Name: Una base de RANKL osteoclasto cultura ensayo de médula ósea de ratón para investigar el papel de mTORC1 en la formación de osteoclastos (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-03-15T12:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 37 s
Description: Aprende a cultivar osteoclastos in vitro a partir de médula ósea de ratón usando RANKL. Este protocolo permite generar osteoclastos gigantes en una semana para estudiar el papel de mTORC1 en la diferenciación ósea y avanzar en terapias contra la osteoporosis.

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Los autores agradecen a Dr. Minghan Tong y S. Kato para ratones y reactivos que amablemente. Agradecemos a los miembros del laboratorio de Zou para discusiones útiles. Este trabajo fue apoyado en parte por subvenciones de 973 programa del Ministerio Chino de ciencia y tecnología (MOST) [2014CB964704 y 2015CB964503], programa de investigación clínica del Hospital de 9 personas, Shanghai Jiao Tong University School of Medicine. Gracias por la ayuda de instalaciones centrales para la biología de la célula e instalaciones centrales de Biología química, CAS centro de excelencia en Ciencia Molecular de la célula, Instituto Shanghai de Bioquímica y biología celular, Academia China de Ciencias.

Todos los procedimientos relativos a los animales se realizaron según el protocolo aprobado por el Panel administrativo de Stanford en el laboratorio Animal Care (APLAC) y fueron aprobados por el cuidado de animales y uso del Instituto de Shanghai de Bioquímica y celular Biología.
1. preparación
<ol><li>Generar ratones de eliminación específicas de Raptor en osteoclastos (Raptorfl/fl; Ctsk-cre, en adelante RapCtsk) apareamiento Raptorfl/fl ratones ratones de Ctsk-cre . Usar los ratones Raptorfl/fl como el control de peso en este estudio.</li>
	<li>Tener un recipiente con hielo para mantener el hueso aislado.</li>
	<li>
Preparar medio de cultivo.
	<ol>
<li>Preparar medio de cultivo MEM α complementando alfa medio esencial mínimo (α-MEM) con 1 x glutamina, penicilina-estreptomicina y 10% de suero de ternero fetal.</li>
		<li>Preparar el medio de inducción de macrófagos de médula ósea consisten en 50 mL de medio MEM α y M-CSF 20 ng/ml.</li>
		<li>Preparar el medio de inducción de osteoclastos que consta de M-CSF y RANKL a 20 ng/mL, respectivamente, en 50 mL de medio de α-MEM.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Preparar los siguientes buffers antes de la tinción de la trampa.
	<ol>
<li>Preparar la solución de fix de 6,5 mL de acetona, 2,5 mL de solución de citrato y 0,8 mL de solución de formaldehído (vol/vol) de 37%.</li>
		<li>Preparar solución de tinción de la trampa.<ol>
<li>Precaliente agua desionizada a 37 ° C.</li>
			<li>Añadir 100 μl de solución de base de GBC rápido granate y 100 μl de solución de nitrito de sodio en un microtubo de 1,5 mL y mezclar por inversión suave para 30 s. deje la mezcla reposar 2 minutos.</li>
			<li>Precalentamiento 9 mL de agua desionizada a 37 ° C. Añadir 200 μL de la solución base de GBC diazotado rápido granate de paso 1.4.2.2, 100 μl de solución de fosfato de naftol AS-BI, 400 μL de solución de acetato y 200 μL de solución de tartrato.</li>
			<li>Mantener la trampa de coloración de la solución de la mezcla en un baño de agua a 37 ° C.</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Preparar el siguiente buffer antes de cuantificación de actividad de trampa del medio de cultivo.
	<ol>
<li>Preparar el tampón tartrato (50 mL): 2 mL de ácido L-tartárico de 0,33 M, 48 mL de tartrato de sodio de 0,33 M dibásico deshidratar. Ajustar el pH a 4.9.</li>
		<li>Preparar (200 mL) de tampón 4-nitrofenil fosfato disódico (pNFF): 1,502 g de glicina, 41 mg de MgCl2, 27,2 mg de vivencias2y 180 mL de agua desionizada. Ajustar el pH a 10.4 con 3 M NaOH y el volumen a 200 mL con agua desionizada.</li>
		<li>Preparar pNFF buffer con un sustrato de la fosfatasa (para una placa de 96 pocillos): 49,37 mg de sustrato de la fosfatasa y 175 μl de tampón de pNFF de paso 1.5.2.</li>
		<li>Preparación de buffer de sustrato (9 mL/96-well plate): 6,24 mL de agua desionizada, 360 μL de solución de acetato y 2,4 mL de buffer de tartrato. Mezclar por vortex y precaliente a 37 ° C antes de usar.</li>
		<li>Agregar 90 μL de tampón de pNFF con fosfatasa substrate(1.5.3) a 9ml de sustrato precalentado buffer(1.5.4) para hacer una mezcla de sustrato y de vortex por 10 s.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. disección (día -1)
<ol><li>Eutanasia por separado 3 one-month-old WT y RapCtsk ratones femeninos por CO2 . Realizar la inhalación de CO2 con el equipo adecuado por personal capacitado.</li>
	<li>Sumerja 6 ratones en un vaso de precipitados con 100 mL de etanol al 75% (vol/vol) durante 5 min evitar la contaminación bacteriana y luego colocar en una mesa de disección en una posición supina. Hacer una incisión en la parte distal de la tibia vertical y disecar la piel a lo largo de las extremidades con las tijeras oftálmicas.</li>
	<li>Cortar el ligamento intraarticular de la articulación de la cadera con unas tijeras y dislocar los miembros posteriores del tronco.</li>
	<li>Cortar el ligamento articular de la articulación de la rodilla y disociar cuidadosamente la tibia y el fémur de articulación de la rodilla. Retire con cuidado el tejido suave con las tijeras.</li>
	<li>Colocar todos los huesos de un genotipo en de un ratón en cada pocillo de una placa de 6 pozos con 2 mL de α-MEM en el hielo. Nota: Para preservar la viabilidad celular, el hueso debe ser mantenido en estas condiciones por menos de 1 h.</li>
</ol>3. aislamiento (día -1)
<ol><li>Llenar un pocillo de una placa de seis pozos con etanol al 75% (3 mL) y los otros 5 pozos con medio de α-MEM (3 mL).</li>
	<li>Poner todos los huesos de un genotipo en el lavado de etanol para 15 huesos s y lavar 5 veces con medio de α-MEM de 10 s cada vez.</li>
	<li>Cortar las epífisis con la tijera e Inserte una aguja de jeringa 0.45 mm en la cavidad y lavado médula hacia fuera con medio MEM de α en un tubo de centrífuga de 50 mL.</li>
	<li>Limpie la cavidad del hueso utilizando el mismo método desde el otro extremo del hueso. Repetir al menos dos veces para lavar la cavidad ósea completamente hasta que el hueso es pálido.</li>
	<li>La médula ósea para obtener un pellet de células a 800 x g y 4 ° C por 5 min aspirar el sobrenadante de la centrífuga.</li>
	<li>Añadir 3 mL de tampón de lisis de glóbulos rojos en el tubo de centrífuga y la pipeta suavemente para Resuspender la médula ósea. Mantenga el tubo de centrífuga en el hielo durante 8 min a lyse células de sangre rojas.</li>
	<li>Añadir 6 mL de medio MEM de α en el tubo de la centrífuga para detener la lisis celular. Centrifugar a 500 x g y 4 ° C por 10 min y aspirar el sobrenadante.</li>
	<li>Resuspender en 3 mL de medio de cultivo MEM α y colocar las células en una placa seis-bien (generalmente un ratón por pozo).</li>
	<li>Incubar a 37 ° C en un incubador de 5% CO2 durante la noche.</li>
</ol>4. galjanoplastia (día 0)
<ol><li>Transferir el sobrenadante a un tubo de centrífuga de 15 mL para recoger células sueltas a la mañana siguiente.</li>
	<li>Centrifugue a 800 x g y 4 ° C por 5 min y aspirar el sobrenadante.</li>
	<li>Resuspender en 4 mL de medio de cultivo MEM α.</li>
	<li>Tomar 20 μl de la solución de células y mezclar con 20 μl de azul tripán. Añadir 10 μl de la mezcla a la cámara de conteo y obtener el conteo de células por mL de solución.</li>
	<li>Añadir un volumen adecuado de medio de cultivo MEM α para obtener una solución de celdas de 500.000 células/mL.</li>
	<li>Añadir 500 μl y 50 μl de medio de inducción de macrófagos de médula ósea en cada pocillo de una placa de 24 pozos y placa de 96 pocillos, respectivamente.</li>
	<li>Añadir 500 μl y 50 μl de la solución celular en cada pocillo de una placa de 24 pozos y placa de 96 pocillos, respectivamente.</li>
	<li>Incubar a 37 ° C en un incubador de 5% CO2 durante 3 días.</li>
</ol>5. diferenciación (días 3-7)
<ol><li>Tres días después de la galjanoplastia, recoger 50 μl de medio de cada pocillo de la placa de 96 pozos y congelar a-20 ° C y luego aspirar el medio residual.</li>
	<li>Añadir 1 mL y 100 μl de los osteoclastos inducción de medio en cada pocillo de una placa de 24 pocillos y una placa de 96 pozos, respectivamente.</li>
	<li>Incubar a 37 ° C durante 2 días.</li>
	<li>Recoger 50 μl del medio de cada pozo y aspirar el medio residual.</li>
	<li>Añadir el medio de inducción de osteoclastos en cada pozo.</li>
	<li>Incubar a 37 ° C por 1 día. Nota: En este momento, grandes, multinucleados osteoclastos puede considerarse bajo un microscopio invertido (figura 2A).</li>
	<li>Si no se observan osteoclastos, cambiar el medio de inducción de los osteoclastos y observar todos los días hasta que aparecen los osteoclastos.</li>
	<li>Recoger 50 μl del medio de cada pocillo de la placa de 96 pocillos después de osteoclastos han formado.</li>
</ol>6. tartrato fosfatasa ácida resistente (TRAP) tinción
Nota: Los osteoclastos maduros pueden presentar después de 6-7 días de cultivo en vitro (paso 4).
<ol><li>Medio de aspirar y lavar suavemente 3 veces con 1 x PBS.</li>
	<li>Fijar las células en cada pocillo de la placa de 96 pocillos con 100 μl de solución de solución de 30 s a temperatura ambiente.</li>
	<li>Después de la fijación, Aspire la solución de fix y lavar suavemente 3 veces con agua desionizada precalentada a 37 ° C. Aspire agua desionizada.</li>
	<li>Añada 100 μl de mancha de trampa en cada pocillo de la placa de 96 pocillos y colocar la placa en una incubadora a 37 ° C por 30 min y protector de la luz.</li>
	<li>Después de la tinción, Aspire la mancha trampa y suavemente Lave 3 veces con agua desionizada.</li>
	<li>Osteoclastos de imagen usando un microscopio invertido con 40 aumentos.</li>
</ol>7. la trampa cuantificación de actividad de medio de cultivo
<ol><li>Recoger el sobrenadante de la cultura de 30 μl de cada pocillo de la placa de 96 pocillos en el paso 5.1, 5.4 y 5.8; Utilizar 30 μl de medio de inducción no cultivadas de los osteoclastos como control negativo. Coloque las muestras en una nueva placa de 96 pocillos.</li>
	<li>Agregar 90 μL de substrato mixture(1.5.5) en cada pocillo de la placa de 96 pocillos.</li>
	<li>Colocar la placa en una incubadora a 37 ° C por 1 h y escudo de la luz.</li>
	<li>Detener la reacción agregando 50 μl de NaOH M 3 en cada pocillo de la placa de 96 pocillos.</li>
	<li>Medida theabsorbance en la longitud de onda de 405 nm.</li>
</ol>8. Western Blotting
Nota: Después de 6-7 días de cultivo en vitro en la placa de 24 pocillos, osteoclastos maduros deben ser visibles.
<ol><li>Aspire el medio.</li>
	<li>Lave suavemente con pre-enfriado de 1 x PBS 3 veces.</li>
	<li>Aspire el PBS.</li>
	<li>Añada 100 μl de 1 x SDS lysis buffer que contiene inhibidor de la proteasa cóctel.</li>
	<li>Lisados de calor a 105 ° C por 10 min y centrifugar a 12.000 x g y 4 ° C durante 10 minutos recogen el sobrenadante que contiene las proteínas.</li>
	<li>Separe los lisados que contiene 30 μg de proteína 10% SDS-PAGE11 y luego se transfieren a una membrana de polivinilideno (PVDF) de fluoruro.</li>
	<li>Bloquear las membranas con leche descremada en polvo 5% durante 30 minutos.</li>
	<li>Incubar las membranas con el Raptor, anti-P-S6, S6 anti, anti-β-actina en el 1:1,000 de dilución de leche descremada 5% a 4 ° C durante la noche.</li>
	<li>Lavar las membranas con Tris amortiguada salina con Tween-20 (TBST) por 10 min a temperatura ambiente.</li>
	<li>Repita el paso 8.9 dos veces.</li>
	<li>Incubar las membranas con peroxidasa de rábano (HRP)-conjugado de anticuerpos IgG anti-ratón o conejo en 1:5,000 dilución en la leche descremada en polvo 5% durante 1 h a temperatura ambiente.</li>
	<li>Lavar las membranas 3 veces con TBST durante 10 min a temperatura ambiente.</li>
	<li>Para detección quimioluminiscente, añadir sustrato quimioluminiscente occidental de HRP en las membranas e incubar 5 min a temperatura ambiente. Drenar el sustrato sobrante y exponer la bienvenida a la película de rayos x.</li>
</ol>

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</ol>

Todos los autores afirman que tienen no hay conflictos de intereses.

El ensayo de osteoclastogenic es el método más utilizado para aislar y cultura osteoclastos en vitro12,13. Mientras que varias inducciones basadas en RANKL osteoclasto se han descrito13,14,15, el presente estudio describe un protocolo con algunas modificaciones basadas en los métodos anteriores.
En el estudio anterior, eran placas BMM...

El hueso es un órgano siempre-que cambia y es remodelado por osteoblastos y osteoclastos durante toda la vida. Osteoclastos se encargan de la resorción de la matriz mineralizada y osteoblastos sintetizan y secretan nuevo hueso matrices1. El equilibrio entre la reabsorción ósea y formación ósea es crucial para la salud de los huesos incluyendo el mantenimiento del hueso masa y respuesta a la estimulación y lesiones. Si este equilibrio se interrumpe, puede ocurrir una serie de enfermedades metabólicas óseas, incluyendo osteoporosis y enfermedades periodontales. En estas enfermedades, pérdida de masa ósea resultante de la resorción ósea osteoclástica supera el hueso formando capacidad de osteoblastos2,3. Así, con el fin de desarrollar objetivos farmacéuticos para tratar trastornos esqueléticos como la osteoporosis, es fundamental para entender la generación y la biología de osteoclastos4.
Osteoclastos son las células multinucleated gigante únicas localizadas en o cerca de la superficie del hueso y pertenecen a la familia de monocito/macrófago1. Ibbotson K. J., et al. informó un método para generar células similares a osteoclastos en vitro con medio que contiene 1,25-dihidroxi-vitamina D35. La identificación del factor estimulante de colonias de macrófagos (M-CSF) y el receptor activador del ligando de factor nuclear-κ B (RANKL) como factores esenciales de la formación de osteoclastos ha aumentado dramáticamente la eficiencia de la osteoclastogénesis in vitro 1 , 6 , 7. la capacidad de cultura osteoclastos en vitro ha mejorado nuestra comprensión de la generación y regulación de los osteoclastos.
El mecanicista/mamíferos objetivo de rapamicina (mTOR) funciones en dos complejos estructuralmente y funcionalmente distintos, a saber mTORC1 y mTORC28,9. Los dos complejos son distintos unos de otros debido a sus diferentes componentes y sustratos aguas abajo. mTORC1 contiene la única proteína reguladoras asociadas de mTOR (Raptor), mientras mTORC2 contiene al rapamicina insensible compañero de mTOR (Powder)9. mTORC1 pueden integrar y transmitir señales importantes para regular la diferenciación, proliferación y crecimiento celular. Recientemente, hemos demostrado que eso mTORC1 desempeña un papel clave en la red de la resorción ósea catabólica por la eliminación de Raptor para inactivar mTORC1 en osteoclastos10. Sin embargo, los mecanismos subyacentes requieren estudio adicional. En el presente estudio, se utilizó un método basado en RANKL osteoclastogenic generar osteoclastos macrófagos derivados de médula ósea (BMMs) de tipo salvaje (WT) y ratones RapCtsk y estudiar la influencia de mTORC1 inactivación en osteoclastos formación.

<table><tbody><tr><td>Raptorfl/fl</td><td>ratones The Jackson Laboratory 013188</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ctsk-cre ratones</td><td></td><td></td><td>un regalo de S. Kato, Universidad de Tokio, Tokio, Japón</td></tr><tr><td>&alpha;-MEM</td><td>Corning</td><td>10-022-CVR</td><td></td></tr><tr><td>Glutamina</td><td>Gibico</td><td>25030081</td><td></td></tr><tr><td>Penicilina estreptomicina</td><td>Gibico</td><td>15140122</td><td></td></tr><tr><td>Suero fetal para terneros</td><td>BioInd</td><td>04-001-1A</td><td></td></tr><tr><td>Proteína M-CSF de ratón recombinante</td><td>R& D</td><td>Q3U4F9</td><td></td></tr><tr><td>Proteína RANKL recombinante de ratón</td><td>R& D</td><td>Q3TWY5</td><td></td></tr><tr><td>Tampón de lisis RBC</td><td>Beyotime</td><td>C3702</td><td></td></tr><tr><td>Azul de tripano</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>302643</td><td></td></tr><tr><td>Acetona</td><td>Shanghai Chemical Co. Ltd.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Solución de citrato</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>915</td><td></td></tr><tr><td>Solución de formaldehído</td><td>Shanghai Chemical Co., Ltd.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kit de fosfatasa ácida, leucocitos (TRAP)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>387A-1KT</td><td></td></tr><tr><td>Granate rápido GBC Solución base</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>3872</td><td></td></tr><tr><td>Solución de nitrito de sodio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>914</td><td></td></tr><tr><td>Naftol AS-BI Solución de fosfato</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>3871</td><td></td></tr><tr><td>Solución de acetato</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>3863</td><td></td></tr><tr><td>Solución de tartrato</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>3873</td><td></td></tr><tr><td>Solución salina tamponada con fosfato de Dulbecco</td><td>Corning</td><td>21-031-CVR</td><td></td></tr><tr><td>Ácido L-tartárico</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>251380</td><td></td></tr><tr><td>Tartrato de sodio dibásico deshidratado</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>s4797</td><td></td></tr><tr><td>Glycine</td><td>Shanghai Chemical Co. Ltd.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>MgCl2</td><td>Shanghai Chemical Co. Ltd.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ZnCl2</td><td>Shanghai Chemical Co. Ltd.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>NaOH</td><td>Shanghái Químico Co., Ltd.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sustrato de fosfatasa</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P4744</td><td></td></tr><tr><td>anti-Raptor</td><td>Tecnología de señalización celular</td><td>2280</td><td></td></tr><tr><td>anti-P-proteína ribosómica S6 (S235/236)</td><td>Tecnología de señalización celular</td><td>2317</td><td></td></tr><tr><td>proteína antirribosómica S6</td><td>Tecnología de señalización celular</td><td>2211</td><td></td></tr><tr><td>anti-&beta;-actina</td><td>Santa Cruz Biotecnología</td><td>sc-130300</td><td></td></tr><tr><td>37% formaldehído Xilong</td><td>membrana</td><td></td><td></td></tr><tr><td>científica de fluoruro de polivinilideno (PVDF)</td><td>Bio-Rad</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Western Chemiluminiscent HRP Substrate (ECL)</td><td>Millipore</td><td>00000367MSDS</td><td></td></tr><tr><td>IX71</td><td>Olympus</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Envision</td><td>Perkin Elmer</td><td></td><td></td></tr><tr><td>0,45 mm Jeringa Tijera</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinza</td><td></td><td></td><td></td> antimosquitos</tr></tbody></table>

una base de rankl osteoclasto cultura ensayo de médula ósea de ratón para investigar el papel de mtorc1 en la formación de osteoclastos

A RANKL-based Osteoclast Culture Assay of Mouse Bone Marrow to Investigate the Role of mTORC1 in Osteoclast Formation

Los osteoclastos son único hueso-resorbing células que diferencian del linaje monocito/macrófago de la médula ósea. Disfunción de los osteoclastos puede resultar en una serie de enfermedades metabólicas del hueso, incluyendo la osteoporosis. Para desarrollar objetivos de productos farmacéuticos para la prevención de pérdida de masa ósea patológica, se deben entender los mecanismos por el cual los osteoclastos diferencian de precursores. La capacidad de aislar y un gran número de osteoclastos en vitro la cultura es fundamental para determinar el papel de genes específicos en la diferenciación de los osteoclastos. Inactivación del mecanicista/mamíferos objetivo de rapamicina complejo 1 (TORC1) en osteoclastos puede disminuir el número de osteoclastos y aumenta la masa ósea; sin embargo, los mecanismos subyacentes requieren estudio adicional. En el presente estudio, se describe un protocolo basado en RANKL para aislar y cultura osteoclastos de médula ósea de ratón y estudiar la influencia de mTORC1 inactivación en la formación de osteoclastos. Este protocolo con éxito dio lugar a un gran número de osteoclastos gigantes, normalmente dentro de una semana. Supresión de Raptor deterioró la formación de osteoclastos y disminución de la actividad de la fosfatasa ácida tartrato resistente secretor, indicando que eso mTORC1 es fundamental para la formación de osteoclastos.

Mediante el presente Protocolo, un gran número de osteoclastos gigantes fueron visto el día 6; Si no se observan osteoclastos gigantes, un día más de diferenciación de osteoclastos puede ser necesario (figura 1). Formación de osteoclastos exitosa fue confirmada por trampa de tinción (figura 2A). Osteoclastos son células de color rojo/morado vino gigantes con más de 3 núcleos. Más de 250 osteoclastos se obtuvieron en cada pocillo ...

Este manuscrito describe un protocolo para aislar y la cultura osteoclastos en vitro de médula ósea de ratón y para estudiar el papel de lo mamíferos/mecanicista Diana de la rapamicina 1 complejo en la formación de osteoclastos.

Una base de RANKL osteoclasto cultura ensayo de médula ósea de ratón para investigar el papel de mTORC1 en la formación de osteoclastos

Osteoclasts are unique bone-resorbing cells that differentiate from the monocyte/macrophage lineage of bone marrow. Dysfunction of osteoclasts may result ...

El objetivo general de este protocolo es aislar y cultivar osteoclastos in vitro a partir de médula ósea de ratón y estudiar el papel de la diana de mamíferos del complejo uno de rapamicina en la formación de osteoclastos. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en la formación de osteoclastos, como el papel de mTORC1 en la diferenciación de los osteoclastos. La principal ventaja de esta técnica es que da como resultado una gran cantidad de osteoclastos gigantes en una semana.Las implicaciones de esta técnica se extienden hacia el tratamiento de la osteoporosis porque es útil estudiar el mecanismo por el cual los osteoclastos se diferencian de sus precursores. Para comenzar este procedimiento, haga una incisión vertical en el extremo distal de la tibia de un ratón sacrificado y diseccione la piel a lo largo de las extremidades traseras. A continuación, corte el ligamento articular de las articulaciones de la cadera con unas tijeras y disloque las extremidades traseras del tronco.Corta el ligamento articular de la articulación de la rodilla y disocia con cuidado la tibia y el fémur de él. Retire suavemente el tejido blando con unas tijeras. Coloque todos los huesos de un ratón en cada pocillo de una placa de seis pocillos con dos mililitros de alfa-MEM en hielo.Para el aislamiento, llene un pocillo de una placa de seis pocillos con etanol al 75% y los otros cinco pocillos con alfa-MEM. Coloque todos los huesos de un ratón en el lavado con etanol durante 15 segundos y luego lave los huesos cinco veces con alpha-MEM durante 10 segundos cada vez. Corta las epífisis con la tijera e inserta una aguja de jeringa de 0,45 milímetros en la cavidad ósea.Enjuague la médula con alfa-MEM en un tubo de centrífuga de 50 mililitros. A continuación, enjuague la cavidad ósea utilizando el mismo método desde el otro extremo del hueso. Repita al menos dos veces para lavar bien la cavidad ósea hasta que el hueso esté pálido.Posteriormente, centrifugar la médula ósea para obtener un pellet de células a cuatro grados centígrados durante cinco minutos. Después, aspira el sobrenadante. Agregue tres mililitros de tampón de lisis de glóbulos rojos en el tubo de centrífuga y pipetee suavemente para resuspender la médula ósea.Luego, mantenga el tubo de centrífuga en hielo durante ocho minutos para lisar los glóbulos rojos. Después de ocho minutos, agregue seis mililitros de alfa-MEM en el tubo de centrífuga para detener la lisis celular. Centrifugar a 800 g y cuatro grados centígrados durante 10 minutos, y aspirar el sobrenadante.Luego, vuelva a suspender en tres mililitros de medio de cultivo alfa-MEM y coloque las células en una placa de seis pocillos. Incubar a 37 grados centígrados durante la noche. En este paso, transfiera el sobrenadante a un tubo de centrífuga de 15 mililitros para recoger las células no adheridas a la mañana siguiente.A continuación, centrifugar a 800 g y cuatro grados centígrados durante cinco minutos y aspirar el sobrenadante. A continuación, vuelva a suspender las células en cuatro mililitros de medio de cultivo alfa-MEM. Tome 20 microlitros de la solución celular y mezcle con 20 microlitros de Azul de Tripán.Posteriormente, agregue 10 microlitros de la mezcla a la cámara de conteo y obtenga el recuento de células por mililitro de solución. A continuación, añada un volumen adecuado de medio de cultivo alfa-MEM para obtener una solución celular de 500.000 células por mililitro. A continuación, agregue 500 microlitros y 50 microlitros de medio de inducción de macrófagos de médula ósea en cada pocillo de una placa de 24 pocillos y una placa de 96 pocillos, respectivamente.Luego, agregue 500 microlitros y 50 microlitros de solución celular en cada pocillo de una placa de 24 pocillos y una placa de 96 pocillos, respectivamente. Incubar a 37 grados centígrados durante tres días. Tres días después de la siembra, recoja 50 microlitros de medio de cada pocillo de la placa de 96 pocillos y congélela a 20 grados centígrados negativos.A continuación, aspire el medio residual. Agregue un mililitro y 100 microlitros de medio de inducción de osteoclastos en cada pocillo de una placa de 24 pocillos y una placa de 96 pocillos, respectivamente. Incubar a 37 grados centígrados durante dos días.Después de dos días, recoja 50 microlitros de medio de cada pocillo y aspire el medio residual. A continuación, se añade el medio de inducción de osteoclastos en cada pocillo y se incuba a 37 grados centígrados durante un día. Después de que se hayan formado los osteoclastos, recoja 50 microlitros de medio de cada pocillo de la placa de 96 pocillos.En este paso, aspire el medio y lave la muestra suavemente tres veces con 1X PBS. A continuación, fije las celdas de cada pocillo de la placa de 96 pocillos con 100 microlitros de solución fija durante 30 segundos a temperatura ambiente. Después de la fijación, aspire la solución fija y lave las células suavemente tres veces con agua desionizada precalentada a 37 grados centígrados.Luego, aspire el agua desionizada y agregue 100 microlitros de tinte TRAP en cada pocillo de la placa de 96 pocillos. Coloque la placa en una incubadora a 37 grados centígrados durante 30 minutos y protéjala de la luz. Después de teñir, aspire la mancha TRAP y lave suavemente tres veces con agua desionizada.Posteriormente, obtenga imágenes de los osteoclastos en un microscopio invertido con un aumento de 40X. Luego, transfiera 30 microlitros del medio recolectado anteriormente a una nueva placa de 96 pocillos. A continuación, agregue 90 microlitros de mezcla de sustrato en cada pocillo de la placa de 96 pocillos.Coloque la placa en una incubadora a 37 grados centígrados durante una hora y protéjala de la luz. Después de una hora, detenga la reacción agregando 30 microlitros de hidróxido de sodio de tres molares en cada pocillo de la placa de 96 pocillos. A continuación, mida la absorbancia en la longitud de onda de 405 nanómetros con el lector de placas multietiqueta EnVision.Esta es la vista representativa de los osteoclastos observados en campo claro en el sexto día. La línea roja delineaba el borde de los osteoclastos. Y aquí se muestra un osteoclasto típicamente gigante, multinucleado y positivo para TRAP.La flecha negra indicaba dos núcleos del osteoclasto multinucleado. Esta figura muestra la tinción TRAP de BMMs en el sexto día. Se muestran imágenes de gran aumento de los cuadrados en los grupos knockout de tipo salvaje y Ctsk-Cre Raptor, respectivamente.Estos eran osteoclastos menos gigantes, TRAP positivos, formados en los BMM knockout Ctsk-Cre Raptor en comparación con el grupo de tipo salvaje. Esta figura muestra la actividad TRAP de BMMs cultivados de tipo salvaje y Ctsk-Cre Raptor knockout. Una vez dominada, esta técnica se puede realizar en una semana si se realiza correctamente.Al intentar este procedimiento, es importante recordar mantener la viabilidad de los macrófagos de la médula ósea, ya que la densidad óptima de siembra de macrófagos viables de la médula ósea es fundamental. Se recomienda mantener el hueso en hielo no más de una hora y resuspender las células suavemente. Este procedimiento puede combinarse con otros métodos, como el ensayo de reabsorción de osteoclastos con cortes de hueso, para estudiar la fisiología normal y patológica de los osteoclastos.Con este método, descubrimos que mTORC1 desempeña un papel importante en la formación de osteoclastos, lo que puede actuar como una diana farmacológica potencial para el tratamiento de trastornos metabólicos óseos, como la osteoporosis, en el futuro.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Developmental Biology

Biología del Desarrollo

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