con ocho ganchos de tirantes afilados de 5 mm</td><td>Cooper Surgical, Tumbull, EE. UU.</td><td>3704</td><td>instrumentos quirúrgicos</td></tr><tr><td>Heaney Simon Retractor vaginal</td><td>Suministros y equipos médicos co., Katy, Texas, EE. UU.</td><td>403-129FSI</td><td>instrumentos quirúrgicos</td></tr><tr><td>Trocar (Insnare)</td><td>Bard, West Sussex, Reino Unido</td><td>NA</td><td>cualquier trocar en el mercado para la implantación de malla transvaginal</td></tr><tr><td>Medicamento:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>amoxilicilina clavulanato 1000 mg / 300 mL (Ampicilina)</td><td>GSK, Wavre, Bélgica</td><td>NA</td><td>antibióticos</td></tr><tr><td>buprenorfina 0,3 mg/mL + clorocresol 1,35 mg/mL (Vetregesic)</td><td>Ecuphar, Oostkamp, Bélgica</td><td></td><td>NA analgesia</td></tr><tr><td>ketamina HCL 100 mg/mL (Ketamina 1000)</td><td>Ceva Sante Animale, Bruselas, Bélgica</td><td></td><td>NA anestesia</td></tr><tr><td>isoflurano (IsoFlo)</td><td>Abbott Laboratories Ltd, Maidenhead, Berkshire, Reino Unido</td><td></td><td>NA anestesia</td></tr><tr><td>polividona yodado 7,5% (Braunol)</td><td>B. Braun Medical, Machelen, Bélgica</td><td>NA</td> solución salina de <td>desinfección local</td></tr><tr><td>500 mL</td><td>B. Braun Medical, Machelen, Bélgica</td><td>NA</td><td>disección acuática</td></tr><tr><td>Xxylazine HCl, 1 mL/50 kg&nbsp;</td><td>Vexylan, Ceva Sante Animale, Bélgica</td><td>NA</td><td>premedicación</td></tr><tr><td>sulfato de atropina 15 mg/mL (),</td><td>Viatris, Bélgica</td><td></td><td>NA premedicación</td></tr></tbody></table>

inserción de mallas transvaginales en el modelo ovino

Transvaginal Mesh Insertion in the Ovine Model

Este protocolo describe la inserción de malla en el tabique rectovaginal en ovejas utilizando una única técnica de incisión vaginal, con y sin la inserción guiada por trocar de los brazos de anclaje. La oveja parosa fue sometida a la disección del septo rectovaginal, seguida de la inserción de un implante con o sin cuatro brazos de anclaje, ambos diseñados para adaptarse a la anatomía ovina. Los brazos de anclaje se pusieron en su lugar utilizando un trócar y una técnica de &quot;fuera-en&quot;. Los brazos craneales se pasaron a través de los músculos obturador, gracilis y aductor magnus. Los brazos caudales se fijaron cerca del ligamento sacrotuberoso, a través de los músculos coccígeos. Esta técnica permite la imitación de procedimientos quirúrgicos realizados en mujeres que sufren de prolapso de órganos pélvicos. Los espacios y elementos anatómicos son fácilmente identificables. La parte más crítica del procedimiento es la inserción del trocar craneal, que puede penetrar fácilmente en la cavidad peritoneal o en los órganos pélvicos circundantes. EsteS puede evitarse mediante una disección retroperitoneal más extensa y guiando el trocar más lateralmente. Este enfoque está diseñado sólo para pruebas experimentales de nuevos implantes en modelos animales grandes, ya que la inserción guiada por trocar no se utiliza actualmente clínicamente.

Gestión en una configuración de observación más larga Después del procedimiento quirúrgico, el empaque vaginal (un paquete de gasa empapado en solución salina insertado en la vagina inmediatamente después de la cirugía) se puede insertar durante 24 horas para asegurar la posición del implante. Las ovejas deben ser colocadas en una jaula de recuperación y su función respiratoria seguida hasta su recuperación co...

Este protocolo describe la implantación de malla en el septo rectovaginal ovino utilizando una única técnica de incisión vaginal, con y sin la inserción guiada por trocar de los brazos de anclaje.

Inserción de mallas transvaginales en el modelo ovino

This protocol describes mesh insertion into the rectovaginal septum in sheep using a single vaginal incision technique, with and without the trocar-guided ...

El objetivo general de este procedimiento quirúrgico experimental es utilizar una única incisión vaginal para implantar una malla en el septo rectovaginal, con o sin inserción guiada por trocar de los brazos de anclaje. El modelo ovino es útil porque el suelo pélvico ovino experimenta cambios similares a los que ocurren durante el parto humano, y porque las dimensiones del cordero permiten intervenciones quirúrgicas comparables. La principal ventaja de esta técnica es que utiliza un modelo animal grande, no primate y ampliamente disponible, que reproduce un enfoque quirúrgico clínicamente implementado para la implantación transvaginal.Aunque este método puede proporcionar información sobre el tratamiento quirúrgico del prolapso de órganos pélvicos con implantes, también puede aplicarse a otras técnicas quirúrgicas, como la reparación con tejido autólogo. La demostración visual de este método es fundamental, ya que resulta difícil enseñar estas técnicas quirúrgicas sin poder observarlas. Tras confirmar que la oveja está somnolienta y letárgica, coloque al animal en posición litotómica en el extremo de la mesa quirúrgica y utilice cuerdas para asegurar las extremidades con las caderas en hiperflexión.A continuación, presione transvaginalmente sobre la vejiga para vaciar el órgano y vacíe manualmente el recto, seguido de afeitar la zona perineal, el área medial del muslo y los pliegues de la cola. Desinfekte la piel expuesta con yodo povidona al 7,5 % y, tras colocar el equipo de protección personal adecuado, cubra al animal con un campo estéril que deje una abertura sobre la hendidura genital. Utilice fórceps de Allis para sujetar la pared vaginal dorsal tres centímetros craneales al anillo himenal.Luego, utilice una jeringa de 10 mililitros cargada con una aguja de calibre 22 para inyectar suero salino a tres o cuatro milímetros bajo el epitelio vaginal a lo largo de la línea media del septo rectovaginal, 1,5 centímetros craneal al anillo himeneal. Realice una disección acuosa del tejido vaginal inyectando el suero salino en el septo rectovaginal. A continuación, use un escalpelo para realizar una incisión de tres centímetros de longitud a lo largo de la línea media del epitelio vaginal, comenzando caudal a las pinzas de Allis y terminando en el anillo himeneal.Mantenga la incisión abierta con un retractor autoadhesivo sobre el periné y cuatro ganchos afilados de retención. Luego, use el dedo índice para diseccionar romo la fascia rectovaginal desde la pared vaginal hacia los laterales hasta las paredes laterales de la pelvis y cranealmente hasta la parte caudal del fondo de saco. En este momento, puede insertar el implante rectangular o continuar con la disección para insertar el implante con brazos de anclaje.Cuando se haya creado un espacio adecuado para el inserto plano de malla de 30 por 40 milímetros, introduzca un retráctor vaginal en la incisión y utilice una sutura simple interrumpida de polipropileno tres-0 en los lados izquierdo y derecho del aspecto más craneal del espacio rectovaginal disecado para fijar las esquinas craneales izquierda y derecha del implante. Recorte el material de sutura residual y coloque una sutura simple interrumpida adicional en el punto medio del borde craneal del implante. Suture los bordes laterales del implante en su punto medio a los tejidos conectivos circundantes, utilizando una sutura simple interrumpida de polipropileno tres-0.Suture los ángulos caudales izquierdo y derecho con puntos simples interrumpidos de polipropileno 3-0 a los lados izquierdo y derecho del aspecto más caudal del espacio rectovaginal. Luego, agregue un punto simple interrumpido adicional en el punto medio del aspecto caudal del implante, y cierre las incisiones vaginales con un punto continuo de poliglactina 3-0, que se mostrará al final del video. Esta es otra intervención quirúrgica.Alternativamente, se puede continuar desde el espacio rectovaginal en dirección craneal y ventral para alcanzar la cara medial del foramen obturador, y también disecar el espacio en dirección caudolateral para llegar al músculo coccygeo ubicado más caudalmente. Con una hoja número 24, realice cuatro incisiones de un centímetro de ancho en el lado vulvar, cortando a través de la piel y la fascia muscular superficial. Realice dos incisiones ventrales en la cara medial del muslo, aproximadamente cuatro centímetros craneales del borde caudal del arco isquiático, y tres centímetros laterales de la línea media.Realice dos incisiones dorsales en la inserción de los pliegues de la cola, dos centímetros mediales al tuber isquiático. Luego, coloque un trócar curvo a través de una de las incisiones ventrales. Controlando la progresión del trócar con un dedo insertado a través de la incisión vaginal, pase el trócar a través del músculo abductor mayor, el obturador externo y la cara medial del foramen obturador.Tenga especial cuidado al insertar el trócar, ya que empujarlo en la dirección incorrecta podría causar una lesión grave al vaso o al nervio, ambos ubicados en la región craneal del foramen obturador. Dirija la punta del trócar hacia el arco tendinoso del músculo elevador del ano y exponga el alambre guía en la incisión de la pared vaginal. Cargue el alambre con el brazo craneal ipsilateral correspondiente de la malla y hale el trócar cargado a través de los tejidos, manteniendo el brazo de la malla sin tensión.Luego cargue el alambre guía con el segundo brazo craneal a través de la incisión ventral en el otro lado del animal y pase el trócar a través de los tejidos, tal como se acaba de demostrar. Ahora pase el trócar a través del músculo coccygeo mediante una de las incisiones dorsales justo distal al ligamento sacrotuberoso, y exponga el alambre guía a través de la incisión vaginal. Sujete el brazo dorsal de la malla y saque la malla, manteniendo el brazo sin tensión.Transfiera el segundo brazo de la malla al otro lado del animal tal como se acaba de demostrar, y ajuste la posición de la malla alisándola y aplicando tensión a ambos brazos, manteniendo al mismo tiempo la malla sin tensión. Utilizando suturas simples interrumpidas de polipropileno 3-0 en la parte media de los bordes caudales, fije la malla al tejido conectivo circundante. Luego corte los brazos a nivel de la piel y utilice suturas simples interrumpidas de poliglecaprona 3-0 para cerrar todas las incisiones cutáneas, seguido de una sutura continua de poliglecaprona 3-0 para cerrar la incisión vaginal.En este animal experimental, los brazos craneales se pasaron a través de la cara caudal del foramen obturador. El punto de entrada del trócar se ubicó en el arco tendinoso del músculo elevador del ano, a dos o 2,5 centímetros caudal al canal obturador y a los vasos y nervio obturadores. El músculo grácil se desplazó medialmente para mostrar el trayecto del brazo craneal a través de los músculos semitendinoso y abductor mayor.Los brazos caudales se pasaron un centímetro por debajo de la parte caudal del ligamento sacrotuberoso amplio, directamente a través del músculo coccígeo. La parte central de la malla se colocó plana, con su sección craneal extendiéndose retroperitonealmente por debajo del extremo caudal del fondo de saco, y su sección caudal hacia abajo a lo largo del septo rectovaginal. Una vez dominado, este tipo de operación puede completarse en 40 minutos.Antes de intentar este procedimiento, es importante recordar que debe familiarizarse con la anatomía pélvica ovina y adquirir habilidades quirúrgicas, como la disección romo y afilada y las técnicas hemostáticas. Tras este procedimiento, se pueden realizar otros métodos como la reparación con tejido autólogo. Después de su desarrollo, esta técnica allanó el camino para que los investigadores en el campo de la uroginecología exploraran la reparación del prolapso de órganos pélvicos con implantes en un modelo ovino para cirugía vaginal.Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo diseccionar el septo rectovaginal ovino para insertar un implante plano rectangular y de cómo utilizar trocares para guiar la inserción de un implante anclado con un brazo. No olvide que trabajar con objetos afilados, como bisturíes o agujas, puede causar lesiones o infecciones accidentales y que siempre se deben tomar precauciones, como prestar total atención durante la cirugía, al realizar este procedimiento.

transvaginal-mesh-insertion-in-the-ovine-model

Research

Investigación

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Este video muestra la técnica de discectomía cervical anterior y fusión en el modelo ovino.

La discectomía cervical anterior con fusión en el modelo ovino

Este video muestra la generación de un modelo de cáncer de endometrio en conejo mediante la inyección de una suspensión de células VX2 altamente metastásicas en los cuernos uterinos suturados del conejo. Esto conduce a la generación de cáncer de endometrio primario con metástasis en los ganglios linfáticos retroperitoneales.

Modelado de cáncer de endometrio metastásico: una técnica para generar cáncer de endometrio con metástasis de ganglios linfáticos en modelos de conejo

La degeneración del disco intervertebral es un factor importante en el dolor de espalda y una de las principales causas de discapacidad en todo el mundo. Existen numerosos modelos animales de degeneración de los discos intervertebrales. Demostramos un modelo ovino de degeneración de disco intervertebral, utilizando una broca, que logra una lesión de disco consistente y nivel reproducible de degeneración de disco.

Modelo de Degeneración de Disco Intervertebral Lumbar Ovino Utilizando una Lesión Lateral Retroperitoneal Lateral

Este protocolo presenta un método estandarizado para cultivar células VX2 en cultivo y para crear un modelo ortotópico VX2 de cáncer endometrial con metástasis de ganglios linfáticos retroperitoneales en conejos. Los modelos de cáncer de endometrio ortotópico son importantes para el estudio preclínico de nuevas modalidades de diagnóstico por imágenes para el diagnóstico de metástasis de ganglios linfáticos.

Un modelo de cáncer de endometrio ortotópico con linfadenopatía retroperitoneal hecha de células VX2 cultivadas y cultivadas en Vivo

Se realizaron inyecciones intravítreas en el ojo de oveja con el objetivo de administrar terapia génica mediada por virus a la retina.

Inyecciones intravítreas en el ojo ovino

El prolapso de órganos pélvicos afecta a millones de mujeres en todo el mundo y, sin embargo, algunas intervenciones quirúrgicas comunes tienen tasas de fracaso de hasta el 40%. La falta de modelos animales estándar para investigar esta condición impide el progreso. Proponemos el siguiente protocolo como modelo para la suspensión del ligamento uterosacro y la prueba de tracción in vivo .

Desarrollo de un modelo de rata con suspensión del ligamento uterosacro

El presente protocolo describe un método para administrar fármacos y agentes modificadores de la expresión génica por vía perivascular en un feto en desarrollo intrauterino . Es importante destacar que el efecto de los fármacos/agentes sobre el flujo sanguíneo puede medirse con la progresión del embarazo.

In vivo Estudio en tiempo real de los efectos de los fármacos sobre el flujo sanguíneo carotídeo en el feto ovino

El establecimiento del embarazo es un proceso dinámico que involucra diafonía compleja entre embriones y úteros. Las contribuciones precisas del entorno uterino materno a estos procesos siguen siendo un área activa de investigación. Aquí, se proporcionan protocolos detallados para ayudar en el diseño de modelos animales in vivo para abordar estas preguntas de investigación.

Métodos para estudiar las contribuciones uterinas al establecimiento del embarazo en un modelo de ratón ovariectomizado

Este protocolo describe la aplicación de la técnica quirúrgica utilizada para transferir embriones de cerdo clonados mediante laparotomía en primerizas.

Cirugía de Transferencia Embrionaria por Laparotomía en Primerizas

En este artículo se explica un nuevo modelo animal diseñado para analizar materiales de injerto suburetral. En este modelo, se implanta una cinta de malla a través de una incisión vaginal en ovejas, y los animales se observan durante un período de tres meses. Este modelo es esencial ya que sienta las bases para la investigación experimental sobre injertos.

Una técnica quirúrgica novedosa en un modelo de oveja para la implantación de injerto suburetral

Este estudio presenta una novedosa técnica quirúrgica para implantar un disco intervertebral artificial biomimético (BioAID). El método garantiza una colocación y estabilidad precisas, con el objetivo de restaurar la función de la columna cervical utilizando un modelo de cabra. Esta técnica es prometedora para su aplicación clínica tanto en pacientes humanos como caninos que padecen mielopatía de la columna cervical.

Técnica quirúrgica para la implantación de un disco intervertebral artificial biomimético en un modelo animal caprino

Aprende la técnica de inserción de mallas transvaginales en el modelo ovino mediante una única incisión vaginal. Este método permite estudiar tratamientos quirúrgicos para el prolapso de órganos pélvicos.

Inserción de mallas transvaginales en el modelo ovino

Explorar más videos