Name: Medir el efecto de productos químicos sobre el crecimiento y reproducción de Caenorhabditis elegans (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-10-05T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 12 s
Description: Aprende a evaluar la toxicidad química en Caenorhabditis elegans mediante un protocolo que mide crecimiento y reproducción. Este método económico facilita el desarrollo farmacéutico y la evaluación de riesgos ambientales.

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Este estudio fue apoyado por el Instituto Coreano de ciencia y tecnología beca de investigación intramuros (2E27513) y el alto valor agregado alimentos tecnología desarrollo programa (IPET) financiado por el Ministerio de agricultura, alimentación y asuntos rurales (315067-03).

Nota: todo el experimento debe realizarse en un laboratorio aislado limpio mantenido a 20 ° C con poco polvo y con minimización de contaminación durante el gusano y manejo bacteriana. Para ello, deben realizarse experimentos bajo la llama de una lámpara de alcohol o de usar un banco limpio.
 1. mantenimiento de C. elegans y huevo preparación para la prueba de química <ol><li>mantenimiento C. elegans N2 (var. Bristol) en una placa de agar NGM hartos de vivir OP50 de e. coli a 20 º C 12 , 13.</li>
	<li>Prepare Huevos sincronizados de edad mediante lejía solución tratamiento 5 o el tiempo del huevo colocación método 6 , 14 , 15. 
	Nota: antes de la preparación de huevo, capa de la placa NGM que contienen etopósido con e. coli OP50 como se describe a continuación inactivadas por calor. E. coli inactivadas por calor OP50 se utiliza para reducir al mínimo la actividad metabólica de e. coli 6 , 16.</li>
</ol> 2. Preparación de inactivadas por calor de e. coli OP50 a Feed C. elegans durante la prueba de toxicidad <ol><li>preparar 500 mL de medio de doble levadura triptona (DYT) como se describe en la tabla 1 y sembrar una sola Colonia de e. coli OP50 cultivadas en placa de un agar Luria-Bertani (LB) 5.</li>
	<li>Incubar el OP50 de e. coli en un incubador de agitación de 14 h a 37 ° C y 150 rpm.</li>
	<li>Después de la centrifugación durante 30 min a 3.220 x g y 20 ° C, quitar medio DYT todo sobrenadante y agregar una premezcla de 25 mL de tampón de S, 250 μl de 1 M MgSO 4 y 25 μl de colesterol 5 mg/mL (disuelto en etanol). Todas estas soluciones son estériles.</li>
	<li>Resuspender las bacterias y transferirlos a un tubo de plástico desechable de 50 mL.</li>
	<li>Para la inactivación de calor, incubar el resuspendido OP50 de e. coli en un baño de agua durante 30 min a 65 ° C.</li>
	<li>Enfriar a temperatura ambiente y almacenar a 4 ° C hasta su uso. Esto puede conservarse hasta un mes.</li>
</ol> 3. Preparación de NGM placas que contienen ya sea 1% DMSO o 750 μm Etoposide <ol><li>preparar dos botellas de vidrio de 200 mL limpia. Añadir 0,6 g de NaCl, 0.5 g de peptona, 3,4 g de agar y 195 mL de agua destilada y un agitador magnético a una botella. Añadir un agitador magnético a la otra botella vacía.</li>
	<li>Botellas de autoclave estos dos durante 15 min a 121 ° C y después de enfriamiento las botellas en un baño de agua durante 30 min a 55 ° C.</li>
	<li>Añadir 0,2 mL de 1 M CaCl 2, 0,2 mL de colesterol 5 mg/mL, 0.2 mL de 1 M MgSO 4 y 5 mL de 1 M KPO 4 (todas estas soluciones son estériles) y luego las mezcle por agitación magnética en un plato caliente a 55 ° C.</li>
	<li>Divide el medio mixto de NGM en dos botellas con el mismo volumen (100 mL). A continuación, añadir 1 mL de DMSO a un frasco, mezcla con agitación magnética. Guarde la otra botella en un baño de agua a 55 ° C hasta el siguiente paso. Alícuota 3 mL del medio que contiene DMSO a cada 35 x 10 mm 2 caja de Petri. Aproximadamente 33 planchas NGM que contiene DMSO pueden hacerse de este paso.</li>
	<li>Mezcla la otra botella con agitación magnética, añadir 1 mL de etopósido 75 mM (caldo disuelto en DMSO), mezclar nuevamente y repita el procedimiento alícuota (paso 3.4). Aproximadamente 33 etopósido (750 μm)-que contienen planchas NGM se puede hacer de este paso. 
	Nota: En la correlación anterior papel 6, probamos 0, 250, 500 y 1.000 μm de etopósido. Basado en los datos, elegimos la 750 μm de etoposide dosis en este papel.</li>
	<li>Fresco abajo las placas NGM que contienen el producto químico a temperatura ambiente dejando a temperatura ambiente durante aproximadamente 3 h y almacenarlos a 4 ° C hasta su uso. 
	Nota: En el caso de productos químicos sensibles a la luz, bloquear la luz para minimizar la descomposición inducida por la luz. 
	Nota: Opcionalmente, hacer una placa NGM normal sin productos químicos para el análisis, que pueden realizarse mediante dos condiciones diferentes de tratamiento químico como se describe a continuación ponedora.</li>
	<li>Agregar 100 μl de inactivadas por calor OP50 de e. coli (como se describe en sección 2) y extensión en cada plato NGM. Permita que seque durante la noche en una incubadora de C. elegans a 20 ° C para la prueba química</li>
</ol> 4. Medición del crecimiento de C. elegans <ol><li>transferencia el sincronizado de edad C. elegans los huevos al plato de NGM suplementado con 1% DMSO o 750 μm etopósido.</li>
	<li>C. elegans de incubar en una incubadora a 20 ° C durante 4 días. Observar los gusanos usando un microscopio estéreo y toma imágenes microscópicas de todos los días. 20 aumentos (1 X objetivo zoom de 2 aumentos y ocular de 10 X) suele ser apropiado para la observación del crecimiento de C. elegans. También tomar una imagen microscópica del micrómetro de microscopio para la calibración de gusano tamaño. 
	Nota: El hambre afecta la prueba de toxicidad. Por lo tanto, la alimentación con suficientes bacterias o ajustar el transferido C. elegans números al principio del huevo. Observar hasta 3 días para excluir la posibilidad de hambre.</li>
	<li>Medir la longitud del cuerpo de C. elegans tratados con DMSO o etopósido en cada momento utilizando el software ImageJ. 
	Nota: Para cada medida de la muestra, 50 gusanos son suficientes para el análisis estadístico.
	<ol><li>El ImageJ en, abra la imagen de micrómetro de etapa de microscopio (&#39; archivo &#39; &#8594; &#39; abrir &#39;). 
		Nota: La imagen del micrómetro y el gusano imágenes (paso 4.2) deben ser el mismo aumento.</li>
		<li>Arrastre una línea de 1.000 μm en la imagen de calibración del micrómetro mediante el uso de &#39; recta &#39; herramienta.</li>
		<li>Haga clic en &#39; analizar &#39; &#8594; &#39; escala Set &#39; y entrada 1.000 μm en la &#39; conocida distancia &#39; caja y &#39; unidad de longitud &#39; de la caja, respectivamente. Compruebe &#39; Global &#39; y haga clic en &#39; OK &#39;.</li>
		<li>Abrir las imágenes de gusano (&#39; archivo &#39; &#8594; &#39; Open &#39;). Dibujar una línea a lo largo de la característica de cada gusano utilizando &#39; línea a mano alzada &#39; herramienta. Obtener los datos de longitud de cuerpo haciendo clic en &#39; analizar &#39; &#8594; &#39; medida &#39;.</li>
		<li>Repita estos pasos para 50 gusanos.</li>
	</ol></li></ol> 5. Ensayo de poner huevo de C. elegans <ol><li>edad-sincronizado de incubar huevos en el NGM la placa que contiene DMSO o etopósido para 64 h (antes del primer parto) hasta la etapa adulta joven a los 20 ° C. 
	Nota: Es opcional para utilizar los gusanos de los experimentos de medición de crecimiento. Es conveniente hacer la medición de crecimiento y ensayo de puesta de huevo juntos.</li>
	<li>Transferencia 5 gusanos adultos a la NGM nuevas placas sin químicos (condición 1, tratamiento químico dentro de cierto período de tiempo, de los huevos a etapa de adulto joven) o placa NGM nueva con el mismo pretratamiento químico (condición 2, la exposición continua de productos químicos durante el periodo experimental en general) y luego les incube durante 24 h. 
	Nota: Se recomienda hacer repeticiones con 3-5 placas NGM para cada tratamiento; estas repeticiones pueden utilizarse para el análisis estadístico.</li>
	<li>Transferir a la nueva placa NGM como se describió anteriormente y contar el número de huevos cada día. Cuenta los gusanos que se arrastró fuera, murieron y fueron los hatchEd.</li>
	<li>Repita estos pasos hasta que los gusanos no ponen más huevos, generalmente en 5 días.</li>
	<li>Calcular el número de huevos puestos por gusano de cada placa y sumar estos valores cada día durante 5 días para determinar el número total de huevos puestos. 
	Nota: Excluye el número de gusanos que se arrastró apagado e internamente tramado del cálculo.</li>
</ol>

<ol><li>Blomme, E. A., Will, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Toxicology+strategies+for+drug+discovery%3A+present+and+future%5BTitle%5D)+AND+%22Chem.+Res.+Toxicol%22%5BJournal%5D)">Toxicology strategies for drug discovery: present and future.</a> Chem. Res. Toxicol. 29 (4), 473-504 (2016).</li>
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<li>Kang, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+topoisomerase+inhibitor%2C+daurinol%2C+suppresses+growth+of+HCT116+cells+with+low+hematological+toxicity+compared+to+etoposide%5BTitle%5D)+AND+%22Neoplasia%22%5BJournal%5D)">A novel topoisomerase inhibitor, daurinol, suppresses growth of HCT116 cells with low hematological toxicity compared to etoposide.</a> Neoplasia. 13 (11), 1043-1057 (2011).</li>
<li>Chaudhuri, J., Parihar, M., Pires-daSilva, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+introduction+to+worm+lab%3A+from+culturing+worms+to+mutagenesis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">An introduction to worm lab: from culturing worms to mutagenesis.</a> J. Vis. Exp. (47), e2293(2011).</li>
<li>Zarse, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impaired+insulin%2FIGF1+signaling+extends+life+span+by+promoting+mitochondrial+L-proline+catabolism+to+induce+a+transient+ROS+signal%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Metab%22%5BJournal%5D)">Impaired insulin/IGF1 signaling extends life span by promoting mitochondrial L-proline catabolism to induce a transient ROS signal.</a> Cell Metab. 15 (4), 451-465 (2012).</li>
<li>Sutphin, G. L., Kaeberlein, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measuring+Caenorhabditis+elegans+life+span+on+solid+media%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Measuring Caenorhabditis elegans life span on solid media.</a> J. Vis. Exp. (27), e1152(2009).</li>
<li>Weimer, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((D-Glucosamine+supplementation+extends+life+span+of+nematodes+and+of+ageing+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Commun%22%5BJournal%5D)">D-Glucosamine supplementation extends life span of nematodes and of ageing mice.</a> Nat. Commun. 5, 3563(2014).</li>
<li>Schmeisser, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuronal+ROS+signaling+rather+than+AMPK%2Fsirtuin-mediated+energy+sensing+links+dietary+restriction+to+lifespan+extension%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Metab%22%5BJournal%5D)">Neuronal ROS signaling rather than AMPK/sirtuin-mediated energy sensing links dietary restriction to lifespan extension.</a> Mol. Metab. 2 (2), 92-102 (2013).</li>
<li>Parodi, D. A., Damoiseaux, R., Allard, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comprehensive+assessment+of+germline+chemical+toxicity+using+the+nematode+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Comprehensive assessment of germline chemical toxicity using the nematode Caenorhabditis elegans.</a> J. Vis. Exp. (96), e52445(2015).</li>
<li>Hahm, J. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((C.+elegans+maximum+velocity+correlates+with+healthspan+and+is+maintained+in+worms+with+an+insulin+receptor+mutation%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Commun%22%5BJournal%5D)">C. elegans maximum velocity correlates with healthspan and is maintained in worms with an insulin receptor mutation.</a> Nat. Commun. 6, 8919(2015).</li>
<li>Nussbaum-Krammer, C. I., Neto, M. F., Brielmann, R. M., Pedersen, J. S., Morimoto, R. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Investigating+the+spreading+and+toxicity+of+prion-like+proteins+using+the+metazoan+model+organism+C.+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Investigating the spreading and toxicity of prion-like proteins using the metazoan model organism C. elegans.</a> J. Vis. Exp. (95), e52321(2015).</li>
<li>Schmidt, B. Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+acute+and+developmental+neurotoxicity+screening%3A+an+overview+of+cellular+platforms+and+high-throughput+technical+possibilities%5BTitle%5D)+AND+%22Arch.+Toxicol%22%5BJournal%5D)">In vitro acute and developmental neurotoxicity screening: an overview of cellular platforms and high-throughput technical possibilities.</a> Arch. Toxicol. 91 (1), 1-33 (2017).</li>
<li>Fey, S. J., Wrzesinski, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determination+of+drug+toxicity+using+3D+spheroids+constructed+from+an+immortal+human+hepatocyte+cell+line%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicol.+Sci%22%5BJournal%5D)">Determination of drug toxicity using 3D spheroids constructed from an immortal human hepatocyte cell line.</a> Toxicol. Sci. 127 (2), 403-411 (2012).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

En este artículo, se describe la evaluación de la toxicidad de productos químicos en C. elegans, un nematodo de suelo, uso de etopósido como un ejemplo de sustancias tóxicos. Para ello, se utilizaron dos condiciones experimentales. En el primer set, C. elegans fueron cultivadas en etopósido que contiene placas de huevos a la etapa de adulto joven, y entonces los gusanos podían poner huevos en las placas NGM normales sin productos químicos. En el segundo set experimental, C. elegans fueron trata...

Evaluación toxicológica es esencial para el desarrollo de productos farmacéuticos y nutracéuticos, cosmecéuticos, así como la evaluación del riesgo de varias toxinas ambientales. El modelo de roedor es uno de los sistemas más populares en vivo experimentales para este estudio de la toxicología; por otra parte, organismos no mamíferos como C. elegans son también ampliamente utilizados. Modelos de evaluación toxicológica de mamíferos no son beneficiosos debido a no sólo animal cuestiones éticas, pero también su conveniencia y utilidad considerando rentabilidad, mantenimiento, velocidad y reproducibilidad1,2 ,3,4.
C. elegans, un suelo redondo gusano, ha sido explotado como un animal modelo en varios Investigación Biología y química básica y aplicada. Es un 1 mm de largo, nematodo transparente, que simplemente se mantiene en sólidos o líquidos nematodo crecimiento medios (NGM) alimentados con la cepa bacteriana de Escherichia coli OP50. C. elegans tiene un corto ciclo de vida y tipo N2 C. elegans pone unos 300 huevos. Por lo tanto, se reproduce fácilmente para ser utilizado como material experimental3,4,5. C. elegans ha sido también ampliamente utilizado en los estudios toxicológicos de muchos fármacos y contaminantes ambientales6,7,8,9.
Porque muchas drogas anticáncer destino rápidamente dividir las células cancerosas, también pueden dañar rápidamente dividiendo las células normales como médula ósea, epitelio intestinal y las células del folículo del pelo. Por ejemplo, fármacos antineoplásicos inhibidores topoisomerasa blanco el proceso de replicación del ADN de las células cancerosas; por lo tanto, inhiben rápidamente dividiendo las células normales. Todo organismo vivo tiene Topoisomerasas y estos topoisomerase inhibidores más probable impacto ambiental de los ecosistemas6,10,11. Así, una plataforma de evaluación toxicológica de drogas usando un animal modelo es valiosa para ambos el desarrollo de fármacos y evaluación del riesgo medioambiental.
En este artículo, se describen los protocolos detallados para probar la toxicidad de etopósido, que es un agente contra el cáncer clínico objetivos del topoisomerase II, como una sustancia química tóxica de modelo en C. elegans. Para ello, describiremos el método de medición del tamaño corporal y el número total de huevos puestos en C. elegans tratados con etopósido.

<table><tbody><tr><td>Agar</td><td>Affymetrix, EE. UU</td>. <td>10906</td><td></td></tr><tr><td>Caenorhabditis elegans N2</td><td>Caenorhabditis Genetics Center (CGC)</td><td></td><td>Colesterol de tipo salvaje</td></tr><tr><td></td><td>Sigma, EE. UU</td>. <td>C3045</td><td></td></tr><tr><td>Dimetilsulfóxido Sigma</td><td>, EE. UU</td>. <td>D2650</td><td></td></tr><tr><td>Escherichia coli OP50</td><td>Centro de Genética de Caenorhabditis (CGC)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Etopósido</td><td>Sigma, EE. UU.</td><td>E1383</td><td></td></tr><tr><td>Image J software (ver 1.4)</td><td>Instituto Nacional de Salud, EE. UU.</td><td></td><td>https://imagej.nih.gov/ij/</td></tr> <tr><td>Cámara microscópica</td><td>Jenopitk, Progress Gryphax, Alemania</td> Peptone Merck, EE<td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>. UU.</td><td>107213</td><td></td></tr><tr><td>35 &times; Placa de Petri de 10 mm</td><td>SPL Ciencias de la Vida, Corea del Sur</td><td>10035</td><td></td></tr><tr><td>90 &times; 15 mm Placa de Petri</td><td>SPL Life Sciences, Corea del Sur</td><td>10090</td><td></td></tr><tr><td>Microscopio estereoscópico</td><td>Nikon, Japón</td><td>SMZ800N</td><td></td></tr><tr><td>Extracto de levadura</td><td>Becton Dickinson, Estados Unidos</td><td>212750</td><td></td></tr></tbody></table>

medir el efecto de productos químicos sobre el crecimiento y reproducción de caenorhabditis elegans

Measuring the Effect of Chemicals on the Growth and Reproduction of Caenorhabditis elegans

Evaluación toxicológica es crucial para entender los efectos de sustancias químicas en los organismos vivos en los campos de la ciencia biológica básica y aplicada. Un suelo no mamíferos ronda gusano, Caenorhabditis elegans, es un organismo modelo valioso para estudios de Toxicología por su comodidad y la falta de temas de ética animal en comparación con sistemas de animales mamíferos. En este protocolo, se describe un procedimiento detallado de evaluación toxicológica de sustancias químicas en C. elegans . Un medicamento contra el cáncer clínico, etopósido, que dirige humano topoisomerasa II e inhibe la replicación del ADN de las células cancerosas humanas, fue seleccionado como modelo de pruebas químicas. Edad-sincronizado C. elegans huevos estaban expuestos a dimetilsulfóxido (DMSO) o etopósido, y entonces el crecimiento de C. elegans fue monitoreado cada día durante 4 días por la observación del microscopio estéreo. El número total de huevos puestos de C. elegans tratados con DMSO o etopósido también fue contado utilizando el microscopio estéreo. Etoposide tratamiento afectó significativamente el crecimiento y la reproducción de C. elegans. Por la comparación del número total de huevos de gusanos con períodos diferentes de tratamiento de productos químicos, se puede decidir que la toxicidad para la reproducción de productos químicos en la reproducción de C. elegans es reversible o irreversible. Estos protocolos pueden ser útiles para ambos el desarrollo de varias drogas y evaluación de riesgos de sustancias tóxicas ambientales.

El tratamiento de etopósido (24-96 h) había retarda significativamente el crecimiento de C. elegans. Después de 96 h de incubación, gusanos tratados con etopósido crecieron 0,86 mm de longitud corporal, mientras que los gusanos tratados con vehículo crecieron a 1,04 mm (figura 1). Retraso de crecimiento se observó también al parecer bajo observación microscopio estéreo (figura 2). Empezamos a ver los huevos de los gusano...

Se describe un protocolo básico para evaluar la toxicidad de productos químicos en un animal modelo, elegans de Caenorhabditis. El método es conveniente y útil para el desarrollo de productos farmacéuticos, así como para la evaluación del riesgo de diversos contaminantes ambientales.

Medir el efecto de productos químicos sobre el crecimiento y reproducción de Caenorhabditis elegans

Toxicological evaluation is crucial for understanding the effects of chemicals on living organisms in basic and applied biological science fields. A ...

El objetivo general de este procedimiento es medir el efecto de productos químicos, como el inhibidor de la topoisomerasa etopósido, en el crecimiento y la reproducción del animal modelo Caenorhabditis elegans. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la toxicología, como la evaluación toxicológica para el desarrollo de medicamentos y la evaluación de riesgos de tóxicos ambientales. La principal ventaja de esta técnica es que la toxicidad de diversos productos químicos puede comprobarse en sistemas no mamíferos, por lo que esta técnica es cómoda y rentable.La demostración del procedimiento estará a cargo de So Young Lee, un estudiante graduado de mi laboratorio. Para comenzar, prepare dos botellas de vidrio limpias de 200 mililitros agregando 0,6 gramos de cloruro de sodio, 0,5 gramos de peptona, 3,4 gramos de agar, 195 mililitros de agua destilada y un agitador magnético a una botella. A continuación, añade un agitador magnético a la otra botella vacía.Esterilizar las botellas en autoclave durante 15 minutos a 121 grados centígrados y luego enfriar las botellas en un baño de agua durante 30 minutos a 55 grados centígrados. A continuación, a la botella ll

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Un ensayo para medir los efectos del etanol sobre la velocidad de locomoción<em&gt; Caenorhabditis elegans</em

Aquí detallamos protocolos específicamente diseñados para monitorear los defectos morfogénicos que ocurren durante las fases tempranas y tardías de la elongación embrionaria del nematodo Caenorhabditis elegans. En última instancia, estos protocolos están diseñados para identificar los genes que regulan estas fases y caracterizar sus requisitos diferenciales a lo largo del eje antero-posterior del embrión.

Las métricas para caracterizar nuevos embrionarias Alargamiento del nematodo<em&gt; Caenorhabditis elegans</em

Se ha desarrollado un método cuantitativo para identificar y predecir la toxicidad de productos químicos, analizando automáticamente los perfiles fenotípicos de Caenorhabditis elegans. Este protocolo describe cómo tratar gusanos con productos químicos en una placa de 384 pozos, capturar videos y cuantificar fenotipos relacionados toxicológicos.

Un análisis de alto rendimiento para la predicción de toxicidad química por perfiles fenotípicos automatizado de Caenorhabditis elegans

Los efectos trans y multigeneracionales de los productos químicos persistentes son esenciales para juzgar sus consecuencias a largo plazo en el medio ambiente y en la salud humana. Proporcionamos métodos detallados novedosos para estudiar los efectos trans y multigeneracionales utilizando nematodo de vida libre Caenorhabditis elegans.

Uso de Caenorhabditis elegans para el estudio de los efectos trans y multigeneracionales de los tóxicos

Este protocolo describe cómo medir la permeabilidad intestinal de Caenorhabditis elegans. Este método es útil para la investigación biológica básica sobre la salud intestinal relacionada con la interacción entre las bacterias intestinales y su huésped y para la detección para identificar agentes probióticos y químicos para curar el síndrome del intestino con fugas y enfermedades inflamatorias intestinales.

Medición de los efectos de las bacterias y los productos químicos en la permeabilidad intestinal de los ceganes

Los nematodos Caenorhabditis elegans adultos jóvenes están expuestos a diferentes concentraciones de pesticidas comerciales u otros tóxicos durante 2-24 h. Luego, se pueden visualizar diferentes neuronas utilizando cepas que expresan fluorescentes. Este artículo demuestra cómo exponer los nematodos a los pesticidas y evaluar el daño neuronal.

Examinando el efecto de los pesticidas en las neuronas caenorhabditis elegans

Aquí, presentamos un método general para determinar la viabilidad embrionaria y el número total de embriones producidos (cría) utilizando el organismo modelo C. elegans.

Medición de la viabilidad embrionaria y el tamaño de la cría en Caenorhabditis elegans

Aprende a evaluar la toxicidad química en Caenorhabditis elegans mediante un protocolo que mide crecimiento y reproducción. Este método económico facilita el desarrollo farmacéutico y la evaluación de riesgos ambientales.

Medir el efecto de productos químicos sobre el crecimiento y reproducción de Caenorhabditis elegans

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