Name: RGB y la proyección de imagen espectral raíz planta Phenotyping y investigación fisiológica: montaje Experimental y protocolos de la proyección de imagen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-08-08T15:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 37 s
Description: Aprende a evaluar sistemas radiculares en plantas cultivadas en suelo mediante imágenes RGB e hiperespectrales. Este protocolo combina técnicas de fenotipado para analizar arquitectura y funcionalidad radicular en rizoboxes.

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Los autores reconocen que la financiación de la austríaca ciencia fondo FWF mediante el proyecto número P 25190-B16 (las raíces de la resistencia a la sequía). Establecimiento de la infraestructura de proyección de imagen hyperspectral fue apoyado financieramente por el Federal gobierno de Baja Austria (Niederösterreich tierra) vía el proyecto K3-F-282/001-2012. Financiación adicional para el experimento de la remolacha azucarera se recibió de AGRANA investigación &#38; GmbH de centro de innovación (ARIC). Los autores agradecen a Craig Jackson para el soporte técnico durante el experimento y el inglés corrección del manuscrito. También reconocemos Markus Freudhofmaier que contribuyeron a la configuración de imagen RGB y Josef Schodl para la construcción del montaje rhizobox.

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Los autores no tienen nada que revelar.

Los protocolos proporcionan dos enfoques complementarios para suelo crecido en proyección de imagen de sistema de la raíz. Un paso crítico para obtener resultados experimentales confiables se llena de la rhizoboxes que tiene que garantizar una capa uniforme y homogénea del sustrato en el vidrio delantero proporcionan el contacto de la raíz y el suelo firmemente en la ventana de observación y evitar espacios de aire. Esta es la razón principal para utilizar comparativamente finas del suelo tamizada de &#60; mm 2: agregados más grandes resultan en mayor superficie morfología en la ventana de observación con espacios vacíos entre los agregados. Además de un mayor riesgo de deshidratación de punta de raíz, esto también requiere técnicas más complejas de procesamiento de imagen para la asignación de agua31.
Modificaciones del Protocolo por lo tanto se centran en mejorar y rápido llenado de rhizoboxes. Tiempo de relleno actualmente es cerca de 30 minutos por la caja. Además se analizan uso de rhizoboxes con dos ventanas de cristal para la proyección de imagen de ambos lados y modificaciones para optimizar la homogeneidad de iluminación para imágenes RGB mejor. Ampliación hardware también puede considerar la integración de optodes plana32 así como capacitancia33 la proyección de imagen en el sistema de rhizobox. Esto es sin embargo más allá de las actividades actuales de modernización.
Modificaciones del software se centran en el registro automático de la imagen a la parte superior del fusible y RBG imágenes34de fondo. Para hiperespectral imagen extracción de característica sin supervisión avanzada acerca28 y más sensibles métodos de detección de objetivo supervisados como MVS35 son probados. Tal modo los datos hiperespectrales potencialmente permitan la evaluación de múltiples propiedades suelo, rizosfera y raíz36. Además se pretende desarrollar un (semi) automatizadas de software para rhizobox raíz imágenes basadas en una versión modificada de raíz sistema analizador37 cuantificar morfológicas (longitud, diámetro, superficie) así como de rasgos arquitectónicos (frecuencia de ramificación, ángulos de ramificación).
La principal limitación del protocolo comparado con métodos de proyección de imagen 3D es la restricción a la raíz visible superficial y propiedades de la rizosfera. Sin embargo se ha demostrado que los rasgos visibles de raíz son un proxy confiable para el sistema entero de la raíz21. La técnica de rhizobox se combina fácilmente con el tradicional muestreo destructivo (lava) al final del crecimiento dinámico proyección de imagen con el fin de validar a la relación de visible vs total del sistema raíz rasgos. Esta relación puede variar entre especies21, muestreo destructivo se recomienda para inferencia confiable de rasgos visibles de cualquier nueva serie de fenotipado con una especie de cultivo diferentes.
La ventaja clave del protocolo presentado aquí es la combinación de las condiciones de crecimiento realista (suelo), relativamente alto rendimiento potencial para el temporal resolver la proyección de imagen RGB e inferencia en la funcionalidad de la raíz (por ejemplo, absorción de agua) a través de los datos de raíces y rizosfera quimiométricas de hyperspectral imaging. Así los métodos supera las restricciones de la inferencia en plántula de alto rendimiento y no suelo raíz de métodos14, mientras que parcialmente permite penetraciones profundas phenotyping en procesos funcionales con complejidad menos experimental y un mayor rendimiento en comparación con métodos avanzados de 3D15.
En próximos experimentos se utilizará el protocolo para estudiar el efecto de la micorriza en el desarrollo del sistema radicular y la funcionalidad de las legumbres así como en cuanto a características de raíz de fenotipado de las especies de cultivo de cobertura en relación con la estructura del suelo, el nitrógeno y el carbono bicicleta.

Raíces proporcionan varias funciones esenciales para las plantas como el almacenamiento de asimilados, anclaje de las plantas terrestres en la tierra y la absorción y transporte de agua y nutrientes1. Desde un punto de vista evolutivo, la formación de ejes de la raíz se considera una condición previa fundamental para el origen de la tierra las plantas2. A pesar de esta importante función, históricamente las raíces han ocupado sólo una posición marginal en la investigación biológica. En tiempos más recientes, sin embargo, existe un creciente interés científico en los sistemas de raíz de planta como se evidencia en la figura 1.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56251/56251fig1.jpg"> 
Figura 1: Importancia de los estudios de raíz en las Ciencias de planta. Número de raíz relacionado con estudios como porcentaje de todos los estudios de planta publicados en revistas SCI en las últimas décadas. Buscar resultado de Scopus utilizando palabras clave "planta" y "planta y raíz". <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56251/56251fig1large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
Dos razones principales pueden ser presumidos para ser la base de los recientes avances en la investigación de la raíz. Vegetación terrestre, primero se expone a estrés ambiental más frecuentes como resultado del cambio global3. En el contexto de producción de cultivos agrícolas se estima que globalmente alrededor 30% de la superficie agrícola está limitado por agua y fósforo4,5. Reducción del estrés de rendimiento de las cosechas son una razón principal de las brechas de rendimiento significativas que a nivel mundial se estima en el inferior el 50% de productividad potencial de los ecosistemas agrícolas de secano6. Además de la disponibilidad de bajos recursos, esto está también relacionado con eficiencia de uso de recursos pobres, es decir, insuficiente capacidad de una planta de explotación de los recursos disponibles7. Esto resulta en pérdidas de recursos móviles tales como nitrato, que puede afectar negativamente a otros ecosistemas. Por ejemplo, la eficiencia de uso de nitrógeno global actual se estima en 47%8. Eficiencia mediante métodos de mejora de la gestión del uso del mejor recurso y cultivares, resulta de gran importancia tanto para crecimiento de salidas agrícolas así como en cuanto a sostenibilidad ambiental sostenido. En esta planta de contexto las raíces se consideran un objetivo clave para mejores cultivos y cultivo sistemas9,10.
Un segundo fondo importante para el reciente interés en las raíces de plantas es un avance tecnológico en los métodos de medición. Métodos de raíz durante mucho tiempo han sido restringidos por dos desafíos clave: para la medición de las raíces de plantas que crecen en el suelo tuvieron que ser aislados para la cuantificación, en su mayoría por lavado11, tal modo perturbar el arreglo arquitectónico de ejes de raíz. Observación de raíz "in situ" mediante excavación métodos, de tal modo conservando la ubicación natural de las raíces en el suelo, se han utilizado para la descripción botánica12. Todavía son muy desperdiciador de tiempo y por lo tanto no cumplen con los requisitos de rendimiento de análisis comparativo sistema estructural-funcional de la raíz. Por otra parte métodos de alto rendimiento para la medición de la arquitectura de raíz en su mayoría se realizaron en medios artificiales y plántulas plantas13 donde la extrapolación al entorno natural de crecimiento de las plantas es cuestionable14.
El reciente auge de la investigación de la raíz está estrechamente ligado al avance en métodos15la proyección de imagen. Enfoques en los estudios de raíz la proyección de imagen se puede agrupar áspero en tres tipos. En primer lugar hay métodos 3D de alta resolución como CT y MRI16. Estos métodos son los más adecuados para el estudio de procesos de interacción de las raíces de la planta con el suelo, tales como sequía inducida por xilema embolia17. Por lo general se aplican a muestras relativamente pequeñas donde permiten observaciones detalladas. Una comparación del CT y de MRI para macetas de diferente tamaños y proyección de imagen de bien raíz se encuentra en18. En segundo lugar, hay alto rendimiento imagen métodos19,20. Estos métodos son principalmente basada en común 2D RGB la proyección de imagen de las raíces que crecen en medios artificiales (gel, papel de germinación) donde de alto contraste permite disección relativamente sencilla entre las raíces y el fondo. Son apropiados para la comparación de alto rendimiento entre caracteres de raíz de la plántula de genotipos diferentes cultivos bajo condiciones cada vez más artificiales estandarizadas13. Entre estos dos enfoques son métodos rhizobox: se utiliza la proyección de imagen 2D de las raíces que crecen en el suelo durante largo período de tiempo y tienen rendimiento medio21,22. Un desafío reciente para la proyección de imagen (2D) de la raíz es también captar indicadores de funcionalidad de la raíz además de descripción de la estructura23.
En el presente trabajo presentamos los protocolos experimentales de rhizobox crecido sistemas radiculares mediante (i) una simple y barata por encargo RGB imagen instalación y (ii) una configuración proyección de imagen de NIR más compleja la proyección de imagen. Resultados de ejemplo de estas dos configuraciones se muestran y discuten en el contexto de planta phenotyping e investigación fisiológica de la planta.

<table><tbody><tr><td>Rhizobox</td><td>Technisches B&uuml; ro f&uuml; r Bodenkultur</td><td>Constructor</td><td></td>experimental</tr><tr><td>Lámparas LED ATUM HORTI 600</td><td>Klutronic</td><td>AHI10600F</td><td></td></tr><tr><td>Tubo de luz fluorescente HiLite T5 Day</td><td>Juwel Aquarium</td><td>86324</td><td></td></tr><tr><td>Tubo de luz UV Eurolite 45cm slim 15 W</td><td>Conrad</td><td>593384 - 62</td><td></td></tr><tr><td>Canon EOS 6D</td><td>Canon Austria GmbH</td><td>8035B024</td><td></td></tr><tr><td>Adobe Photoshop CS5 Extended Versión 12.0 x 32</td><td>Adobe Systems Software Ireland Ltd.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>WinRhizo Pro v. 2013</td><td>Regent Instruments Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cámara SWIR Xeva-1.7-320</td><td>Xenics</td><td>XEN-000105</td><td></td></tr><tr><td>Espectrógrafo Imspector N25E</td><td>Specim</td><td></td><td></td>Escáner</tr> de <tr><td>imágenes hiperespectrales</td><td>Carinthian Tech Research AG</td><td>Constructor experimental</td><td>Diseño y montaje de escáner de imágenes hiperespectrales y software</td></tr><tr><td>Matlab R2106a</td><td>Mathworks</td><td></td><td>Incluye cajas de herramientas para el procesamiento de imágenes, el procesamiento de señales y la estadística y el aprendizaje automático</td></tr><tr><td>AP4 Poromoeter</td><td>Delta-T-Devices</td><td></td><td></td></tr><tr><td>LI-3100C Medidor de área</td><td>LI-COR</td><td></td><td></td></tr><tr><td>BASF Láminas de poliestireno Styradur</td><td>Obi Baumarkt</td><td>9706318</td><td>Se pueden utilizar diferentes tipos de láminas de poliestireno u otro material que separe el suelo humedecido de manera diferente</td></tr></tbody></table>

rgb y la proyección de imagen espectral raíz planta phenotyping y investigación fisiológica: montaje experimental y protocolos de la proyección de imagen

RGB and Spectral Root Imaging for Plant Phenotyping and Physiological Research: Experimental Setup and Imaging Protocols

Mejor comprensión de la dinámica de raíz de planta es esencial para mejorar la eficiencia de uso de recursos de los sistemas agrícolas y aumentar la resistencia de variedades de cultivo contra tensiones ambientales. Se presenta un protocolo experimental para RGB y la proyección de imagen hyperspectral de sistemas de la raíz. El enfoque utiliza rhizoboxes donde las plantas crecen en el suelo natural sobre un tiempo más largo para observar completamente desarrollado sistema de raíces. Configuración experimental se ejemplifica para evaluar rhizobox plantas bajo estrés hídrico y estudiar el papel de las raíces. Una configuración de imagen RGB se describe para la cuantificación rápida y barata de desarrollo de las raíces en el tiempo. La proyección de imagen Hyperspectral mejora la segmentación de raíz desde el fondo de suelo en comparación con el umbral de color en RGB. La fuerza particular de la proyección de imagen hyperspectral es la adquisición de quimiométricas información sobre el sistema de la raíz y el suelo para comprensión funcional. Esto se demuestra con la asignación contenido de agua de alta resolución. La proyección de imagen espectral, sin embargo, es más compleja en la adquisición de imágenes, procesamiento y análisis en comparación con el enfoque RGB. Una combinación de ambos métodos puede optimizar una evaluación integral del sistema radicular. Ejemplos de aplicaciones integración de raíz y parte aérea rasgos se dan para el contexto de la investigación fisiológica phenotyping y planta de planta. Mejora de la imagen de la raíz puede obtenerse mediante la optimización de la calidad de imagen RGB con mejor iluminación utilizando diferentes fuentes de luz y por extensión de métodos de análisis de imagen para inferir propiedades de zona raíz de datos espectrales.

Se presenta un protocolo experimental para la evaluación de suelo cultivado planta raíz sistemas RGB y la proyección de imagen hyperspectral. Combinación de tiempo de imagen RGB serie con información quimiométricas de hyperspectral optimiza penetraciones en la dinámica de la raíz de planta.

RGB y la proyección de imagen espectral raíz planta Phenotyping y investigación fisiológica: montaje Experimental y protocolos de la proyección de imagen

Better understanding of plant root dynamics is essential to improve resource use efficiency of agricultural systems and increase the resistance of crop ...

El objetivo general de este procedimiento es obtener información exhaustiva sobre las raíces de las plantas que crecen en rizocajas llenas de suelo, combinando diferentes métodos de obtención de imágenes. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo del fenotipado y mejoramiento vegetal, como la contribución de diferentes arquitecturas radiculares a una mayor resistencia al estrés abiótico. La principal ventaja de este enfoque es que combina la obtención de imágenes RGB para la arquitectura radical y la obtención de imágenes hiperspectrales para la funcionalidad de las raíces.El potencial del uso de la imagen hiperespectral para raíces se extiende hacia una amplia gama de parámetros del rizosfera, ya que la información espectral puede revelar cambios fisicoquímicos a pequeña escala introducidos por las raíces de las plantas. La demostración visual de este método es fundamental, ya que los pasos de llenado del rizocaja deben realizarse con cuidado. De lo contrario, el crecimiento de las raíces y su visibilidad se verán negativamente afectados.Comience este procedimiento con la preparación de las cajas radiculares para el llenado del sustrato, tal como se describe en el protocolo escrito. Humedezca previamente el suelo seco hasta alcanzar un contenido gravimétrico de agua de 0,108 gramos por gramo, agregando 400 gramos de agua por cada 3.705 gramos de suelo seco. Mezcle suavemente el suelo y el agua para obtener una distribución homogénea del agua.Disgregar manualmente los agregados más grandes para mantener el tamaño de partícula menor o igual a dos milímetros. Es fundamental obtener una capa homogénea de suelo junto a la ventana de observación de gas, evitando huecos de aire. Las puntas de las raíces de las plantas se deshidratan rápidamente al crecer hacia los huecos de aire.Además, la calidad de la imagen espectral para la cartografía del agua se ve afectada negativamente. Llene las cajas radiculares abiertas con el suelo previamente humedecido y compáctelo suavemente utilizando una lámina de poliestireno para cubrir el volumen interno de la caja, logrando así una densidad aparente homogénea de 1,3 gramos por centímetro cúbico. Añada la cantidad restante de agua para alcanzar el contenido hídrico objetivo de 0,31 centímetros cúbicos por centímetro cúbico rociándola sobre la superficie con una botella pulverizadora.Asegúrese de un tamaño pequeño de gota para evitar la degradación de la estructura superficial, así como un mojado homogéneo. Mantenga la caja sobre una balanza durante la pulverización para monitorear la cantidad de agua que se agrega realmente al sustrato. Deje que el agua se redistribuya durante 10 minutos y luego presione el vidrio contra la superficie y fíjelo con los rieles metálicos laterales.El peso final promedio de las cajas de rizosfera con sustrato humedecido fue de 17.818 ± 68 gramos. Equipe la cámara climática con ocho lámparas LED que proporcionen una iluminación homogénea de 450 micromoles por metro cuadrado por segundo, con picos espectrales a 440 y 660 nanómetros, para un crecimiento óptimo de las plantas. Después de ajustar los parámetros ambientales según las necesidades de la planta y del experimento, cubra la ventana de vidrio con una placa de madera para mantener la zona radicular en la oscuridad y evitar el crecimiento de algas debido a la penetración de luz a través de la superficie de vidrio.Luego coloque las cajas radiculares en una inclinación de 45 grados utilizando un marco metálico adecuado. Esto maximiza el crecimiento de las raíces hacia la superficie de vidrio debido a la gravitropismo. Para la imagenología RGB de raíces, ilumine la caja radicular utilizando cuatro tubos fluorescentes de 24 vatios colocados a una distancia de 80 centímetros de la caja radicular.Además, monte cuatro tubos UV de 15 vatios a 20 centímetros del sistema de iluminación alternativa del rizocaja, aprovechando la autofluorescencia de las raíces en caso de bajo contraste entre la raíz y el fondo del sustrato de color brillante. Encienda las lámparas UV y luego coloque el rizocaja que se va a capturar en el soporte del caja de imagen. A continuación, tome dos imágenes para cubrir la mitad superior e inferior de un rizocaja con una superposición de aproximadamente tres centímetros.Adquiera y procese las imágenes RGB según se describe en el protocolo escrito. Finalmente, realice el análisis de las imágenes adquiridas de las raíces en RGB y posteriormente verifique si existen regiones que no coincidan. En ese caso, defina una región de exclusión y reinicie el análisis.Para raíces no clasificadas, agregue clases de color adicionales y reinicie el análisis. Para elementos clasificados erróneamente como raíces, active o aumente las opciones de filtrado de residuos y bordes irregulares. Realice la adquisición de imágenes determinando primero los tiempos de integración de la cámara para el escaneo del rizocaja y el estándar blanco en el software de la cámara.Para ello, abra la interfaz gráfica de usuario de imagen y mueva la cámara a una posición del rizocaja donde haya raíces. Ajuste el tiempo de integración de la cámara apuntando a un objeto iluminado de forma que aproximadamente el 85 % del rango dinámico completo de la cámara se utilice en el histograma mostrado por el software. Establecer correctamente el tiempo de integración para diferentes sustratos y tejidos radiculares es fundamental para aprovechar al máximo el rango dinámico de la cámara infrarroja, evitando cualquier pérdida de información al exceder su rango.Repita el proceso para el estándar blanco moviendo el sistema de posicionamiento de la cámara para enfocar el estándar blanco antes de cerrar el software de la cámara. A continuación, abra la interfaz gráfica de usuario de imágenes en Matlab e introduzca todos los ajustes del escaneo actual del rizobox. Adquiera los estándares oscuro y blanco antes de cada sesión de imagen, una vez al día.El estándar oscuro representa el ruido de la cámara, mientras que el estándar blanco proporciona la reflectividad máxima. Estos datos son necesarios para la normalización de imágenes durante el preprocesamiento. Defina si se escanea todo el rizobox o solo una parte de él.Para el caso presente, se toman imágenes de rizocajas completas. Luego inicie el escaneo. Para la medición espectral del contenido de agua, se necesita una rizocaja de calibración.Subdivida una caja de rizosfera en compartimentos de cinco centímetros utilizando láminas de poliestireno para llenarlos con suelo a diferentes contenidos de agua. Escanee la caja de rizosfera de calibración con los mismos ajustes utilizados para las cajas de rizosfera plantadas. Como ejemplo, para combinar características de raíces y partes aéreas, obtenga el porómetro foliar para la medición de la conductancia estomática.Equilibre el dispositivo a las condiciones ambientales durante al menos una hora en la cámara climática. Tome mediciones de al menos tres hojas por planta. Aquí se muestra una imagen representativa del crecimiento de la raíz de la variedad de remolacha azucarera Ferrara, basada en imágenes RGB.A los 35 días después de la siembra, las raíces de la planta se han alargado hasta alcanzar la base de la caja radicular. Algunos ejes radiculares en la parte superior de la caja radicular no pudieron segmentarse a partir de las imágenes RGB. La senescencia de las raíces basales más viejas cambia su color a marrón.Por lo tanto, la separación entre estas raíces y el fondo del suelo basada en un umbral de color falla. Mediante el uso de imágenes hiperspectrales, la segmentación se basa en diferentes características espectrales del primer plano de la raíz y del fondo del suelo. Esto mejora el resultado de la segmentación.Las diferencias en la longitud de la raíz medida respecto a una imagen de referencia rastreada manualmente son solo del 1,5 %. Además, la imagen espectral permite un mapeo detallado del contenido de agua alrededor de la raíz para inferir la absorción de agua. Aquí, el esqueleto de la raíz se muestra en negro. Las áreas más claras indican regiones con mayor agotamiento de agua cerca de los ejes de la raíz.Mientras que las zonas más oscuras de color azul representan regiones con mayor contenido de agua en el suelo fuera del alcance de las raíces. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo llenar adecuadamente las cajas rizosféricas para garantizar un crecimiento radicular satisfactorio y una buena visibilidad. Esto constituye la base para obtener posteriormente imágenes y resultados representativos de fenotipificación radical.Tras seguir este procedimiento, se pueden realizar otros métodos de clasificación espectral, como agrupamiento K-medias o máquinas de vectores de soporte, para obtener información detallada sobre las propiedades de las raíces y la rizosfera, como la senescencia y descomposición de las raíces. Una vez establecida, esta técnica permite fenotipar de forma integral los sistemas radiculares y la respuesta al estrés abiótico. Un conjunto de 10 cultivares puede caracterizarse con una duración experimental total de menos de tres meses.

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Este protocolo describe un proceso para la toma rápida de imágenes de plantas de semillero de Arabidopsis en respuesta a un estímulo de gravedad, utilizando escáneres planos disponibles en el mercado. El método permite barato, la captura de grandes volúmenes de imágenes de alta resolución susceptibles de algoritmos de análisis de aguas abajo.

El uso de escáneres planos para recopilar de alta resolución de duración transcurrido Imágenes de la gravitrópica Respuesta Arabidopsis Root

Aquí, presentamos un protocolo para el estudio de comportamiento de crecimiento de planta y especialmente los fenotipos de una manera reproducible. Mostramos cómo proporcionar al mismo tiempo condiciones luz estable y variable. Análisis adecuados dependen de suficientes números de muestra y evaluaciones estadísticas válidas.

Análisis del comportamiento de crecimiento de Arabidopsis thaliana en diferentes calidades de luz

Visualización y medición del crecimiento de raíz en situ es extremadamente difícil. Se presenta un método rhizobox personalizable para seguir el desarrollo de la raíz y proliferación en el tiempo en respuesta al enriquecimiento de nutrientes. Este método se utiliza para analizar maíz diferencias genotípicas en la plasticidad de la raíz en respuesta a una fuente de nitrógeno orgánico.

Un protocolo de Rhizobox optimizada para visualizar el crecimiento de las raíces y la capacidad de respuesta a nutrientes localizadas

Describimos un nuevo enfoque técnico para estudiar las respuestas fotosintéticas en plantas superiores que implica mediciones simultáneas de clorofila una fluorescencia y la reflectancia de las hojas utilizando un PAM y un radiómetro espectral para la detección de señales de la misma zona de la hoja en Arabidopsis.

Evaluación de comportamientos fotosintéticos mediante mediciones simultáneas de la reflectancia de la hoja y análisis de fluorescencia de clorofila

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Un protocolo simple para mapear los rasgos de arquitectura del sistema radicular de la planta

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Fenotipado basado en imágenes de alto rendimiento para determinar las respuestas morfológicas y fisiológicas a estreses simples y combinados en patata

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Transcripción y metabolito de perfiles para la Evaluación de árbol Tabaco y Poplar como materia prima para la industria basada en Bio

Comprender el papel de la heterogeneidad ambiental en la coexistencia de especies se ha centrado generalmente en los tipos de heterogeneidad que son extrínsecos a la composición de especies de la comunidad. Proporcionamos métodos detallados para la creación de nuevos tratamientos de la heterogeneidad del suelo utilizando los suelos sometidos a la retroalimentación acondicionado planta-suelo, o la heterogeneidad intrínseca a la composición de la comunidad.

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RGB y la proyección de imagen espectral raíz planta Phenotyping y investigación fisiológica: montaje Experimental y protocolos de la proyección de imagen

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