Name: Regeneración de microelectrodos de oro vestidas para un analizador en tiempo real de la célula (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-03-12T12:30:00.000+00:00
Duration: 12 min 47 s
Description: Aprende a regenerar microelectrodos de oro para análisis celular en tiempo real usando reactivos de baja toxicidad. Este método reduce costos y minimiza residuos en laboratorios de biología celular.

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El trabajo fue apoyado por nacional Ciencias naturales Fundación de China (U1703118), un proyecto financiado por la prioridad académica programa de desarrollo de Jiangsu educación superior instituciones (DPPA), Jiangsu Shuangchuang programa, fondos abiertos de la clave del estado Laboratorio de quimioterapia/biodetección y Quimiometría (2016015) y el laboratorio nacional de biomacromoléculas (2017kf05) y profesor de Jiangsu Specially-Appointed proyecto, China.

Nota: en general, el proceso de regeneración incluye la digestión de tripsina y paso enjuague con agua y etanol. El tiempo de digestión cambia según el número de células utilizadas y el tipo y número de células utilizadas pueden diferir dependiendo de la experimentación. Se aconseja comprobar los microchips regenerados mediante métodos ópticos y electroquímicos para optimizar las condiciones de regeneración. Durante el experimento, pueden estar involucrados productos químicos solubles e insolubles, y aquí se detallan estos dos casos típicos de los procedimientos de regeneración.
1. preparación de soluciones de regeneración de
Nota: Preparar y manejar todas las soluciones en condiciones estériles.
<ol><li>Preparar nueva solución de tripsina 0.25% (g/v). Tripsina puede ser comprada o recién preparada como sigue.<ol>
<li>Disolver 0,25 g de tripsina en 100 mL de solución salina con tampón fosfato de pH 7,4 (PBS).</li>
		<li>Agitar la solución hasta que la tripsina se haya disuelto completamente en 4 oC. Revuelva la solución a baja velocidad teniendo cuidado de evitar cualquier formación de burbujas.</li>
		<li>Filtrar la solución con un filtro de 0,22 μm en la campana de bioseguridad.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Preparación de etanol al 75% con etanol absoluto. Vierte 75 mL de etanol absoluto en un matraz aforado y añadir agua desionizada hasta que el volumen llegue a 100 mL. Realizar esterilización más si es necesario.</li>
</ol>2. incubación y proliferación de las células A549 en placas electrónicas
Nota: Placa electrónica tipos 16 y L8 son hechas microelectrodos de oro vestidas litográfico impresos en la parte inferior de los pozos de incubación. Placa electrónica 16 tiene 16 mientras que la placa electrónica L8 tiene 8 pocillos. Los pocillos de la placa electrónica 16 están alrededor mientras que los pozos de la placa electrónica L8 son rectángulos redondeados. El volumen de cada placa electrónica 8 bueno es aproximadamente 830 μl y cada placa electrónica 16 bueno es aproximadamente 270 μl.
<ol><li>Cultivo de células A549<ol>
<li>Plato de penicilina-estreptomicina en cultivo celular células A549 en cultivo en medio del Roswell Park Memorial Institute-1640 (RPMI-1640) suplementado con 10% suero bovino fetal (FBS) y 1%.</li>
		<li>Las células de paso cuando la densidad celular alcanza el ~ 75% y luego lavar la capa de células adherentes con 1 x PBS y trypsinize solución de tripsina 0.25% durante 1 min a 37 oC. centrifugar las células a 179 × g por 5 min eliminar tripsina. Resuspender las células en medio de 10 mL para más cultura u otros experimentos. Nota: La solución de células suspendidas en el medio aquí es señalada como el buffer de suspensión celular.</li>
		<li>Extraiga 10 μl y contar el número de celular utilizando un hemocitómetro. Use el Medio RPMI-1640 para diluir más el tampón de suspensión celular para preparar 80.000 30.000 células/mL del tampón de suspensión celular para los experimentos.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Proliferación/citotoxicidad experimento y adquisición de datos
	<ol>
<li>Añadir (50 μl 150 μL para la placa electrónica L8) celular de medio a cada incubación de la placa electrónica 16 y déjela por 30 min en la bioseguridad campana para equilibrar. Inserte manualmente la placa electrónica 16 en el analizador en tiempo real de la célula en la incubadora de CO2 a 37 oC.</li>
		<li>En marcha el programa de operación del analizador celular en tiempo real en el equipo. En su defecto experimento página de configuración de modelo, seleccione "Experimento modelo" y el nombre el análisis corriente.</li>
		<li>En su página de diseño, seleccione los pozos correspondientes que se incluyen en el experimento y la información como la célula tipo, número y drogas nombres en los cuadros de edición de entrada. En su página de la lista, agregue los pasos experimentales, luego seleccione el tiempo en marcha (p. ej., 12, 24 o 48 h) de cada paso y el intervalo de adquisición de datos en tiempo real. Nota: Aquí, el intervalo de paso 1 y 2 son 1 min y 15 min después.</li>
		<li>Guarde el archivo y haga clic en el botón "Start" para medir la impedancia de fondo de los medios de comunicación en su página índice de celda; los datos resultantes se restará automáticamente. En su página bien gráfico, se pueden visitar todas las curvas bien. En su página de la trama, añadir pozos y el gráfico del índice de tiempo celular serán demostrados.</li>
		<li>Para el experimento de proliferación celular, en primer lugar haga clic en el botón de "Pause" para detener el programa. Luego extraiga la placa electrónica y añadir 100 μl A549 células suspensión de tampón por bien a temperatura ambiente. Deje la placa durante 30 min en la campana de seguridad biológica para dejar las células asentarse en el fondo de los pozos de incubación.</li>
		<li>Inserte manualmente la placa electrónica de la estación de analizador en tiempo real de la célula. Haga clic en el botón "Inicio" para continuar el experimento. Nota: En la página de la trama, el analizador continuamente registra valores de índice de celda o curvas durante todo el experimento.</li>
		<li>Cuando el experimento esté completo, ingresar a la página de complot y abra el archivo de experimento. Continuación, seleccione todos los pozos de incubación probados y las curvas de índice de celda resultantes que pueden ser un promedio o normalizadas por la vez última antes de agregar fármacos o cambiar el medio para reducir las variaciones entre los ensayos. En la página de análisis de datos, pueden calcularse CE50 o CL50</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. regeneración de placas electrónicas
Nota: Para cada paso del lavado, la solución en la placa electrónica se mezcló completamente (5 - 10 veces) con una pipeta.
<ol><li>
Caso 1: para la evaluación de la citotoxicidad de anti -fármaco contra el cáncer
	<ol>
<li>Células A549 de semilla en la placa electrónica y como se describe en la sección 2.</li>
		<li>Disolver primero el fármaco contra el cáncer el clorhidrato de doxorubicina (DOX) en el medio celular. Lentamente añadir DOX a las células (concentración final de DOX es 30 μg/mL) usando una pipeta. Grabar el CI como se describe en la sección 2. Nota: La placa electrónica utilizada fue regenerada inmediatamente después de que el experimento fue completado. En este caso, como DOX es una sustancia soluble, la regeneración de la placa electrónica siguiendo el protocolo es relativamente fácil de manejar y no hay pasos adicionales son necesarios.</li>
		<li>
Regeneración
		<ol>
<li>Sacar la placa electrónica que contiene las células de la estación de analizador en tiempo real de la célula. Coloque la placa de electrónica usada en una campana de bioseguridad estéril a temperatura ambiente y mezclar cuidadosamente con una pipeta de medio de cultivo. Pipetee hacia fuera el medio.</li>
			<li>Enjuague las placas electrónicas con agua desionizada μl 200 por 3 veces a temperatura ambiente.</li>
			<li>Digerir las células restantes de las placas electrónicas con tripsina 0.25% recién preparado para 1-2 h (200 μL/pocillo) en una incubadora a 37 oC. Una vez terminada la digestión, mezclar la solución de incubación 5 - 10 veces utilizando una pipeta y pipeta de la solución en la campana de bioseguridad a temperatura ambiente.</li>
			<li>Enjuague las placas electrónicas con 200 μL etanol y 200 μL de agua, respectivamente, como sigue: agua desionizada 2 veces, 100% etanol 2 veces; 75% etanol 2 veces; agua desionizada 2 veces. Invertir la placa electrónica en una gasa estéril o el papel de tejido para decantar el agua restante a temperatura ambiente.</li>
			<li>Radiación ultravioleta esteriliza la placa electrónica regenerada para 1-2 h en la campana de bioseguridad a temperatura ambiente. Nota: El doble del volumen de todas las soluciones para la regeneración de la placa electrónica L8.</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Caso 2: entrega de la droga usando el material mesoporoso.
	<ol>
<li>Utilizar materiales de sílice mesoporosa de barra-como con un tamaño de poro promedio de 5,6 nm como matrices de entrega de drogas, como previamente divulgados20. Nota: Aquí, la placa electrónica fue empleada para supervisar el efecto de liberación del fármaco en las células.<ol>
<li>Añadir materiales mesoporosos en la solución de incubación de cada pocillo de las placas electrónicas. Como materiales de silicona no son solubles y precipitado de la placa electrónica, lavar la placa como sigue:</li>
		</ol>
</li>
		<li>Realice pasos 3.1.3.1-3.1.3.3 como se describe para el caso 1.</li>
		<li>Enjuague los microchips con agua desionizada μl 200 una vez en la campana de bioseguridad a temperatura ambiente.</li>
		<li>Enjuague los microchips con etanol absoluto de 200 μL 2 veces a temperatura ambiente.</li>
		<li>Enjuague los microchips con etanol del 75% de 200 μL de una vez a temperatura ambiente.</li>
		<li>Añadir 250 μl de etanol al 75% en cada pozo y sellar la placa electrónica con la película a temperatura ambiente.</li>
		<li>Vuelta a 114 x g durante 2 min y vaciar la placa electrónica. Invertir la placa electrónica en una gasa estéril o el papel de tejido para decantar el agua restante a temperatura ambiente.</li>
		<li>Repita el paso 3.2.5-3.2.7 una vez.</li>
		<li>Radiación ultravioleta esteriliza la placa electrónica regenerada para 1-2 h en la campana de bioseguridad a temperatura ambiente. Nota: Doble el volumen de solución de todo caso de las placas electrónicas de L8.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. evaluación del efecto de la regeneración
<ol><li>
Características ópticas de la superficie de la placa electrónica regenerado
	<ol>
<li>Uso un acero cuchara para desmontar con cuidado la parte inferior de la incubación de fresco y regenerado placa electrónica que contiene v. oro microelectrodos. Llevaba un guante de plástico, con cuidado Limpie la parte que contiene el microchip de la placa electrónica con la cuchara de acero.</li>
		<li>Coloque ambas piezas en el centro de los portaobjetos de vidrio y recoger los espectros Raman resultantes por microscopio de Raman equipado con un detector CCD del21. Nota: El espectrómetro fue equipado con un láser 633 y los espectros se registró en un intervalo de 30 exposición láser a una longitud de onda en el rango de 500-3500 cm-1. Las imágenes ópticas obtuvieron un microscopio Raman utilizando una lente de ojo de 10 x y objetivo de 50 x. Figura 1A y figura 1 también se obtuvieron usando el aparato instalado de microscopio de Raman.</li>
		<li>Para evaluar la viabilidad de las células conectadas después de la absorción de fármaco contra el cáncer en el fresco y regenerado electronica placas, utilice un confocal laser microscopio para controlar la fluorescencia espontánea de moléculas DOX absorbidas por A549.<ol>
<li>Para registrar la fluorescencia espontánea de DOX absorbida por las células (fresco y regenerado electronica placas con células A549), uso un 63 X aceite objetiva y 485 nm como la longitud de onda de excitación.</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Comportamiento electroquímico de electrodos regenerados Nota: Como desmontaje manual de una placa electrónica comercial es difícil y no es lo ideal para la evaluación del estado eléctrico superficial como comprobado, la eficiencia de regeneración del Protocolo se evaluó mediante el uso de electrodos de carbón oro/vidrioso normal (CME) como una prueba de plataforma, que se realizó espectroscopia de impedancia electroquímica (EIS). Los diámetros de los electrodos de Au y CME son 3 mm. datos electroquímicos se obtuvieron mediante un analizador electroquímico con un sistema de tres electrodos y las mediciones de impedancia se llevaron a cabo usando una señal de corriente alterna (CA) de 10 amplitud de mV en un amplio rango de frecuencias de 100 kHz 0,01 Hz.<ol>
<li>Antes de la medición, el electrodo de Au y polacos CME a una superficie de espejo con una mezcla de alúmina en un paño de limpieza, seguido de sonicación en agua para eliminar cualquier partícula.</li>
		<li>Activar el electrodo de Au en 0,5 M H2hasta4. Obtener datos EIS del pelado electrodo de Au y CME en 10 mM la solución de electrolito KCl que contiene 1mM K3[Fe(CN)6] describe22.</li>
		<li>Prepare solución celular A549 según 2.1.2 y 2.1.3. Suspensión de células de 10 μl de la gota en la superficie del electrodo de Au y CME. Incubar electrodo de Au y modificado con las células en una incubadora de C o37 para 3 h. EIS obtener datos del electrodo Au CME y CME modificado con las células en 10 mM la solución de electrolito KCl que contiene 1 mM K3[Fe(CN)6].</li>
		<li>
Regenerar los electrodos utilizando el protocolo y medida EIS.
		<ol>
<li>Sumerja el electrodo de Au y CME modificado con células en tripsina 0.25% para 0,5-2 h. Enjuague el electrodo de Au CME suavemente con agua y 4 veces. Enjuague los electrodos suavemente con etanol absoluto 4 veces. Sumergir el electrodo de Au y CME en etanol 75% ~ 5 minutos enjuague las virutas suavemente con etanol 75% 4 veces.</li>
			<li>Obtener datos EIS regenerado electrodo de Au y CME en la solución de electrolito KCl 10 mM con 1mM K3[Fe(CN)6].</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
</ol>

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</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Resumimos varios métodos disponibles17,23,24,25,26 para regenerar microchips en la tabla 1. Básicamente, estos métodos involucrados condiciones experimentales relativamente fuertes para lograr la regeneración completa de fichas debido a la presencia de interacciones fuertes de molécula-molécula como la del complejo inmune utilizado para chips ...

Debido a su eficiente y menos dependiente de trabajo proceso experimental, etiqueta-libre celular basada en tecnología ha sido testigo de un crecimiento rápido durante la última década fines analíticos como screening como en el aspecto de proteómica1,2 , entrega3, etc.4,5 comparada con métodos bioquímicos tradicionales dirigidos al análisis de la célula, análisis de la célula libre de etiquetas en tiempo real con el prototipo desarrollado por Giaever y compañeros de trabajo previamente6 la droga se basa en el principio de registro de los cambios de la señal eléctrica en la superficie de los microchips conectados a celulares, que permiten una medición continua del crecimiento de la célula o la migración de forma cuantitativa. Siguiendo esta estrategia, se lanzó un celular en tiempo real electrónico detección sistema (RT-CES) utilizando el principio de detección basado en la impedancia eléctrica fue introducido7,8 y más recientemente un analizador comercial celular en tiempo real (RTCA) laboratorio de investigación9.
El analizador celular en tiempo real comercial principalmente Lee señales evocadas de las células de impedancia eléctrica, que resultan de los cambios fisiológicos de células incubados incluyendo proliferación celular, migración, viabilidad, morfología y la adherencia en la superficie de microchips10,11. Estas señales eléctricas se convierten más lejos por el analizador en un parámetro adimensional, denominado la célula índice (CI) para evaluar el estado de la célula. El cambio de la impedancia de los microchips refleja principalmente el entorno iónico de las células de la cubierta en la interfase electrodo/disolución. Por lo tanto, el rendimiento analítico del analizador celular depende en gran medida la unidad detección de núcleo, los microchips disponibles (es decir, llamadas placas electrónicas, por ejemplo, 96/16/8-bien), que se hacen de microelectrodos de oro vestidas litográfico impreso en la parte inferior de los pozos de incubación. Los microelectrodos oro montan en forma de círculo en la línea (figura 1) y cubren la mayor parte de la superficie de los pozos de incubación, que permiten la detección dinámica y sensible de células adjunto3,12,13 ,14. El CI aumentará en el caso de más cobertura de superficie de las células en el chip y disminuye cuando las células se exponen a una sustancia tóxica que resulta en la apoptosis. Aunque el analizador en tiempo real de la célula se ha utilizado con frecuencia para determinar la citotoxicidad11 y neurotoxicidad15 y proporcionar más información cinética que el método clásico de extremos, las placas electrónicas desechables son los más consumibles.
Hasta ahora, ha habido no hay métodos disponibles para la regeneración de la placa electrónica, que es probablemente debido a que las condiciones de regeneración áspero, como solución de Piraña o ácido acético son implicados16,17, 18, que puede alterar el estado eléctrico de los microchips de oro. Por lo tanto, un método suave y eficaz para eliminar las células adherentes y otras sustancias de la superficie de oro fichas será conveniente para el proceso de regeneración de la placa electrónica. Recientemente hemos desarrollado un protocolo para la regeneración de platos electrónicos desechables reactivos corrosivos y las virutas regeneradas fueron caracterizadas por métodos electroquímicos y ópticos19. Mediante el uso de reactivos de laboratorio fácilmente disponibles y moderada como tripsina y etanol, hemos establecido un método general para regenerar la placa electrónica comercial sin efectos adversos, que se aplica con éxito para regenerar los dos tipos principales de la placa electrónica (16 y L8) utilizan para la RTCA.

<table><tbody><tr><td>Rata: Sprague-Dawley</td><td>Charles River</td><td>Cat# 400</td><td></td></tr><tr><td>ratón anti-rata CD11b monoclonal (clon OX42)</td><td>Bio-Rad</td><td>Cat# MCA275R</td><td>Paneo: 1:1,000; Tinción: 1:500</td></tr><tr><td>Policolonal de cabra anti-Iba1&nbsp;</td><td>Abcam</td><td>Cat# AB5076</td><td>Tinción: 1:500</td></tr><tr><td>Conejo policlonal anti-Ki67&nbsp;</td><td>Abcam&nbsp;</td><td>Gato# AB15580</td><td>Tinción: 1:500</td></tr><tr><td>Alexa Fluor Donkey anti-ratón 594</td><td>Invitrogen</td><td>Cat# 11055</td><td>Tinción: 1:500</td></tr><tr><td>Alexa Fluor Donkey anti-cabra 488</td><td>Invitrogen</td><td>Cat# A-21203</td><td>Tinción: 1:500</td></tr><tr><td>Alexa Fluor Donkey anti-Rabbit 647</td><td>Invitrogen</td><td>Cat# A-31573</td><td>Tinción: 1:500</td></tr><tr><td>Triton-X (detergente en ICC tinción)</td><td>Thermo Fisher</td><td>Cat# 28313</td><td></td></tr><tr><td>Sulfato de heparán</td><td>Galeno Suministros de laboratorio</td><td>Cat# GAG-HS01</td><td></td></tr><tr><td>Heparina</td><td>Sigma&nbsp;</td><td>Cat# M3149</td><td></td></tr><tr><td>Peptona de sólidos lácteos</td><td>Sigma</td><td>Cat# P6838</td><td></td></tr><tr><td>TGF-&beta; 2</td><td>Peprotech</td><td>Cat# 100-35B</td><td></td></tr><tr><td>Murine IL-34</td><td>R& D Systems</td><td>Cat# 5195-ML/CF</td><td></td></tr><tr><td>Lana ovina colesterol</td><td>Avanti Polar Lipids</td><td>Cat# 700000P</td><td></td></tr><tr><td>Colágeno IV</td><td>Corning&nbsp;</td><td>Cat# 354233</td><td></td></tr><tr><td>Ácido oleico</td><td>Cayman Chemicals&nbsp;</td><td>Cat# 90260</td><td></td></tr><tr><td>11(Z)Ácido eicosadienoico (gondoico) Productos</td><td>químicos de las Islas Caimán&nbsp;</td><td>Cat# 20606</td><td></td></tr><tr><td>Calceína AM colorante</td><td>Invitrogen</td><td>Cat# C3100MP</td><td></td></tr><tr><td>Ethidium homodimer-1</td><td>Invitrogen</td><td>Cat# E1169</td><td></td></tr><tr><td>DNaseI</td><td>Worthington</td><td>Cat# DPRFS</td><td></td></tr><tr><td>Percoll PLUS</td><td>GE Healthcare</td><td>Cat# 17-5445-02</td><td></td></tr><tr><td>Tripsina&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>Cat# T9935</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F12</td><td>Gibco</td><td>Cat# 21041-02</td><td></td></tr><tr><td>Penicilina/ Estreptomicina</td><td>Gibco</td><td>Cat# 15140-122</td><td></td></tr><tr><td>Glutamina</td><td>Gibco</td><td>Cat# 25030-081</td><td></td></tr><tr><td>N-acetilcisteína&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>Cat# A9165</td><td></td></tr><tr><td>Insulina</td><td>Sigma</td><td>Cat# 16634</td><td></td></tr><tr><td>Apo-transferrin&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>Cat# T1147</td><td></td></tr><tr><td>Selenito de sodio</td><td>Sigma</td><td>Cat# S-5261</td><td></td></tr><tr><td>DMEM (alta glucosa)</td><td>Gibco</td><td>Cat# 11960-044</td><td></td></tr><tr><td>Dapi Fluoromount-G</td><td>Southern Biotech</td><td>Cat# 0100-20&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Poly-D-Lisina &nbsp;</td><td>Sigma</td><td>Cat# A-003-E</td><td></td></tr><tr><td>Placas Primarias&nbsp;</td><td>VWR</td><td>Cat# 62406-456</td><td></td></tr><tr><td>Reactivos de stock&nbsp; </fuerte></td><td><fuerte>reconstitución&nbsp; </fuerte></td><td><fuerte>Concentración utilizada</fuerte></td><td><fuerte>Almacenamiento</fuerte></td></tr><tr><td>Apo-transferrina</td><td>10 mg/mL en PBS&nbsp;</td><td>1:100-20</td> <td>y grados; C</td></tr><tr><td>N-acetilcisteína</td><td>5 mg/mL en H2O&nbsp;</td><td>1:1,000-20</td><td>&deg; C</td></tr><tr><td>Selenito de sodio</td><td>2,5 mg/mL en H2O&nbsp;</td><td>1:25,000-20</td><td>&deg; C</td></tr><tr><td>Colágeno IV</td><td>200 &mu; g/mL en PBS&nbsp;</td><td>1:100-80</td> <td>y grados; C</td></tr><tr><td>TGF-b2</td><td>20 &mu; g/mL en PBS&nbsp;</td><td>1:10,000-20</td><td>&deg; C</td></tr><tr><td>IL-34</td><td>100 &mu; g/mL en PBS&nbsp;</td><td>1:1,000-80</td><td>&deg; C</td></tr><tr><td>Colesterol de lana ovina</td><td>1,5 mg/mL en etanol al 100%;</td><td>1:1,000-20</td><td>&deg; C</td></tr><tr><td>Sulfato de heparán</td><td>1 mg/mL en H2O</td><td>1:1,000-20</td><td>&deg; C</td></tr><tr><td>Ácido oleico/Ácido gondoico</td><td>gondoico: 0,001 mg/mL; Oleico: 0,1 mg/mL en etanol al 100%&nbsp;</td><td>1:1,000-20</td><td>&deg; </td></tr><tr><td>C Heparina</td><td>50 mg/mL en PBS&nbsp;</td><td>1:100-20</td> <td>y grados; C</td></tr><tr><td>Solutions&nbsp; </fuerte></td><td><fuerte>Receta&nbsp; </fuerte></td><td></td><td><fuerte>Comentarios</tampón></td></tr><tr><td>perfusión</td> fuerte <td>50 &mu; g/mL de heparina en DPBS++ (PBS con Ca++ y Mg+ +)</td><td></td><td>Úselo cuando esté helado</td></tr><tr><td>Douncing Buffer</td><td>200 &mu; L de 0,4% de DNaseI en 50 mL de DPBS++</td><td></td><td>Úselo cuando esté helado</td></tr><tr><td>Tampón de paneo</td><td>2 mg/mL de peptona de sólidos lácteos en DPBS++</td><td></td><td></td></tr> medio de <tr><td>crecimiento de microglía (MGM)</td><td>DMEM/F12 que contiene 100 unidades/mL de penicilina, 100 &mu; g/mL de estreptomicina, 2 mM de glutamina, 5 &mu; g/mL de N-acetilcisteína, 5 y mu; g/mL de insulina, 100 &mu; g/mL de apo-transferrina y 100 ng/mL de selenito</td><td></td> de sodio <td>Use MGM helado para desplazar la microglía fuera del plato de inmnopanning.</td></tr><tr><td>Recubrimiento de colágeno IV</td><td>MGM que contiene 2 &mu; g/mL de colágeno IV</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tampón de separación de mielina</td><td>9 mL Percoll PLUS, 1 mL 10x PBS sin Ca++ y Mg++, 9 &mu; L 1 M CaCl2, 5 &mu; L 1 M MgCl2</td><td></td><td>Mezcle bien después de la adición de&nbsp; CaCl2 y MgCl2</td></tr><tr><td>TGF-b2/IL-34/Medios de crecimiento (TIC) que contienen colesterol&nbsp;</td><td>MGM que contiene 2 ng/mL de TGF-b2 humano, 100 ng/mL de IL-34 murino, 1,5 &mu; g/mL de colesterol de lana ovina, 10 &mu; g/mL de heparán sulfato, 0,1 &mu; g/ml de ácido oleico, y 0,001 &mu; g/ml de ácido</td><td></td> gondoico <td>Asegúrese de agregar colesterol a los medios calentados a 37 °C; C y no agregue más de 1.5 &mu; g/mL o se precipitará. No filtre los medios que contengan colesterol. Equilibre los medios TIC con un 10% de CO2 durante 30 minutos y 1 hora antes de agregarlos a las celdas para asegurar un pH óptimo.</td></tr></tbody></table>

regeneración de microelectrodos de oro vestidas para un analizador en tiempo real de la célula

Regeneration of Arrayed Gold Microelectrodes Equipped for a Real-Time Cell Analyzer

El ensayo de celular libre de etiqueta es ventajoso para estudio bioquímico, debido a no requiere el uso de animales de experimentación. Debido a su capacidad para proporcionar información dinámica sobre células bajo condiciones fisiológicas que ensayos bioquímicos clásicos, este ensayo de célula libre de etiquetas en tiempo real basado en el principio de impedancia eléctrica está atrayendo más atención durante los últimos década. Sin embargo, su utilización práctica puede ser limitado debido al costo relativamente caro de medición, en el que se utilizan microchips oro desechables consumibles costosos para el analizador de células. En este protocolo, hemos desarrollado una estrategia general para regenerar microelectrodos de oro vestidas para un analizador de célula libre de etiqueta comercial. El proceso de regeneración incluye la digestión de la tripsina, enjuague con agua y etanol y un paso de spinning. El método propuesto ha sido probado y demostrado para ser eficaz para la regeneración y el uso repetido de las placas electrónicas comerciales de al menos tres veces, que ayudará a los investigadores excepto en el alto costo de ejecución de ensayos en tiempo real de la célula.

Propiedades de superficie de oro microchips: los procedimientos de regeneración usados en este protocolo fueron descritos en la figura 1. La figura 2 muestra el microscópico superficial fotos de fresco y regenerado electronica placas por el microscopio óptico. Como se muestra en la figura 2A y figura 2, microscópicas observaciones indi...

Este protocolo describe una estrategia general para regenerar comerciales microelectrodos de oro vestidas para un analizador de célula libre de etiqueta para ahorro en los alta ejecución costos ofmicrochip-ensayos. El proceso de regeneración incluye la digestión de la tripsina, enjuague con agua y etanol y un paso de giro, que permite el uso repetido de los microchips.

Regeneración de microelectrodos de oro vestidas para un analizador en tiempo real de la célula

The label-free cell-based assay is advantageous for biochemical study because of it does not require the use of experimental animals. Due to its ability ...

El objetivo general de este procedimiento es regenerar placas electrónicas comerciales preparadas para un Analizador en Tiempo Real de Células, o RTCA. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la regeneración de chips desechables basados en oro, incluyendo la regeneración de placas electrónicas utilizadas en RTCA. La principal ventaja de esta técnica es que el procedimiento de regeneración puede realizarse utilizando reactivos de laboratorio suaves, fácilmente disponibles y de baja toxicidad.Tuvimos por primera vez la idea de este método cuando comenzamos a utilizar el Analizador de Células en Tiempo Real, que tiene un costo elevado debido a sus chips basados en oro. Inicie este procedimiento con la incubación y proliferación de células A549 en una placa de cultivo celular, tal como se describe en el protocolo escrito. Añada 150 microlitros de medio celular a cada pocillo de incubación de la placa electrónica L8. Deje la placa durante 30 minutos en la cabina de seguridad biológica para su equilibrio.Después de 30 minutos, inserte manualmente la placa electrónica L8 en el Analizador de Células en Tiempo Real dentro del incubador de CO₂ a 37 grados Celsius. A continuación, inicie el programa de operación del Analizador de Células en Tiempo Real en la computadora. En la página de configuración predeterminada del modelo de experimento, seleccione Modelo de Experimento y asigne un nombre al ensayo en curso.En su página de diseño, seleccione los pocillos correspondientes que están incluidos en el experimento e ingrese la información, como el tipo celular, el número y los nombres de los fármacos, en los cuadros de edición. En su página de programación, agregue los pasos experimentales y luego seleccione el tiempo de ejecución de cada paso y el intervalo de adquisición de datos en tiempo real. Haga clic en iniciar para medir la impedancia de fondo del medio.Se guardará el archivo del experimento. Los datos resultantes se restarán automáticamente. En la página del gráfico, agregue pozos y se mostrará el gráfico de tiempo-índice celular.Para el experimento de proliferación celular, primero haga clic en el botón de pausa para detener el programa. Luego retire la placa electrónica y agregue 100 microlitros de tampón de suspensión de células A549 por pocillo a temperatura ambiente. Deje la placa durante 30 minutos en la cabina de seguridad biológica para permitir que las células sedimenten en el fondo de los pocillos de incubación.Inserte manualmente la placa electrónica en la estación del analizador celular en tiempo real. Luego, haga clic en el botón de inicio para continuar el experimento. En la página de gráficos, el analizador registra continuamente los valores del índice celular, o curvas, durante todo el experimento.Una vez finalizado el experimento, ingrese a la página de gráficos y abra el archivo del experimento. Luego, seleccione todos los pocillos de incubación analizados y las curvas resultantes del índice celular que puedan promediarse o normalizarse por última vez antes de añadir fármacos o cambiar el medio, con el fin de reducir las variaciones entre los ensayos. En la página de análisis de datos, se puede calcular la CE50 o la CI50.Después de realizar la evaluación de citotoxicidad del fármaco anticancerígeno según se describe en el protocolo del texto, retire la placa electrónica que contiene las células de la estación de Analizador de Células en Tiempo Real. Coloque la placa electrónica usada en una campana de seguridad biológica estéril a temperatura ambiente y mezcle completamente el medio de cultivo utilizando una pipeta. Luego, use una pipeta para aspirar todo el medio.Lave las placas electrónicas con 200 microlitros de agua desionizada durante tres veces a temperatura ambiente. Diga las células restantes en las placas electrónicas con tripsina recién preparada al 0,25 % durante una a dos horas en un incubador a 37 grados Celsius. Cuando la digestión haya finalizado, trabaje en la cabina de seguridad biológica a temperatura ambiente, mezclando la solución de incubación de cinco a 10 veces mediante una pipeta y luego retire la solución.Lave las placas electrónicas con 200 microlitros de agua desionizada dos veces. Luego, lave con 200 microlitros de etanol al 100 % dos veces, seguido del mismo volumen de etanol al 75 % dos veces. Finalmente, enjuague con otros 200 microlitros de agua desionizada dos veces.Dar la vuelta a la placa electrónica sobre una gasa estéril o papel de filtro para decantar el agua restante a temperatura ambiente. A continuación, realizar la esterilización con luz ultravioleta sobre la placa electrónica regenerada durante una a dos horas en la cabina de seguridad biológica a temperatura ambiente. Después de usar las placas para la administración de fármacos utilizando material mesoporoso según se describe en el protocolo del texto, digerir las células restantes con tripsina como antes.Dado que la pipeta se utiliza frecuentemente en los experimentos, la persona debe tener cuidado para evitar rayar la punta y la superficie de los microchips. Enjuague los microchips con 200 microlitros de agua desionizada una vez en la cabina de seguridad biológica a temperatura ambiente. Luego, enjuague los microchips con 200 microlitros de etanol absoluto dos veces a temperatura ambiente.A continuación, lave los microchips con 200 microlitros de etanol al 75 % una vez a temperatura ambiente. Añada 250 microlitros de etanol al 75 % en cada pocillo y selle la placa electrónica con la película sellante a temperatura ambiente. Después de centrifugar la placa electrónica a 114 × g durante dos minutos, vacíe la placa.Invierta la placa electrónica sobre una gasa estéril o papel de tejido para decantar el líquido restante a temperatura ambiente. Repita los lavados con etanol al 75 % seguidos de la centrifugación. Luego, realice la esterilización con luz ultravioleta en la placa electrónica regenerada durante una a dos horas en la cabina de seguridad biológica a temperatura ambiente.Evalúe las características ópticas de la superficie regenerada de la placa electrónica desmontando primero la parte inferior del pozo de incubación, como se describe en el protocolo escrito. Para evaluar la viabilidad de las células adheridas tras la absorción del fármaco anticancerígeno en placas electrónicas nuevas y regeneradas, utilice un microscopio confocal de barrido láser para monitorear la fluorescencia espontánea de las moléculas de DOX absorbidas por las células A549. Para registrar la fluorescencia espontánea del DOX absorbido por las células, use un objetivo de inmersión en aceite de 63 aumentos y una longitud de onda de excitación de 485 nanómetros.A continuación, evalúe los comportamientos electroquímicos de los electrodos regenerados puliendo primero el electrodo de oro y el electrodo de carbono vítreo hasta obtener una superficie similar a un espejo, utilizando una suspensión abrasiva sobre un paño de pulido. Luego, someta los electrodos a sonicación en agua para eliminar cualquier partícula. A continuación, active el electrodo de oro en ácido sulfúrico 0,5 molar.Obtenga datos de espectroscopía de impedancia electroquímica, o EIS, del electrodo de oro desnudo y del electrodo de carbono vítreo en una solución electrolítica de cloruro de potasio 10 milimolar, que contenga ferricianuro de potasio 1 milimolar. A continuación, agregue 10 microlitros de una suspensión celular sobre la superficie del electrodo de oro en el ECv. Después de añadir las células, incube el electrodo de oro en el ECv en un incubador a 37 grados Celsius durante tres horas antes de obtener los datos de EIS de los electrodos modificados con células, como se describe en el protocolo del texto.Para regenerar los electrodos, sumerja el electrodo de oro en el GCE modificado con células en tripsina al 0,25 % durante 0,5 a dos horas. Enjuague ambos electrodos suavemente con agua cuatro veces. Luego, enjuague los electrodos suavemente con etanol absoluto cuatro veces.A continuación, sumerja el electrodo de oro en el GCE en etanol al 75 % durante aproximadamente cinco minutos. Después de cinco minutos, enjuague suavemente el chip con etanol al 75 % cuatro veces antes de obtener los datos de EIS de los electrodos regenerados, como se describe en el protocolo del texto. Para evaluar la eficiencia de regeneración de la placa electrónica de oro dispuesta en matriz, se realizaron observaciones microscópicas tanto en placas electrónicas nuevas como tratadas.No se encontró diferencia apreciable en las propiedades ópticas de la superficie del microchip. Se utiliza la fluorescencia de las moléculas de doxorrubicina para evaluar el estado celular en los microchips de oro antes y después de la regeneración. La homogeneidad similar y la morfología celular bien definida demostraron la reutilización de los chips.El protocolo de regeneración se aplica para la prueba real de proliferación celular. Las curvas de crecimiento obtenidas a partir de múltiples pocillos de incubación de una placa electrónica analizada muestran una buena consistencia, lo que indica la regeneración exitosa del chip comercial. Aquí se muestra la evaluación de citotoxicidad realizada con la placa electrónica regenerada L8 utilizando materiales de sílice mesoporosa.El índice celular de la muestra tratada con materiales mesoporosos disminuyó en comparación con el control, lo que indica una ligera citotoxicidad de los materiales. La encapsulación adicional y la liberación del fármaco anticancerígeno doxorrubicina mediante materiales mesoporosos provocaron una disminución drástica en la curva de crecimiento de las células A549. Una vez dominada, esta técnica puede realizarse en cuatro horas si se lleva a cabo adecuadamente.Al intentar este procedimiento, es importante recordar que el tiempo de digestión del sumidero de tipo puede variar de un chip a otro. Tras seguir este procedimiento, se pueden realizar otros métodos, como microscopía confocal de barrido láser, o incluso espectroscopía, espectroscopía de impedancia electroquímica, con el fin de responder preguntas adicionales, como la evaluación del efecto de regeneración.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Biochemistry

Bioquímica

El video muestra la regeneración funcional de las conexiones propioespinales utilizando un ensayo basado en una matriz de electrodos múltiples (MEA). Los cortes de la médula espinal se colocan en el MEA y se dejan fusionar. Los cortes fusionados se separan mecánicamente creando una lesión, induciendo que las neuronas propioespinales crezcan sobre la lesión y conecten los cortes. Se evalúa la actividad eléctrica de las rodajas para identificar la regeneración de las conexiones funcionales.

Estudio de la regeneración de conexiones funcionales entre cortes de médula espinal utilizando una guía de electrodos múltiples

Diferentes recubrimientos de electrodos afectan al rendimiento de grabación neural a través de cambios en las propiedades electroquímicas, químicas y mecánicas. Comparación de los electrodos in vitro es relativamente simple, sin embargo la comparación de la respuesta in vivo típicamente se complica por las variaciones en la distancia de los electrodos / neurona y entre animales. Este artículo proporciona un método robusto para comparar electrodos de grabación neural.

Un método para Sistemática Electroquímica y electrofisiológico Evaluación de Neuronales Grabación Electrodos

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Eléctrico de la célula-sustrato Impedancia de detección para la cuantificación de la proliferación endotelial, la función de barrera, y la motilidad

Aquí se presenta un protocolo que se basa en rebanadas de la médula espinal cultivadas en matrices de electrodos múltiples para estudiar la regeneración funcional de conexiones propioespinal in vitro.

La investigación de la regeneración funcional en organotípicos médula espinal Co-culturas cultivadas en Arrays Multi-electrodos

Las células neuronales de ratón cultivadas en matrices de múltiples electrodos muestran un aumento de la respuesta después de la estimulación eléctrica. Este protocolo demuestra cómo cultivar las neuronas, cómo registrar la actividad, y cómo establecer un protocolo para entrenar a las redes para responder a los patrones de estimulación.

Incremento dependiente del tiempo en la respuesta de la red a la estimulación de cultivos de células neuronales en matrices de microelectrodos

En este estudio, modificamos microelectrodos de fibra de carbono con nanopartículas de oro para mejorar la sensibilidad de la detección de neurotransmisores.

Microelectrodos de fibra de carbono modificados por nanopartículas de oro para una detección neuroquímica mejorada

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Implantación Crónica de Múltiples Matrices de Electrodos Flexibles de Polímeros

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Construcción e implementación de matrices de microelectrodos de fibra de carbono para grabaciones in vivo crónicas y agudas

Aquí, describimos la metodología de fabricación para matrices de electrodos de fibra de carbono personalizables para grabar in vivo en nervios y cerebro.

Kit de herramientas de código abierto: Matriz de microelectrodos de fibra de carbono de sobremesa para grabación nerviosa

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Detección y captura en tiempo real de subpoblaciones celulares invasivas a partir de cocultivos

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Aprende a regenerar microelectrodos de oro para análisis celular en tiempo real usando reactivos de baja toxicidad. Este método reduce costos y minimiza residuos en laboratorios de biología celular.

Regeneración de microelectrodos de oro vestidas para un analizador en tiempo real de la célula

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