31 de julio de 2017
Este protocolo fue desarrollado para identificar cuantitativamente los componentes del microambiente tumoral en resecciones de pacientes con glioblastoma usando inmunohistoquímica cromogénica e ImageJ.
El objetivo general de este protocolo es identificar cuantitativamente los componentes del microambiente tumoral en las resecciones de pacientes con glioblastoma mediante inmunohistoquímica cromogénica e imagen J. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo del microambiente tumoral, como el aspecto de estos componentes en las muestras de pacientes y cómo podemos determinar las proporciones fisiológicamente relevantes de las células. La principal ventaja de esta técnica es que es sencilla de analizar en muestras de pacientes. Las implicaciones de esta técnica se extienden hacia la elucidación del microambiente tumoral de glioblastoma complejo y poco caracterizado.
Por lo general, las personas nuevas en este método tendrán dificultades porque el momento del desarrollo cromogénico debe controlarse de cerca para evitar el desarrollo excesivo y la saturación del tejido. Comience el protocolo realizando los lavados especificados en el protocolo de texto adjunto. Divida la solución desenmascaradora de antígenos de pH alto a base de tris y el agua destilada siguiendo las recomendaciones del fabricante.
Continúe con la recuperación de antígenos mediada por calor agregando la solución desenmascarante diluida a un recipiente no sellado apto para microondas. Coloque los portaobjetos en el recipiente. A continuación, coloque los portaobjetos del recipiente en el microondas.
A continuación, hierva el recipiente durante 20 minutos a alta potencia. Controle los niveles de líquido para detectar la evaporación y reponga el recipiente con agua destilada según sea necesario. Deje que las muestras se enfríen en solución durante una hora a temperatura ambiente.
Delinee la muestra de tejido con un hidrofóbico para minimizar el volumen de reactivos necesarios para cubrir la muestra. Luego, coloque suficiente solución de permeabilidad, de 100 a 200 microlitros para cubrir la muestra de tejido. Retire y deseche la solución y vuelva a cubrir la muestra de tejido con una solución de permeabilización.
Incubar las muestras a temperatura ambiente con solución de bloqueo durante una hora. Luego, incube las muestras durante la noche a cuatro grados centígrados con anticuerpos primarios diluidos en solución de bloqueo. Al día siguiente, detecte los anticuerpos primarios utilizando un reactivo polimérico de peroxidasa de rábano picante correspondiente al animal huésped del anticuerpo primario.
Coloque suficiente solución de permeabilización para cubrir la muestra de tejido e incube la muestra durante cinco minutos. Retire y deseche la solución y cubra la muestra de tejido con la solución de permeabilización una vez más durante cinco minutos. Incubar los portaobjetos en peróxido de hidrógeno al 0,3% y IX TBS durante 15 minutos.
Revele las muestras con una peroxidasa, diaminobenzidina o sustrato para frotar durante dos a 10 minutos hasta que se logre la intensidad de tinción deseada. Contratinción de las muestras para identificar los núcleos celulares, por ejemplo, con hematoxilina siguiendo el protocolo del fabricante. Deshidratar muestras con etanol y xileno al 100%.
Por último, monte las muestras de forma permanente con medios de montaje. Dos regiones de interés dentro de nuestras resecciones tumorales, el tumor primario a granel y las regiones adyacentes, compuestas principalmente por tejido sano con células cancerosas invasoras difusas, fueron identificadas por un neuropatólogo colaborador en muestras de pacientes teñidas con hematoxilina y eosina. La inmunohistoquímica cromogénica identificó tinciones positivas para astrocitos, microglía y oligodendrocitos dentro de cada muestra de paciente.
Se realizó una tinción sin anticuerpo primario para un control negativo. El fabricante recomendó diluciones adicionales antes de decidirse por la dilución de uno a 200 debido a la tinción positiva óptima del cuerpo celular y el proceso con un fondo minimizante para el anticuerpo anti ALDH 1l1. Utilizando la imagen J, se cuantificó el porcentaje de cobertura de tinción de oligodendrocitos OSP-1 positivo para finalmente comparar las diferencias en nuestras regiones de interés.
Una vez que se ha aplicado el umbral adecuado a la imagen, se puede medir y comparar el porcentaje de cobertura del umbral para varios pacientes. Se compararon cinco regiones adyacentes y a granel de muestras de pacientes con glioblastoma o GBM, junto con tejido cerebral sano, para determinar la cobertura de la proteína uno específica de oligodendrocitos o OSP1 por ciento. Una vez dominada, la técnica de tinción se puede realizar en cuatro horas el primer día y dos horas el segundo día si se realiza correctamente.
Al intentar este procedimiento, es importante recordar controlar de cerca la intensidad de la tinción del tejido y la hidratación.
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Este protocolo describe un método para identificar cuantitativamente los componentes del microambiente tumoral en resecciones de pacientes con glioblastoma utilizando inmunohistoquímica cromogénica e ImageJ. Esta técnica tiene como objetivo proporcionar información sobre el complejo microambiente tumoral del glioblastoma.
Quantitative analysis of the tumor microenvironment in patient-derived glioblastoma samples enables mechanistic de-risking of glial cell targets in neuro-oncology drug discovery. By providing reproducible, region-specific measurements of astrocytes, microglia, and oligodendrocytes, this method supports target validation and phenotypic screening in disease-relevant systems. It enhances predictive confidence in preclinical models by linking microenvironment composition to therapeutic response and resistance mechanisms.
This method fits within the discovery continuum from target hypothesis testing to lead optimization, particularly for neuro-oncology programs focused on microenvironment modulation.